11 Eylül 2013
, Dekolmanı bir tekrarlanabilir ve sürekli yüksekliği ile deneysel retina dekolmanı oluşturma ve subretinal kanama olmadan retina hastalığında fotoreseptör hücre kaybı patofizyolojisi okuyan ve potansiyel terapötik müdahalelerin değerlendirilmesi için önemlidir. Burada ayrıntılı olarak, böyle bir yöntem sunulmaktadır.
Bu prosedürün genel amacı, subretinal kanama olmaksızın, tekrarlanabilir ve sürdürülebilir bir ayrılma yüksekliğine sahip deneysel retinal ayrılmalar oluşturmaktır. Bu işlem, öncelikle konjunktivayı skleradan ayırmak için posterior limbus düzeyinde temporal konjunktivanın insize edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adımda, kendi kendini kapatan bir skleral insizyon ve kornea ponksiyonu yapmak için 30 gauge bir iğne ucu kullanılır.
Ardından, nörosensoriyel retinayı altta bulunan retinal pigment epitelyumundan ayırmak için subretinal boşluğa sodyum hyaluronat enjekte edilir. Son adımda, sklera yarasının üzerine siyanoakrilat yapıştırıcı uygulanır ve sodyum hyaluronat sızıntısı riskini azaltmak için konjunktiva orijinal konumuna yeniden dikilir. Son olarak, subretinal hemoraji olmaksızın bolus retinal ayrılmanın gerçekleştiğini doğrulamak için bir lam cam kullanılarak fundus incelenir.
Kemirgenlerde retinal dekolmanı azaltmaya yönelik mevcut yöntemler, retinal dekolmanın yüksekliği ve kalıcılığında değişkenliğe yol açarak ölçülen hücre ölüm oranlarının tutarsız olmasına neden olabilir. Bu teknik ile, subretinal hemoraji riski azaltılmış, tekrarlanabilir büllöz ve kalıcı retinal dekolmanlar oluşturulabilir; bu da kemirgenlerde güvenilir bir retinal dekolman modeline olanak tanır. Kemirgenlerde deneysel retinal dekolman uygulaması nispeten basittir, makul bir zaman sürecine sahiptir ve insan hastalığına oldukça benzerdir.
Bu nedenle, fotoreseptör hücre ölümü mekanizmalarını ve görme kaybını önlemeye yönelik tedavileri incelemek için harika bir modeldir. Retinal dejeneratif bozukluklarda, ayrılmış retinada meydana gelen değişken fotoreseptör hücre ölümünü incelemek için, subretinal kanama olmaksızın tekrarlanabilir bir ayrılma oluşturmak avantajlıdır. Bunun nedeni, retinal ayrılmanın süresinin uzamasının veya subretinal kanama oluşumunun fotoreseptör hücre ölümünü etkileyebilmesidir.
Sekiz haftalık bir fare anesteziye alındıktan sonra hayvanın bıyıklarını kısaltın, ardından cerrahi bir mikroskop altında %5 phenyl rine ve %0,5 tropic içeren bir solüsyonla pupillayı dilate edin. Hayvanın kirpiklerini kesin, topikal anestezi (%0,5 propane hydrochloride oftalmik solüsyon) uygulayın. Fareyi, burnu cerraha bakacak şekilde lateral pozisyona getirin ve ardından posterior limbus düzeyinde temporal konjunktivayı insize ederek, bir pens yardımıyla konjunktivayı skleradan ayırın.
Gözü kontrol etmek için konjonktivayı limbus bölgesinden tutun. Ardından, eğik ucu yukarı bakacak şekilde 30 gauge bir iğne tutun. Retinayı delmeden, sklera üzerinden bir tünel oluşturup sklera boyunca koroid tabakasına nüfuz etmek için iğnenin ucunu kullanın.
Ardından, 30 gauge iğneyi irise paralel tutarak, intraoküler basıncı düşürmek için korneayı delin. Şimdi eğimli ucu aşağıya doğru yönlendirerek, Hamilton 10 µL şırıngaya bağlı 33 gauge bir iğneyi subretinal boşluğa yerleştirin ve 3.5 µL sodyum urinat enjekte edin.
Bu işlem, nörosensoriyel retinanın yaklaşık %50'sini alttaki retinal pigment epitelyumundan ayıracaktır. Pens kullanarak korneayı kornea ponksiyonu çevresinden itin ve akuöz hümörün kornea ponksiyonundan dışarı akmasını sağlayın; ardından, sodyum urinat sızıntısı riskini azaltmak için skleral yaradan sızıntı olmadığını doğrulamak amacıyla cerrahi bir selüloz mızrak kullanın. Skleral yaranın üzerine siyanoakrilat yapıştırıcı sürün ve ardından konjunktivayı orijinal konumuna yeniden tutturun.
Fundusu kontrol etmek ve subretinal hemoraji olmaksızın bir bolus retinal detaman oluşumunu onaylamak için bir lamel cam kullanın. Son olarak, enfeksiyon riskini azaltmak için göze antibiyotikli pomad uygulayın. Vücut sıcaklığının düşmesini önlemek için fareyi bir ısıtıcı ped üzerinde tutun.
Düşük kan basıncı takiben. Anesteziden uyandıktan sonra hayvanı kafesine geri koyun. Bu protokol ile oluşturulan retinal ayrılmanın kalıcılığını değerlendirmek için, ayrılmanın indüklenmesinden sonraki üçüncü, yedinci ve 14. günlerde kriyoseksiyonlar yapıldı.
Her zaman noktası için altı göz kullanıldı; kesitlerin görüntülenmesi için hematoksilin ve eosin boyama yapıldı ve her birinde lense yaklaşan bir bolus retinal dekolman görüldü.
Hiçbir gözde enfeksiyon veya lens yaralanması belirtisi görülmemiştir. Uzmanlaşıldığında, bu cerrahi işlem yaklaşık beş dakika içinde gerçekleştirilebilir. Bu prosedürü uygularken, ayrılmış retinadaki reseptör hücresi ölümünü etkileyebilecek sodyum sızıntısına, yüksek düzeyde subretinal hemorajiye veya lens yaralanmasına neden olmamak için her adımın nazikçe uygulanması önemlidir. Bu videoyu izledikten sonra, kemirgenlerde subretinal hemoraji oluşmadan, tekrarlanabilir ve sürdürülebilir bir ayrılma yüksekliğine sahip deneysel retinal ayrılmanın nasıl oluşturulacağı konusunda iyi bir anlayış kazanmış olmalısınız.
Bu makale, kemirgenlerde subretinal kanama olmadan, tekrarlanabilir ve sürdürülebilir bir yüksekliğe ulaşan deneysel retina dekolmanları oluşturma yöntemini sunmaktadır. Bu teknik, retina hastalıklarında fotoreseptör hücre kaybının incelenmesi ve potansiyel tedavilerin değerlendirilmesi için kritik öneme sahiptir.
Kafa karıştırıcı kanamalar olmadan tekrarlanabilir retinal dekolman modelleri oluşturmak, retinal dejeneratif hastalıklarda hedef doğrulamadaki risklerin azaltılması için gereklidir. Bu yöntem, fotoreseptör hücre ölümü üzerine mekanistik çalışmaları destekler ve preklinik süreçlerde terapötik müdahalelerin tutarlı bir şekilde değerlendirilmesine olanak tanır.
Bu model, erken keşif aşamasındaki hipotez testlerini destekleyerek ve öncü bileşik optimizasyonu ile preklinik doğrulama için kantitatif histoloji okumaları sağlayarak, keşiften preklinik aşamaya uzanan sürekliliğe uyum sağlar.