Name: Eski utero Elektroporasyon ve Tüm Yarımküre Eksplantlarından: Erken Kortikal Kalkınma Çalışmaları İçin Basit Bir Deney Yöntemi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-03T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 47 s
Description: Öğrenin, fare embriyolarında ex utero elektroporasyon ve tüm yarımküre eksplantları kullanarak erken kortikal gelişimi incelemeyi. Bu yöntem gen fonksiyonu ve farmakolojik çalışmalar için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu eser NINDS (NS066071) ve NIAAA hibe desteklenmiştir. (P50AA017823) ECO. Yazarlar, Dr Robert Quinn ve hayvan bakımı Laboratuar Hayvan Kaynakları Bölümü personel teşekkür. Biz Yaz Lisans Araştırma Görevlisi (SURF) gibi yardım için, teknik destek için Nicole Belletier Judson Belmont ederim. Biz de yorum yapmak için Dr David Cameron teşekkür yazının önceki bir sürümünde düzenler.

Plazmid Yeşil Floresan Protein Ekspresyonu ile 1. Ex utero Electroporations <ol><li> Plazmid DNA enjeksiyon çözeltileri GKD 2 O. içinde 0.33 mg / ml &#39;lik nihai konsantrasyona seyreltildi çalışma CAG-eGFP DNA 27 ile hazırlanır Qiagen Endo-Free Maxi-Preps dönüştürülmüş bakteriler plazmid arındırmak için kullanılır. ~% 0.02 (w / v nihai) çabuk bir yeşil boya enjeksiyon İzleyici olarak DNA çözeltisine ilave edilir. </li><li> Cerrahi alan hazırlamak için,% 70 etanol çözeltisi ile tezgah üstü ve diseksiyon mikroskop sahne yıkadığınız ve kurulayın. Öncesinde diseksiyonu% 70 etanol ile cerrahi makas ve forseps püskürtün ve kurulayın. </li><li> Tüm hareket en az 1 dakika süreyle durdu kadar Timed Hamile İsviçre / Webster barajlar basınçlı silindirden CO 2 ile doldurulur ve baraj izlenen bir odasına transferi ile E13 üzerinde kurban edilir. CO 2 solunum yoluyla kurban sonra embriyolar rahim kaldırılır ve yerleştirilir10 cm&#39;lik Petri kabı içeren buz gibi soğuk Hanks dengeli tuz çözeltisi (HBSS). </li><li> Dikkatle çevredeki extraembryonic membranların her embriyo incelemek ve buz HBSS tutmak. </li><li> Soğuk HBSS içeren ikinci bir 10 cm Petri kabı ayrı ayrı her bir embriyo transfer. Gelecek analizi için kortikal alandan mekansal ayrı bir kortikal alanda enjekte bakımı, sol serebral hemisfer ventrikül içine DNA Hızlı yeşil karışımı 2-3 ul enjekte etmek için bir Hamilton şırınga kullanın. </li><li> Elektroporasyonu için forseps ile yavaşça embriyo tutun ve hafifçe başının dorsal orta hat üzerindeki cımbız elektrodun pozitif raket yerleştirin ve hafifçe embriyo çene altındaki negatif kürek yerleştirin. Electroporations 950 msn aralıklarla ayrılmış 50 msn süresince beş 30 V bakliyat, teslim etmek için programlanmış bir BTX830 Elektroporatör ile elde edilir. Bu ayarlar BTX830 model oluşturuyor. Diğer sistemler, üreticinin TALİMATLAR göre kullanılabilecekns. </li></ol> 2. Tüm Yarımküre Eksplantasyon Hazırlama <ol><li> Elektroporasyonun ardından embriyoların buz-soğuk HBSS içinde tekrar yerleştirilir. Beyin embriyo baş cilt ve kıkırdak kafatası kaldırmak için iki # 5 kuyumcu forseps kullanılarak kaldırılır. Bir forsepsle sonra kafatası bozulmamış beyinde çıkarmak için beyin altında kaydırılır. Electroporated yarımkürede (sol) ve sonra beyin uzak disseke edilir ve ekli orta beyin doku çıkarılır. Diseksiyon prosedürü dikkatle boyunca sol kortikal yarımkürede örten zarları tahrip etmeyecek alınır. </li><li> Sonra her bir embriyo bir kesim 1 ml pipet ile bir pipet kullanarak HBSS aktarılır disseke. Yarımkürede hafifçe kollajen kaplı kültürü insert üzerine atılır. Altı adede yarımkürede eksplantlar her 24 mm uç üzerindeki medial tarafı aşağı düzenlenmiştir. Bir kez düzenlenmiş fazla HBSS elemanı kaldırılır ve insert daha sonra da bir 6 da çanak biri 35 mm içine yerleştirilir. Iyi EXA içerirOrtamın ctly 2.7 ml DMEM-F12 ortamı Glutamax içeren ve% 2 B-27,% 1 G5 ve% 1 Penisilin-Strep desteklenmiştir. Kuyudan bir ortam birkaç damla her eksplant üstüne pipetle edilebilir, ancak çukur başına 2.7 mL orijinal fazla medya ekleme. </li><li> Eksplantlar Kollajen filtreler üzerine konulduktan sonra eksplantlar içeren 6 sıra çanak Billups Rothenberg (BR) odası (aynı zamanda bir su nemlendirme tabak içeren) içine yerleştirilir. A% 95 /% 5 Oksijen / CO 2 gaz karışımı odasının kapalı mühürleme ve% 95 /% 5 Oksijen / CO 2 gaz tüpü çıkarmadan önce en az 1 dakika süreyle odasına demlenir. BR oda sonra kültür periyodu, 1-2 DIV geri kalanı için bir 37 ° C doku kültürü kuluçka makinesi içine yerleştirilir. </li></ol> 3. Histoloji için Eksplantasyon Doku fiksasyonu <ol><li> Bir davlumbaz olarak ısıtılmış (~ 80 ve de 100 ml paraformaldehid ilk çözücü 8 g tarafından Pagano tesbit çözeltisi hazırlamakg, C) GKD 2 O. NaOH çözünürleştirme teşvik ve hafifçe karıştırın konsantre 1-3 damla ekleyin. Bir kez 500 mM sakaroz, 100 mM Hepes, pH 7.4, 50 mM MgCl2, 250 mM sakaroz, 50 mM Hepes içinde% 4 paraformaldehid bir nihai konsantrasyon için 5 mM KCl, olduğu bir çözelti ile% 8 paraformaldehid çözelti 1:1 Karışım çözündürülmüş , 25 mM MgCl2, 2.5 mM KCI, pH 7.4. </li><li> Eksplantlar 37 ° C&#39;ye Pagano düzeltme çözüm ısıtmak düzeltmek için Hızla de her kültürden DMEM/F12 medyanın en çıkarmak ve eksplant her kuyucuğa Pagano Fix 5 ml ekleyin. Düzeltme tamamen her eksplant kapsayacak emin olun. Oda sıcaklığında 1 saat için düzeltildi. Önceki fiksasyon 1 hr filtresinden eksplantlar çıkarmayın. </li><li> Tespit Pagano düzeltme çözüm kaldırmak ve sabit olmayan Pagano çözeltisi (250 mM sukroz, 50 mM Hepes, 25 mM MgCl2, 2.5 mM KCI, pH 7.4) ile değiştirin sonra. Gömme kadar 4 azından% 10 sodyum azid ve mağaza ° C&#39;de bir kaç damla ekleyin. </li></ol> 4. Gömme ve SHistoloji için ectioning <ol><li> Ilık su (55-60 ° C), 100 ml buzağı cilt jelatin 10 g çözücü ile bir% 10 buzağı cilt jelatin çözeltisi hazırlayın. Çözündüğünü kadar ° C ve girdap aralıklarla 60 için ayarlanmış bir sıcak plaka üzerinde jelatin solüsyonu yerleştirin. </li><li> 10 cm&#39;lik Petri kabı içine alt% 10 jelatin solüsyonu, yaklaşık 10 ml dökülür ve 30 dakika katılaşmaya izin. Bu eksplantlar gömmek için bir &quot;pad&quot; oluşturacak. Bu pedler önceden hazırlanmış gün olması ve 4 ° C&#39;de depolanabilir Petri kabı alt kısmında bir ızgara çizmek ve ızgara her kutuya tek eksplantlar aktarmak için bir cetvel kullanın. Rezidüel Pagano çözüm çıkarın ve bir pipet kullanarak, sıcak% 10 jelatin çözeltisi ile her eksplant kapak ve katılaşmaya izin. Her eksplant tamamen çok fazla kerede jelatin sıcak ilave edilmesi ile ped erime vermemeye dikkat ederek, jelatin ile çevrelenmiştir kadar jelatin çözeltisinin yavaş ilavesi devam edin. ~ 1 saat için sertleşmesine jelatin için izin ver. Bir kez münferit sertleştirilmişKitabında eksplantları jelatin küçük bloklar halinde kesip olabilir. Bloklar daha sonra önce bir vibratome ile kesit 24-48 saat süreyle düzeltmek Pagano yayınladığınız-sabittir. </li><li> Jelatin blok Eksplantlarından koku ampul kadar konumlandırılmış ve 100 mikron kalınlığında koronal düzlemde kesitler vardır. Bölümleri toplanan ve saklanan PBS içinde 4 az +% 0,1 sodyum azid ° C immunohistokimyasal işleme kadar. </li><li> Immünohistokimyasal algılama bir 24 gözlü bir levha (kuyu başına 2-3 bölümleri) bölümleri içine aktarılması ile gerçekleştirilir. İlk blok non-spesifik antikor 0.5 ml PBST ekleyerek bağlayıcı + B nazik sallayarak her şey, inkübe 1 hr (PBS +% 0.5 Triton X 100 ve% 2 BSA). Uygun birincil antikor daha sonra PBST + B ile seyreltilir ve çukur başına 0.4 ml RT&#39;de bir gece kuluçka için ilave edilir. Birincil 3X PBS en azından 10 dakika için her bir yıkama ile yıkanmıştır. İkincil antikor ve 2 ug / ml Hoechst 33342 leke nükleer sonra PBST + B ile seyreltilir ve numuneler oda sıcaklığında 2 saat süreyle inkübe edilmektedirnazik sallayarak ile. PBS üç yıkama (her biri 10 dakika) yapılmakta ve daha sonra bölümleri ile% 90 gliserol, 50 mM Tris pH7.4, montaj ortamı kullanarak kaydıraklar üzerinde monte edilmiştir. </li></ol>

<ol><li>Rakic, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+neural+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Experientia%22%5BJournal%5D)">Principles of neural cell migration.</a> Experientia. 46, 882-891 (1990).</li>
<li>Tabata, H., Nakajima, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipolar+migration%3A+the+third+mode+of+radial+neuronal+migration+in+the+developing+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Multipolar migration: the third mode of radial neuronal migration in the developing cerebral cortex.</a> J. Neurosci. 23, 9996-10001 (2003).</li>
<li>Noctor, S. C., Martinez-Cerdeno, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+neurons+arise+in+symmetric+and+asymmetric+division+zones+and+migrate+through+specific+phases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases.</a> Nat. Neurosci. , (2004).</li>
<li>Olson, E. C., Kim, S., Walsh, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+neuronal+positioning+and+dendritogenesis+in+the+neocortex+after+cell-autonomous+Dab1+suppression%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Impaired neuronal positioning and dendritogenesis in the neocortex after cell-autonomous Dab1 suppression.</a> J. Neurosci. 26, 1767-1775 (2006).</li>
<li>Takahashi, T., Goto, T., Miyama, S., Nowakowski, R. S., Caviness, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+of+neuron+origin+and+neocortical+laminar+fate%3A+relation+to+cell+cycle+of+origin+in+the+developing+murine+cerebral+wall%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Sequence of neuron origin and neocortical laminar fate: relation to cell cycle of origin in the developing murine cerebral wall.</a> J. Neurosci. 19, 10357-10371 (1999).</li>
<li>Marin-Padilla, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+prenatal+ontogenesis+of+the+cerebral+cortex+%28neocortex%29+of+the+cat+%28Felis+domestica%29.+A+Golgi+study.+I.+The+primordial+neocortical+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Z.+Anat.+Entwicklungsgesch%22%5BJournal%5D)">Early prenatal ontogenesis of the cerebral cortex (neocortex) of the cat (Felis domestica). A Golgi study. I. The primordial neocortical organization.</a> Z. Anat. Entwicklungsgesch. 134, 117-145 (1971).</li>
<li>Nichols, A. J., Olson, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reelin+promotes+neuronal+orientation+and+dendritogenesis+during+preplate+splitting%5BTitle%5D)+AND+%22Cerebral+Cortex%22%5BJournal%5D)">Reelin promotes neuronal orientation and dendritogenesis during preplate splitting.</a> Cerebral Cortex. 20, 2213-2223 (2010).</li>
<li>Sheppard, A. M., Pearlman, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+reorganization+of+preplate+neurons+and+their+associated+extracellular+matrix%3A+an+early+manifestation+of+altered+neocortical+development+in+the+reeler+mutant+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Abnormal reorganization of preplate neurons and their associated extracellular matrix: an early manifestation of altered neocortical development in the reeler mutant mouse.</a> J. Comp. Neurol. 378, 173-179 (1997).</li>
<li>Manzini, M. C., Walsh, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+disorders+of+cortical+development+tell+us+about+the+cortex%3A+one+plus+one+does+not+always+make+two%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Genetics+%26+Development%22%5BJournal%5D)">What disorders of cortical development tell us about the cortex: one plus one does not always make two.</a> Current Opinion in Genetics & Development. 21, 333-339 (2011).</li>
<li>Jones, L., Fischer, I., Levitt, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonuniform+alteration+of+dendritic+development+in+the+cerebral+cortex+following+prenatal+cocaine+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Cereb.+Cortex%22%5BJournal%5D)">Nonuniform alteration of dendritic development in the cerebral cortex following prenatal cocaine exposure.</a> Cereb. Cortex. 6, 431-445 (1996).</li>
<li>Olney, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+alcohol+syndrome+at+the+cellular+level%5BTitle%5D)+AND+%22Addict.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fetal alcohol syndrome at the cellular level.</a> Addict. Biol. 9, 137-149 (2004).</li>
<li>Levitt, P., Reinoso, B., Jones, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+critical+impact+of+early+cellular+environment+on+neuronal+development%5BTitle%5D)+AND+%22Prev.+Med%22%5BJournal%5D)">The critical impact of early cellular environment on neuronal development.</a> Prev. Med. 27, 180-183 (1998).</li>
<li>Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+organotypic+cultures+of+nervous+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">A simple method for organotypic cultures of nervous tissue.</a> J. Neurosci. Methods. 37, 173-182 (1991).</li>
<li>O'Rourke, N. A., Dailey, M. E., Smith, S. J., McConnell, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diverse+migratory+pathways+in+the+developing+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Diverse migratory pathways in the developing cerebral cortex.</a> Science. 258, 299-302 (1992).</li>
<li>Elias, L. A., Wang, D. D., Kriegstein, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gap+junction+adhesion+is+necessary+for+radial+migration+in+the+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Gap junction adhesion is necessary for radial migration in the neocortex.</a> Nature. 448, 901-907 (2007).</li>
<li>Franco, S. J., Martinez-Garay, I., Gil-Sanz, C., Harkins-Perry, S. R., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reelin+regulates+cadherin+function+via+Dab1%2FRap1+to+control+neuronal+migration+and+lamination+in+the+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Reelin regulates cadherin function via Dab1/Rap1 to control neuronal migration and lamination in the neocortex.</a> Neuron. 69, 482-497 (2011).</li>
<li>Gotz, M., Bolz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+preservation+of+cortical+layers+in+slice+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Formation and preservation of cortical layers in slice cultures.</a> J. Neurobiol. 23, 783-802 (1992).</li>
<li>Cameron, R. S., Rakic, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+membrane+proteins+that+comprise+the+plasmalemmal+junction+between+migrating+neurons+and+radial+glial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Identification of membrane proteins that comprise the plasmalemmal junction between migrating neurons and radial glial cells.</a> J Neurosci. 14, 3139-3155 (1994).</li>
<li>Lizarraga, S. B., Coser, K. R., Sabbagh, M., Morrow, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+Study+of+Neuronal+Morphogenesis%3A+Ex+vivo+RNAi+Electroporation+in+Embryonic+Murine+Cerebral+Cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Methods for Study of Neuronal Morphogenesis: Ex vivo RNAi Electroporation in Embryonic Murine Cerebral Cortex.</a> J. Vis. Exp. (63), e3621(2012).</li>
<li>Jossin, Y., Goffinet, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reelin+signals+through+phosphatidylinositol+3-kinase+and+Akt+to+control+cortical+development+and+through+mTor+to+regulate+dendritic+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Reelin signals through phosphatidylinositol 3-kinase and Akt to control cortical development and through mTor to regulate dendritic growth.</a> Mol. Cell Biol. 27, 7113-7124 (2007).</li>
<li>Jossin, Y., Ogawa, M., Metin, C., Tissir, F., Goffinet, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+SRC+family+kinases+and+non-classical+protein+kinases+C+induce+a+reeler-like+malformation+of+cortical+plate+development%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Inhibition of SRC family kinases and non-classical protein kinases C induce a reeler-like malformation of cortical plate development.</a> J. Neurosci. 23, 9953-9959 (2003).</li>
<li>Kingsbury, M. A., Rehen, S. K., Contos, J. J., Higgins, C. M., Chun, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-proliferative+effects+of+lysophosphatidic+acid+enhance+cortical+growth+and+folding%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Non-proliferative effects of lysophosphatidic acid enhance cortical growth and folding.</a> Nat. Neurosci. 6, 1292-1299 (2003).</li>
<li>Rehen, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+of+embryonic+culture+for+assessing+global+changes+in+brain+organization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">A new method of embryonic culture for assessing global changes in brain organization.</a> J. Neurosci. Methods. 158, 100-108 (2006).</li>
<li>Jossin, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+central+fragment+of+Reelin%2C+generated+by+proteolytic+processing+in+vivo%2C+is+critical+to+its+function+during+cortical+plate+development%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The central fragment of Reelin, generated by proteolytic processing in vivo, is critical to its function during cortical plate development.</a> J. Neurosci. 24, 514-521 (2004).</li>
<li>O'Dell, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Layer+6+cortical+neurons+require+Reelin-Dab1+signaling+for+cellular+orientation%2C+Golgi+deployment%2C+and+directed+neurite+growth+into+the+marginal+zone%5BTitle%5D)+AND+%22Neural.+Dev%22%5BJournal%5D)">Layer 6 cortical neurons require Reelin-Dab1 signaling for cellular orientation, Golgi deployment, and directed neurite growth into the marginal zone.</a> Neural. Dev. 7, 25(2012).</li>
<li>Powrozek, T. A., Olson, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol-induced+disruption+of+Golgi+apparatus+morphology%2C+primary+neurite+number+and+cellular+orientation+in+developing+cortical+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol%22%5BJournal%5D)">Ethanol-induced disruption of Golgi apparatus morphology, primary neurite number and cellular orientation in developing cortical neurons.</a> Alcohol. , (2012).</li>
<li>Matsuda, T., Cepko, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporation+and+RNA+interference+in+the+rodent+retina+in+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Electroporation and RNA interference in the rodent retina in vivo and in vitro.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 16-22 (2004).</li>
<li>Suter, B., Nowakowski, R. S., Bhide, P. G., Caviness, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Navigating+neocortical+neurogenesis+and+neuronal+specification%3A+a+positional+information+system+encoded+by+neurogenetic+gradients%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience+%3A+The+Official+Journal+of+The+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Navigating neocortical neurogenesis and neuronal specification: a positional information system encoded by neurogenetic gradients.</a> The Journal of Neuroscience : The Official Journal of The Society for Neuroscience. 27, 10777-10784 (2007).</li>
<li>Englund, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((and+Tbr1+are+expressed+sequentially+by+radial+glia%2C+intermediate+progenitor+cells%2C+and+postmitotic+neurons+in+developing+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">and Tbr1 are expressed sequentially by radial glia, intermediate progenitor cells, and postmitotic neurons in developing neocortex.</a> J. Neurosci. 25, 247-251 (2005).</li>
<li>Kwon, G. S., Hadjantonakis, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eomes%3A%3AGFP-a+tool+for+live+imaging+cells+of+the+trophoblast%2C+primitive+streak%2C+and+telencephalon+in+the+mouse+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Eomes::GFP-a tool for live imaging cells of the trophoblast, primitive streak, and telencephalon in the mouse embryo.</a> Genesis. 45, 208-217 (2007).</li>
<li>Pearlman, A. L., Sheppard, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+in+early+cortical+development%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix in early cortical development.</a> Prog. Brain Res. 108, 117-134 (1996).</li>
<li>Milev, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+regulation+of+expression+of+hyaluronan-binding+proteoglycans+in+developing+brain%3A+aggrecan%2C+versican%2C+neurocan%2C+and+brevican%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Differential regulation of expression of hyaluronan-binding proteoglycans in developing brain: aggrecan, versican, neurocan, and brevican.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 247, 207-212 (1998).</li>
<li>Kwan, K. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SOX5+postmitotically+regulates+migration%2C+postmigratory+differentiation%2C+and+projections+of+subplate+and+deep-layer+neocortical+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">SOX5 postmitotically regulates migration, postmigratory differentiation, and projections of subplate and deep-layer neocortical neurons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 16021-16026 (2008).</li>
<li>McKenna, W. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tbr1+and+Fezf2+regulate+alternate+corticofugal+neuronal+identities+during+neocortical+development%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience+%3A+The+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Tbr1 and Fezf2 regulate alternate corticofugal neuronal identities during neocortical development.</a> The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience. 31, 549-564 (2011).</li>
<li>Tabata, H., Nakajima, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+in+utero+gene+transfer+system+to+the+developing+mouse+brain+using+electroporation%3A+visualization+of+neuronal+migration+in+the+developing+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex.</a> Neuroscience. 103, 865-872 (2001).</li>
<li>Stancik, E. K., Navarro-Quiroga, I., Sellke, R., Haydar, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+in+ventricular+zone+neural+precursors+contributes+to+neuronal+fate+diversity+in+the+postnatal+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity in ventricular zone neural precursors contributes to neuronal fate diversity in the postnatal neocortex.</a> J. Neurosci. 30, 7028-7036 (2010).</li>
<li>Powrozek, T. A., Zhou, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+prenatal+alcohol+exposure+on+the+development+of+the+vibrissal+somatosensory+cortical+barrel+network%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res.+Dev.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of prenatal alcohol exposure on the development of the vibrissal somatosensory cortical barrel network.</a> Brain Res. Dev. Brain Res. 155, 135-146 (2005).</li>
<li>O'Dell, R., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aO%27Dell%2C+R+%22Society+for+Neuroscience%22">Society for Neuroscience</a>. , Washington D.C. (2011).</li>
<li>Tombol, T., Hajdu, F., Somogyi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+Golgi+picture+of+the+layer+VI+cortic-geniculate+projection+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Brain+Research.+Experimentelle+Hirnforschung.+Experimentation+Cerebrale%22%5BJournal%5D)">Identification of the Golgi picture of the layer VI cortic-geniculate projection neurons.</a> Experimental Brain Research. Experimentelle Hirnforschung. Experimentation Cerebrale. 24, 107-110 (1975).</li>
<li>Brumberg, J. C., Hamzei-Sichani, F., Yuste, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+and+physiological+characterization+of+layer+VI+corticofugal+neurons+of+mouse+primary+visual+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Morphological and physiological characterization of layer VI corticofugal neurons of mouse primary visual cortex.</a> Journal of Neurophysiology. 89, 2854-2867 (2003).</li>
<li>Jones, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchrony+in+the+interconnected+circuitry+of+the+thalamus+and+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+New+York+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Synchrony in the interconnected circuitry of the thalamus and cerebral cortex.</a> Annals of the New York Academy of Sciences. 1157, 10-23 (2009).</li>
<li>Kowalczyk, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intermediate+Neuronal+Progenitors+%28Basal+Progenitors%29+Produce+Pyramidal-Projection+Neurons+for+All+Layers+of+Cerebral+Cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Cereb.+Cortex%22%5BJournal%5D)">Intermediate Neuronal Progenitors (Basal Progenitors) Produce Pyramidal-Projection Neurons for All Layers of Cerebral Cortex.</a> Cereb. Cortex. , (2009).</li>
<li>Konig, N., Roch, G., Marty, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+onset+of+synaptogenesis+in+rat+temporal+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Anatomy+and+Embryology%22%5BJournal%5D)">The onset of synaptogenesis in rat temporal cortex.</a> Anatomy and Embryology. 148, 73-87 (1975).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Biz gelişmiş ve deneysel modelini değerlendirdi - Bütün yarımkürede eksplantlar - erken kortikal gelişim çalışması için (E13-E15). Modeli serebral korteks 25,37 tabaka 6 teşkil eksitatör nöron soy göç ve farklılaşma analizi için yararlı olduğu kanıtlanmıştır. Sistemin prensibi avantajları hazırlık sadeliği ve beyin gelişiminin bu erken, kritik döneminde elektroporasyon, Farmakolojik manipulasyon ve görüntüleme için nöronlara 3) deneysel erişim)) 2 DIV organotipik büyüme, 2 1 vardır. Biz morfolojisi, yönelim v...

Gittikçe üretilen nöronların uyumlu proliferasyon, göç ve farklılaştırılması yoluyla memeli serebral korteks formları. Her bir nöron ventriküler zonunda (VZ) doğdu ve kortikal plaka (CP) 1 oluşturan, ara bölge (IZ) içine VZ göç ediyor. Edilir Onlar farklı kortikal alanları geçerken, göç nöronlar gelişmekte doku içindeki ekstraselüler çevre ve diğer hücresel elementler (örneğin radyal glia) bağlıdır göç 2,3 çoklu ekran modları. Kortikal nöronlarda sonra nöronal göç yakalanması ve dendritogenesis 4 çakışık süreçlerinde şekillendirme kortikal plaka üstünde göç tutukla. Kortikal gelişme embriyonik gün ilkel pleksiform tabakada 6 veya preplate (PP), o örter VZ öncü nöron tabakası kurulması yoluyla 11-13 (E11-13) 5 ile başlatılır. MuhtemelSonra katman 6 kortikal nöronların (VZ doğumlu yani ilk kortikal nöronlar) şark onların basmakalıp bir desen somata ve PP 7 içinde ayrı bir tabaka halinde birleşme. Bu olaylar bir yüzeysel marjinal (gelecek kortikal tabaka 1) ve derin bölge subplate hücreleri (geçici kortikal tabaka 7) oluşan ikinci içine preplate bölünmüş. Bu süreç, preplate yarma adlandırılan, serebral korteks 8 gelecekteki büyüme temel bir olaydır. Pek çok genetik mutasyonlar kortikal geliştirme 9 çeşitli yönlerini bozan olduğu tespit edilmiştir. Kortikal gelişimi de olumsuz gibi kokain 10 ve alkol 11 olarak yutulur toksinler tarafından etkiledi olabilir. Gelişimi sırasında ortaya çıkan kortikal malformasyonlar nörolojik bozukluklar (örneğin otizm, şizofreni) muhtemelen katkıda olduğundan, kortikal gelişim için pertürbasyonların ampirik araştırmalar doğasında vardırönemli ly. Genetik ya da toksin etkilerinin hızlı testler izin değil, aynı zamanda beyin gelişimi 12 bu erken dönemde ayırt nöronlar, diğer hücre türleri ve ekstrasellüler matriks (ECM) arasındaki olası etkileşimler koruyan kortikal gelişim eğitim yaklaşımları kurmaya büyük önem taşımaktadır . Dilim eksplantları 13 böyle bir sistemi temin olan ve yaygın olarak tahlil kortikal Nöron gelişme 14-16 için kullanılmıştır. Ancak, dilim deneyleri nöronal migrasyon ve laminasyon muhtemelen gelişmekte olan beyin ve çapa radyal glial iskele çevreleyen meningeal hücreler hasar nedeniyle 17 anormal olabilir dezavantajı muzdarip olabilir. Radyal glial lifler dilimleme bazal lamina kortikal nöron göçü 18 kesinti için önemli bir substrat olarak yerel radyal glial mimarisi bozabilir ve altere kortikal göç yol açabilir. Buna ek olarak slieksplant ced yüzeyleri bu alanlarda ECM normal kompozisyonu değiştirebilir ölü hücrelerin bir bölge sağlar. Daha yeni yaklaşımlar uygun sağlıklı hücre tipleri ve ECM çevrili dilim derin yerleşimli hücrelerin üzerinde kendilerine analizi odaklanmıştır. Ancak, bazı durumlarda bu yeni yaklaşımların dilim nispeten normal iç analizi 19-21 için uygun hale getirilir, böylece orijinal kalın kültürlü dilim fiksasyon sonra kriyo-kesitli veya parafin-kesitli olmasını gerektirebilir. Kültür gibi analiz için sabit dilimlerin sonraki cryosectioning için canlı dilimleri hazırlamak için kesit orijinal vibratome Her ikisi de bu deneyler için çaba ve dikkat çalışma gerektirir. Erken kortikal gelişim çalışmaları için basit, tamamlayıcı bir yaklaşım sağlamak için, biz erken kortikal gelişim çalışmalarını kolaylaştırmak için varolan bir dilim yaklaşımlar 13 değiştirdiniz. Biz bir wh geliştirdik65 dakikadaki dönüş ve 16-18 saat 22,23 için izin organotipik büyümeyi sallayarak kültürleri dahil varolan E14 bütün yarımkürede modeline benzer ole yarımkürede eksplant modeli. Bizim yaklaşım, bütün yarımkürede eksplantlar 48 saat süreyle organotipik kortikal büyüme genişletmek için yüksek oksijen kültür atmosferi 21,24 içinde yarı geçirgen bir zar 13 yerleştirilir. Bu yaklaşım, aynı zamanda kortikal nöronlarda geliştirilmesi tutarlı elektroporasyon için olanak sağlar. Embriyolar rahim kaldırılır ve plazmid DNA tanıtmak electroporated ve telencephalon sonra disseke edilir edilir. Her hemisfer izole ve kollajen kaplı filtre üzerinde medial yüzü aşağı yerleştirilir. Eksplant sonra 48 saat, preplate yarma 8 kapsayan bir dönem bir süre için yetiştirilir. Kültür döneminde, L6 nöronlar kortikal plağındaki doğru konumlandırılmış farklılaşmış nöron 25 habercisidir gelişir. Bu dönemde gelişmekte boyuncanöron in vivo olarak buna karşılık gelen hücre karşısına uygun ECM ve hücre türleri tarafından çevrelenmiştir. Bu sistem zaten etanol toksisitesi 26 kat 6 oluşumu ve preplate bölme 7,25 altında yatan hücresel olayları çözmekte değerli kanıtlamıştır.

<table><tbody><tr><td><güçlü > Reaktifler< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM / F12 + GlutaMAX</td><td>GIBCO</td><td>10565</td><td></td></tr><tr><td>G5 Takviyesi 100X</td><td>Invitrogen</td><td>17503-012</td><td></td></tr><tr><td>B27 Serumsuz Takviye 50X</td><td>Invitrogen</td><td>1504-044</td><td></td></tr><tr><td>Kalem / Strep Sıvı 100X</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>HBSS 500 ml</td><td>GIBCO</td><td>14025</td><td></td></tr><tr><td>Kültür eki kollajen kaplı </td><td>Costar</td><td>3492</td><td></td></tr><tr><td>Sığır derisi jelatini </td><td>Sigma</td><td>G9382</td><td></td></tr><tr><td>H & # 8211; chst 33342</td><td>Invitrogen</td><td>H1399</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serumu Albümin</td><td>Sigma</td><td>7906</td><td></td></tr><tr><td>EndoFree Plazmid Maxi Kiti</td><td>Qiagen</td><td>12362</td><td></td></tr> <tr><td>< güçlü > Ekipman< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>BTX 830 Elektroporatör</td><td>Harvard Aparatı</td><td>450052</td><td></td></tr><tr><td>Cımbız elektrotları 10mm</td><td>Harvard Aparatı</td><td>450166</td><td></td></tr><tr><td>Kuluçka</td><td>makinesi Billups Rothenberg</td><td>MIC-101</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton şırınga (5uL)</td><td>Hamilton</td><td>87930</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton şırınga iğnesi</td><td>Hamilton</td><td>7803-04</td><td>1" ve stil 4'ü belirtin</td></tr><tr><td>Dumont #5 Forseps</td><td>FST</td><td>11251-10</td><td></td></tr><tr><td>İnce Makas Sert Kesim 9 cm</td><td>FST</td><td>14058-09</td><td></td></tr></tbody></table>

eski utero elektroporasyon ve tüm yarımküre eksplantlarından: erken kortikal kalkınma Çalışmaları İçin basit bir deney yöntemi

Ex utero Electroporation and Whole Hemisphere Explants: A Simple Experimental Method for Studies of Early Cortical Development

Kortikal gelişme nöronlar ve öncü hücreleri, kan damarları, zarları ve ilişkili ekstrasellüler matriks içeren nöronal olmayan elemanlar arasındaki karmaşık etkileşimleri içerir. Onlar uygun bir organotipik ortamı sağlamak için, kortikal dilim eksplantlar genellikle nöronal farklılaşma ve gelişimini kontrol bu etkileşimlerin araştırılması için kullanılır. Yararlı olsa da, dilim eksplant modeli aberan hücresel laminasyon ve göç gibi sakıncaları muzdarip olabilir. Burada kortikal dilimleri ve gösterileri tutarlı organotipik göç ve laminasyon daha hazırlamak kolaydır erken kortikal gelişim çalışmaları için bir bütün serebral hemisfer eksplant sistemi rapor. Bu model sistem, erken laminasyon ve göç yollarını, preplate bölme dönemi de dahil olmak üzere, in vitro iki günlük bir süre için normal prospektif kortikal tabaka boyunca altı formları devam edin. Biz o eski utero elektroporasyon (EUEP) geliştirdidorsal medial korteks gelişen nöronlar GFP hedefleme ~% 80 başarı elde yaklaşım. Bütün yarımkürede eksplant modeli elektroporasyon, farmakolojik müdahale ve canlı görüntüleme yaklaşımları için erişilebilir erken kortikal gelişim yapar. Bu yöntem transfeksiyon ve alansal hedefleme tutarlılığı hem artırırken utero elektroporasyon (IUEP) yaklaşımlar gerekli sağkalım cerrahi önler. Bu yöntem nöronal proliferasyon, göç ve farklılaşma deneysel çalışmalar kolaylaştıracaktır.

Embriyonik kemirgen korteks gelişim dönemi boyunca bir enine nörogenetik degrade sergiler, öyle ki yanal neokorteks dorsal medial neokorteks 28 yaklaşık 1 gün daha olgun olduğunu. Katman 6 nöronların toplu böylece lateral korteks bölgesindeki E12 üzerinde (ayrıca Saha 40 5 denir) ve E13 de dorsal medial korteks (ayrıca Tarla 1 5 denir) (S-fazı nihai sergilemek gibi) oluşturulur. Preplate yarma Katman 6 nöron üretimi yaklaşık 1 gün sonra başlar ve böylece E13 üzerinde lateral kor...

Bu protokol içerir geliştirilmiş bir eksplant yordam açıklanır<em&gt; Ex utero</em&gt; Embriyonik fare genelinde hemisferlerin elektroporasyon, diseksiyon ve kültür. Hazırlanması erken kortikal gelişim sırasında gen fonksiyonu farmakolojik çalışmalar ve testler kolaylaştırır.

Eski utero Elektroporasyon ve Tüm Yarımküre Eksplantlarından: Erken Kortikal Kalkınma Çalışmaları İçin Basit Bir Deney Yöntemi

Cortical development involves complex interactions between neurons and non-neuronal elements including precursor cells, blood vessels, meninges and ...

Bu prosedürün genel amacı, erken kortikal gelişimin incelenmesi için tüm serebral hemisfer eksplantı hazırlamaktır. Bu işlem, öncelikle embriyonik 13. günde fare embriyolarının toplanmasıyla gerçekleştirilir. Ardından, plazmid DNA karışımı serebral ventriküle enjekte edilir ve utero dışı elektroporasyon uygulanır.Ardından, elektropore edilmiş embriyodan bütün bir hemisfer explanı hazırlayın. Son adım, histolojik analizler için bütün hemisfer explanının fikse edilmesi ve kesitlenmesidir. Nihayetinde, mutasyonun veya toksin maruziyetinin kortikal nöron gelişimi üzerindeki etkisi, GFP eksprese eden nöronların immünohistokimyasal analizleri ile değerlendirilebilir.Benim adım Eric Olson. Syracuse'daki SUNY Upstate Medical University bünyesindeki Nörobilim ve Fizyoloji Bölümü'ndeyim ve bugün size "tüm hemisfer eksplantı" adını verdiğimiz, geliştirdiğimiz bir yöntemi göstereceğiz. Bu tekniğin dilim eksplantı gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, tüm hemisfer eksplantlarının hazırlanmasının basit olması ve iki günlük organotipik büyüme sağlamasıdır.Bu yöntem, belirli bir mutasyonun veya toksinin erken kortikal gelişimi nasıl bozduğu gibi nörogelişim alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Genel olarak, bu yöntemi ilk kez kullanacak kişiler, meningeslere zarar vermeden tüm hemisferin eksplantını hazırlamanın biraz pratik gerektirmesi nedeniyle zorluk yaşayabilirler. Dokunun mekanik hasara karşı hassasiyeti nedeniyle diseksiyon ve eksplant transfer adımlarının öğrenilmesi zor olduğundan, bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi kritik öneme sahiptir.Prosedür, laboratuvarımdaki doktora sonrası araştırmacı Dr. Theresa Ozzi tarafından gösterilecektir. Bu protokol için, plazmitleri saflaştırmak amacıyla ticari olarak mevcut bir kit kullanın. Plazmit DNA'sını su içerisinde 0,33 mg/mL konsantrasyonunda hazırlayın ve enjeksiyon izleyicisi olarak yaklaşık %0,02 (ağırlık/hacim) oranında fast green boyası ekleyin; cerrahi aletleri, çalışma alanını ve mikroskobu her zaman dezenfekte edin.%70 etanol ile temizledikten sonra, E 13 günündeki gerekli sayıda Swiss Webster diş fareyi karbondioksit inhalasyonu ile sakrifiye edin. Embriyolar çıkarıldığında, onları buz gibi soğuk HBSS içeren ve soğuk tutulan 10 santimetrelik bir kaba yerleştirin. Her bir embriyoyu çevreleyen ekstra embriyonik membranlardan dikkatlice ayırın.Şimdi her bir embriyoyu tek tek, buz gibi soğuk HBSS içeren temiz bir kaba aktarın. Bir Hamilton şırıngası kullanarak, hazırlanan DNA'dan iki ila üç mikrolitre sol serebral hemisferin ventrikülüne enjekte edin. Gelecekteki analizler için planlanan kortikal alana veya bu alanın yakınına enjeksiyon yapmayın.DNA'yı elektroporasyonla aktarmak için, embriyoyu pensle nazikçe tutun ve cımbız elektrodun pozitif pedini başın dorsal orta hattına hafifçe yerleştirin. Negatif pedi embriyonun çenesinin altına hafifçe yerleştirin. BTX 830 model bir cihaz kullanarak, her biri 50 milisaniye süren, bir saniyelik aralıklarla uygulanan 30 voltluk beş palslik bir program çalıştırın; diğer sistemler üretici talimatlarına göre ayarlanabilir.Her bir embriyoyu buz gibi soğuk HBSS'ye geri koyun ve iki adet 5 numara kuyumcu pensi kullanarak bir diseksiyon mikroskobu altında tüm hemisfer Explan hazırlığına geçin. Embriyo başından deriyi ve kıkırdaksı kafatasını çıkarın. Ardından, penslerden birini beynin altına kaydırın.Sağlam beyni kafatasından çıkarmak için, ekli orta beyin dokusu da dahil olmak üzere elektropore edilmiş hemisferi diseke ederek ayırın. Diseke edilen kortikal hemisferin üzerindeki meningeslere zarar vermemeye dikkat edin. En zor öğrenilen adımın, meningeslere zarar vermeden elektropore edilmiş hemisferin diseksiyonu ve çıkarılması olduğunu tespit ettik.Diseksiyon işlemi tamamlandıktan sonra, genişletilmiş bir mililitrelik pipet ucu kullanarak her bir hemisferi beş mililitre buz gibi soğuk HBSS içerisine aktarın. Gerekirse embriyolar, 12 kuyucuklu bir doku kültürü kabının ayrı kuyucuklarında tutulabilir. Ardından, altı adede kadar hemisferi nazikçe 24 milimetrelik kolajen kaplı bir kültüre aktarın.İnserti medial tarafı aşağı gelecek şekilde yerleştirin ve düzenleyin. Şimdi, altı kuyucuklu bir plağın 35 milimetrelik bir kuyucuğunu 2,7 mililitre desteklenmiş besiyeri ile doldurun. İnsertteki fazla HBSS'yi uzaklaştırın ve inserti besiyeri bulunan kuyucuğun içine yerleştirin; kuyucuktaki besiyerinden birkaç damlayı her bir eksplanın üzerine pipetleyin.Besiyeri hacmini artırmayın. X eksplantlarının üzerine birkaç damla kültür besiyeri yerleştirmenin ve böylece X eksplantlarının besiyeri ile tamamen örtülmemesinin kritik olduğunu saptadık. Bu, x eksplantı üzerindeki 2,7 ml besiyerine 400 µL kadar ekleme yapmak anlamına gelebilir.Kabı, içinde nemlendirme amacıyla su bulunan bir kap yerleştirilmiş ve en az bir dakika boyunca %95 oxygen ile doyurulmuş bir Billups Rothenberg haznesine yerleştirin. Hazneyi sızdırmaz şekilde kapatın ve gaz besleme tüpünü ayırın. Hazneyi, prepl bölünmesinin gerçekleşeceği süre boyunca iki gün boyunca 37 degree Celsius'lik bir inkübatöre yerleştirin.Hazırlık aşaması. Explan gömme işlemi için pedler hazırlayın. 60 °C'de %10'luk dana derisi jelatin çözeltisi hazırlayın.Çözündükten sonra, çözeltinin yaklaşık 10 mililitresini 10 santimetrelik bir kaba dökün. Kalan çözeltiyi daha sonra kullanmak üzere 60 °C'de tutun. Gerekiyorsa, pedlerin katılaşması için yarım saat bekleyin.Dört °C'de birkaç gün boyunca saklanabilirler, ancak kullanımdan önce oda sıcaklığına getirilmelidirler. Tespit işleminin yapılacağı gün, bir çeker ocak altında Pagano, tespit çözeltisi ve tespit çözeltisi içermeyen Pagano çözeltisini hazırlayın. Tespit çözeltisini 37 °C'ye ısıtın.Eksplantları, dokuları rahatsız etmeden dikkatlice ve hızlı bir şekilde inkübatörden çıkarın. Besiyerinin büyük kısmını uzaklaştırın ve yerine beş mililitre ısıtılmış tespit çözeltisi ekleyin. Her bir eksplantın tamamen daldırıldığından emin olun.Dokuları oda sıcaklığında bir saat boyunca sabitleyin. Ardından fiksatifle uzaklaştırın ve yerine Pagano solüsyonu ekleyin. Fiksatif kullanmayın.Her bir kuyuya birkaç damla %10 sodyum azid ekleyin. Dokular, gömme pedine gömülene kadar dört derece Celsius'ta saklanabilir. Bir cetvel yardımıyla kabın tabanına bir ızgara çizin.İki ila üç santimetrelik kareler oluşturun. Münferit eksplantları gömme pedine aktarın. Kalan solüsyonu pipetle çekin ve her bir eksplantın üzerini sıcak %10'luk jelatin solüsyonu ile kaplayın.Katılaşmasını bekleyin. Yavaşça katılaştıktan sonra, her bir eksplant tamamen çevrelenene kadar daha fazla jelatin çözeltisi ekleyin. Bir kerede çok fazla jelatin eklenmesi durumunda meydana gelebilen pedin erimesinden kaçının.Şimdi, jelatinin yaklaşık bir saat boyunca sertleşmesini bekleyin. Sertleşme tamamlandığında, kesit alma işleminden önce tekil explanlar küçük jelatin bloklar halinde kesilebilir. Blokların bir veya iki gün boyunca Pagano fiksatifinde son fiksasyona tabi tutulması önemlidir.Kesit alma işlemi sırasında, eksplantları olfaktör bulb yukarı gelecek şekilde konumlandırın ve koronal düzlemde 100 µm kalınlığında kesitler alın. Kesitleri %0,1 sodyum azid içeren soğutulmuş PBS içerisinde toplayın.Kesitleri, belirtilen teknik kullanılarak boyanana kadar dört °C'de saklayın. Tüm hemisfer eksplantları, prelate bölünmesi öncesinde E 13 evresinde hazırlandı. Dorsal neokortekste.Doku, eksitatör kortikal soyuna ait immatür nöronları raporlayan bir transgen taşıyordu. Aynı batımdan alınan kortikal eksplantlar, in vitro ortamda iki günlük bir süre boyunca sırasıyla damla sabitleme yöntemine tabi tutuldu ve sonraki histolojik analizler için işlendi. Başlangıç analiz zaman noktası olan DIV sıfırda, alan bir bir boyunca prepl bölünmesi henüz gerçekleşmemiştir.DIV.CP belirginleşti ve 2D IV'e kadar büyümeye devam etti. Böylece, başlangıçta E 13'te kültüre edilen tüm hemisfer eksplantları, serebral korteksin olgunlaşmasını iki gün boyunca destekledi ve dorsal neokorteksteki normal histolojik gelişimi doğrulamak için dorsal neokorteksteki öncül bölünmeyi yakaladı. 2D IV eksplantları kondroitin sülfat, proteoglikanlar ve hücre dışı matris bileşenleri için immün boyandı. Dorsal korteksteki iki immünreaktivite bandı, in vitro kültür süresi boyunca PPP'nin MZ ve SP'ye uygun şekilde bölündüğünü gösterdi.PP, CTIP2 ve TBR1 eksprese eden altı kortikal nöron tarafından L şeklinde bölünmüştü. Bu markörlerin immün boyama örüntüsü, yeni oluşan cp'de bu transkripsiyon faktörlerinin uygun ekspresyonunu doğrulamaktadır. Bu analizler hep birlikte, tanımlanan protokolün tamamı kullanılarak sağlam E13 embriyolarının sol ventrikülüne enjeksiyon yapılan tüm hemisfer preparatında ORGANOTİPİK erken kortikal gelişimi doğrulamaktadır.Vz'deki nöronal öncüllerde elektropore edilmiş ve işlenmiş GFP ekspresyonu gözlemlenebilmiştir. IZ ve cp'de yoğun GFP eksprese eden hücreler görülürken, önemle, gelişen dendrit ve aksonlara sahip, ok uçlarıyla işaretlenmiş çok sayıda GFP pozitif nöron, oluşmakta olan CP'nin üst kısmında gözlemlenmiştir. CP ve MZ arasındaki arayüzde bulunan belirgin tabaka; uygun migrasyon, duraklama ve laminasyonun gerçekleştiğini göstermektedir.Dendritler MZ'ye doğru uzanırken, kortiko-ugal aksonlar CP'nin altına ve iz'ye doğru uzanmıştır. Farklaşan hücreler, radyal glial liflerin yanındaki bipolar morfolojiye sahip nöronlar ve bunların altında iz'deki multipolar nöronlar dahil olmak üzere, farklı olgunluk durumlarındaki GFP pozitif hücrelerdi. Dendritler ayrıca, ECM proteini reelin'in uygun şekilde immünolokalize olduğu MZ'ye de uzanmıştır.Böylece, elektroporasyon ve eksplant koşulları kortikal nöronların normal gelişimine olanak sağlar. Beklendiği gibi, post-mitotik GFP pozitif nöronlar oluşan cp'yi doldurmuştur. Dolayısıyla, bu protokol, göç ve olgunlaşma çalışmalarında L altı kortikal nöronları güvenilir bir şekilde hedefleyebilir.Bu prosedürün kapsamlı kullanımı %79 başarı oranıyla sonuçlanmıştır. 248 denemenin 195'i görüntüleme ve analiz için uygun bulunmuştur. Başarısızlıkların yarısı, GFP ekspresyonunun gerçekleşmemesinden veya hedeflenen GFP'nin kaçırılmasından kaynaklanmıştır. Yöntem ustalıkla uygulandığında.Bu teknik, doğru şekilde uygulandığında 90 dakika içinde tamamlanabilir. Bu prosedürü gerçekleştirirken, elektropore edilmiş hemisferlerin prosedür sonrasında sağlam meningesler ile kültüre edilebilmesi için diseksiyonların pratikle pekiştirilmesinin önemli olduğunu unutmamak gerekir. İlgilenilen mutasyonların nöronal migrasyonu veya dendritogenezi nasıl bozduğu gibi ek soruları yanıtlamak için time-lapse mikroskopi gibi diğer yöntemler uygulanabilir.

ex-utero-electroporation-whole-hemisphere-explants-simple

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

E15 Fare Embriyolar Utero İntraventriküler Enjeksiyon ve Elektroporasyon

Utero elektroporasyon nöronal progenitör hücrelerinin in vivo transfecting için değerli bir yöntemdir. Elektrotlar ve elektroporasyon gelişimsel timepoint yerleştirme bağlı kortikal hücrelerin bazı altkümelerini hedeflenebilir. Hedeflenen hücreler daha sonra in vivo veya in vitro genetik değişiminin etkileri analiz edilebilir.

In utero Elektroporasyon Kortikal nöronlar Altküme Gen Fonksiyonu Öğrenmenin İlköğretim Nöronal Kültür takip

Gelişmekte olan fare beyninin içine bir gen transferi yöntemi eşsiz bir cerrahi yöntem ve elektrotlar özel şekli ile tarif edilir. Bu benzersiz tekniği, beyin gelişimi okuyan birçok Nörobilimadamları yardımcı olacak zamansal ve mekansal plazmid DNA transfeksiyon sağlar.

Fare Utero Elektroporasyon: Kontrollü Spatiotemporal Gen Transfeksiyon

Serebral kortekse bir gelişme genlerin işlevine hızlı bir değerlendirme yapmak için, ilgili yöntemler...

Nöronal Morphogenesis Çalışması Yöntemleri:<em&gt; Ex vivo</emEmbriyonik Mürin Serebral Korteks olarak&gt; RNAi Elektroporasyon

Bu makalede ayrıntılı olarak utero serebral korteks ve farelerde E14.5 de hipokampus electroporate bir protokol tanımlamaktadır. Biz de bu bu iki beyin bölgelerinde dendrit ve dikenler incelemek için değerli bir yöntem olduğunu göstermektedir.

Kullanarak Fare Serebral Korteks ve Hippocampus Görselleştirme ve Dendritler ve Spine Genetik Manipülasyon<em&gt; Utero olarak</em&gt; Elektroporasyon

Burada, hipokampal gelişim sırasında belirli genlerin düzenleyici mekanizmalarını incelemek için bir araç sağlayan bir protokol sunuyoruz. Ex utero elektroporasyon ve organotipik dilim kültürünün kullanılması, tek hücrelerde ilgilenilen genlerin ekspresyonunun yukarı ve aşağı regülasyonuna izin verir ve gelişim sırasında kaderlerini takip eder.

Fare Hipokampal Doku Ex Utero Elektroporasyon ve Organotipik Dilim Kültür

Bu protokol, in utero elektroporasyon yoluyla C57BL/6 merkezi sinir sistemindeki farklı bölgelerin spesifik olarak nasıl transfekte edileceğini ayrıntılı olarak açıklar. Bu protokolde korteks, hipokampus, talamus, hipotalamus, lateral septal çekirdek ve striatuma dönüşen bölgelerin transfeksiyonları için ayrıntılı talimatlar bulunmaktadır.

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü<em&gt; In Utero</em&gt; C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

Bu yazının tek hücre düzeyinde ve floresan etiketli nöronların eksitabilite nöronların yapısal bağlantı tanımlamak için utero elektroporasyon (İEÜ) kullanmak protokolleri sağlar. Histoloji dendritik ve aksonal projeksiyonlar karakterize etmek için kullanılır. Akut dilim tam hücreli kayıt eksitabilitesini araştırmak için kullanılır.

Rahimde Elektroporasyon Nöronal alt popülasyonlar heyecanlanma ve Tek hücreli Bağlantı Eğitim Yaklaşımları

Burada, electroporated beyin organotypic dilim kültürler fare embriyo confocal mikroskobu ve canlı görüntüleme teknikleri için uygun oluşturmak için düşük maliyetli ve güvenilir bir yöntem sağlamak.

Eski Utero Elektroporasyon ve embriyonik fare beyni canlı görüntüleme, GABAergic Interneurons geçiş için Organotypic dilim kültürleri

Uteros elektroporasyonda çift mekansal ve zamansal olarak ayrılmış hücre popülasyonları hedefleme sağlar. Bu teknik, bu hücre popülasyonları arasındaki etkileşimleri normal koşullarda floresan proteinler ihsallaştırmak için değil, aynı zamanda fonksiyonel deneylerden sonra ilgi genlerini tedirgin etmek için görselleştirmek için yararlıdır.

Geçici ve Mekansal Olarak Ayrılmış Hücre Popülasyonlarını Hedef lemek için Utero Elektroporasyonunda Çift

Öğrenin, fare embriyolarında ex utero elektroporasyon ve tüm yarımküre eksplantları kullanarak erken kortikal gelişimi incelemeyi. Bu yöntem gen fonksiyonu ve farmakolojik çalışmalar için değerlidir.

Eski utero Elektroporasyon ve Tüm Yarımküre Eksplantlarından: Erken Kortikal Kalkınma Çalışmaları İçin Basit Bir Deney Yöntemi

Daha fazla video keşfet