Name: Tüm Dağı RNA Floresan In situ Hibridizasyon Drosophila Embriyolar (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: Öğrenin, Drosophila melanogaster embriyolarında RNA ifadesini ve lokalizasyonunu analiz etmek için tüm dağı floresan in situ hibridizasyon (FISH) protokolünü. Bu yöntem, gelişim biyolojisi araştırmalarında yüksek çözünürlüklü RNA dağılım görüntüleme sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Lecuyer laboratuarda yürütülen çalışmalar Ulusal Bilimler ve Kanada&#39;nın Mühendislik Konseyi (NSERC), Sağlık Araştırması (CIHR) ve Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) ve Kanada Enstitüsü fon tarafından desteklenmektedir. Carole Iampietro Angelo PIZZAGALLI doktora sonrası dostluk tarafından destekleniyor ise Fabio Alexis Lefebvre ve Gaël Moquin-Beaudry&#39;den, NSERC lisans araştırma studentships tarafından desteklenmektedir.

1. RNA Prob Hazırlanması Genel Bakış: Aşağıdaki bölümde FISH için uygundur digoxigenin (Dig) etiketli RNA problar yapmak için gereken adımları açıklar. İlk adım, bir klonlama ya da dizi spesifik prob oluşturmak için kullanılacak bir ilgi geninin transkripsiyonu bölgeye karşılık gelen bir dizi yükselterek PCR ile yapılır. Bu, çoklu klonlama sitesi sonra oluşturulmuş arttırıcı dizileri dahil komşu primerler kullanılarak PCR için bir şablon olarak hizmet edebilir bakteriyofaj promotör elemanları (T7, T3 ya da SP6) ile takviye edildiği bir plazmid içine ilk klonlama gen segmenti ile elde edilebilir böylece her bir uç (Şekil 1A) farklı promotor sekansları olan bir doğrusal PCR ürünü üreten. : Alternatif olarak, klonlama aşaması önlemek için, bir de genomik DNA ya da cDNA, T3, T7, ya da 5 &#39;uçlarında SP6 dizileri (örneğin, T7 içeren oligonükleotidler kullanılarak PCR amplifikasyon gerçekleştirebilir5&#39;-TAATACGACTCACTATAGGGAGA-3 &#39;; T3: 5&#39;-AATTAACCCTCACTAAAGGGAGA-3&#39;; SP6: 5&#39;-ATTTAGGTGACACTATAGAAGAG-3 &#39;). Doğrusal PCR ürünleri daha sonra çalıştırmak mahsus uygun polimerazı (Şekil 1B) ile in vitro olarak transkripsiyonu ile DIG-labeled duyu veya antisense RNA probları sağlamak için şablon olarak kullanılır. Belirli genler için problar yaparken, biz FISH sinyal spesifitesi (yani faiz gen antisens yönde transkripsiyonu sürece değerlendirmek için yararlı olacak farklı polimerazlar kullanılarak duygusu ve antisens RNA problar hem hazırlanması tavsiye, sense RNA probu ortaya çıkaracaktır arka sinyal seviyesi). Aşağıdaki adımların tümünü, bir (örneğin su, ilk% 70 etanol veya ticari RNAse dekontaminasyon çözümleri ile tüm tezgah alanları ve ekipmanın temizlik ve RNAse-ücretsiz kaynakları kullanarak kirletici ribonükleazlar (RNaz) tarafından potansiyel düşüşü önlemek için büyük özen ipuçları, mikrosantrifüj tüpleri). Anneterials <ul><li> 1.5 ml mikrosantrifüj tüpleri, (Abgene, Rochester, NY, ABD Cat. No 0900) </li><li> Jel-ekstraksiyon kitleri (QIAGEN, Mississauga, ON, Kanada;. Cat No 28706). </li><li> RNAse ücretsiz su (Wisent, Inc Kat. No 809-115-CL) </li><li> RNA polimeraz (T3, T7, ya da SP6). (20 U / ul, Fermentas Biosciences. Cat. No EP0101, EP0111, EP0131). </li><li> RNAse-OUT Ribonükleaz inhibitörü (40 U / ml &#39;), (Invitrogen, Burlington. Canada.Cat. No 10777-019 ON). </li><li> Digoxigenin (DIG) nükleotid karışımları (DIG-11-UTP, Roche Uygulamalı Biosciences, Laval, QC, Kanada. Cat. No.11209256910). </li></ul> Ekipman <ul><li> Masa üstü mikro-santrifüj </li><li> Jel elektroforez cihazları </li></ul><ol><li> PCR genomik DNA, cDNA, veya bakteriyofaj T7 ve T3 ya da SP6 promoter dizileri ile çevrili bir doğrusal PCR ürünü üretmek için plazmid DNA ile gen spesifik sekans yükseltmek. PCR koşulları için üretici tavsiyelerine uyun. </li><li> Kalite ve si doğrulamaagaroz jel elektroforezi ile PCR ürünü ze. Tavsiyeler üretir ve 50 ul tampon içinde ürün elüt edilmesi için uygun bir standart Jel çıkarma kiti kullanılarak Tüketim ve temizleyen bir PCR ürünü. </li><li> 3M sodyum asetat (pH 5.2) ve buz gibi soğuk% 100 etanol 150 ul 5 ul ilave edilerek PCR ürünü çökeltmek ve -70 ° C&#39;da gece boyunca tüpleri. 4 ° C &#39;de 10 dakika boyunca 13.000 x g&#39;de santrifüje tüpler ve% 70 etanol ile pelet yıkayın. Yeniden Spin, etanol ve hava pelet kuru tüm izlerini kaldırmak. RNAse-serbest su 25-50 ul süspanse edin. </li><li> 10X T7 transkripsiyon tamponu 2 ul (Invitrogen), RNAse inhibitörü, 2 ul Dig-NTP karışımı 1 ul (20 U / ml &#39;) aşağıdaki gibi bir 20 mikrolitre reaksiyon içinde 200-500 ng saflaştırılmış PCR ürünü kullanılarak DIG-etiketli prob uyarlamak ve 2 ul T7 RNA polimeraz (20 U / ml &#39;den). RNAse-serbest su ile 20 ul son hacim getirin. 3-4 saat boyunca 37 ° C &#39;de transkripsiyon reaksiyon inkübe edin. </li><li> Transc ayarlayınRNAse-serbest su ile 50 ul ription karışımı ve benzeri gibi Aşama 4&#39;te tarif DIG-labeled RNA probu hızlandırabilir. RNAse-serbest su ve 100 ul içinde yıkanmış RNA pelet yeniden süspanse edin. -70 ° C&#39;de saklayın numuneleri yeniden süspanse </li><li> Bir Nanodrop spektrofotometre kullanılarak prob sayısal. Prob kalitesini doğrulamak için, etidyum bromür ile% 1-2 agaroz jel lekeli bir 1-2 ul örnek çalıştırın. </li></ol> 2. Drosophila embriyolar toplanması ve Fiksasyon Genel Bakış: Bu bölümde sahnelenen Drosophila embriyo toplama ve işleme için gereken adımları açıklar. Ihtiyaç duyulan embriyo sayısına bağlı olarak, farklı büyüklükte sinekler nüfus kafesler içinde muhafaza edilebilir. Koleksiyonları 100mm elma suyu toplama plakaları kullanılarak 900 cm 3 silindirik kafesler kullanılarak yapılır için aşağıdaki adımlar vardır. Uygun fiksasyon embriyo çevreleyen iki koruyucu katmanlarının çıkarılması gerekir: Dış koryon ve iç Vitelline zar 13. Bir kez hasat edilir, embriyolar birinci koryon çıkarmak için% 50 ağartıcı çözelti ile yıkanmış, daha sonra da heptan (vitellin zar permeabilizes) ve PBS% 3.7 formaldehit ihtiva eden ihtiva eden bir iki fazlı çözelti içinde karıştırılır. Vitellin zar sonra kırık ve heptan ile metanol ve bifazik bir karışım içine embriyo transfer ile ortadan kaldırılmaktadır. Uygun embriyo fiksasyon ve vitellin membran çıkarılması mansap FISH prosedürünün başarısı için kritik öneme sahiptir. Malzemeler <ul><li> Apple suyu on sent büyüklüğünde maya hamurlu agar plaklarına (% 40 elma suyu,% 4 sakkaroz,% 3.5 agar,% 0.3 metil paraben) (ekmek mayası tereyağı tutarlılık su ile karıştırılarak) </li><li> Toz paraformaldehid (Elektron Mikroskobu Bilimler, Hatfield, PA, USA;. Cat No 19208) </li><li> Heptan </li><li> Metanol </li><li> 3% Bleach çözümü </li><li> 20 ml cam sintilasyon şişeleri (Kanada, Thermo Fisher Scientific, Ottawa;. Cat No 03-337-15). </li></ul> Ekipman <ul><li> Nüfus kafesleri </li><li> Toplama sepetler (Nitex bir ağ ve bir delik kapak olarak kesilmiş olan bir kesik 50 ml polipropilen tüpün üst kısmını kullanarak yapılır). </li><li> Küçük boya fırçası </li><li> Masa üstü vorteks </li></ul><ol><li> 25 1 saat için taze elma suyu / maya plaka ile Pre-net, iyi beslenen nüfusun kafesleri ° C. </li><li> Erken evre embriyo hasat kafese yeni bir elma suyu / maya plaka ekleyin. 25 4 saat boyunca kafes inkübe ° C (toplama saatleri istenen aşamaları bağlı olarak ayarlanabilir unutmayın). </li><li> 3.7 g paraformaldehid tozu, 2N KOH 70 ul ve kimyasal başlık altında bir bardak sintilasyon flakon milliQ su 7.3 ml birleştirerek yeni bir% 37 formaldehit solüsyonu hazırlayın. Paraformaldehid tozu tamamen eriyene kadar yeni sintilasyon şişenin içine oda sıcaklığında ve filtre sonra serin, kaynatıp. </li><li> Bir bifazik fiksasyon çözeltisi hazırlayındaha sonra 7.5 ml heptan ekleyerek, bir sintilasyon şişesi içinde% 37 formaldehit 250 ml ile 1X PBS içinde 2.25 ml birleştirerek. </li><li> Kafesinden elma suyu plaka Harvest ve oda sıcaklığındaki musluk suyu biraz ekleyerek ve ince fırça ile plaka embriyolar fırçalayarak embriyolar toplamak. Bir sepet içine yeniden süspanse embriyo transferi ve ılık musluk suyu ile durulayın. </li><li> Çamaşır suyu çözeltisi içinde toplama sepetleri banyo tarafından 90 sn Dechorionate embriyolar, daha sonra ılık musluk suyu (çamaşır suyu kokusu gidene kadar) ile iyice yıkayınız. </li><li> Toplama sepeti sökün, hafifçe bir fırça kullanılarak embriyolar toplamak ve bifazik tesbit çözeltisi içine aktarabilirsiniz. Embriyolar PBS ve heptan katmanları arasındaki arayüzü de birikir. </li><li> Mühür sintilasyon şişeleri ve bir vorteks mikser sabitleyin. Düşük ayarda 20 dakika boyunca çalkalanır. </li><li> Çıkarın ve Pasteur pipeti kullanarak alt PBS ve üst heptan aşamalarının çoğu atın. Soluklupipet içine geri kalan PBS / heptan / embriyolar karışımı. Damla damla moda, embriyolar ortadan kaldırmak için özen, pipetle alt PBS faz atın. Bir 500 ul heptan iki fazlı çözelti (üst faz) ve 500 ul metanol (alt faz) ihtiva eden 1.5 ml bir tüp içine embriyolar yatır. </li><li> Vitellin membranlar çatlamak 30-45 sn için elle kuvvetlice tüpler sallayın. Bir kere kırık, embriyoların metanol içine batar. </li><li> Heptan / metanol ara yüzeyinde üst faz heptan ve çatlamamış embriyolar Sil ve metanol 500 ul ilave edin. 5 saniye sallayın. </li><li> Metanol ile 3 kere yıkayın ve -20 ° C (bu noktada embriyolar hafta / ay süreyle saklanabilir) de embriyolar saklayın. </li></ol> 3. Post-fiksasyon İşleme, Hibritleşme ve Post-hibridizasyon Yıkama Genel Bakış: BALIK Bu bölüm detayları embriyo permeabilization için işlem adımları önceden, öncesi melezleme,RNA problar ve post-hibridizasyon yıkar ile hibridizasyon. İlk permeabilization adımlar için embriyolar tek bir tüp (aşağıdaki adımları 1-9, yerleşmiş embriyo / numune 10-15 ul amaçlayan) bir havuz olarak işlenir, ancak bir 96-PCR plate bireysel kuyulara aliquoted edilir Ön hibridizasyon adım (Adım 10) ile devam etmeden önce. Bu deney ilk aşamalarında bile her embriyo tedavi edilmesine yardım eder. Bir BALIK deney kurarken, bireysel deneylerde arka sinyal seviyesini belirlemek için negatif kontroller dahil etmek önemlidir. Bunun için bölüm 1, tipik bir &#39;no-prob&#39; koşulu ile karşılaştırılabilir bir sinyal verecektir &#39;anlamda&#39; RNA probu ile melez bir örnek belirtildiği gibi, &#39;no-prob&#39; numune dahil tavsiye ve. Malzemeler: <ul><li> Metanol </li><li> Fosfat% 0.1 Tween-20 (PBT) ile tamponlu salin </li><li> Proteinaz-K, 1 mg / ml stok çözeltisi (Sigma Aldrich, Oakville, ON, Kanada. Katalog No P2308) </li><li> Glisin (20 mg / ml stok çözeltisi) </li><li> Hibritleşme çözeltisi:% 50 formamid, 5X SSC,% 0.1 Tween-20, yamultulmuş somon sperm DNA, 100 g / ml, 100 ug / ml heparin. </li><li> 0.2 ml 96-PCR plakaları, Abgene, Rochester, NY, ABD halfskirted Cat. 0900 yok) </li></ul> Ekipman <ul><li> 56 ile ayarlanabilir Hibridizasyon fırını, dijital ısıtma bloğu ya da su banyosu ° C, 80 ° C veya 100 ° C ya da bir PCR makinesi. </li><li> Çok kanallı pipet (yıkama adımları basitleştirmek için önerilir) </li><li> Karıştırıcı sallanan yanda </li></ul><ol><li> PBT iki kez daha sonra PBT, ve: metanol 1:1 lik bir karışım, daha sonra metanol içinde embriyolar durulayın. </li><li> PBT bir nutator sürekli sallama ile% 3.7 formalin (adım 11 &#39;de tarif edildiği gibi, taze hazırlanmış) ihtiva eden 1 ml içinde 20 dakika için embriyolar düzeltildi. </li><li> PBT 2 dakika sallanan ise 3 kez embriyo yıkayın. </li><li> 3 mg / PBT seyreltilir proteinaz K (PK) ml bir çözelti hazırlayın ve eklemekÖrnekler çözüm 500 ul. Sallayarak olmadan oda sıcaklığında 10 dakika için numune inkübe edin. Bir pipet ile jeti veya yavaşça tersine tüpler tarafından embriyoların her 2 dk karıştırın. </li><li> 1 saat boyunca buz üzerinde embriyo örnekleri aktarın. </li><li> Oda sıcaklığına örnekleri Taşı ve PK çözüm çıkarın. PBT + 2 mg / ml glisin 1 ml ile 2 dakika süreyle 2 kez yıkayın. </li><li> Sallanan ile PBT +% 3,7 formaldehit 1 ml numune 20 dk Fix. Embriyolar PBT 5 kez durulayın. </li><li> PBT ve Krm çözeltisi bir 1:1 karışımı 1 ml embriyolar durulayın. 100% Krm solüsyonu (bu aşamada embriyo -20 ° C&#39;de birkaç gün / hafta saklanabilir) ve 0.5-1 ml ile değiştirin. </li><li> 96-plaka (/ iyi, embriyoların zarar görmesini önlemek için geniş diyafram ipuçlarını kullanmaya özen yerleşen embriyoların ~ 10-15 ul için amaç) bireysel kuyulara tablet embriyolar. </li><li> 5 dakika buz üzerinde serin sonra 5 dakika için ve Krm çözelti 100 ul / numune kaynatılır. Bu çözelti (Ön Krm) örnek ön melezleme için kullanılmıştır. </li><li> Ön-Krm çözelti 100 ul / numune ilave edin ve 56 en az 2 saat süreyle inkübe ° C </li><li> Her numune için, Krm çözeltisinden 100 ul prob ~ 100 ng sulandırmak. 80 Isı 5 dakika (birkaç saat ısıtılmış problar için buz üzerinde muhafaza edilebilir) boyunca buz üzerinde daha sonra serin 3 dk için ° C. </li><li> Embriyolardan Öncesi Krm çözüm çıkarın ve RNA probu çözümü ile değiştirin. </li><li> 12-16 saat süre ile 56 ° C &#39;de melezleşir. </li><li> 56 de ön ısıtma aşağıdaki yıkama çözümler ° C: (A) 200 Krm çözeltisi ul / numune, (B) ve Krm 3:1 karışımından 100 ul / numune: PBT, bir (C) 100 ul / numune Krm 1:1 karışımı: PBT, (D) Krm 1:3 oranındaki karışımı 100 ul / numune: PBT, (E) PBT yaklaşık 400 ul / numune. </li><li> Yıkama solüsyonu A 100 ul örnekleri durulayın, daha sonra 15 dakika her biri için 56 de çözümler MS 100 ul / numune ile yıkama adımı ° C gerçekleştirin. Daha sonra, 56 ° C&#39;de E çözeltisi 100 ul / numune ile 5 dakika için numune 4 kez yıkayın </li><li> Oda sıcaklığında Cool örnekleri. </li></ol> Genel Bakış: Bu bölümde RNA prob sinyali aşağıdaki hibridizasyon dağılımını tespit etmek ve görselleştirmek için kullanılan antikorlar ve algılama reaktifler açıklar. Bu adımlar, Şekil 2, şematik olarak açıklanmaktadır. İşte biz güçlü sinyal amplifikasyon için kullandığınız standart saptama reaktifleri yalnızca mevcut, ancak protein-RNA çift için aynı anda farklı RNA&#39;lar co-algılamak için çift BALIK deneyler özellikle çeşitli alternatifler olarak kullanılabilirler ticari reaktifler, orada var boyama. Bu protokol ile elde edilen sonuçlar örnekleri Şekil 3 mRNA / lokalizasyon desen mozaik görüntülenir. Malzemeler <ul><li> HRP-konjüge fare monoklonal anti-DIG (Jackson Immunoresearch Laboratories Inc Cat. No 200-032-156) </li><li> Biotin-konjüge fare monoklonal anti-DIG (Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc Kedi. No 200-062-156) </li><li> Streptavidin-HRP konjugat (Molecular Probes, Eugene OR, ABD, Kedi. No.S991) </li><li> Cy3-tyramide konjugatları (Perkin Elmer Life Sciences, Boston, MA, USA, Cat. No SAT704A) </li><li> DABCO çözüm montaj: bir 50 ml tüp içinde, DABCO 1.25 gram seyreltik (1,4-diazabisiklo [2.2.2] oktan; Sigma D-2522) tam olarak kadar 1X PBS içinde 15 ml, sonra 35 ml gliserol ve karıştırılır homojen. PBS ile önceden karıştırmadan olarak, DABCO toz çok hızlı bir şekilde çözülür. -20 ° C&#39;de saklayın montaj çözümü </li><li> Cam slayt, lamelleri </li></ul> Ekipman <ul><li> Karıştırıcı sallanan yanda </li><li> Kanallı pipet </li><li> Flüoresans mikroskobu </li></ul><ol><li> PBT PBTB ihtiva eden çözelti, +% 1 yağsız kuru süt (genellikle 50-100 ml tüm tespit reaktif inkübasyon ve yıkama adımları için yeterli olan) hazırlayın. </li><li> Nutator sallanan ise PBTB 100 ul / numune içinde oda sıcaklığında 10 dakika için örnekler engelleme. </li> &lt;li&gt; sallanan ile 100 ul / numune monoklonal biyotin anti-DIG antikor çözüm (PBTB içine stoktan 1/400 seyreltilmiş) ile oda sıcaklığında 1.5-2 saat boyunca embriyo ve inkübe örnekleri engelleme çözüm çıkarın. </li><li> Her sallanan ile 100 ul PBTB / numune ile 5 dakika boyunca numuneler 6 kez yıkayın. </li><li> Sallanan ile streptavidin-HRP çözeltisi (PBTB, 10 ug / ml nihai konsantrasyonda stok ile 1/100 sulandırılmış) 75 ml / numune ile, oda sıcaklığında 1.5 saat inkübe edin. </li><li> Örnekleri yıkayın 5 dakika boyunca 6 kere her sallanan (DNA counterstaining için, PBTB içinde 1X çalışma konsantrasyonu DAPI sulandırmak ve ilk yıkama adımda bu çözümü kullanabilirsiniz) ile 100 ul PBTB / örnek. </li><li> PBT embriyolar durulayın, daha sonra PBS ile 5 dakika boyunca 2 kez yıkayın. </li><li> Cy3-tyramide çözeltisi (Tyramide amplifikasyon tampon içinde 1/50 seyreltilmiş), 50 ul / numune ile nutator oda sıcaklığında 2 saat için örnekler inkübe edin. Bu adımı itibaren, hafif korumalı priz örnekleri tutmak için emin olun. &lt;/ Li&gt; <li> 5 dk Her nutator 100 ul PBS / numune ile numuneler 6 kez yıkayın. </li><li> PBS çıkarın ve% 70 gliserol ve% 2.5 (DABCO) içeren montaj çözümü 100-125 ul / örnek ekleyin. Mağaza numuneler 4 ° C&#39;de Bu örnekler, birkaç yıl boyunca saklanabilir. </li><li> Geniş çaplı ucu ile hafifçe örnekleri pipetleme embriyoların tekrar süspansiyon ve bir cam slayt üzerine embriyoların 25 ul aktarın, sonra tırnak cilası ile slayt üzerine embriyolar ve mühür üzerine lamel yerleştirin. </li><li> Bir floresan mikroskop kullanılarak embriyo örnekleri analiz edin. </li></ol>

<ol><li>Wilcox, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundamental+principles+of+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Histochem.+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Fundamental principles of in situ hybridization.</a> J. Histochem. Cytochem. 41, 1725-1733 (1993).</li>
<li>Tautz, D., Pfeifle, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+non-radioactive+in+situ+hybridization+method+for+the+localization+of+specific+RNAs+in+Drosophila+embryos+reveals+translational+control+of+the+segmentation+gene+hunchback%5BTitle%5D)+AND+%22Chromosoma%22%5BJournal%5D)">A non-radioactive in situ hybridization method for the localization of specific RNAs in Drosophila embryos reveals translational control of the segmentation gene hunchback.</a> Chromosoma. 98, 81-85 (1989).</li>
<li>Lecuyer, E., Tomancak, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+the+gene+expression+universe%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Mapping the gene expression universe.</a> Curr Opin Genet Dev. 18, 506-512 (2008).</li>
<li>Tomancak, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+patterns+of+gene+expression+during+Drosophila+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Global analysis of patterns of gene expression during Drosophila embryogenesis.</a> Genome Biol. 8, 2007-208 (2007).</li>
<li>Thisse, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+and+temporal+expression+of+the+zebrafish+genome+by+large-scale+in+situ+hybridization+screening%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Spatial and temporal expression of the zebrafish genome by large-scale in situ hybridization screening.</a> Methods Cell Biol. 77, 505-519 (2004).</li>
<li>Quiring, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+expression+screening+by+automated+whole-mount+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">Large-scale expression screening by automated whole-mount in situ hybridization.</a> Mech. Dev. 121, 971-976 (2004).</li>
<li>Pollet, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+atlas+of+differential+gene+expression+during+early+Xenopus+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">An atlas of differential gene expression during early Xenopus embryogenesis.</a> Mech. Dev. 122, 365-439 (2005).</li>
<li>Lein, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+atlas+of+gene+expression+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genome-wide atlas of gene expression in the adult mouse brain.</a> Nature. 445, 168-176 (2007).</li>
<li>Lecuyer, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+mRNA+localization+reveals+a+prominent+role+in+organizing+cellular+architecture+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Global analysis of mRNA localization reveals a prominent role in organizing cellular architecture and function.</a> Cell. 131, 174-187 (2007).</li>
<li>Imai, K. S., Levine, M., Satoh, N., Satou, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulatory+blueprint+for+a+chordate+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Regulatory blueprint for a chordate embryo.</a> Science. 312, 1183-1187 (2006).</li>
<li>Bell, G. W., Yatskievych, T. A., Antin, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GEISHA%2C+a+whole-mount+in+situ+hybridization+gene+expression+screen+in+chicken+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">GEISHA, a whole-mount in situ hybridization gene expression screen in chicken embryos.</a> Dev. Dyn. 229, 677-687 (2004).</li>
<li>Wilkie, G. S., Shermoen, A. W., O'Farrell, P. H., Davis, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcribed+genes+are+localized+according+to+chromosomal+position+within+polarized+Drosophila+embryonic+nuclei%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Transcribed genes are localized according to chromosomal position within polarized Drosophila embryonic nuclei.</a> Curr. Biol. 9, 1263-1266 (1999).</li>
<li>Rothwell, W. F., Sullivan, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+embryo+dechorionation%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Drosophila embryo dechorionation.</a> CSH Protoc. , (2007).</li>
<li>Stapleton, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+gene+collection%3A+identification+of+putative+full-length+cDNAs+for+70%25+of+D.+melanogaster+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">The Drosophila gene collection: identification of putative full-length cDNAs for 70% of D. melanogaster genes.</a> Genome Res. 12, 1294-1300 (2002).</li>
<li>Rubin, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+complementary+DNA+resource%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A Drosophila complementary DNA resource.</a> Science. 287, 2222-2224 (2000).</li>
<li>Tomancak, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+determination+of+patterns+of+gene+expression+during+Drosophila+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Systematic determination of patterns of gene expression during Drosophila embryogenesis.</a> Genome Biol. 3, (2002).</li>
<li>Terashima, J., Bownes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+available+food+into+the+number+of+eggs+laid+by+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Translating available food into the number of eggs laid by Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 167, 1711-1719 (2004).</li>
<li>Lecuyer, E., Parthasarathy, N., Krause, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+in+situ+hybridization+protocols+in+Drosophila+embryos+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent in situ hybridization protocols in Drosophila embryos and tissues.</a> Methods Mol. Biol. 420, 289-302 (2008).</li>
<li>Lecuyer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+fluorescent+in+situ+hybridization+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">High resolution fluorescent in situ hybridization in Drosophila.</a> Methods Mol. Biol. 714, 31-47 (2011).</li>
<li>Kosman, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+detection+of+RNA+expression+in+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multiplex detection of RNA expression in Drosophila embryos.</a> Science. 305, 846(2004).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Prob sentez adımlar için, biz genellikle Drosophila Gen Koleksiyonu (DGC), aşağıdaki web sitesinden ayrıntılı bir kaynak bulunan plazmidler amplifiye tam uzunlukta Drosophila DNA&#39;larının in vitro transkripsiyon tarafından işletilen-off antisens RNA problar oluşturmak: <a href="http://www.fruitfly.org/DGC/index.html" target="_blank">http://www .fruitfly.org / DGC / index.html</a> 14,15. Bu yaklaşım sinek embriyolar 9,16 haritalama gen ekspresyonu ve mRNA yerelleştirme ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog Numarası </td><td> Yorumlar (isteğe bağlı) </td></tr><tr><td> T7, T3 veya SP6 RNA Polimeraz </td><td> Fermentas Yaşam Bilimleri </td><td> EP0101, EP0111, EP0131 </td><td> Kitler reaksiyon tamponu içerir. </td></tr><tr><td> DIG RNA Etiketleme Mix </td><td> Roche Uygulamalı Bilimler </td><td> 11 277 073 910 </td><td></td></tr><tr><td> RNAguard </td><td> Amersham Biosciences </td><td> 27-0816-01 </td><td></td></tr><tr><td> 3M sodyum asetat </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Soğuk% 100 etanol. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Soğuk% 70 etanol. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Klor ağartıcı çözelti su ile 1:1 seyreltilmiştir. </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Heptan </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Metanol </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> proteinaz K </td><td> Sigma Aldrich Oakville, ON, Kanada </td><td> Katalog No P2308 </td><td></td></tr><tr><td> % 40 formaldehit solüsyonu, taze hazırlanmış </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> PBS-Tween solüsyonu (PBT) </td><td></td><td> 1xPBS,% 0.1 Tween-20 </td><td></td></tr><tr><td> Glisin çözümü </td><td></td><td> PBT içinde 2 mg / ml glisin </td><td></td></tr><tr><td> Monoklonal HRP-konjüge fare anti-DIG </td><td> Jackson Immunoresearch Laboratories Inc </td><td> 200-032 - 156 </td><td> (PBTB içinde bir 1 mg / ml stok çözeltisi 1/400 seyreltme </td></tr><tr><td> HRP-eşlenikli koyun anti-DIG monoklonal </td><td> Roche Uygulamalı Science, Laval, QC </td><td> 1 207 733 </td><td> PBTB stok solüsyonu 1/500 dilüsyon </td></tr><tr><td> Biotin-konjüge fare monoklonal anti-DIG </td><td> Jackson Immunoresearch Laboratories Inc, West Grove, PA, USA </td><td> 200-062-156 </td><td> (PBTB içinde bir 1 mg / ml stok çözeltisi 1/400 seyreltme </td></tr><tr><td> Streptavidin-HRP konjugat </td><td> Moleküler Probları, Eugene OR, ABD </td><td> S991 </td><td> (Bir 1 ug / ml stok, 1/100 seyreltme </td></tr></tbody></table>

tüm dağı rna floresan<em&gt; in situ</emve&gt; hibridizasyon<em&gt; drosophila</em&gt; embriyolar

Whole Mount RNA Fluorescent in situ Hybridization of Drosophila Embryos

Bir gen, hem de kendi RNA transkripsiyonu hücre içi lokalizasyonu özellikleri, salgılama modelini değerlendirilmesi gelişme sırasında biyolojik işlevlerini anlamada için önemli özellikleri vardır. In situ hibridizasyon RNA (RNA-ISH) RNA dağılımı özelliklerine görselleştirmek için kullanılan güçlü bir yöntemdir, organizmalar, hücresel ya da hücre içi düzeylerinin 1 olması. RNA-ISH bir mRNA veya ilgi içinde bir 2 kodlayıcı olmayan RNA hedef sekansına tamamlayıcı bir etiketli nükleik asit sondası (örneğin, antisens RNA, oligonükleotidler) ve hibridizasyon dayanmaktadır. Işlem dizi spesifik prob oluşturmak için tek başına birincil sıralama bilgisinin gerektirdiği gibi, evrensel organizmalar ve doku örnekler, 3, geniş bir alanda uygulanabilir. Gerçekten de, büyük ölçekli ISH çalışmalar bir dizi gen ekspresyon belgelemek ve çeşitli model organizmaların yerelleştirme dinamikleri RNA uygulanan edilmiştir hangi yol açtıönemli topluluk kaynaklarını 4-11 kurulması. Prob etiketleme ve algılama çeşitli stratejiler yılda geliştirilmiş olmasına rağmen, floresan-etiketli algılama reaktifler ve enzimatik sinyal amplifikasyon adımlar kombine kullanımı prosedürü 12 hassasiyet ve çözünürlük önemli iyileştirmeler sunuyor. Burada sahnelenen Drosophila embriyolar RNA ekspresyonu ve lokalizasyonu dinamikleri görselleştirmek için tyramide sinyal amplifikasyon (TSA) kullanılarak in situ hibridizasyon metodu (FISH), optimize edilmiş floresan tarif. Işlem çok sayıda numune eş zamanlı olarak işlem kolaylaştırır 96-kuyulu plaka PCR formatında gerçekleştirilir.

Başarıyla yapıldığında, bu işlem erken Drosophila embriyogenez sırasında gen ekspresyonu ve mRNA lokalizasyonu dinamiklerinin uzay-zamansal analiz içerisinde detaylı bir çarpıcı gelişmiş seviyede sunuyor. Klasik çift-kural gen bücür (run) için Şekil 3A&#39;da gösterildiği gibi, aslında tek çekirdekler ifade gruplarında henüz olgunlaşmamış transkript odaklarının tespiti yoluyla gen ekspresyonu olayları gözlemlemek için bu protokolü kullanabilirsiniz. Buna ek olarak, Şekil 3B&#39...

Burada bir bütün montaj floresan tarif<em&gt; In situ</emMeyve sinekleri embriyogenez sırasında ifade RNA&#39;ların ekspresyonu ve lokalizasyonu özelliklerini belirlemek için&gt; hibridizasyon (FISH) protokolü,<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;.

Tüm Dağı RNA Floresan<em&gt; In situ</emVe&gt; Hibridizasyon<em&gt; Drosophila</em&gt; Embriyolar

Assessing  the expression pattern of a gene, as well as the subcellular localization  properties of its transcribed RNA, are key features for ...

Bu prosedür, bütün Drosophila mount embriyolarında RNA'nın ekspresyon ve lokalizasyon özelliklerini değerlendirmek için optimize edilmiş bir balık yöntemini tanımlar. Bu, ilk olarak, uygun şekilde seçilmiş bir DNA şablonunun in vitro transkripsiyonu ile ilgilenilen bir Mr NA veya kaplanmayan RNA'ya tamamlayıcı olan etiketli bir RNA probunun sentezlenmesiyle gerçekleştirilir. Paralel olarak, sinek popülasyonu kafesleri, istenen gelişim aşamasındaki embriyoları toplamak, sabitlemek ve perme yapmak için kullanılır.Birkaç sabitleme sonrası adımdan sonra, embriyolar etiketli antisens RNA probu ile hibritlenir. Son olarak, numunelerin kapsamlı bir şekilde yıkanmasını takiben, hibritleştirilmiş prob, spesifik bir antikor ve florokrom konjuge tespit reaktifleri ile immüno-etiketleme ile tespit edilir, böylece hedef RNA dağılımının hassas bir okuması sağlanır. Sonuç olarak, sonuçlar, drosophila embriyogenezi sırasında hedef RNA'nın uzamsal ve zamansal ekspresyon özelliklerini belgelemek için standart floresan mikroskobu ile analiz edilen yüksek oranda çözülmüş floresan sinyalleri verir.Bu tekniğin Northern blot veya R-T-P-C-R gibi mevcut yöntemlere göre ana avantajı, sağlam doku örneği içindeki RNA ekspresyonunun değerlendirilebilmesidir. Bu yöntem, erken drosophila embriyolarında RNA ekspresyon özelliklerinin analizi için tasarlanmış olsa da, larvalardan veya yetişkin sineklerden diseke edilen dokunun daha sonraki gelişim aşamalarında embriyoların analizi için de kullanılabilir. Prosedürümüzün önemli bir yönü, balıkları PCR yerinde gerçekleştirerek elde edebileceğimiz numune sayısında yükseltmedir ve bu da yaklaşımın verimini önemli ölçüde artırır.Bu prosedürü gösteren laboratuvar üyeleri arasında lisans araştırma direnci, yüksek lisans öğrencileri ve doktora sonrası araştırmacılar yer alır. İyi beslenmiş nüfus kafesleri ile başlayın. Plakayı bir elma suyu mayası tabağı ile değiştirin ve sinekleri 25 santigrat derecede bir saat bekletin.Ardından, erken evre embriyoları hasat etmek için elma suyu mayası plakasını değiştirin. Kafesi 25 santigrat derecede inkübe edin ve embriyoların istenen gelişim aşamasına ulaşılana kadar bekleyin Kimyasal bir başlıkta beklerken, kimyasalları bir cam inhalasyon şişesinde% 37 formaldehit yapmak için karıştırın. PFA tozu tamamen eriyene kadar çözeltiyi kaynatın.Daha sonra oda sıcaklığına soğutun ve yeni bir parıldama şişesine süzün. Ardından, bifazik bir fiksasyon çözeltisi hazırlayın. PBS'yi bir sintilasyon şişesinde% 37 formaldehit ile birleştirin ve hazır olduğunda heptan ekleyin.Embriyoları elma suyu tabağından oda sıcaklığında, musluk suyuyla ve ince bir boya fırçasıyla hassas bir şekilde süpürerek hasat edin. Yeniden askıya alınan embriyoları bir sepete aktarın ve ılık musluk suyuyla durulayın. Şimdi sepeti taze% 3 ağartıcı solüsyonla yıkayarak embriyoları 90 saniye boyunca kaplayın.Ardından, çamaşır suyu kokusu gidene kadar çamaşır suyunu ılık musluk suyuyla çıkarın. Embriyoları toplamak için, toplama sepetini sökün ve embriyoları nazikçe bifazik fiksasyon çözeltisine aktarın. Boya fırçasını kullanarak, embriyolar PBS ve heptan katmanları arasındaki arayüzde birikecektir.Şimdi parıldama şişelerini kapatın, bir girdap karıştırıcısına sabitleyin ve en düşük ayarda 20 dakika çalkalayın. Çalkalamadan sonra, bir mera pipeti kullanarak alt PBS ve üst topuk fazlarının çoğunu atın. Daha sonra kalan karışımı pipete aspire edin ve embriyoları kaybetmeden alt fazı dikkatlice bırakın.Embriyoları, 500 mikrolitre heptan ve 500 mikrolitre metanolden oluşan bifazik bir çözelti içeren 1.5 mililitrelik bir tüpe koyun. Patella zarlarını kırmak için tüpü 30 ila 45 saniye kuvvetlice çalkalayın. Kırıldıktan sonra, embriyolar metanolün içine batacaktır.Üst fazı ve kırılmamış embriyoları atın ve bir mililitre metanol ekleyin. Şimdi tüpü beş saniye boyunca kısaca çalkalayın ve embriyoları üç kez metanol ile yıkayın. Yıkamalardan sonra, embriyolar eksi 20 santigrat derecede birkaç ay saklanabilir.Embriyoların her birine 500 mikrolitre PK ekleyerek başlayın ve örnekleri çalkalamadan oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin. Numuneleri protein a k ile aşırı sindirerek veya özensiz manipülasyon yoluyla zarar vermeye büyük özen gösterin. PK inkübasyonu sırasında, embriyoları her iki dakikada bir pipetle püskürterek karıştırın.10 dakika sonra embriyoları bir saat boyunca buza koyun. Bir saat sonra, PK çözeltisini oda sıcaklığında çıkarın. Embriyoları PBT'de glisin ile iki dakika boyunca iki kez yıkayın.Şimdi, numuneleri PBT'de bir mililitre% 3.7 formaldehit içinde 20 dakika boyunca sallanarak sabitleyin. Formaldehiti PBT'de beş durulama ile yıkayın. Daha sonra embriyoları bir mililitre eşit hacimde PBT ve HI çözeltisi ile durulayın ve karışımı 0.5 ila bir mililitre saf çözelti ile değiştirin.Bu noktada, embriyolar eksi 20 santigrat derecede birkaç gün ila haftalarca saklanabilir. 96 oyuklu bir plakada, oyuk başına 10 ila 15 mikrolitre yerleşmiş embriyo alikot. Embriyolara zarar vermemek için geniş delikli bir uç kullanın.Şimdi numune başına 100 mikrolitre yutturmaca çözeltisini kaynatarak ön hibridizasyon çözeltisini hazırlayın. Beş dakika boyunca, Pre-Hype çözeltisini beş dakika boyunca buz üzerinde soğutun ve ardından embriyo örneklerini içeren her bir plaka kuyucuğuna 100 mikrolitre ekleyin. Bir NanoDrop spektrofotometresi ile ölçülen hazırlanmış RNA probunu alın.Ayrıca, probun kalitesini doğrulamak için, bir ila iki mikrolitresini bir agro jel üzerinde çalıştırın. Şimdi her numune için, yaklaşık 100 nanogram probu 100 mikrolitre HI çözeltisinde seyreltin. RNA'lardan arındırılmış koşullarda çalışmak hayati önem taşır.Probu tutarken. Çözeltiyi üç dakika boyunca 80 santigrat dereceye ısıtın. Ardından en az beş dakika buz üzerinde soğutun.Birkaç saat buzdolabında tutulabilir. Plakayı alın ve Pre-Hype solüsyonunu aspirasyon yoluyla embriyolardan çıkarın. Daha sonra her birine RNA probu ile 100 mikrolitre yutturmaca çözeltisi ekleyin.Probu ertesi gün 12 ila 16 saat boyunca 56 santigrat derecede iyi bir şekilde hibritleyin. Beş çözeltiden oluşan bir seri, 56 santigrat derecede önceden ısıtılır. Birincisi saf yutturmaca çözümüdür ve sonuncusu saf PBT'dir.Diğer üçü HI'nın PBT'ye seyreltilmesidir. Isıtıldıktan sonra, numuneleri saf yutturmaca çözeltisinde bir kez hızlı bir şekilde durulayın. Ardından, en az seyreltilmiş hype solüsyonu ile başlayarak ve ardından ardışık seyreltmelerin her biri ile 15 dakikalık üç yıkama gerçekleştirin.Son olarak, numuneleri saf PBT'de beş dakika boyunca dört kez yıkayın. Ardından numuneleri oda sıcaklığına getirin. Şimdi, numune karıştırmayı iyileştirmek için probu tespit etmek için antikor uygulamalarına devam edin.Bu adımlar sırasında, plaka, tarif edilen protokol kullanılarak mutasyona uğrayan bir karıştırıcıya takılabilen küçük bir kutuya yerleştirilebilir, klasik çift kuralı gen runt, embriyogenezin farklı aşamalarında analiz edildi. Balık analizi, embriyonik aşama dördüncüde embriyonun orta kısmındaki ilk geniş ifadenin, parçalı bir şerit desenine nasıl rafine edildiğini ortaya koydu. Daha sonraki aşamalarda, balıklar çeşitli diggen ve etiketli antisens kullanılarak gerçekleştirildi, RNA probları sıfır ila dört saatlik drosophila embriyolarına hibritlendi.Hibritleştirilmiş problar, HRP ve Seramid'de biyotinile edilmiş bir antijen ve antikor streptokok ile ardışık inkübasyonlarla tespit edildi. Numuneler monte edildi ve floresan mikroskobu ile analiz edildi. Bu aşamada dört ila yedi embriyoda geniş bir balık sonuçları mozaiği gözlemlendi: Bu prosedürü denerken, RNA problarınızı korumak ve RNA'sız koşullar altında çalışarak ve RNA'dan arındırılmış kaynakları kullanarak bozulma gibi çeşitli adımlarda önlemler almak önemlidir.Bu temel öğrenildikten sonra, aynı numunede farklı RNA'ları veya spesifik protein belirteçlerini görselleştirmek için çoklu etiketleme deneyimi yapmak için yönteme ek adımlar eklenebilir. Bu videoyu izledikten sonra, Drosophila embriyogenezi Happy Fishing sırasında en sevdiğiniz RNA'nın ekspresyonunu veya hücre altı lokalizasyon dinamiklerini belgelemek için C iki hibridizasyonunda floresan işleminin nasıl yapılacağı hakkında iyi bir fikre sahip olacaksınız.

whole-mount-rna-fluorescent-situ-hybridization-drosophila

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

In situ hibridizasyon Tüm montaj, gelişim biyolojisi en yaygın olarak kullanılan teknikleri biridir. Burada, tek bir genin kesin ifadelerde desen analiz ve iki genin ifadesi etki çakışma belirlenmesi için çift floresan in situ hibridizasyon protokol yüksek çözünürlüklü sunuyoruz. Biz bir doku organizasyon vurgulamak için propidium iyodür nükleer karşı leke içerir.

Zebra balığı Tüm Dağı Yüksek Çözünürlüklü Çift Floresan Yerinde Hibridizasyon

Drosophila hemocytes gelişmekte olan embriyonun bütünlüğü içinde dağılırlar . Bu protokol, floresan etiketli hemocytes embriyoları kullanılarak bu göçler montaj ve görüntü nasıl gösteriyor.

Uygulamalarda Canlı Görüntüleme Drosophila melanogaster Embriyonik Hemocyte Göçler

Tüm Dağı<em&gt; In situ</emE11.5 fare embriyolarına E8.5 ve&gt; Hibridizasyon

Zebra balığı, küçük tropikal balık, omurgalı geliştirme ve hastalık sırasında gen fonksiyonu çalışmak için popüler bir model haline gelmiştir. Hedef genlerin uzaysal ve zamansal ifade ile tespit...

Yüksek Çözünürlüklü Tüm Dağı<em&gt; Yerinde</emGen İfade ve Fonksiyon Eğitim için Zebra balığı Embriyolar içinde&gt; Hibridizasyon

Biz renkli çökeltilerin zıt üç farklı mRNA dağıtım desen eşzamanlı ve belirli algılama izin bozulmamış Drosophila embriyolar bir çoklu hedef kromojenik tüm montaj in situ hibridizasyon (MC-DİLERİZ) prosedürü açıklar.

Çoklu hedef Kromojenik Tüm montaj<em&gt; In Situ</em&gt; Melezleme Gen İfade Etki karşılaştırılması için<em&gt; Drosophila</em&gt; Embriyolar

Açıklanan RNA in situ hibridizasyon Protokolü RNA algılama bütün Drosophila embriyo veya disseke doku sağlar. 96-de microtiter plakaları ve tyramide sinyal Güçlendirme kullanma, yüksek kararlılık, duyarlılık ve işlem hacmi ve nispeten düşük bir maliyetle transkript tespit edilebilir.

Yüksek çözünürlüklü Floresan Situ hibridizasyon Drosophila embriyo ve Tyramide sinyal güçlendirme kullanarak doku

Bu el yazması Xoluşturmak için ayrıntılı bir yöntem sunuyor-kromozom kol sonda ve kız kardeşi durumunu incelemek için performans gösteren Floresans in situ hibridizasyon (balık) Kromatit uyum içinde prometafaz ve metafaz tutuklandı Drosophila yumurta. Bu iletişim kuralı segregasyonun kol uyum bozulmamış veya kesintiye farklı genotip içinde olup olmadığını belirlemek için uygundur.

Kol uyum içinde prometafaz ve metafaz durumunu izlemek için Floresans In Situ hibridizasyon (balık) kullanarak ben Drosophila yumurta

Burada, moleküler işaretleri kullanarak canlı Drosophila melanogaster yumurta odasında endojen mRNA kaçakçılığı görselleştirme, algılama, analiz ve izleme için bir protokol sunuyoruz, iplik disk konfokka mikroskopi, ve açık kaynak Analizi Yazılım.

Canlı Drosophila melanogaster yumurta Chambers Içinde endojen mrnas görselleştirme ve izleme

Burada, Drosophila embriyo proteini ve RNA'nın toplanmasından ön gömülmesine ve gömülmesine, immünoboyamaya ve mRNA in situ hibridizasyonuna kadar tespiti ve lokalizasyonu için bir protokol tarif ediyoruz.

Erken Drosophila Embriyosunda İmmünohistokimya ve RNA In-situ Dağılımı için Bir Protokol

Genişleme Destekli Yinelemeli Floresan In Situ Hibridizasyon (EASI-FISH), kalın dokuda birden fazla genin ekspresyonunu tespit etmek için genleşme mikroskobunu floresan in situ hibridizasyon (FISH) ile birleştiren sağlam bir tekniktir. Bu protokol, yöntemdeki son gelişmeleri ve bozulmamış Drosophila merkezi sinir sistemini etiketlemek için adaptasyonunu özetlemektedir.

Genişleme Destekli Yinelemeli Floresan In Situ Hibridizasyon Kullanılarak Sağlam Drosophila Beyindeki Gen Ekspresyonunun Multipleks Tespiti

Öğrenin, Drosophila melanogaster embriyolarında RNA ifadesini ve lokalizasyonunu analiz etmek için tüm dağı floresan in situ hibridizasyon (FISH) protokolünü. Bu yöntem, gelişim biyolojisi araştırmalarında yüksek çözünürlüklü RNA dağılım görüntüleme sağlar.

Tüm Dağı RNA Floresan

Daha fazla video keşfet