Name: Karbon Siyah Mürekkep İntravasküler Perfüzyon Serebral Gemiler Güvenilir Görselleştirme verir (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 16 s
Description: Öğrenin, farelerde serebral damarları görselleştirmek için karbon siyah mürekkep perfüzyon yöntemini. Bu teknik, inme araştırmalarında vasküler anatomiyi güvenilir şekilde analiz etmeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz video çekimi hazırlık düzenlemek için onu mükemmel teknik destek ve Mahesh Kumar Teli için Britta kaltwasser teşekkür etmek istiyorum.

1. Hayvanlar <ol><li> Deneyler laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için NIH kılavuzunda göre yürütülen ve yerel otoriteler tarafından onaylanmıştır. Tüm deneyler için, C57Bl6 / J yabani tip fareler, Apolipoprotein - / - (ApoE KO) ve (12-16 haftalık, 26-30 g vücut ağırlığı, deneysel grup başına 5-6 hayvan) SV129 fareler kullanılmıştır. </li></ol> 2. Renkli Latex ile Serebral Gemiler Boyanması <ol><li> EP bir tüp içinde bir 01:20 oranında lateks bileşiğin 0.5 ml (Pebeo, Fransa) ile 25 ul karbon siyah mürekkep (Herlitz, Almanya) oluşan bir karışım hazırlayın ve bir su banyosu içinde 37 ° C &#39;de karışım ısıtın. Hayvan bayıltmadan önce 28-30G bir iğne ile bir 2 ml şırınga içinde karışım toplayın. </li><li> Steril serum fizyolojik 1 ml içine papavarine hidroklorür toz 50 mg çözülür. Bir insülin şırınga çözümü toplayın. Başka steril insülin şırınga iğne kopartıp. Bir 20 ° C sonunda bu iğne yerleştirinm uzunluğunda PE10 tüp. Şimdi vazodilatasyon ve damarların uygun dolgu sağlamak için femoral ven yoluyla enjekte edilecek papavarine hidroklorür solüsyonu içeren insülin şırınga iğnesi bu PE10 tüp takın. </li><li> Başka bir iki insülin şırıngası tuzlu her birini içeren 1 ml hazırlayın. İnsülin iğneleri kesin bir yerde enjekte edilen sıvı düzgün teslimat sağlar. Ancak, lateks, alternatif hareketli daha geniş bir iğne ile 1 ml şırınga yüksek viskoziteye bağlı olarak kullanılmalıdır. </li><li> İşletme aşamasında yakın tüm şırınga ve steril kesme aletleri alın. Operasyon sahne etrafında bir cerrahi manifaturacı levha yayın. Işlem aşama yeterince ışıklı edilmesi ve gerekirse bir ameliyat mikroskobu kullanılabilir. </li><li> Şimdi bir C57Bl6 / J fare vücut ağırlığı ölçmek ve daha sonra% 5% 70 N 2 O ve% 30 O 2 izofluran buharlaşmış anestezi neden. Buharlaşmış izofluran% 1 ile anestezi devam edin. Uygun Positionin sonraekstremitelerin sırtını ve fiksasyon üzerinde fare g, anestezi derinliği değerlendirmek. Sonra sol femoral ven üzerinde cilt kesmek ve damar bulun. PE10 boru üzerine yerleştirilen iğne sivri ucu takın ve yavaş yavaş dakika başına 100 ul (50 mg / kg vücut ağırlığı) bir oranda papavarine hidroklorür çözelti enjekte edilir. </li><li> Enjeksiyonu takiben karın boşluğu ve delgi diyafram kesti. Bu zarar veya morarma olmadan kalp açığa kaburga kesin. Bir arter forsepsi ile inen torasik aorta klipsleyin. Venöz kan dışarı akmasını sağlamak için sağ atrium üzerinde keskin bir kesim olun. 18-20 sn üzerinde hafif basınç ile elle renkli lateks enjekte ardından, sol ventrikül içine serum fizyolojik 2 ml enjekte edilir. Önceden doldurulmuş şırıngalar birbiri ardına kullanın. Herhangi kabarcıklar enjekte kaçının. </li><li> Lateks enjeksiyonundan sonra 5 dakika için hayvan bırakın. Hayvan başını kesmek ve dikkatlice tüm beyin çıkarın. Gemi mimarisi ve corte kesmemeye iyi bakx kafatası kemiği ve meninks çıkarırken. Fotoğraf çekmek için% 4 PFA 6-8 ml&#39;lik 60 mm hücre kültür çanak beyin yerleştirin. Şeffaf çanak altında bir ölçüm cetvel yerleştirin. Operasyon mikroskobu bağlı bir kamera ile dorsal ve beynin ventral yüzeyi bir 25x büyütme fotoğraflar çekin. Resimler orijinal mesafeyi ölçmek amacıyla Petri kabı ve mikroskop objektif arasındaki 90 ° açıyla alınmalıdır. </li><li> Başka 4-5 hayvanlarda işlemi tekrarlayın. </li></ol> 3. Karbon Siyahı Mürekkepler karışımı ile Serebral Gemiler Boyanması <ol><li> Bizim protokol ile lateks bazlı serebral vasküler boyanma sonuçlarını karşılaştırmak için, bir 1.5 ml EP tüp Pelican Scribtol Schwarz mürekkep (CB2) 900 ul Herlitz Stempelfarbe mürekkep (CB1) 100 ul karışımı hazırlayın. Bir 01:09 oranında CB1 ve CB2 2 ml karışımının bir toplam hacim yapmak için iki EP tüp hazırlanır. Iki ayrı insülin şırıngası (1 içinde karışım toplayınml her). 37 ° C&#39;ye kadar ısınmasını şırınga kap ve su banyosu koyun Başka iki insülin şırıngaları salin 2 ml toplayın, ve de bir su banyosunda koyun. </li><li> Hayvan anestetize ve papavarine hidroklorür enjeksiyon için haricinde yukarıda açıklandığı gibi aynı prosedür tekrarlayın. Sol ventrikül içine 2 ml salaine enjeksiyonu takiben, karbon siyah mürekkep yerine renkli bir lateks 2 ml karışımı enjekte edilir. Ml başına 18-20 sn üzerinde hafif basınç ile elle enjeksiyonları gerçekleştirin. Enjeksiyonları öncesinde inen torasik aorta klipsleyin. </li><li> Hayvan Kurban, beyin çıkarın ve fotoğraf çekmek. </li><li> Yüzen beyin tamamen submerges kadar beynin uzun süreli korunması için, (% 5% 15 izledi ve ardından% 30) giderek artan konsantrasyon ile sukroz ile inkübasyon PFA gecede izledi% 4 beyin koymak. Renkli lateks ile perfüze hayvanların beyinlerinin de aynı şekilde muhafaza edilebilir. </li><li> GerçekleştirinBaşka 4-5 hayvanlarda prosedürü. Farklı genetik arka plan veya suşları nedeniyle serebral vasküler anatomi farkı karşılaştırmak için, sırasıyla, ApoE KO ve SV129 farelerin eşit sayıda protokol tekrarlayın. </li><li> Derin anestezi (cerrahi ayrıntılı bir açıklama bu makalenin kapsamı dışındadır altında MCA intraluminal tıkanıklığı standart bir protokole göre 45 dakika veya 90 dakika boyunca geçici fokal serebral iskemi neden, iskemik koşullarda vasküler anatominin incelenmesi; okuyucu Doeppner ve diğ., 2010) ifade edilir. Infarkt hacmi tanımlamak için reperfüzyon dönemi (1 gün veya 5 gün) planlanan sonunda, CB1 + CB2 mürekkepler yalnızca vasküler boyanma gerçekleştirmek ve 5-10 dakika süreyle 37 ° C&#39;de% 2 TTC çözeltisi ile tüm beyin leke . TTC mitokondrial enzimler (özellikle süksinat dehidrogenaz) tarafından kırmızı renkli formazan düşürülür. TTC boyama sonra, enfarkte doku unstai derin kırmızı metabolik olarak aktif doku lekeleri kalırkenned ve nedeniyle işlevsiz ve denatüre mitokondrial enzim beyaz görünür. Yukarıda tarif edildiği gibi aynı şekilde görüntü toplayın. </li></ol> 4. Serebral Vasküler Toprakları Çalışması <ol><li> Serebral damarlar, + CB2 mürekkepler ImageJ yazılım (görüntü işleme ve analiz için kullanılan bir Java tabanlı kamuya açık yazılım) ile analiz edilebilir renkli lateks veya CB1 ile beyin ya lekeli dorsal yüzeyinin görüntülerin gros anatomisinin analiz etmek. CB1 + CB2 perfüzyon ventral ve dorsal yüzeyleri hem tüm gemiler leke olurken renkli lateks ile perfüze edilen beyinler, dorsal yüzeyi üzerinde bulunan geminin boyanması değişik derecelerde gösterebilir. </li><li> ImageJ yazılım ile bir resim dosyası açın. ACA ve MCA arasındaki tüm anastomoz noktaları belirleyin. Anastomotik nokta damar çapı en dar ya da sırasıyla ACA en yakın dallanma noktaları ve MCA dalları arasındaki yarı mesafe, 2, yer olarak tanımlanır. <skadar&gt; segmente satırı aracı çizim yardım ve eklenti &quot;noktalı çizgi&quot; ile anastomoz noktaları işaretleyerek hayali bir çizgi (Anastomoz hattı) çizin. </li><li> Mm çaplı ayarlayın. Anastomoz hattı ve düz hat çizim aracı ve &quot;ölçü&quot; aracını kullanarak beynin frontal kutup kaudal 4 mm orta hat arasındaki mesafeyi ölçün. Kaudal frontal kutbundan 6 mm aynısını yapın. Hayvan başına 3-4 görüntüleri analiz eder ve ortalama değer hesaplayabilirsiniz. Serebrovasküler anatomi varyasyonu belirlemek için hayvanların farklı gruplar arasındaki değerleri karşılaştırın. C57Bl6 / J hayvanlarda, ACA ve MCA arasındaki Anastomoz hattı kaudal frontal kutbundan 6 mm den 4 mm daha yakın orta hat izlenebilmektedir. ApoE KO fareler bu açıdan anlamlı farklılık sunacak. Aksine, SV129 farelerde anastomoz hat ön kutup kaudale ileri ve 4 mm orta hattı hem de paralel ve 6 mm ortaya çıkacaktır. </li><li> Vasküler anatominin analiz etmek in iskemik durumlar, yukarıda belirtilen aynı hesaplamaları yapar. Sırasıyla, metabolik olarak aktif doku ve nekrotik unstained doku temsil kırmızı ve beyaz renkli doku marjı olarak infarktüsü sınır belirleyin. 4 mm ve beynin ön direğe yerden kaudal 6 mm orta hattan infarktüsü sınırın mesafeyi ölçün. Hayvan başına 3-4 görüntüleri ortalama değer toplayın. Farklı iskemi ve reperfüzyon dönemleri arasında sonuçları karşılaştırın. </li></ol>

<ol><li>Meng, H., Peng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+contrast+angiography%3A+A+simple+method+for+morphological+characterization+of+cerebral+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Nuclear contrast angiography: A simple method for morphological characterization of cerebral arteries.</a> Brain Research. 1261, 75-81 (2009).</li>
<li>Maeda, K., Hata, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+the+cerebrovascular+anatomy+of+C57black%2F6+and+SV129+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Differences in the cerebrovascular anatomy of C57black/6 and SV129 mice.</a> Neuroreport. 9 (7), 1317-1319 (1998).</li>
<li>Coyle, P., Jokelainen, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal+cerebral+arterial+collaterals+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Dorsal cerebral arterial collaterals of the rat.</a> The Anatomical Record. 203, 397-404 (1982).</li>
<li>Coyle, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal+cerebral+collaterals+of+stroke-prone+spontaneously+hypertensive+rats+%28SHRSP%29+and+Wistar+Kyoto+rats+%28WKY%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Dorsal cerebral collaterals of stroke-prone spontaneously hypertensive rats (SHRSP) and Wistar Kyoto rats (WKY).</a> The Anatomical Record. 218, 40-44 (1987).</li>
<li>Hasan, M. R., Herz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+macroscopic+cerebral+vessel+anatomy%E2%80%94A+new+and+reliable+technique+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Visualization of macroscopic cerebral vessel anatomy—A new and reliable technique in mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 204, 249-253 (2012).</li>
<li>Doeppner, T. R., Nagel, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TAT-Hsp70-mediated+neuroprotection+and+increased+survival+of+neuronal+precursor+cells+after+focal+cerebral+ischemia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cerebral+Blood+Flow+%26+Metabolism%22%5BJournal%5D)">TAT-Hsp70-mediated neuroprotection and increased survival of neuronal precursor cells after focal cerebral ischemia in mice.</a> Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 29, 1187-1196 (2009).</li>
<li>Todo, K., Kitagawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulocyte-macrophage+colony-stimulating+factor+enhances+leptomeningeal+collateral+growth+induced+by+common+carotid+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor enhances leptomeningeal collateral growth induced by common carotid artery occlusion.</a> Stroke. 39 (6), 1875-1882 (2008).</li>
<li>Sugiyama, Y., Yagita, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulocyte+colony-stimulating+factor+enhances+arteriogenesis+and+ameliorates+cerebral+damage+in+a+mouse+model+of+ischemic+stroke%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Granulocyte colony-stimulating factor enhances arteriogenesis and ameliorates cerebral damage in a mouse model of ischemic stroke.</a> Stroke. 42 (3), 770-775 (2011).</li>
<li>Busch, H. J., Buschmann, I. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arteriogenesis+in+hypoperfused+rat+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cerebral+Blood+Flow+%26+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Arteriogenesis in hypoperfused rat brain.</a> Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 23 (5), 621-628 (2003).</li>
<li>Maeda, K., Hata, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regional+metabolic+disturbances+and+cerebrovascular+anatomy+after+permanent+middle+cerebral+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22in+C57black%2F6+and+SV129+mice.+Neurobiology+of+Diseases%22%5BJournal%5D)">Regional metabolic disturbances and cerebrovascular anatomy after permanent middle cerebral artery occlusion.</a> in C57black/6 and SV129 mice. Neurobiology of Diseases. 6, 101-108 (1999).</li>
<li>Wang, Y., Kilic, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF+overexpression+induces+post-ischaemic+neuroprotection%2C+but+facilitates+haemodynamic+steal+phenomena%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">VEGF overexpression induces post-ischaemic neuroprotection, but facilitates haemodynamic steal phenomena.</a> Brain. 128 (1), 52-63 (2005).</li>
<li>ElAli, A., Doeppner, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+blood-brain+barrier+permeability+and+brain+edema+after+focal+cerebral+ischemia+induced+by+hyperlipidemia%3A+Role+of+lipid+peroxidation+and+calpain+1%2F2%2C+matrix+metalloproteinase-2%2F9%2C+and+RhoA+overoxidation%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Increased blood-brain barrier permeability and brain edema after focal cerebral ischemia induced by hyperlipidemia: Role of lipid peroxidation and calpain 1/2, matrix metalloproteinase-2/9, and RhoA overoxidation.</a> Stroke. 42, (2011).</li>
<li>Coyle, P., Jokelainen, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+outcome+to+middle+cerebral+artery+occlusion+in+spontaneously+hypertensive+stroke-prone+rats+%28SHRSP%29+and+Wistar+Kyoto+%28WKY%29+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Differential outcome to middle cerebral artery occlusion in spontaneously hypertensive stroke-prone rats (SHRSP) and Wistar Kyoto (WKY) rats.</a> Stroke. 14, 605-611 (1983).</li>
<li>Coyle, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diameter+and+length+changes+in+cerebral+collaterals+after+middle+cerebral+artery+occlusion+in+the+young+rat%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Diameter and length changes in cerebral collaterals after middle cerebral artery occlusion in the young rat.</a> The Anatomical Record. 210 (2), 357-364 (1984).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Bu belli bir basınç 2,3 ima için herhangi bir özel cihaz içermeyen manuel olarak enjeksiyon ile CB1 + CB2 perfüzyon yoğun bir eğitim olmadan ile başarılı bir şekilde gerçekleştirilebilir. Bizim protokol perfüzyon sonuçların heterojenliği azdır. 20 iskemik hayvanlar üzerinden sadece 1 16 iskemik olmayan hayvanların üzerinden hayvan ve 3 yetersiz perfüzyon göstermiştir. Bu durumlarda, damarların tıkanması neden tuzlu perfüzyon sırasında kabarcıklarının eklenmesi başarısız sonucun nedeni büyük olasılıkla. <p...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Firma Adı </td><td> Katalog No </td></tr><tr><td> Scribtol Schwarz (CB2) </td><td> Pelican, Almanya </td><td> 221 135 </td></tr><tr><td> Stempelfarbe (CB1) </td><td> Herlitz PBS AG, Almanya </td><td> 10417202 </td></tr><tr><td> Gedeo Lateks </td><td> Pebeo, Fransa </td><td> 13042B </td></tr></tbody></table>

karbon siyah mürekkep İntravasküler perfüzyon serebral gemiler güvenilir görselleştirme verir

Intravascular Perfusion of Carbon Black Ink Allows Reliable Visualization of Cerebral Vessels

Beyin damarlarının anatomik yapısı beyin hemodinami için önemli bir belirleyici yanı sıra iskemik hakaret takip yaralanma şiddeti olduğunu. Beyin damarlarında dinamik çeşitli patofizyolojik devletler yanıt verir ve suşları arasındaki genetik manipülasyon koşullarında önemli farklılıklar sergilemektedir. Esasen, intrakraniyal damar boyama için güvenilir bir tekniktir iskemik inme patogenezinde çalışmak için esastır. Yakın zamana kadar, farklı teknikler bir dizi düşük viskoziteli reçine, araldit F enjeksiyonunu içeren beyin damarlarında, jelatin 2 veya siyah 3 karbon olmadan çeşitli boyalar 1 (yani karmin kırmızı, çini mürekkebi) veya lateks ile karıştırılır. Görselleştirmek için istihdam edilmiştir Asendan aorta yoluyla beyaz lateks bileşik Perfüzyon ilk Coyle ve Jokelainen 3 tarafından rapor edilmiştir. Maeda et al. 2 karbo ekleyerek değiştirilmiş olan protokolbeynin fizyolojik perfüzyon sonrası damarlarının gelişmiş kontrast görselleştirme için lateks bileşik n siyah mürekkep. Ancak, verimsiz perfüzyon ve gemilerin yetersiz dolum sık lateks bileşik 4 yüksek viskozitesi nedeniyle yaşanmaktadır. Bu nedenle, bir tekrarlanabilir bir şekilde 5 beyin damarlarında görselleştirmek için ticari olarak satılan iki karbon siyah mürekkep (CB1 ve CB2) oluşan bir karışım kullanılarak bir basit ve düşük maliyetli bir teknik tarif var. Biz lateks perfüzyon 5 ile karşılaştırıldığında daha yüksek bir yoğunlukta önemli ölçüde daha küçük beyin damarlarının boyama farelerde sonuç CB1 + CB2 ile bu perfüzyon göstermiştir. Burada, anterior (ACA) ve farklı genetik geçmişleri olan farelerde damar değişikliklerin incelenmesi orta serebral arter (MCA) arasındaki anastomoz noktaları belirlemek için protokol açıklar. Son olarak, CB1 birleştirerek farelerde bir geçici fokal serebral iskemi modelinde, bizim teknik olarak uygulanabileceğini göstermek +Iskemik yaralanma çeşitli derecelerde TTC boyama ile CB2-aracılı damar boyama.

Burada açıklanan protokol kemirgen beyin damarlarında geleneksel lateks bazlı görselleştirme teknik kısıtlamaların üstesinden gelmektedir. Şekil 1A renkli lateks bu aşağıdaki perfüzyon göstermektedir, ventral yüzeyi üzerinde sadece büyük damarlarda tüm dorsal yüzeyini renksiz bırakarak boyanmıştır. Sonuç da oldukça değişkendir. Beyin (veriler gösterilmemiştir) dorsal yüzeyinde görünür ACA ve MCA kısmi boyama altı gösterileri dışında sadece bir hayvan. Tersine, CB1 + eşit bir şekilde (Şekil 1B)</...

Kemirgen serebrovasküler anatomi Analiz deneysel inme araştırmalarında önemli bir rol oynar. Bu çerçevede, renkli lateks ile intravasküler perfüzyon birkaç yıldır standart bir araç olarak kabul edilmiştir. Ancak, bu tekniğin tekrarlanabilirliği zayıflatmak farklı teknik sınırlamaları, ifade eder. Burada, tekrarlanabilir bir şekilde beyin damarlarının görselleştirmek için basit bir yöntem tarif. Yüksek kontrast görselleştirme ile beyin damarlarının yeterli dolgu sol ventrikül miyokard sonuçları ile iki ticari karbon siyah mürekkepler karışımı Enjeksiyon. Biz başarıyla farklı genetik geçmişleri olan farelerin serebral vasküler ülkelerle arasındaki anastomoz noktaları belirlemek için bu tekniği uyguladık. Farelerde infarkt hacimleri gözlemlemek ve analiz etmek için yaygın olarak kullanılan bir araçtır - Sonunda geminin boyanması için bu yeni ve basit bir yöntemdir Triphenyftetrazoliumchlorid (TTC) boyama ile kombine edilebilir olduğunu ifade vermek.

Karbon Siyah Mürekkep İntravasküler Perfüzyon Serebral Gemiler Güvenilir Görselleştirme verir

Serebral damarların anatomik yapısı, beyin hemodinamikleri ile iskemik hasarlar sonrası yaralanmanın şiddeti için temel bir belirleyicidir. ...

Bu prosedürün genel amacı, farelerin serebral vasküler anatomisini tekrarlanabilir bir şekilde incelemektir. İlk olarak, daha sonra karbon siyahı mürekkep boyaması ile karşılaştırmak amacıyla serebral damarlar renkli lateks ile boyanır. Ardından, karbon siyahı mürekkepleri karıştırılır ve hayvanlar, sol ventrikül üzerinden PBS ve karbon siyahı mürekkep karışımı ile perfüze edilir.Son adımda, beyin toplanır ve boyanmış serebral damarların karşılaştırılması ve analizi için fotoğrafları çekilir. Son olarak, orta ve anterior serebral arterler arasındaki anastomotik noktaları analiz etmek için Image J yazılımı kullanılır. Bu tekniğin uygulamaları, vasküler yoğunluk ve anjiyogenezin analizinde kullanılabileceği için özellikle inme olmak üzere serebrovasküler hastalıkların tedavisine yöneliktir.Bu yöntem beyindeki vasküler sistem hakkında bilgi sağlayabildiği gibi, kalp, karaciğer veya böbrekteki mikrovasküllerin görselleştirilmesi gibi diğer sistemlere de uygulanabilir. Lateksi bir EP tüpünde karbon siyahı mürekkebi ile karıştırdıktan sonra, karışımı bir su banyosunda 37 °C'de ısıtın. Isınmış lateksi iki mL'lik bir şırıngaya çekmek için 23 ila 25 gauge bir iğne kullanın.Ardından, 12,5 mi

intravascular-perfusion-carbon-black-ink-allows-reliable

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Intravital mikroskopi pial mikrosirkülasyon zamansal ve mekansal hemodinamik ve inflamatuar olayları takip etmek.

Kapalı Kranial Pencere kullanarak Fare Beyin Mikrosirkülasyon intravital Mikroskopi

Bu makalede, biz gerçekleştirmek için kolay ve görüntü yetişkin fare beyin damar ağacı kullanılabilir serebrovasküler döküm için basit ve pratik bir tekniği mevcut.

3D Görüntüleme ve Morfolojik Analizi Yetişkin Mouse Serebrovasküler Döküm

Bilateral ortak karotis arterleri ortaya çıkarmak ve gevşek bir şekilde bağlamak için bir boyun kesisi yapın.

Floresan izleyici kullanarak bir farede iskemi sırasında serebral kan akışının görselleştirilmesi

Kaynak: Kim, D. E., et al. Serebral tromboemboliyi doğrudan görselleştirmek için birleşik yakın kızılötesi floresan görüntüleme ve mikro bilgisayarlı tomografi. J. Vis. Uzm. (2016)Bu video, fibrine özgü bir prob ile işaretlenmiş eksize edilmiş beyin dokusundaki trombüsleri görselleştirmek için yakın kızılötesi floresan (NIRF) görüntülemeyi göstermektedir. Yakın kızılötesi ışık, probu uyararak trombüsün floresan oluşmasına neden olur ve majör serebral arter ve küçük kortikal kan damarlarında...

Yakın Kızılötesi Floresan Görüntüleme Kullanılarak Fare Serebral Trombüsünün Görselleştirilmesi

Bu protokol serebral emboli görselleştirmek için kombine yakın kızılötesi floresan (NIRF) görüntüleme ve mikro-bilgisayarlı tomografi (mikroBT) uygulanmasını açıklar. Bu teknik trombüs yükü ve evrim ölçümü sağlar. MikroBT'lerin tekniği altın nanopartiküller kullanarak canlı hayvan içinde trombüs görüntüler ise NIRF görüntüleme tekniği floresan, eksize beyinde trombüs etiketli görselleştirir.

Doğrudan Serebral emboli görselleştirme için Kombine Yakın kızılötesi Floresan Görüntüleme ve Mikro bilgisayarlı Tomografi

Bu yazının uzunlamasına iki foton mikroskopi kullanılarak in vivo amiloid plak birikimi sırasında cerebrovasculature bir biçimlenme izlemek için bir yordam açıklanır. Incelmiş kafatası preparat, Alzheimer hastalığının bir fare modelinde serebrovasküler hasara ilerlemesini değerlendirmek için floresan boyalar görselleştirme sağlar.

uzunlamasına<em&gt; İn Vivo</em&gt; Cerebrovasculature Görüntüleme: MSS Hastalıkları uygunluk

Biz dinamik spinal vasküler değişiklikler yetişkin Sprague-Dawley Sıçanlarda contusive Medulla Spinalis Yaralanmalarında takip izlemek için iki farklı floresan boyalar kullanarak yöntemi Imaging bir vivo tanıtmak.

İçinde bir Vivo Vasküler Dynamics Contusive Medulla Spinalis Yaralanmalarında takip görüntüleme için duo-renk yöntemi

Bu makalede, bir teleost balık kan damarlarında etiketleme için hızlı bir protokol açıklar dıı kalp perfüzyon tarafından fiktatif olarak seyreltilebilir, Medaka kullanarak (Oryzias latipes) bir model olarak ve beyin ve hipofiz doku odaklanmak.

Teleost beyin ve hipofiz kan damarlarının bir dıı-fixative ile kardiyak perfüzyon kullanarak etiketleme

Bu protokol, beyin ensheathing perisitlerinden floresan kalsiyum görüntülerini ve uyuşturulmış farelerde yakındaki kan damarlarından kan akışı verilerini elde etmek ve analiz etmek için adımlar sunar. Bu teknikler duvar hücresi fizyolojisi çalışmaları için yararlıdır ve herhangi bir hücre tipinde kalsiyum geçicilerini araştırmak için uyarlanabilir.

Vivo Transgenik Farelerde Beyin Perisit Kalsiyumu ve Hemodinamik Görüntüleme

Ön araştırma, subaraknoid kanamanın (SAK) beyin perisit ölümüne neden olduğunu doğrulamaktadır. SAK sonrası perisit kontraktilitesinin değerlendirilmesi, canlı ve canlı olmayan beyin perisitleri arasında ayrım yapılmasını gerektirir. Bu nedenle, canlı ve canlı olmayan beyin perisitlerini beyin bölümlerinde aynı anda etiketlemek için bir prosedür geliştirilmiştir ve yüksek çözünürlüklü bir konfokal mikroskop kullanarak gözlemi kolaylaştırmıştır.

Subaraknoid Kanama Sonrası Beyin Dilimlerinde Vital ve Non-vital Beyin Perisitlerinin Görüntülenmesi

Serebral kan akışının düzenlenmesini in vivo olarak incelemek için, geleneksel farmakolojik yöntemler invazivdir ve genellikle kafatasına, duraya ve leptomeninglere zarar verir. Bu çalışmada, nanoenjektör kılavuzluğunda intrasisternal magna (ICM) enjeksiyonunu lazer benek kontrast görüntüleme ile birleştiren, kafatasının ve leptomeninglerin bütünlüğünü koruyan minimal invaziv bir teknik geliştirdik.

Serebral Kan Akışı Düzenlemesini İn Vivo Çalışmak için Eşleştirilmiş Sarnıç Magna Nanoenjeksiyon ve Lazer Benek Kontrast Görüntüleme Testi

Öğrenin, farelerde serebral damarları görselleştirmek için karbon siyah mürekkep perfüzyon yöntemini. Bu teknik, inme araştırmalarında vasküler anatomiyi güvenilir şekilde analiz etmeye yardımcı olur.

Karbon Siyah Mürekkep İntravasküler Perfüzyon Serebral Gemiler Güvenilir Görselleştirme verir

Daha fazla video keşfet