Name: Büyüyen Aksonlar boyunca murin Schwann Hücresi Kalkınma Analizi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 46 s
Description: Öğrenin, fare embriyolarından üst servikal ganglion eksplantasyonu ve kollajen matrisler kullanarak büyüyen aksonlar boyunca Schwann hücresi gelişimini analiz etme yöntemini. Sinir rejenerasyonu araştırmaları için değerli bir model sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz mükemmel teknik destek için bir kollajen protokol ve Jutta Fey ve Ursula Hinz paylaşmak için Urmas Arumae teşekkür etmek istiyorum. Ayrıca biz nazik Video Atış için yardım için Hıristiyan F. Ackermann, Ulrike Engel ve Heidelberg Üniversitesi Nikon Görüntüleme Merkezi ve ayrıca Joachim Kirsch teşekkür etmek istiyorum. Çalışma kısmen Deutsche Forschungsgemeinschaft (SFB 592) yoluyla finanse edildi.

1. Kollajen Jeller hazırlanması <ol><li> 455 ul 10x MEM, 112 ul% 7.5 NaHCO3, 50 ul glutamin ve NaOH içeren bir stok ortamı hazırlayın. Konsantrasyon ve NaOH miktarı sıçan kuyruğu kolajeni hazırlanması (1.2), 1.000 ul olmak stok orta son hacmine bağlıdır. </li><li> Ebendal (1) &#39;e göre-fare kuyruk kolajeni hazırlayın. 4 ° C&#39;de depolayın Kolajen çözeltisi Kollajen çözümün bir bozulma gözlenmemektedir. Yeni bir toplu hazırlandıktan sonra, (1.1) stok ortam için gerekli olan NaOH konsantrasyonunun tahmin. NaOH miktarı ve konsantrasyon titrasyonu için ortamın pH gösterge kullanın. 800 ul asidik fare kuyruk kolajeni stok orta 210 ul karıştığında kırmızı bir gölge çevirmek zorunda. NaOH konsantrasyonunun çok düşük ise kolajen çözeltisi ortamın pH gösterge dolayı, sarı dönecektir. Eşya olmadan ortam ve karışım için kolajen eklemekabarcıklar ucing. Buz üzerinde bu adımları uygulayın. Polimerizasyon kolajen çözeltisi ve stok orta karıştırıldıktan sonra 2 saat içinde meydana gelir ve yeni çözelti 37 ° C de kuluçkaya bırakılır Bir deneme başlamadan önce bunu sınayın. 1.3) stok orta 210 ul (1.2) ile kollajen solüsyonu 800 ul karıştırın. 8 de kamara slayt kuyularda bu çözüm yeri 100 ul. 37 slaytlar inkübe ° C,% 5 CO2 ve bir hücre kültürü inkübatöründe nemli koşullar. Bir hücre kültür tezgah ve steril koşullar altında kolajen jellerin hazırlanması. Kollajen 2 saat içinde gelatinizes. </li></ol> 2. Embriyonik SCGs diseksiyonu <ol><li> Kez hamile rahim fareler (E16-18) ve daha fazla ihtiyaç kadar PBS saklayın Harvest embriyolar. </li><li> Amniyon itibaren bir embriyo teşrih. Klavikula düzeyinde kaudal embriyo başını kesmek. &quot;Böcek-iğne&quot; ile Silikon alt yemeğin üzerine başını düzelt. Başın ventral tarafında bir size karşı karşıya bulunmaktadırEğer submandibuler bölgede görmek olurdu. Fiksasyon daha kolay hazırlanmasını sağlar. </li><li> Sol ve sağ submandibular bölgedeki cilt çıkarın ve deri altı bağ dokusu ile. </li><li> Hyoid, infrahyoidal kas ve SKM kas üzerine görünümünü temizlemek için kendi konumdan submandibular tükrük bezleri çıkarın. </li><li> Gırtlak ve nefes borusu üzerine görünümünü temizlemek için dikkatle bu kaslar çıkarın. Trakea ve larinks çıkarın. Karotis arterler sonra prevertebral kaslar üzerinde her iki tarafta görülür. SCG karotid arterlerin çatallanma bulunan ve oval bir şekil vardır. Dikkatlice ganglionlar kaldırmak ve PBS koyun. Onları yapışmasını iseniz diseksiyon araçları yavaşça ganglionlarda çıkarın. Bu forseps hem de SCG çıkarılması için bir &quot;böcek iğne&quot; ile monte edilmiş bir iğne tutucuya kullanmak için faydalıdır. </li><li> Eğer enou parçalara kadar bir kez PBS içinde, PBS içinde oda sıcaklığında saklayın gangliyongh ganglionlarda. Sonra kan damarları ve bağ dokusundan ganglionlarda temizleyin. Bir laminer akış tezgah altına yerleştirilen bir diseksiyon mikroskobu altında SCG diseksiyonu ve temizlik yapın. </li><li> Son olarak, daha kolay kullanım için şırınga üzerine monte şırınga iğne yardımıyla jelatinize kollajen jeller üzerine eksplante ganglionlarda yerleştirin. </li><li> % 5 CO2 ile nemli koşullar ile, 37 ° C &#39;de bir hücre kültürü kuluçka makinesi içinde jelatinleştirilmiş kollajen SCG eksplantlar inkübe edin. </li></ol> 3. SCG Eksplantlarından Tedavisi <ol><li> 1-2 saat inkübasyondan sonra, B27 takviyesi, glutamin ve antibiyotik içeren 100 ul Neurobasal hücre kültür ortamı ile SCG eksplant içeren kollajen kapsamaktadır. Artık oda slaytların kuyular 200 ul (100 ul ve 100 ul jel orta) bir hacmi içerir. , Besiyerinin bir 200 ul ekle ancak şimdi akson büyümesini kolaylaştırmak için NGF (60 ng / ml) içeren. Buna uygun olarak, NGF, nihai konsantrasyon 30 ng / ml &#39;dir. </li><li><ol class="lalpha"><li> SC göç başlangıçlı araştırmak için, in vitro 0 (DIV0) gün doğrudan ek faktörler ekleyin. Gerekli olan çift konsantrasyonu (2) &#39;de NGF içeren medyumda faktörler çözülür. </li><li> Zaten aksonlar boyunca göç başladı SC&#39;ler, üzerindeki etkisini analiz etmek amacıyla, DIV4 (deney potansiyel durağı) kadar DIV3 ilave faktörler ekleyin. Bu amaçla, dikkatlice DIV3 de çözelti 180 ul kaldırmak ve 200 ul yeni ortamı içeren NGF ve çift konsantrasyonu (2) çıkar ve ek faktörler ekleyin. </li></ol></li></ol> 4. Time-lapse Görüntüleme Analizler için bir inverted mikroskop kullanın. Çeşitli amaçları görünümü ve büyütme alanını tanımlayarak, kullanılabilir. SCG eksplant görüntüleme cam slayt ve kollajen ile gerçekleştirilir olarak önemli bir yönü ise, ikinci amacı çalışma mesafesijel. 1/10-30 dakika kayıt kare hızı iyi sonuçlar (2) gösterdi. Bununla birlikte, bu görünüş bilimsel soruya ayarlanmak zorundadır. Normal bir CCD kamera ile görüntü elde etmek için de kullanılabilir. Zaman atlamalı görüntüleme için bir hücre kültürü inkübasyon odası mikroskop aşamasına bağlı olmak zorundadır. % 5 CO2 ile nemli koşullar ile, 37 ° C de görüntüleme sırasında doku inkübe edin. Görüntüleme başlamadan önce kuluçka sistemi bir saat başlatın. Bu odaya slayt dahil mikroskop parçaları (örneğin objektif) sıcaklığa ayarlamanızı sağlar ve sıcaklık kaynaklı sürüklenir önler. Mikroskop yazılım yardımı ve SCG eksplantlar farklı uygulanan koşulların eşzamanlı analizleri için bir yazılım kontrollü motorize aşaması (Çok pozisyonlu ayar) ile analizler belirli alanlarda (eksplant üzerinde olan ve farklı eksplant arasında) tanımlayın. Kullanılabilir hızlandırılmış görüntüleme yabani-tip doku hem de transjenik hayvanlardan elde edilen doku için(3): SC&#39;ler (GFP S100B) markalama. Görüntüleme floroforlar için bir floresan ışık kaynağı micropscope kurulum uygulanacak vardır. Standart filtreleri kullanın. 5. SC göç mesafeleri kantifikasyonu <ol><li> Son nokta (örneğin DIV4) az, 3-4 saat boyunca odasında slayt% 4 PFA ile kollajen jeller sabitleyin. Ardışık olarak PBS ile 10 dakika için kolajen jellerin 5 kez yıkayın. Immünsitokimya (2) için standart protokoller uygulayın. Eğer SCGs hazırlanması için yeni iseniz, tirozin hidroksilaz karşı immünohistokimyasal tarafından sempatik ganglion (TH) katekolaminerjik hücreler için ortak bir belirteç olarak ganglion kimliğini doğrulamak. Immünohistokimya sırasında (birincil antikor sonra), jeller yıkama için yararlı olan daha büyük bir hacimde sahip 24 gözlü levhalar için eksplant ihtiva eden kolajen jellerin aktarın. </li><li> Immünhistokimya sonra, cam slaytlar kollajen jel dikkatlice yerleştirin. DikkatliceKalan çözüm kaldırmak ve kollajen kurulayın / iki boyut için küçültmek sağlar. Bu mesafe (2) kolayca ölçümleri sağlar. Bundan sonra, örnekleri monte. </li><li> Nihayet, Fiji (NIH) yazılımı yardımıyla göç mesafeleri ölçmek. Hiçbir özel eklentileri bu amaçla ihtiyaç vardır. Um içinde doğru ölçümler sağlamak için, doğru görüntüleme metadata ve Fiji altındaki ayarları, görüntü ve ölçek kontrol edin. Hücrelerin ölçümü için de Fiji kullanın. </li></ol>

<ol><li>Ebendal, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEbendal%2C+T+%22Use+of+collagen+gels+to+bioassay+nerve+growth+factor+activity%22">Use of collagen gels to bioassay nerve growth factor activity</a>. Rush, R. A. IBRO Handh, John Wiley & Sons Ltd. (1989).</li>
<li>Heermann, S., SchmÃcker, J., Hinz, U., Rickmann, M., Unterbarnscheidt, T., Schwab, M. H., Krieglstein, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuregulin+1+type+III%2FErbB+signaling+is+crucial+for+Schwann+cell+colonization+of+sympathetic+axons%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Neuregulin 1 type III/ErbB signaling is crucial for Schwann cell colonization of sympathetic axons.</a> PloS One. 6 (12), e28692(2011).</li>
<li>Zuo, Y., Lubischer, J. L., Kang, H., Tian, L., Mikesh, M., Marks, A., Scofield, V. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+proteins+expressed+in+mouse+transgenic+lines+mark+subsets+of+glia%2C+neurons%2C+macrophages%2C+and+dendritic+cells+for+vital+examination%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience.+The+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Fluorescent proteins expressed in mouse transgenic lines mark subsets of glia, neurons, macrophages, and dendritic cells for vital examination.</a> The Journal of Neuroscience. The Official Journal of the Society for Neuroscience. 24 (49), 10999-11009 (2004).</li>
<li>Levi-Montalcini, R., Booker, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EXCESSIVE+GROWTH+OF+THE+SYMPATHETIC+GANGLIA+EVOKED+BY+A+PROTEIN+ISOLATED+FROM+MOUSE+SALIVARY+GLANDS%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">EXCESSIVE GROWTH OF THE SYMPATHETIC GANGLIA EVOKED BY A PROTEIN ISOLATED FROM MOUSE SALIVARY GLANDS.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 46 (3), 373-384 (1960).</li>
<li>Meintanis, S., Thomaidou, D., Jessen, K. R., Mirsky, R., Matsas, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuron-glia+signal+beta-neuregulin+promotes+Schwann+cell+motility+via+the+MAPK+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">The neuron-glia signal beta-neuregulin promotes Schwann cell motility via the MAPK pathway.</a> Glia. 34 (1), 39-51 (2001).</li>
<li>Yamauchi, J., Miyamoto, Y., Chan, J. R., Tanoue, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ErbB2+directly+activates+the+exchange+factor+Dock7+to+promote+Schwann+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">ErbB2 directly activates the exchange factor Dock7 to promote Schwann cell migration.</a> The Journal of cell biology. 181 (2), 351-365 (2008).</li>
<li>Anton, E. S., Weskamp, G., Reichardt, L. F., Matthew, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+growth+factor+and+its+low-affinity+receptor+promote+Schwann+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Nerve growth factor and its low-affinity receptor promote Schwann cell migration.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (7), 2795-2799 (1994).</li>
<li>Mahanthappa, N. K., Anton, E. S., Matthew, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glial+growth+factor+2%2C+a+soluble+neuregulin%2C+directly+increases+Schwann+cell+motility+and+indirectly+promotes+neurite+outgrowth%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%3A+The+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Glial growth factor 2, a soluble neuregulin, directly increases Schwann cell motility and indirectly promotes neurite outgrowth.</a> The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 16 (15), 4673-4683 (1996).</li>
<li>Yamauchi, J., Chan, J. R., Shooter, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophins+regulate+Schwann+cell+migration+by+activating+divergent+signaling+pathways+dependent+on+Rho+GTPases%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Neurotrophins regulate Schwann cell migration by activating divergent signaling pathways dependent on Rho GTPases.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (23), 8774-8779 (2004).</li>
<li>Gumy, L. F., Bampton, E. T. W., Tolkovsky, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperglycaemia+inhibits+Schwann+cell+proliferation+and+migration+and+restricts+regeneration+of+axons+and+Schwann+cells+from+adult+murine+DRG%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Hyperglycaemia inhibits Schwann cell proliferation and migration and restricts regeneration of axons and Schwann cells from adult murine DRG.</a> Molecular and Cellular Neurosciences. 37 (2), 298-311 (2008).</li>
<li>Sakaue-Sawano, A., Kurokawa, H., Morimura, T., Hanyu, A., Hama, H., Osawa, H., Kashiwagi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+spatiotemporal+dynamics+of+multicellular+cell-cycle+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Visualizing spatiotemporal dynamics of multicellular cell-cycle progression.</a> Cell. 132 (3), 487-498 (2008).</li>
<li>Park, D., Don, A. S., Massamiri, T., Karwa, A., Warner, B., MacDonald, J., Hemenway, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+imaging+of+cell+death+using+an+Hsp90+ligand%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Noninvasive imaging of cell death using an Hsp90 ligand.</a> Journal of the American Chemical Society. 133 (9), 2832-2835 (2011).</li>
<li>Shcherbo, D., Souslova, E. A., Goedhart, J., Chepurnykh, T. V., Gaintzeva, A., Shemiakina, I. I., Gadella, T. W. J., Lukyanov, S., Chudakov, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practical+and+reliable+FRET%2FFLIM+pair+of+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Practical and reliable FRET/FLIM pair of fluorescent proteins.</a> BMC Biotechnology. 9, 24(2009).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Periferik sinir sisteminin gelişimi heyecan verici bir süreçtir. Gelişimi tamamlandıktan sonra, aksonların, insanlarda, sık sık, 100 cm olabilir tüm uzunluğu boyunca, SKS ile ensheathed edilir. Bu amaca yönelik olarak, gerekli SCs sayısı doğru gelişme sırasında oluşturulmalıdır ve SCs da tam kapsamı sağlamak aksonal için çevre uzanan akson boyunca hareket etmek zorunda. Bu miyelinli hem de için unmeylinated aksonlar için de geçerlidir. Her iki durumda da tüm aksonların SCs ile temas halinde olan ve destek bağlıdır. SC g...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif / Malzeme Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog Numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> 10x MEM </td><td> Gibco </td><td> 21430 </td><td></td></tr><tr><td> Sodyum Bikarbonat (% 7.5) </td><td> Gibco </td><td> 25080 </td><td></td></tr><tr><td> Glutamin </td><td> Gibco </td><td> 25030 </td><td></td></tr><tr><td> NaOH </td><td> Merck </td><td> 109137 </td><td></td></tr><tr><td> NGF </td><td> Roche </td><td> 1058231 </td><td> ARGE # 556-NG-100 </td></tr><tr><td> Neurobasal Orta </td><td> Gibco </td><td> 21103 </td><td></td></tr><tr><td> B27 Supplement </td><td> Gibco </td><td> 17504 </td><td></td></tr><tr><td> antibiyotikler </td><td> Gibco </td><td> 15640 </td><td></td></tr><tr><td> d-PBS </td><td> Gibco </td><td> 14040 </td><td></td></tr><tr><td> Böcek iğneleri </td><td> FST </td><td> 26002-20 </td><td></td></tr><tr><td> şırınga iğnesi </td><td> Braun </td><td></td><td> BD # 300013 </td></tr><tr><td> 8 de kamara slayt </td><td> Lab tek </td><td> 177402 </td><td></td></tr></tbody></table>

büyüyen aksonlar boyunca murin schwann hücresi kalkınma analizi

Analyzing Murine Schwann Cell Development Along Growing Axons

Periferik sinirlerin gelişimi ilginç bir süreçtir. Nöronlar insanlarda 100&#39;den fazla cm uzaklıkta nöronun soma gelen genellikle belirli hedeflere, innerve aksonlar gönderir. Gelişme sırasında nöronal hayatta kalma hedef türevi büyüme faktörleri üzerinde değil, aynı zamanda Schwann hücreleri (SC&#39;ler) bir desteğe bağlıdır. Sinaps veya nöromuskuler kavşağa nöronal soma (veya merkezi periferik sinir sistemine geçiş) bölgesinden Bu amaçla SC ensheath aksonlar için. Schwann hücreleri nöral krest türevleri ve tüm akson SC&#39;ler ile kaplıdır kadar çıkan aksonlar boyunca habercileri olarak göç ederler. Bu periferik sinir sisteminin gelişimi için SC göçün önemini göstermektedir ve bu sürecin araştırılması gerekliliğini vurgulamaktadır. SC gelişme analiz etmek için, bir ayar da geçiş için onların fizyolojik alt tabaka, akson içeren SCs yanında olan ihtiyaç vardır. Intrauterin gelişme nedeniyle <em&gt; in vivo time-lapse görüntüleme, ancak, (Mus musculus) fare gibi plasental omurgalılarda mümkün değildir. Bunu aşmak için, biz üstün servikal ganglion (SCG) eksplant tekniği uyarlanmıştır. Sinir büyüme faktörü (NGF) ile tedavi üzerine SCG eksplantlar gangliyondan çevreye aksonları boyunca göç SC öncüleri takip aksonlar uzatmak. Bu sistemin güzelliği SC endojen SC bir havuz ve onlar aynı anda büyüyor kendi fizyolojik aksonlar boyunca göç ettiğini elde olmasıdır. Aksonlar boyunca SC gelişimi SC göç içgörüler kazanmak için başka imkanların açıldığı, time-lapse görüntüleme ile analiz edilebilir, çünkü bu sistem, özellikle şaşırtıcıdır.

Aksonal büyüme NGF (4) (film düzeni S1 Şekil 1 düzeni) ile muamele üzerine ikinci eksplantlar SCG kolaylaştırılır. Bu işlem herhangi bir inverted mikroskop ile görülebilen ve time-lapse görüntüleme (film S2) takip edilebilir. Bir bilim adamı fare embriyoları SCG diseksiyon için yeni ise şiddetle basit bir anti-tirozin hidroksilaz (TH) immünohistokimyasal olarak tekniğin bir doğrulama öneririz. TH etiketi aksonlar (Şekil 2B) katekolaminerjik nöronlar (bu durumda sempatik...

Burada SC&#39;ler uzanan aksonlar boyunca geliştirmek için mümkün olduğu bir Schwann hücresi (SC) göç tahlil tarif.

Büyüyen Aksonlar boyunca murin Schwann Hücresi Kalkınma Analizi

The  development of peripheral nerves is an intriguing process. Neurons send out  axons to innervate specific targets, which in humans are often more than ...

Aşağıdaki deneyin amacı, doğal yaşam alanları olan büyüyen aksonlar boyunca schwan hücresi gelişimini analiz etmektir. Bu, ikinci bir adım olarak ilk ex explan superior servikal gangliyonlar veya fare embriyolarının kollajen matrisleri üzerine S cgs ile elde edilir. S cgs, SCG nöronlarından koronal bir şekilde aksonal büyümeyi kolaylaştıran sinir büyüme faktörü veya NGF ile tedavi edilir.X explan'dan aksonal büyümeye ek olarak, endojen schwan hücrelerinin genişletilmiş aksonlar boyunca perifere doğru göç ettiği gözlemlenebilir. Schwan hücre gelişimi, hızlandırılmış görüntüleme ve ayrıca mesafe ölçümlerini mümkün kılan sabit dokunun uç nokta analizi ile analiz edilebilir. Bu tekniğin, çizik göçü tahlili gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, kuğu hücrelerinin doğal yaşam alanlarının bu tahlillere dahil edilmesidir.Bu yöntemin görsel gösterimi çok önemlidir. Kollajen metriklerinin doğru montajı ve sgs'nin doğru diseksiyonu başarının anahtarıdır. Bu adımları öğrenmek özellikle zor değildir.Sadece önce pratik yapmaları gerekiyor. Bir doku kültürü davlumbazında çalışırken, buz üzerindeki tüm solüsyonlarla koşullarımızı anladık. Stok kültürü ortamını ve sıçan kuyruğu kollajenini yazılı protokoldeki talimatlara göre hazırlayın.800 mikrolitre sıçan kuyruğu kollajenini 210 mikrolitre stok ortamı ile karıştırın. Kabarcıklar oluşturmadan, çözelti kırmızı renkte kalmalıdır. Çözelti sararırsa, Ratal kollajen çözeltisi çok asidiktir ve daha büyük bir konsantrasyonda sodyum hidroksit pipeti ile yeniden yapılması gerekir 100 mikro çözeltinin çok kuyulu bir slaydın her bir oyuğuna salınması ve her bir kuyucuğun tabanının tamamen kaplandığından emin olun.Bulaşıkları iki saat boyunca 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksite ayarlanmış nemlendirilmiş bir doku kültürü inkübatörüne yerleştirin. Hasattan sonra, E 16 ila E 18 embriyolarımız PBS içeren bir Petri kabına yerleştirilir, daha sonra amnyondan diseke edilir ve C klaviküler seviyesinde bir kordiyal dekapite edilir. Baş ve boyun bölgeleri daha sonra silikon bir alt tabağa aktarılır ve diseksiyon mikroskobu ile bakarken, submandibular ve klavikulüler bölgelerdeki dokuyu iğnelemek için böcek iğneleri kullanılır.Şimdi submandibular bölgenin cildini ve deri altı dokusunu çıkarmak için forseps kullanın. Daha sonra supra hyoid, infra hial ve sternokleidomastoid kasları ortaya çıkarmak için submandibular tükürük bezlerini çıkarın. Daha sonra, gırtlak ve trakeayı ortaya çıkarmak için infra hial ve sternokleidomastoid kasları dikkatlice çıkarmak için forseps kullanın.Trakeayı forseps ile kavrayın ve trakea ve gırtlağı kaldırın. Gırtlak ve trakea çıkarıldıktan sonra, karotis arterler görülebilir, prevertebral kasların her iki tarafıdır. Superior servikal gangliyonlar, karotis arterlerin çatallanmasında bulunur ve oval bir şekil olarak tanımlanabilir.Üst servikal gangliyonları çıkarmak için forseps ve böcek iğnesi ile monte edilmiş bir iğne tutucu kullanın ve PBS içeren taze bir tabağa yerleştirin, ardından gangliyonlardan herhangi bir kan damarını veya bağlı dokuyu inceleyin. Şırınga iğneleri yardımıyla, jelatinleştirilmiş kollajen jelleri inkübatörden çıkarın ve gangliyonları jellere aktarmak için şırıngalara monte edilmiş şırınga iğnelerini kullanın. Eksplantları,% 5 karbondioksit ve nemli koşullarda% 5 santigrat dereceye ayarlanmış doku kültürü inkübatörüne bir ila iki saat boyunca yerleştirin.Bir ila iki saatlik inkübasyondan sonra, superior servikal ganglion eksplantları doku kültürü inkübatöründen alınır ve her x explan'a B 27 takviyesi glutamin ve antibiyotik içeren 100 mikrolitre nöro bazal ortam eklenir. Daha sonra, mililitre başına 60 nanogram içeren 200 mikrolitre nöro bazal ortam. Aksonal büyümeyi kolaylaştırmak için kuyucuklara NGF de eklenir.Halihazırda göç etmeye başlamış olan kuğu hücreleri üzerindeki etkiyi incelemek için in vitro sıfır gün olarak tanımlanan bu zamanda test maddeleri de eklenebilir. Akson maddeleri, mevcut ortamın 180 mikrolitresinin çıkarılması ve ilgilenilen maddenin ve NGF'nin son konsantrasyonun iki katı şekilde 200 mikrolitre ortamla değiştirilmesiyle in vitro olarak üç günde uygulanabilir, hızlandırılmış görüntüleme, farklı test maddelerini karşılaştırmak için paralel hücre kültürü inkübasyonunu ve hızlandırılmış görüntülemeyi mümkün kılacak ters çevrilmiş bir mikroskop kurulumu kullanılarak gerçekleştirilir. Bir deneyde, deneyin bitiş noktasında çok konumlu bir ayar önerilir.Kültür slaytları içindeki eksplantları üç ila dört saat boyunca %4 PFA ile sabitledikten ve PBS ile yıkadıktan sonra, SCG dokuyu bloke ederken X eksplantını doğrulamak için immünohistokimya yapın, iki saat boyunca% 10 normal eşek serumu% 2% tritton X 100% içeren PBS ile. Daha sonra gece boyunca bloke edici çözeltide birincil antikor inkübasyonu ile devam edin. Primer antikor inkübasyonundan sonraki ertesi gün, X explan içeren jelleri PBS ile yıkadıktan sonra 24 oyuklu bir plakaya aktarın, ışıktan korunurken floresan etiketli ikincil antikorlarla iki saat inkübe edin, ardından PBS ile yıkayın ve 10 dakika boyunca dappy solüsyonu ile inkübe edin.Birkaç kez yıkadıktan sonra, X explan içeren kollajen jelleri bir mikroskoba yerleştirin, kaydırın, slaytları kurutun ve ardından dana eti ile monte edin. Daha sonra kantitatif analiz için görüntüler elde etmek için standart bir floresan mikroskobu kullanın. Mikroskop yazılımının meta verileri kaydedebilmesi yararlıdır.Elde edilen görüntülerin kantitatif analizleri, bilimsel uygulamalar için ücretsiz olarak kullanılabilen Fiji veya ImageJ yazılımı ile gerçekleştirilebilir. Bu filmde in vitro olarak dört gün boyunca şematik bir SCGX EXPLAN'dan elde edilen aksonal büyüme gösterilmektedir. İmmünohistokimya, eksplante edilen ganglionu net bir şekilde tanımlamak için in vitro dördüncü günde yapılabilir.Sempatik bir ganglion olarak, schwan hücrelerinin akson boyunca göç ettiği, üst servikal gangliondan çevreye doğru hareket ettiği gözlemlenebilir. Bu video, daha yüksek bir büyütmede görülenle aynı geçiş modelini gösterir. Migrasyon mesafeleri, önde gelen schwan hücrelerinin çekirdeklerinden şematikte gösterildiği gibi birden fazla yerde ekilen SCG'nin sınırına olan mesafeyi ve dört günde DPI etiketli NGF ile muamele edilmiş bir numunenin görüntüsünü ölçerek, DPI'lı çekirdekler için karşı boyama numuneleri üzerinde kolayca ölçülebilir.Parlak alan ve floresan kombinasyonu, S 100 GFP pozitif kuğu hücrelerinin ve aksonların görselleştirilmesini sağlar. Son olarak, bu film üstün bir servikal ganglionun sınırında schwan hücre göçünü ex exlan gösterir. Burada sadece floresan kanalı gösterilmiş olup, S 100 GFP pozitif schwan hücrelerinin daha kolay yorumlanmasını sağlar.Bu prosedürü takiben, bir hücre proliferasyonunun nicelikçiliği veya bir hücre apoptozunun niceliğinin belirlenmesi gibi ek kantitatif analizler yapılabilir. Tabii ki, son nokta analizi için yeterli immünohistokimya yapılmalı veya canlı bağlamdaki etkileri göstermek için spesifik transgenik hayvanlar kullanılmalıdır.

analyzing-murine-schwann-cell-development-along-growing-axons

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu makale niyetinde kademeli biçimde tanımlamak için yaygın olarak...

Schwann-astrosit Etkileşimleri Analizi In Vitro Tahliller

Kültür Yetişkin Dorsal Root Ganglion Nöronlar ile Axon Rejenerasyon Genetik Çalışma

Bu video, bir dorsal kök ganglion eksplant ve Schwann hücrelerinin kokülasyon modelini göstermektedir. Kokültür koşullarında, askorbik asit, Schwann hücrelerinin miyelinatör formlara farklılaşmasını teşvik eder. Miyelinizan Schwann hücreleri, sinir fonksiyonu için gerekli olan bir miyelin kılıfı oluşturmak için aksonları birden çok kez sarar.

Nöron Miyelinasyonu için Dorsal Kök Ganglion Eksplantının Schwann Hücreleri ile Birlikte Kültürlenmesi

Burada, genetik olarak tasarlanmış farelerin geliştirilmesinde duyusal akson büyüme fenotiplerini değerlendirmek için etkili bir yöntem olarak, tüm hayvanda periferik nosiseptör akson projeksiyonlarının görüntülenmesi için fetal fareleri genotiplemek, boyamak ve hazırlamak için optimize edilmiş bir protokol sunuyoruz.

Fare Embriyo Duyu Akson Projeksiyonlar tüm montaj Görüntüleme

Işık mikroskobu teknikleri, biyokimyasal tahlillerle birleştiğinde, netrin bağımlı akson dallanmasında SNARE aracılı ekzositozun katılımını aydınlatmaktadır. Bu tekniklerin kombinasyonu, akson dallanmasını ve hücre şekli değişikliğini kontrol eden moleküler mekanizmaların tanımlanmasına izin verir.

Kombine Metodolojileri kullanan Akson Dallanman ve Nöronal Morfogenez sırasında Plazma Membran Teslimat Rolü tanımlayın

Bu protokol, sıçanlardan izole edilen dorsal kök ganglion (DRG) nöronlarının izolasyonunu ve akson hizalamasını geliştirmek için statik önceden gerilmiş bir hücre kültürü sistemi üzerinde DRG nöronlarının kültürünü ve ardından miyelinasyonu teşvik etmek için Schwann Hücrelerinin (SC'ler) ko-kültürünü tanımlar.

Bir Yaklaşım sırt kök ganglion nöronlar hizalama ve myelinizasyondur Artırma

Burada, motor nöron projeksiyon ve transgenik Hb9::GFP fare embriyo axon arborization görüntülenmesi için bir protokol açıklayın. Motor nöronlar için immunostaining sonra hafif levha Floresans mikroskobu Image embriyolar için sonraki kantitatif analiz için kullanılan. Bu iletişim kuralı diğer nöron gezinti süreçlerinde merkezi sinir sistemi için geçerlidir.

Görselleştirme Motor Axon navigasyon ve hafif levha Floresans mikroskobu kullanarak fare embriyo Axon Arborization miktar

Bir ex vivo dilim tahlil gerçek zamanlı olarak görüntülenmiş olmak okülomotor sinir büyüme sağlar. Dilim E 10.5 ISLMN katıştırarak oluşturulur: agarose 'de Gfp embriyolar, bir vibratom üzerinde dilimleme, ve bir aşama-üst kuluçç büyüyen. Axon rehberlik yollarının rolü, kültür ortamına inhibitörler ekleyerek değerlendirilir.

Olomotor sinir gelişimi için zaman aşımı görüntüleme için embriyonik GFP-Ifade fareler dan ex vivo okülomotor dilim kültürü

Dorsal kök gangliyonları ve Schwann hücrelerinin kokültür sisteminde, periferik sinir sisteminin miyelinasyonu incelenebilir. Bu model, periferik miyelinasyonu gözlemlemek ve ölçmek ve ilgilenilen bileşiklerin miyelin kılıfı üzerindeki etkilerini incelemek için deneysel fırsatlar sunmaktadır.

Sıçan dorsal kök ganglion eksplantları ve schwann hücrelerinin bir kokültüründe periferik aksonların in vitro miyelinasyonu

Serebral korteksin gelişimi sırasında, nöronlar ve glial hücreler ventrikülü kaplayan ventriküler bölgeden kaynaklanır ve beyin yüzeyine doğru göç eder. Bu süreçte birçok gen yer alır. Bu protokol, göç eden nöronların ve glial progenitörlerin hızlandırılmış görüntüleme tekniğini tanıtır.

Embriyonik Fare Beyin Dilimlerinde Göç Eden Nöronların ve Glial Progenitörlerin Hızlandırılmış Görüntülenmesi

Öğrenin, fare embriyolarından üst servikal ganglion eksplantasyonu ve kollajen matrisler kullanarak büyüyen aksonlar boyunca Schwann hücresi gelişimini analiz etme yöntemini. Sinir rejenerasyonu araştırmaları için değerli bir model sunar.

Büyüyen Aksonlar boyunca murin Schwann Hücresi Kalkınma Analizi

Daha fazla video keşfet