Name: Fibrin pıhtısı içinde allojenik Mezenkimal Kök Hücre implantasyonu ile Tavşan Diz Eklemi içinde Osteokondral Kusur tedavisi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 22 s
Description: Öğrenin tavşan diz eklemindeki osteokondral kusurları mezenkimal kök hücrelerle tedavi etme yöntemini. Fibrin pıhtısı içinde allojenik hücre implantasyonu doku mühendisliği için standart bir yaklaşım sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu proje Alman Araştırma Birliği (hibe HE 4578/3-1) tarafından ve kısmen FP7 AB Projesi &quot;GAMBA&quot; NMP3-SL-2010-245993 tarafından finanse edildi.

Mezenkimal Kök Hücre İzolasyon için Donör Tavşan A. hazırlanması (Ameliyathane) <ol><li> Hücreler erkek 4 aylık yaşta Beyaz Yeni Zelanda (NZW) tavşan ve yaklaşık 3 kg vücut ağırlığı izole edilmiştir. </li><li> Propofol (10 mg / kg vücut ağırlığı dozunda) ile anestezi neden ve sodyum pentobarbital (100 mg / kg vücut ağırlığı dozunda) ile kurban. </li><li> Bir elektrik kesme makinesi ile arka bacaklarda, sırt ve karnından kürk tıraş ve kürk vakum. </li><li> % 70 etanol ile iyice traş alanı dezenfekte edin. </li><li> Doku ve bağ için künt forseps, keskin bir makas (ya da neşter) ve kemik kesiciler kullanın. </li><li> Bacak ve buzağı kafatası yüzeyi boyunca bir kesi yapmak. </li><li> Ya keskin veya künt diseksiyon ile deri ve deri altı doku yansıtmaktadır. </li><li> Ayrı kas ve tibia ve femur gelen bağlar. Temiz bir diseksiyon yapmak mümkün kemiğe yakın kesim tutun. Şu anda tibiadan femur ayırmayın. </li><li> Thr Cutough asetabulum gelen femur başı ayırmak için kalça eklemi. </li><li> Tibia-femur karmaşık yükseltmek. </li><li> Kemiklerden kalan yumuşak doku kazımak veya steril bez doku ile kemik ovmak neşter bıçak kullanın. Bu noktada, uyluk kemiği ve kaval kemiği de bağlanır. </li><li> Kesim tarafından patella çıkarın, sonra nihayet ayrı kemiklere diz eklemi bağ kesti. </li><li> Sprey% 70 etanol ile ayrılan kemik, kuru hava ve hücre kültür ortamı (DMEM +% 1 penisilin / streptomisin (pen / strep)) onları nemli tutmak için olan bir 50 ml&#39;lik santrifüj tüpüne, her kemik yer sağlar. </li><li> Şimdi steril hücre kültürü laminer akış kaputu altında geçiş. </li></ol> B. (Hücre Kültürü Hood) Kemikler ve Genişleme gelen Tavşan MSC Flushing <ol><li> Tüplerinden kemikleri toplayın ve steril forseps kullanarak 150 mm yemekleri içine yerleştirin. </li><li> Her iki kemik yeni 150 mm yemekleri steril bir testere ve hareket parçaları ile biter çıkarın. </li><li> Medi ile 10 ml şırınga doldurunum (DMEM), bir 18 iğne takın ve kemik iliği açılış takın. </li><li> Daha sonra, çanak içine, kemik iliği temizleme ortamı ile ilik boşluğu yıkayın. Mümkünse Daha sonra, diğer ucundan yıkayın. Gerekirse, uçları daha fazla kapalı gördüm. Kemik kırmak olursa, sadece kemik içini durulayın. </li><li> Şırıngaya hücre orta süspansiyonu aspire ve süspansiyon kemik iliği boşluğu ve kemik iliği-pıhtıları görünür başka kemik ile serbest dalgalı kadar arka arkaya kemik iliği durulayın. </li><li> Bir kez kemik iliği iliği kümeleri bir 18 gauge iğne geçerek bozabilir, tüm kemiklerden tahsil edilmiştir: iğne takılı şırınga doldurun ve orta içine zorla. </li><li> Daha sonra, 50 ml&#39;lik bir tüp içine, bir hücre filtresi aracılığıyla süspansiyon filtre. Hücre kaybını önlemek için, 10 ml ortam ile kültür kaplarına 2 x yıkama ve hem de filtre. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 500 x g&#39;de santrifüj süspansiyon. </li><li> Süpernatant ve tekrar süspansiyon hücre pell çıkarınve arkadaşları 10 ml ortam içinde (DMEM +% 1 Pen / Strep). </li><li> Bir Biocoll ayırmak Çözüm kullanarak Periferik kan mononükleer hücreler (hücre) ve mezenkimal kök hücre (MSC) ayrı kan hücreleri. </li><li> Biocoll 15 ml&#39;lik bir tüp içine Çözüm Ayırma 5 ml doldurmak ve dikkatli bir şekilde oda sıcaklığında 20 dakika (frensiz) boyunca 800 xg&#39;de üst ve santrifüj hücre 5 ml süspansiyon, ilave edin. </li><li> PBMC ve mezenkimal kök hücreler arayüzü kalırken Biocoll, altına kırmızı kan hücreleri tortu daha olmak daha yoğun: Olası sonuçlar Şekil 1. </li><li> Dikkatli bir şekilde 15 ml tüp içine arayüzü kaldırmak ve 5 ml PBS ile yıkayın. </li><li> Gibi, adım 22&#39;de tarif edildiği şekilde 5 ml PBS içinde tekrar süspansiyon santrifüj ve 2-3x tekrarlayın. </li><li> Daha sonra, oda sıcaklığında 10 dakika (frenli) için 350 xg&#39;de tekrar santrifüj. </li><li> 10 ml ortamda süspanse edin ve bir hemasitometre hücreleri saymak. </li><li> 150 mm çanağı yaklaşık olarak 5 x 10 6 arasında bir başlangıç ​​ekim yoğunluğu plakası hücreleri. </li><li> 2-3 gün sonra, tekraryapışmayan hücreler hareket eder. Bu hücre enkaz kaldırmak için PBS ilk ile durulayın gerekebilir. Taze tam ortam ekleyin (DMEM +% 10 fetal buzağı serumu (FCS) ve% 1 Pen / Strep), daha sonra. </li><li> Hücreler her 3-4 günde (Şekil 2) besleyin. </li><li> 5-10 gün sonra, ilk kez için geçiş hücreleri. </li></ol> In vitro olarak fibrin pıhtısı C. Preparasyon <ol><li> İmplantasyon yapıldığı gün olarak,% 0.25 tripsin-EDTA, 3 dakika maruz bırakılan şişeler / yemekler yapışan hücreler bırakın. Tam ortam eklenerek tripsinizasyon durdurun. </li><li> 50 ml şahin tüp hücreleri dağıtmak ve PBS ile iki kez yıkayın. </li><li> Tripan mavisi boyama ile hücre canlılığı ve numaraları belirleyin. </li><li> 50,000 hücre / mikrosantrifüj tüpüne ilave edin ve oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 500 x g&#39;de santrifüj ile pelet toplamak. Gerektiği gibi en az bir pıhtı için bir master hazırlayın. </li><li> 17 ul PBS içinde hücre pelletini ve TISSU arasında fibrinojen bileşeninin 25 ul karıştırınBu 17 ul MSC süspansiyon ile COL-Kit. </li><li> In vivo olarak delik (Şekil 3) &#39;e göre önceden delinmiş delikleri (3x3.6 mm) steril bir plaka al. </li><li> İlk olarak, 42 ​​ul fibrinojen-hücre süspansiyonu ve iyi tekrar 4 ul trombin çözeltisi ilave edildi ve ardından hemen bir delik içine, 4 ul trombin solüsyonu (500 IU / ml) inoküle. Pipet içinde pıhtılaşma önlemek için süspansiyon karıştırmayın. İlk olarak, pipetlenen fibrinojen-hücre süspansiyonu 50 ul hacim yüzey gerilimine bağlı erime olmadan önceden delinmiş deliklerin ağız çıkıntı yapacaktır. Ancak, tam pıhtılaşma sonra (60 dakika sonra) pıhtı sözleşme ve önceden delinmiş deliğe uyuyor. </li><li> Dikkatli PBS ile bir mikrosantrifüj tüp içine künt forseps ve yer kullanarak pıhtı çıkarın. 2 pıhtıları / hayvan hazırlayın. </li><li> Ameliyat odasına pıhtıları alın. </li></ol> Fibrin pıhtısı içinde allojenik Mezenkimal Kök Hücre D. implantasyonu<ol><li> Propofol iv enjeksiyonu (10 mg / kg vücut ağırlığı) ile tavşan (5-6 aylık NZW, erkek, 3.5-4.0 kg vücut ağırlığı,) ile anestezi neden. </li><li> Bir elektrik kesme makinesi ve vakum kürk ile ameliyat olmak için diz tıraş. Önce adını tüm işlemler ameliyathane steril çevre kirlenmesini önlemek için bir ameliyat hazırlık odası yapılmaktadır. </li><li> Entübasyon sonra, 1.5 mg / kg / dk propofol ve 0.05 mg / kg / dk intravenöz fentanil ile anestezi korumak. Kapnografi, pulse oksimetre ve nabız ile anestezi izleyin. </li><li> Iyice traş diz dezenfekte ve steril bir sargı ile tavşan geri kalanı kapsar. </li><li> Patella palpe ve patella medial bir cilt kesisi gerçekleştirin. </li><li> Steril koşullar altında bir medial parapatellar artrotomi ile diz eklemi açın. Herhangi bir küçük yüzeysel kan damarları kesme kaçının. </li><li> (Şekil 4) yanal patella yerinden. </li><li> Inspe sonraherhangi bir eşlik eden kıkırdak lezyonları veya ortak anomaliler için diz ekleminin ction, bir stop-cihazla steril bir hava çalışma gücü matkap ile troklear oluk iki osteokondral kusurları (3 mm derinliğinde, sekiz şeklinde resim) (çapı 3.6 mm) oluşturmak (Şekil 5). </li><li> Kusurları temiz ve steril serum fizyolojik ile yıkayın. </li><li> Implantasyon öncesinde, kusurları içine fibrin yapıştırıcı 20 ul doldurun ve defekt alt üzerine eşit olarak dağıtın. </li><li> Daha sonra pıhtı implant basın-donatılmış sekiz rakamı şeklindeki kusur içine. </li><li> Pıhtılaşma sonra, troklear oluk içinde patella yerini değiştirmek ve birkaç kez eğilip diz streç. </li><li> Yanal bir kez daha patella yerinden ve fibrinojen-hücre-pıhtı hala yerinde olup olmadığını kontrol edin. </li><li> Tekrar patella değiştirin ve (her ikisi de emilebilir sütür ile tek bir düğmeye sütür (4-0 vicryl) ve sürekli bir cilt sütür (4-0 Monocryl) ile katmanlar halinde yara kapatılması ile işlemi bitirmekmalzeme). </li><li> Son olarak, su buharı geçirgen soyunma bir sprey ile yara mühür. </li><li> Ameliyat sonrası bakım için, yara 7 gün boyunca günde kontrol edilir. Tavşan post-operatif analjezi Carprofen 4 mg / kg sc, her 24 saat (4 gün) ve Buprenorphin 0.03 mg / kg sc, her 12 saat (2.5 gün için) verilir. Diz bir stabilizasyon (örneğin giyinme) gerekli değildir. </li></ol>

<ol><li>Kon, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+nano-composite+multilayered+biomaterial+for+osteochondral+regeneration%3A+a+pilot+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Novel nano-composite multilayered biomaterial for osteochondral regeneration: a pilot clinical trial.</a> The American Journal of Sports Medicine. 39, 1180-1190 (2011).</li>
<li>Kon, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orderly+osteochondral+regeneration+in+a+sheep+model+using+a+novel+nano-composite+multilayered+biomaterial%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%3A+Official+Publication+of+the+Orthopaedic+Research+Society%22%5BJournal%5D)">Orderly osteochondral regeneration in a sheep model using a novel nano-composite multilayered biomaterial.</a> Journal of Orthopaedic Research: Official Publication of the Orthopaedic Research Society. 28, 116-124 (2010).</li>
<li>Hangody, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+osteochondral+grafting--technique+and+long-term+results%5BTitle%5D)+AND+%22Injury%22%5BJournal%5D)">Autologous osteochondral grafting--technique and long-term results.</a> Injury. 39, 32-39 (2008).</li>
<li>Marcacci, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthroscopic+autologous+osteochondral+grafting+for+cartilage+defects+of+the+knee%3A+prospective+study+results+at+a+minimum+7-year+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Arthroscopic autologous osteochondral grafting for cartilage defects of the knee: prospective study results at a minimum 7-year follow-up.</a> The American Journal of Sports Medicine. 35, 2014-2021 (2007).</li>
<li>Ochs, B. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodeling+of+articular+cartilage+and+subchondral+bone+after+bone+grafting+and+matrix-associated+autologous+chondrocyte+implantation+for+osteochondritis+dissecans+of+the+knee%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Remodeling of articular cartilage and subchondral bone after bone grafting and matrix-associated autologous chondrocyte implantation for osteochondritis dissecans of the knee.</a> The American Journal of Sports Medicine. 39, 764-773 (2011).</li>
<li>Aurich, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+chondrocyte+transplantation+by+the+sandwich+technique.+A+salvage+procedure+for+osteochondritis+dissecans+of+the+knee%5BTitle%5D)+AND+%22Unfallchirurg%22%5BJournal%5D)">Autologous chondrocyte transplantation by the sandwich technique. A salvage procedure for osteochondritis dissecans of the knee.</a> Unfallchirurg. 110, 176-179 (2007).</li>
<li>Williams, R. J. 3rd, Ranawat, A. S., Potter, H. G., Carter, T., Warren, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fresh+stored+allografts+for+the+treatment+of+osteochondral+defects+of+the+knee%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery.+American+Volume%22%5BJournal%5D)">Fresh stored allografts for the treatment of osteochondral defects of the knee.</a> The Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 89, 718-726 (2007).</li>
<li>Szerb, I., Hangody, L., Duska, Z., Kaposi, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mosaicplasty%3A+long-term+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Hosp.+Jt.+Dis%22%5BJournal%5D)">Mosaicplasty: long-term follow-up.</a> Bull. Hosp. Jt. Dis. 63, 54-62 (2005).</li>
<li>Brittberg, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+deep+cartilage+defects+in+the+knee+with+autologous+chondrocyte+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Treatment of deep cartilage defects in the knee with autologous chondrocyte transplantation.</a> N. Engl. J. Med. 331, 889-895 (1994).</li>
<li>Peterson, L., Vasiliadis, H. S., Brittberg, M., Lindahl, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+chondrocyte+implantation%3A+a+long-term+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Sports+Med%22%5BJournal%5D)">Autologous chondrocyte implantation: a long-term follow-up.</a> Am. J. Sports Med. 38, 1117-1124 (2010).</li>
<li>Gomoll, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+subchondral+bone+in+articular+cartilage+repair%3A+current+problems+in+the+surgical+management%5BTitle%5D)+AND+%22Knee+Surg.+Sports+Traumatol.+Arthrosc%22%5BJournal%5D)">The subchondral bone in articular cartilage repair: current problems in the surgical management.</a> Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18, 434-447 (2010).</li>
<li>Steinhagen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+osteochondritis+dissecans+of+the+femoral+condyle+with+autologous+bone+grafts+and+matrix-supported+autologous+chondrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Orthop%22%5BJournal%5D)">Treatment of osteochondritis dissecans of the femoral condyle with autologous bone grafts and matrix-supported autologous chondrocytes.</a> Int. Orthop. 34, 819-825 (2010).</li>
<li>Guo, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repair+of+large+articular+cartilage+defects+with+implants+of+autologous+mesenchymal+stem+cells+seeded+into+beta-tricalcium+phosphate+in+a+sheep+model%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Repair of large articular cartilage defects with implants of autologous mesenchymal stem cells seeded into beta-tricalcium phosphate in a sheep model.</a> Tissue Eng. 10, 1818-1829 (2004).</li>
<li>Centeno, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+knee+cartilage+volume+in+degenerative+joint+disease+using+percutaneously+implanted%2C+autologous+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Pain+Physician%22%5BJournal%5D)">Increased knee cartilage volume in degenerative joint disease using percutaneously implanted, autologous mesenchymal stem cells.</a> Pain Physician. 11, 343-353 (2008).</li>
<li>Niederauer, G. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+multiphase+implants+for+repair+of+focal+osteochondral+defects+in+goats%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Evaluation of multiphase implants for repair of focal osteochondral defects in goats.</a> Biomaterials. 21, 2561-2574 (2000).</li>
<li>Nagura, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repair+of+osteochondral+defects+with+a+new+porous+synthetic+polymer+scaffold%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bone.+Joint+Surg.+Br%22%5BJournal%5D)">Repair of osteochondral defects with a new porous synthetic polymer scaffold.</a> J. Bone. Joint Surg. Br. 89, 258-264 (2007).</li>
<li>Schlichting, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+scaffold+stiffness+on+subchondral+bone+and+subsequent+cartilage+regeneration+in+an+ovine+model+of+osteochondral+defect+healing%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Influence of scaffold stiffness on subchondral bone and subsequent cartilage regeneration in an ovine model of osteochondral defect healing.</a> The American Journal of Sports Medicine. 36, 2379-2391 (2008).</li>
<li>Schagemann, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-laden+and+cell-free+biopolymer+hydrogel+for+the+treatment+of+osteochondral+defects+in+a+sheep+model%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Cell-laden and cell-free biopolymer hydrogel for the treatment of osteochondral defects in a sheep model.</a> Tissue Engineering. Part A. 15, 75-82 (2009).</li>
<li>Vogt, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+the+stable+expression+of+BMP2+in+fibrin+clots+on+the+remodelling+and+repair+of+osteochondral+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The influence of the stable expression of BMP2 in fibrin clots on the remodelling and repair of osteochondral defects.</a> Biomaterials. 30, 2385-2392 (2009).</li>
<li>Schillinger, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fibrin+glue+composition+as+carrier+for+nucleic+acid+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm.+Res%22%5BJournal%5D)">A fibrin glue composition as carrier for nucleic acid vectors.</a> Pharm. Res. 25, 2946-2962 (2008).</li>
<li>Ahmed, T. A., Giulivi, A., Griffith, M., Hincke, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+glues+in+combination+with+mesenchymal+stem+cells+to+develop+a+tissue-engineered+cartilage+substitute%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Fibrin glues in combination with mesenchymal stem cells to develop a tissue-engineered cartilage substitute.</a> Tissue Engineering. Part A. 17, 323-335 (2011).</li>
<li>Haleem, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Clinical+Use+of+Human+Culture-Expanded+Autologous+Bone+Marrow+Mesenchymal+Stem+Cells+Transplanted+on+Platelet-Rich+Fibrin+Glue+in+the+Treatment+of+Articular+Cartilage+Defects%3A+A+Pilot+Study+and+Preliminary+Results%5BTitle%5D)+AND+%22Cartilage%22%5BJournal%5D)">The Clinical Use of Human Culture-Expanded Autologous Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Transplanted on Platelet-Rich Fibrin Glue in the Treatment of Articular Cartilage Defects: A Pilot Study and Preliminary Results.</a> Cartilage. 1, 253-261 (2010).</li>
<li>Pape, D., Filardo, G., Kon, E., van Dijk, C. N., Madry, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disease-specific+clinical+problems+associated+with+the+subchondral+bone%5BTitle%5D)+AND+%22Knee+Surg+Sports+Traumatol.+Arthrosc%22%5BJournal%5D)">Disease-specific clinical problems associated with the subchondral bone.</a> Knee Surg Sports Traumatol. Arthrosc. 18, 448-462 (2010).</li>
<li>Shirazi, R., Shirazi-Adl, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Computational+biomechanics+of+articular+cartilage+of+human+knee+joint%3A+effect+of+osteochondral+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Computational biomechanics of articular cartilage of human knee joint: effect of osteochondral defects.</a> Journal of Biomechanics. 42, 2458-2465 (2009).</li>
<li>Jorgensen, C., Gordeladze, J., Noel, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Engineering+through+autologous+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Tissue Engineering through autologous mesenchymal stem cells.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 15, 406-410 (2004).</li>
<li>Chen, F. H., Tuan, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+in+arthritic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Res.+Ther%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells in arthritic diseases.</a> Arthritis Res. Ther. 10, 223(2008).</li>
<li>Le Blanc, K., Tammik, C., Rosendahl, K., Zetterberg, E., Ringden, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HLA+expression+and+immunologic+properties+of+differentiated+and+undifferentiated+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Hematol%22%5BJournal%5D)">HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells.</a> Exp. Hematol. 31, 890-896 (2003).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Son yıllarda, karmaşık eklem osteokondral kusurları tedavi olasılığı - Bu osteokondritis dissekans, osteonekroz ve travma sonucu gibi - Doku Mühendisliği yaklaşımlar ile daha cazip hale geldi. Daha önce sözü edilen patolojik kişiler olarak, doku hasarı subkondral kemiğe kadar uzanan ve farklı içsel iyileşme kapasiteleri 1 ile karakterize edilen iki doku içerir. Osteokondral eklem hasarı 11,23 patojenik işlemleri için subkondral kemik rolü giderek artan bir ilgi var. Eklem kıkırdağı ve destek kemik ...

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Biochrom AG</td><td>F 0415</td><td></td></tr><tr><td>FCS</td><td>PAN Biotech GmbH</td><td>0401</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Fresenius Kabi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penisilin/Streptomisin</td><td>Biochrom AG</td><td>A 2210</td><td>%0,9 NaCl içinde 1.000 ünite/10 &amp;mu;g/&amp;mu;l</td></tr><tr><td>PBS Dulbecco (1X)</td><td>Biochrom AG</td><td>L1815</td><td></td></tr><tr><td>Etanol (%70)</td><td>Merck KGaA</td><td>410230</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Mavisi Çözeltisi (%0,4)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>Biocoll Ayırma Solüsyonu</td><td>Biochrom AG</td><td>L6115</td><td>İzotonik çözelti Yoğunluk: 1,077 g/ml</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA %0,05</td><td>Invitrogen GmbH</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>Fentanil</td><td>DeltaSelectGmBH</td><td>1819340</td><td></td></tr><tr><td>NaCl çözeltisi (%0,9)</td><td>BBraun</td><td>8333A193</td><td></td></tr><tr><td>Şırıngalar (Injekt)</td><td>BBraun</td><td>4606108V</td><td></td></tr><tr><td>İğneler (Sterican)</td><td>BBraun</td><td>4657519</td><td></td></tr><tr><td>Pensler (küt/sivri)</td><td>Aesculap</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Makaslar</td><td>Aesculap</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Neşterler</td><td>Feather Safety Razor Co</td><td>02.001.30.022</td><td></td></tr><tr><td>Araştırma pipetleri</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kemik Kesici</td><td>Aesculap</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Doku kültürü kapları 100 mm/150 mm</td><td>TPP AG</td><td>93100/93150</td><td>Büyüme alanı 60,1 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;/147,8 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Doku kültürü flaskları 25/75 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td><td>TPP AG</td><td>90025/90075</td><td>25 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;, 75 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Santrifüj Tüpleri (50 ml)</td><td>TPP AG</td><td>91050</td><td>Gama sterilize edilmiş</td></tr><tr><td>CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; İnkübatörü</td><td>Forma Scientific Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hera Safe hücre kültürü laminer akışlı kabini</td><td>Heraeus Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril testere</td><td>Aesculap</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Megafuge 2.0 R santrifüjü</td><td>Heraeus Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hemositometre</td><td>Brand GmbH+Co KG</td><td>717810</td><td>Neubauer</td></tr><tr><td>Hava tahrikli güç matkabı</td><td>Aesculap</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TISSUCOL-Kit 1,0 ml Immuno</td><td>Baxter</td><td>2546648</td><td></td></tr><tr><td>Sütürler (4-0 Monocryl, 4-0 Vicryl)</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sprey pansuman (OpSite)</td><td>Smith&amp;amp;Nephew</td><td>66004978</td><td>Su buharı için geçirgen</td></tr></tbody></table>

fibrin pıhtısı içinde allojenik mezenkimal kök hücre implantasyonu ile tavşan diz eklemi içinde osteokondral kusur tedavisi

Treatment of Osteochondral Defects in the Rabbit's Knee Joint by Implantation of Allogeneic Mesenchymal Stem Cells in Fibrin Clots

Osteokondral eklem kusurları tedavisinde uzun yıllar hekim zor olmuştur. Son yıllarda eklem kıkırdağı ve subkondral kemik etkileşimlerin daha iyi anlaşılması, tüm osteokondral birimin restorasyon daha fazla dikkat yol açtı. Kıkırdak lezyonlarının göre osteokondral defektlerin rejenerasyonu çok daha karmaşık ve çok daha büyük bir cerrahi ve tedavi mücadeledir. Hasarlı doku sadece yüzeysel kıkırdak katmanı aynı zamanda subkondral kemik içermez. Bu osteokondrozis dissekans ile örneğin oluşur gibi derin, osteokondral hasar, kusurun tam kat eklem yüzeyinin 1 geri değiştirilmesi gerekir. Uygun tedavi prosedürleri onların farklı içsel iyileşme potansiyelini 2 ile bu iki farklı doku göz önünde bulundurmanız gerekir. Son yıllarda, çeşitli cerrahi tedavi seçenekleri ortaya çıkmıştır ve zaten klinik olarak 3 kurulmuştur -6. Otolog veya allojenik osteokondral nakli eklem kıkırdağı ve subkondral kemik oluşur ve tüm osteokondral biriminin değiştirilmesi sağlar. Kusurlar yüzeyi 3,7,8 kaplı bir uyumlu kıkırdak hasarı sağlamak amacıyla silindirik osteokondral greft ile doldurulur. Dezavantajları kullanılabilir greft, donör alan morbiditesi (otolog nakli için) ve yüzeyin uyumsuzluk sınırlı miktarda olan, böylece bu yöntemin uygulama özellikle büyük kusurları için sınırlıdır. Doku mühendisliği alanında yeni yaklaşımlar rejeneratif osteokondral tedavisi için umut verici olanaklar açtı. Otolog kondrosit implantasyonu tam kat kıkırdak lezyonlarının tedavisi için ilk hücre, biyolojik bir yaklaşım işaretlenmiş ve şu anda dünya çapında hatta 10 ila 20 yıl implantasyon 9,10 sonra iyi klinik sonuçlar ile kurulmuştur. Bununla birlikte, Date, bu tekniğin subkondral kemik 11 ile ilgili bozukluklar gibi derin lezyonlar her türlü tedavisi için uygun değildir. Sandviç tekniği Doku Mühendisliği 5,6 mevcut yaklaşımlarla kemik grefti birleştirir. Bu kombinasyon tek başına osteokondral greft görülen sınırlamaları aşmak için mümkün gibi görünüyor. Subkondral defekt alanına aşılama otolog kemik sonra, otolog kondrosit ile numaralı seribaşı bir zar üzerinde dikildi ve yaralı site ile greft topoloji maç için kolaylaştırır edilir. Tabii ki, bir önceki kemik rekonstrüksiyonu ek cerrahi zaman ve çoğu zaman da ek bir ameliyat gerekiyor. Ayrıca, bugüne kadar, uzun vadeli veri 12 kayıp. Aşılama ek kemiksiz Doku Mühendisliği nakledilen hücrelerin kondrojenik ve osteojenik potansiyeli ile yerli eklem kıkırdağının karmaşık yapısı ve özellikleri geri amaçlamaktadır. HoweveR, yine, bu genellikle daha fazla veya daha az yeniden sadece kıkırdak dokudur. Ek osteokondral hasar belirli bir daha başka bakıma gereksinimi. Allojenik / otolog hücreler ile tohumlanmış osteokondral kusurların katmanlı yapısının bir rejenerasyon elde etmek için, üç boyutlu bir doku mühendisliği ürünlerinin iyi bir tekrar üretim kapasitesi 11 sağlayabilir. Otolog kondrosit yanında, mezenkimal kök hücre (MSC) bir tam kat kıkırdak doku gelişimi için cazip bir alternatif gibi görünüyor. Çok sayıda klinik öncesi in vitro ve in vivo çalışmalarda, mezenkimal kök hücrelerin mükemmel doku rejenerasyonu potansiyel 13,14 göstermiştir. Özellikle osteokondral defektlerin tedavisi için mezenkimal kök hücrelerin önemli avantajı osteosit yanı sıra kondrositte ayırt etme kapasitesine sahip olmasıdır. Bu nedenle, potansiyel olarak d çok katmanlı bir yenilenme sağlaretkileyebilen. Son yıllarda, osteokondral rejeneratif potansiyeli olan birçok iskeleleri nedenle geliştirilmiştir ve ilk sonuçlar umut verici 1,15-18 ile değerlendirildi. Ayrıca, hücre taşıyıcı olarak fibrin yapıştırıcı deneysel kıkırdak tamir en tercih edilen tekniklerden biri haline gelmiş ve başarılı bir şekilde çeşitli hayvan çalışmalarında 19-21 ve hatta ilk insan çalışmaları 22 kullanılmıştır. Aşağıdaki protokol hücre kültüründe sonraki yayılması için ve fibrin-hücre pıhtılaşması için in vitro model bir standart hazırlamak için, bir tavşan kemik iliğinden mezenkimal kök hücreleri izole etmek için deneysel bir tekniktir gösterecektir. Son olarak, tavşan diz ekleminin yapay osteokondral zararların içine önceden belirlenmiş bir fibrin pıhtısı hücre implantasyonu için bir yöntem tarif edilecektir.

Açıklanan cerrahi teknik yapay osteokondral defekt içine allojenik mezenkimal kök hücrelerin başarılı bir izolasyon ve implantasyon izin verir. Deney düzeneği çevre kıkırdak içine implant başarılı bir şekilde entegrasyonu ile sonuçlanmıştır. Kusur çevreleyen kıkırdak ile karşılaştırıldığında benzer biyomekanik özellikleri ve benzeri dayanıklılık ile tamir dokusu ile doluydu. Fibrin hücreli pıhtı osteokondral lezyon (Şekil 3) ile aynı boyutta sahip önceden delinmiş delikleri,...

Tavşan diz eklemi osteokondral defektlerinin tedavisi için bir deney tekniği tarif edilmektedir. Osteokondral kusurları içine allojenik mezenkimal kök hücrelerin implantasyon doku mühendisliği alanında umut verici bir gelişme sağlar. Fibrin pıhtısı hücre hazırlanması<em&gt; In vitro</em&gt; Implantasyon için standart bir yöntem sunmaktadır.

Fibrin pıhtısı içinde allojenik Mezenkimal Kök Hücre implantasyonu ile Tavşan Diz Eklemi içinde Osteokondral Kusur tedavisi

Osteokondral eklem defektlerinin tedavisi, uzun yıllardır hekimler için zorlayıcı olmuştur. Eklem etkileşimlerinin daha iyi anlaşılması...

Bu prosedürün genel amacı, osteokondral onarım alanındaki deneysel kök hücre araştırmaları için standartlaştırılmış bir yöntemi göstermektir. Bu, öncelikle tavşan kemik iliğinden mezenkimal kök hücrelerin izole edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adımda, izole edilen kök hücreler proliferasyonu kolaylaştırmak amacıyla kültürlenir.Ardından, fibrin hücre pıhtıları in vitro ortamda üretilir. Son olarak, önceden hazırlanmış fibrin hücre pıhtıları tavşan diz eklemindeki yapay osteokondral defektlere implante edilir. Nihayetinde, 12 haftalık in vivo sürenin ardından dizin makroskobik analizi gerçekleştirilebilir; bu analizde onarım dokusunun homojen ve sağlam bir yüzeye sahip olduğu, solid bir dokuda olduğu görülür.Bu tekniğin etkileri, allojenik mezenkimal kök hücrelerin kıkırdak hasarının tedavisi için entegrasyon ve rejenerasyon kapasitesinin in vivo analizine olanak tanıması nedeniyle, deneysel hayvan ortamında kıkırdak lezyonlarının tedavisine kadar uzanmaktadır. Ameliyathanesinde, ötanazı yapılmış bir tavşanın arka bacaklarının arkasındaki ve karnındaki tüyleri tıraş etmek için elektrikli tıraş makinesi kullanın ve tıraş edilen bölgeyi %70 ethanol ile iyice dezenfekte ettikten sonra aynı zamanda tüyleri vakumla temizleyin. Bacağın ve baldırın kranial yüzeyi boyunca bir insizyon yapın, ardından cilt ve deri altı dokusunu keskin diseksiyonla reflekte edin.Ardından, temiz bir diseksiyon için kesileri kemiğe mümkün olduğunca yakın tutarak kasları ve ligamentleri tibia ve femurdan ayırın. Daha sonra, femur başını asetabulumdan ayırmak için kalça eklemini kesin ve tibial femoral kompleksi kaldırın. Şimdi, kemikler üzerinde kalan tüm yumuşak dokuları sıyırmak için skalpel bıçağını kullanın.Ardından, bacak kemiklerini tamamen ayırmak için patellayı ve diz eklemi bağlarını kesin. Hava ile kuruduktan sonra ayrılan kemikleri %70 etanol ile püskürtün. Kemikleri, steril bir hücre kültüründe nemli tutmak için hücre kültür ortamı içeren ayrı 50 mililitrelik santrifüj tüplerine yerleştirin.Laminar akış kabini. Hasat edilen kemikleri santrifüj tüplerinden 150 milimetrelik kaplara aktarmak için steril pens kullanın. Ardından, kemik uçlarının her ikisini de kesmek için steril bir testere kullanın ve parçaları yeni 150 milimetrelik kaplara taşıyın.Ardından, 10 mililitrelik bir şırıngayı besiyeri ile doldurun. Şırıngaya 18 gauge bir iğne takın ve iğnenin ucunu kemiğin bir ucundan içeri, iliğe yerleştirin. Şimdi, kemik iliğini tabağa boşaltmak için ili boşluğunu besiyeri ile yıkayın.Ardından hücre süspansiyonunu şırıngaya çekin ve süspansiyon serbestçe kemik iliği boşluğunda yüzer hale gelene ve daha fazla kemik iliği pıhtısı görülmeyene kadar kemik iliğini defalarca durulayın. Tüm kemiklerden kemik iliği toplandıktan sonra, şırıngayı iğne aracılığıyla kemik iliği süspansiyonuyla doldurun ve iliği kümelerini dağıtmak için ili süspansiyonunu medyumun içine kuvvetlice püskürtün. Sonrasında, hücre kaybını önlemek için süspansiyonu bir hücre filtresinden geçirerek 50 mililitrelik bir tüpe aktarın.Kültür kabını, her seferinde yıkama sıvısını filtreden geçirerek 10 mililitre besiyeri ile iki kez yıkayın. Süspansiyonu oda sıcaklığında 500 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Ardından süpernatantı uzaklaştırın ve hücre peletini 10 mililitre besiyeri içinde yeniden süspanse edin.Ardından, 15 mL'lik bir tüpe beş mililitre bio call ayırma çözeltisi ekleyin ve ardından üzerine beş mililitre hücre süspansiyonunu dikkatlice tabaka halinde yerleştirin. Tabakalı çözelti santrifüj edildikten sonra, alyuvarlar dibe çökecek, PBMC ve mezenkimal kök hücreler ise ara yüzeyde kalacaktır. Ara yüzeydeki hücreleri 15 mL'lik konik bir tüpe aktarın ve toplanan PBMC ile mezenkimal kök hücreleri yıkamak için beş mililitre PBS'yi iki ila üç kez kullanın.Ardından hücreleri bir kez daha santrifüjleyin ve pelletini 10 mililitre besiyerinde yeniden süspanse edin. Son olarak, hücreleri bir hemositometre ile sayın ve ardından 150 milimetrelik kaplara yaklaşık beş x 10⁶ başlangıç ekim yoğunluğunda ekleyin. İki ila üç gün sonra, yapışmayan hücreleri uzaklaştırarak kültürleri sürdürün.İmplantasyon gününde, hücre kalıntılarını uzaklaştırmak için plağı PBS ile durulayın ve hücreleri taze, komple besiyeri ile besleyin. Adezyon gösteren hücreleri üç dakika boyunca %0,25 trypsin EDTA'ya maruz bırakarak başlayın. Komple besiyeri ekleyerek tripsinizasyonu durdurun.Ardından, ayrıştırılan mezenkimal kök hücreleri 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın ve PBS ile iki kez yıkayın. Trypan blue boyama ile hücre sayısı ve canlılığını belirledikten sonra, n eşittir dört için gerektiği şekilde en az bir pıhtı daha içerecek şekilde bir ana karışım (master mix) hazırlayın. 200.000 hücreyi bir mikro santrifüj tüpünde çöktürün ve ardından peleti 68 mikrolitre PBS ve bir doku pıhtısı kitinin 100 mikrolitre fibrinojen bileşeni içinde yeniden süspanse edin.Ardından, önceden delinmiş steril bir plakanın bir deliğine dört mikrolitre trombin solüsyonu inoküle edin. Derhal, bir fibrinogen hücre süspansiyonunun tamamı olan 42 mikrolitreyi ekleyin ve ardından hücre süspansiyonunun üzerine dört mikrolitre daha trombin solüsyonu ekleyin. Başlangıçta, pipetlenen 50 mikrolitrelik fibrinogen hücre süspansiyonu hacmi, yüzey gerilimi nedeniyle önceden delinmiş deliğin kenarının dışına taşacaktır.Ancak, bir saat sonra karışım tamamen pıhtılaşmış olacak ve önceden açılmış deliğe sığacak şekilde küçülecektir. Şimdi, pıhtıyı dikkatlice çıkarmak için küt uçlu pens kullanın ve ardından pıhtıyı PBS içeren bir mikro santrifüj tüpüne yerleştirin. Tıraşlanmış dizi dezenfekte ettikten sonra, patellayı iyice palpasyonla muayene edin ve patellanın medial tarafında bir cilt insizyonu gerçekleştirin.Ardından, steril koşullar altında medial para patellar artrotomi ile diz eklemini açın ve patellayı lateral yönde kaydırın. Şimdi, trochlea oluğunda üç milimetre derinliğinde, sekiz şeklinde iki osteokondral defekt oluşturmak için 3,6 milimetre çapında matkap ucu ve bir durdurucu düzeneğe sahip steril bir hava basınçlı cerrahi matkap kullanın. Daha sonra defektleri steril salin ile duruladıktan sonra, yapıştırıcı kurumadan önce 20 µL fibrin tutkalını defektlerin tabanına hızlıca ve eşit şekilde dağıtın.Sıkıştırılarak yerleştirilen pıhtıları sekiz şeklindeki defekte implante edin. Pıhtılaşma gerçekleştikten sonra, patellayı troklear oluk içerisindeki konumuna geri getirin ve dize birkaç kez bükme ve germe hareketleri yaptırın. Ardından patellayı tekrar lateral olarak kaydırın ve fibrinojen hücre pıhtılarının hala yerinde olup olmadığını kontrol edin.Patellayı tekrar yerine yerleştirdikten sonra, yarayı tek düğümlü 4-0 Vicryl sütürlerle katmanlar halinde ve sürekli 4-0 Monocryl deri sütürleriyle kapatın. Son olarak yarayı, su buharına geçirgen bir sprey pansumanla mühürleyin. Bu deneyde defekt, çevredeki kıkırdağa benzer biyomekanik özelliklere ve benzer dayanıklılığa sahip onarım dokusu ile doldurulmuştur.Bu fibrin hücre pıhtısı, osteokondral defekt ile aynı boyutta önceden delinmiş deliklere sahip steril bir plaka üzerinde in vitro olarak hazırlanmıştır. Sonuç olarak, implante edilen fibrin pıhtısı ile çevredeki kıkırdak arasında, erken dejenerasyon veya delaminasyon için risk faktörü oluşturabilecek herhangi bir boşluk kalmamıştır. Subkondral kemiğe penetrasyon sağlandığı ve böylece makaslama kuvvetine karşı direnç oluşturulduğu için onarım dokusunun bazal tutunması garanti altına alınmıştır.Bir diğer önemli husus, eklem üzerindeki yükün artmasını ve olası erken dejenerasyonu önlemek adına sağlıklı çevre kıkırdak dokusuyla uyumlu olması gereken onarım dokusunun sertliğiydi. Ayrıca, transplantin sağlam ve homojen bir yüzeye sahip olduğu görülmüştü; bu durum, geliştirme sonrası makaslama stresini ve olası implant hasarını azaltmıştı. Bu teknik, ortopedik kök hücre araştırmaları alanındaki araştırmacıların osteokondral defektler için tedavi seçeneklerini ve deneysel bir hayvan modelini keşfetmelerinin önünü açabilir.Bazı hayvan hazırlama ve diz cerrahisi tekniklerinin daha ayrıntılı gösterimi için, eşlik eden Jovi makalemiz olan tavşan modelinde kondral defektlerin yeniden şekillendirilmesi ve onarımı için matriks destekli otolog kondrosit transplantasyonu çalışmasını izlediğinizden emin olun.

treatment-osteochondral-defects-rabbit-s-knee-joint-implantation

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Sunumun Amaç, kıkırdak defektleri, MR görüntüleme ile görüntülendi olabilir matris ilişkili kök hücre implantları üretmek için son derece tekrarlanabilir bir yöntem göstermektir. Kök hücreler, agaroz ile karışık FDA onaylı Ferumoxides, kıkırdak hasarlarının içine implante edilerek 7T MR tarayıcı ile görüntülü olarak etiketlenir.

Ferumoxides implantasyonu Kıkırdak Kusur İnsan Mezenkimal Kök Hücreler Etiketli

İnsan perivasküler kök hücreler (PSC'ler) mezenkimal kök hücreler (MKH) benzer iskelet doku yenilenmesine yönelik yeni bir kök hücre sınıfı vardır. PSC'ler standart bir yağ emme prosedürleri sırasında temin adipoz dokusu FACS (floresans aktive hücre ayırma) yoluyla izole edilebilir, ardından kemik oluşumunu sağlamak için bir osteoendüktif iskelesi ile...

Kemik Rejenerasyon için İnsan perivasküler Kök Hücre kullanın

Tavşan diz ekleminde kıkırdak defektlerinin tedavisi için bir deney tekniği tarif edilmektedir. Bir matris üzerinde numaralı seribaşı otolog kondrosit implantasyonu tatmin edici uzun vadeli sonuçlar sağlayan eklem kıkırdağı lezyonların yeniden ve onarım için bir iyi kabul edilen bir yöntemdir. Matrix destekli otolog kondrosit transplantasyonu (MACT) bir standart ve klinik olarak kurulan implantasyon yöntem sunmaktadır.

Bir Tavşan Modelinde Kondral Kusurların Tadilat ve Onarım için matris destekli Otolog Kondrosit Nakli

Hayvan modelleri, doku mühendisliği yapılmış greftlerin değerlendirilmesi için önemli araçlardır. Bu makale, ön çapraz bağ dokusu mühendisliğinde kullanılmak üzere elektroeğrilmiş biyobozunur polimer greft hazırlama protokolünün yanı sıra bir sıçan modelinde implantasyon için bir cerrahi protokol sunmaktadır.

Engineered Ön Çapraz Bağ Greftlerinin Değerlendirme Atimik Rat Modeli

Bu çalışmada microfractured ve saf yağ kaynaklı kök hücre kullanarak talus osteokondral lezyon artroskopik tedavi için bir protokol rapor etmektir.

Otolog Microfractured ve saf yağ dokusu osteokondral lezyon Talus, artroskopik yönetimi için

Bu kağıt hazırlık ve göbek kordonu matris elde edilen Mezenkimal Kök hücre pulcuklarının bir ikili patellar tendon kusur modelinde bir fare ile değerlendirilmesi açıklanmaktadır. Bu model ile kabul edilebilir bir hastalık ilişkili ve tedavi edilmezse ve tedavi tendon arasındaki farklılıkları algılamak için bulundu ve iki tedaviler arasında test.

Kök hücre tedavileri Sıçanlarda bir ikili Patellar Tendon yaralanma modelinde değerlendirilmesi

Bu yazı basit yalıtım ve Yeni Zelanda beyaz tavşan synovial sıvı mezenkimal kök hücre arınma için basit ve ekonomik Protokolü sunar.

Manyetik aktif hücre stratejileri yalıtmak ve Sinovyal sıvı elde edilen mezenkimal kök hücre bir tavşan modelinden arındırmak için sıralama

Burada, bir Yağ dokusundan elde edilen stromal vasküler fraksiyonu ve osteoartrit olan insan hastalarda kıkırdak benzeri doku Yenileyici tarafından diz işlevlerini geliştirmek için uygulama üretmek için bir protokol mevcut.

Yağ dokusundan elde edilen Stromal vasküler kesir için potansiyel kıkırdak rejenerasyon üreten klinik protokol

Mezenkimal kök hücrelerden üretilen yapay kıkırdak dokusunun implante edilmesiyle endokondral kemikleşme yoluyla kemik tedavisi, geleneksel tedavilerin dezavantajlarını aşma potansiyeline sahiptir. Hyaluronik asit hidrojelleri, in vivo kaynaşmış greftler arasında vaskülarizasyon ile entegre kemik oluşturmanın yanı sıra homojen olarak farklılaşmış kıkırdak greftlerinin ölçeklendirilmesinde etkilidir.

Mezenkimal Kök Hücreler Kullanılarak İn Vivo Endokondral Ossifikasyon Yoluyla Entegre Kemik Oluşumu

Önerilen protokol, multimodal analizler kullanarak kemik rejenerasyonu bağlamında kemik oluşumunu değerlendirmek için küresel bir yaklaşım gerektirmektedir. Yeni kemik oluşumu hakkında kalitatif ve kantitatif bilgi sağlamayı, temel ve klinik öncesi araştırmaların titizliğini ve geçerliliğini artırmayı amaçlar.

Ex Vivo Modelde Doku Mineralizasyonunun Kapsamlı Karakterizasyonu

Burada, kemik ve kıkırdak dokusu yenileme çalışmaları için uygun deneysel bir model oluşturmak amacıyla, koyun dizlerinde kontrollü osteokondral lezyonlar oluşturmak için entegre bir protokol sunuyoruz. Protokol, femoral kondilde tam kalınlıkta osteokondral defekt oluşturmak için hayvan refahı etkilerini ve sonuçlardaki değişkenliği en aza indiren teknikler kullanarak bir yöntem ortaya koyuyor.

Tam Kalınlıkta Osteokondral Defektli Bir Koyun Modelinin Oluşturulması ve Değerlendirilmesi

Öğrenin tavşan diz eklemindeki osteokondral kusurları mezenkimal kök hücrelerle tedavi etme yöntemini. Fibrin pıhtısı içinde allojenik hücre implantasyonu doku mühendisliği için standart bir yaklaşım sunar.

Fibrin pıhtısı içinde allojenik Mezenkimal Kök Hücre implantasyonu ile Tavşan Diz Eklemi içinde Osteokondral Kusur tedavisi

Daha fazla video keşfet