Name: Hücre ve Doku mechanobiology Applications A Novel Germe Platformu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-03T14:15:00.000+00:00
Duration: 16 min 46 s
Description: Öğrenin, anizotropik germe platformu ile tek hücrelerin mekanik deformasyona yanıtlarını ve biyolojik dokuların mekanik özelliklerini nasıl inceleyeceğinizi. C2C12 hücreleri ve fare aort dokuları kullanılarak geliştirilen bu yöntem, hücre mekaniği ve doku mühendisliği alanlarında önemli uygulamalar sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

DT le Fonds de Recherche du Québec-Doğa ve Teknolojileri (FQRNT) ve bir MITACS Yükseltmek Stratejik Bursu bir doktora sonrası öğrencilikle tarafından desteklenmiştir. CMC le Fonds de Recherche en Sante du Québec (FRSQ) ve Ernest ve Ottawa Kalp Enstitüsü Üniversitesi&#39;nden Margaret Ford kardiyoloji sahip araştırma bursu bir doktora sonrası öğrencilikle tarafından desteklenmiştir. EOB işletim hibeleri Sağlık Araştırmaları Kanada Enstitüsü (CIHR) dan MOP80204 ve Kalpten T6335 ve Ontario İnme Vakfı tarafından desteklenmiştir. CIHR ve Medtronic topluca bir hakemli Araştırma Başkanı (ÜAK # 57093) ile EOB sağlar. AEP Doğal Bilimler ve Mühendislik Araştırma Konseyi (NSERC) Discovery Grant, bir NSERC Discovery Hızlandırıcı Supplement tarafından finanse edilen ve minnetle Kanada Araştırma Sandalyeler (CRC) programı ve Ontario Eyaleti Erken Araştırmacı Ödülü desteğini kabul edilir.

Tek Hücrelerinin 1.. Mekanik Deformasyon <ol><li> Gömülü Floresan Boncuk ile bir PDMS Yüzey Fabrikasyon Önce, alt-tabakanın imalatı için, su çözeltisi içerisinde flüoresan mikro hidrofobik doğası nedeniyle PDMS boncuk karıştırmayı artırmak için izopropanol içinde yeniden süspanse edilir. <ol><li> 10 dakika boyunca 16.200 x g&#39;de bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü ve santrifüj flüoresan mikro pipetle 500 ul. </li><li> Süpernatantı atın ve eklemek izopropanolün 500 ul vortekslen 5 dakika ile izledi. Herhangi bir büyük partiküllerin çökelmesi için agrega sağlamak için karanlıkta gece boyunca bir kenara şişeyi koyun. </li><li> Ertesi sabah, dikkatli bir şekilde temiz bir mikrosantrfuj şişeye süpernatantı. Bu çözelti, daha fazla boncuk 5 tabakaları imal etmek için kullanılabilir. NOT: boncuk çözeltisi bir sonraki 3 gün boyunca tortu devam edecektir. Pelet resuspending önlemek için dikkatli olun. </li><li> Resim sertleştirme ajanının 0.5 g dökünbilimsel bir tartıyı kullanarak, bir 1.5 ml mikrosantrifüj şişede PDMS kiti ile. Birbirini takip eden adımlar ile, her bir ilave arasında 1 dakika boyunca karıştırın, (altı 15 ul ilave olarak) boncuk 90 ul bir toplam ekleyin. Kenara koyun. </li><li> PDMS, 10 g tartılır ve flüoresan boncuklar ile desteklenmiş sertleştirme maddesinin 0.5 g, en azından 12 dakika boyunca karıştırın. </li><li> Üreticinin talimatlarına göre standart teknikler kullanılarak bir fotolitografi SU-8 2.050 çapraz şeklinde kalıp imal. Kullanılan kalıp 320 um&#39;lik bir yüksekliğe ve 13.4 cm2 bir alan (Şekil 3) sahiptir. Kalıp 428 ul veya PDMS 440 mg içerebilir. </li><li> Bir transfer pipeti kullanarak, çapraz-şekilli kalıpta boncuklar ile PDMS 400 mg dökün ve 80 ° C&#39;de 2 saat boyunca kür Sertleştirme sonrası, kalıbın (Şekil 5A) arasındaki alt-tabakanın soyulabilir. Alt-tabaka, mekanik özelliklerinde önemli değişiklikler göstermeden 2 hafta boyunca oda sıcaklığında bir Petri kabındaki tutulabilir. </li&gt; <li> Çap olarak yaklaşık 4 mm lik bir son boyutuna sahip bir Petri kabındaki (01:20 oranı ile bir PDMS sertleştirme maddesi) ve 80 ° C&#39;de (Şekil 5B), 2 saat boyunca baş aşağı tedavi PDMS damlacıkları dökün. Bu ankraj özellikler hafta içinde bir Petri kabındaki tutulabilir. NOT: sertleştirme işlemi sırasında düzleşme gelen düşüşlerini önlemek için ters çanak koruyun. </li><li> Hava plazma tedavi (30 W 30 sn) yüzey ve 8 ankraj özellikleri. Alt-tabakanın (Şekil 5C) üzerinde bulunan kare şeklindeki girintisi 4 mm bir mesafede alt-tabakanın her iki ucundaki özellikleri bağlayın. </li></ol></li><li> Üzerinde Kelepçe Membran Montaj <ol><li> Kelepçelerin oluklu silindirik kısmı çevresinde alt-tabakanın her iki ucunda sarın ve üstten 2 ayar vidaları (Şekil 2B ve Şekil 5D-E) ile yerine sabitleyin. </li><li> Kelepçe tutucuya 4 kelepçeler vida ve bir tek t kullanarak PDMS (oran 1:20) dökmekalt-tabaka ve kelepçeler yivli silindir kısmı arasındaki ara yüzde ransfer pipet. 1.5 mm altıgen anahtarı kullanarak yivli silindirik parçası etrafında sertleşmemiş PDMS yayıldı. </li><li> Tamamen kılcal hareket ile doldurulmuş ve 2 saat (Şekil 5F), 80 ° C de montaj tedavi kadar oluklarından PDMS (1:20) dökün. </li></ol></li><li> Membran Hücreler tohumlama <ol><li> Hava plazma muamele (30 W 30 saniye) kolajen kaplamaya izin vermek için alt-tabaka ve sterilize işlevselleştirilmesi bütün düzeneği. </li><li> Hücreler, 1 saat boyunca oda sıcaklığında fare kuyruk kolajeni ve 16 ug / ml ile takviye edilmiş, 0.02 M asetik asit içinde, 1 ml ile tohumlanmış edilecek alt-tabakanın alanı işlevselleştirilmesi. Istenen son kollajenizasyon 5 ug / cm 2 &#39;dir. </li><li> Fosfat tampon maddesi ile alt-tabaka 3 kez yıkayın ve bu, oda sıcaklığında kuru, en az 10 dakika boyunca için sağlar. </li><li> % 10 fetal sığır tenan ile takviyeli kültür ortamında 40 ul eklem ve 1 cm2&#39;lik bir alanı kapsayacak şekilde, substratın orta kısmında 2000 hücreleri ihtiva eden,% 1 penisilin-streptomisin (hücre yoğunluğu: 20 hücre / mm 2). Hücre yoğunluğu deneysel ihtiyaçlarına göre değiştirilebilir. </li><li> Alt-tabaka üzerinde hücreleri ihtiva eden kültür ortamı içinde damla ile yukarı bakacak şekilde, standart hücre kültür inkübatörü içinde bütün montaj koyun. NOT: montaj tabaka hücreleri sıkıca takmak için izin en az 3 saat boyunca yukarı bakacak şekilde tutulmalıdır. Buharlaşmayı önlemek için, sıcak bir kültür ortamının 30 ul alt tabaka üzerindeki damla 3 saat için her 45 dakika içinde ilave edilir. </li><li> 3 saat sonra, alt-tabakanın daldırın ve hücreler çoğalmaya izin vermek için bir gece boyunca inkübasyona taze kültür ortamı ile doldurulmuş bir Petri çanağı içine bütün montaj çevirin. </li><li> Ertesi gün, HEPES-tamponlu tuz çözeltisi (HBSS hazırlanması, Hepes, NaCl 120 mM, KCl 5.3 mM, MgSO 4, 0.8 mM, CaCI2 1.8 mM, ve DE 11.1 mM ile 20 mMxtrose). PH&#39;ı 7.4 &#39;e ayarlayın. NOT: HBSS çözeltisi günlük olarak hazırlandı ve deney esnasında 37 ° C &#39;de muhafaza edilmesi gerekir. Bu fizyolojik çözelti, normal doku / kan ortamı taklit ile mikroskop sahnede hücreleri korumak için kullanılır. </li><li> Ters faz kontrast veya floresan mikroskop Dağı BAXS platformu ve motor üzerinde kelepçe-tabaka montaj on set-up monte edin. HEPES tamponu (Şekil 2B) olan Petri çanağı içine ısıtıcı Petri kabı doldurun. </li></ol></li></ol> Küçük Kalibre Gemiler 2. Sertlik Ölçüm <ol><li> Hazırlık <ol><li> Krebs fizyolojik çözelti: 118.1 mM NaCI, 11.1 mM D-glikoz, 25 mM NaHCO 3, 4.7 mM KCI, 1.2 mM MgSO 4, 1.2 mM KH 2 PO 4 ve 2.5 mM CaCl2 ihtiva eden bir çözelti hazırlayın. PH&#39;ı 7.4 &#39;e ayarlayın ve 30 dakika karbojen tıbbi gaz (% 95 O 2/5% CO2) ile çözüm oksijen. NOT: Krebs solutigünlük hazırlanır ve deney esnasında 37 ° C &#39;de muhafaza edilmesi gerekir. Bu fizyolojik çözelti, normal doku / kan ortamı taklit ederek canlı dokuları korumak için kullanılır. </li><li> Cerrahi makas, bükülmüş cımbız, mikro-makas, cerrahi diseksiyon mikroskop, 50 ml polipropilen santrifüj tüpleri, ve 10 ml serolojik pipet: diseksiyonu ve aort damarlarının mekanik değerlendirilmesi için enstrümantasyon toplayın. Cerrahi ve deney prosedürü herhangi bir steril koşullar gerekmez. Önceden yük hücresi ile birlikte BAXS platformun kelepçeler monte edin. </li></ol></li><li> Doku İzolasyon ve Diseksiyon Laboratuvar hayvanları içeren tüm deneysel prosedürleri ülke &#39;kullanıcıların Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Sağlık Rehberi ile uyumludur kurum,&#39; kullanıcı Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanmış olması gerekir. <ol><li> % 99 CO 2 inhalasyon ile fare ötenazi gerçekleştirin (7 psi)Bir pleksiglas odası (Şekil 6A) içinde. </li><li> Açık fare karın ve fareyi kanamaya aorta kesti. </li><li> Diyafram, göğüs kafesi ve akciğer lobları (Şekil 6B) sökün. NOT: dokuya zarar riskini en aza indirmek aorta bağlı kalp tutmak ve doğrudan damar dokunmaktan kaçının ama kalbi kullanarak işlemek için. </li><li> Nazikçe gemi ve omurga arasındaki kesim tarafından kalp, aort kökü ve aorta çıkarın. NOT: doku bozulmamış (Şekil 6C) iç yapısını korumak için eksizyonu sırasında geminin herhangi bir uzama kusturmayın. </li><li> Hemen batırmak ve Krebs çözeltisi içinde kalp ve aort tutun. </li><li> Kes ve dikkatle herhangi bir kan pıhtıları uzaklaştırmak için Krebs çözeltisi içinde aorta yıkayın. Mikro-makas, cımbız ve cerrahi mikroskop (Şekil 6D-E) kullanılarak bağ dokusu kaldırmak. NOT: Tüm damar uzunluğu tutun ve AOR kullanındamar yönünü belirlemek için tik kök. </li></ol></li><li> Gemi Boyut Belirlenmesi ve Montaj Kabın sertliğini belirlemek için, boş kap boyutları gerekmektedir ve kalibre edilmiş bir mikroskopla saptanabilir. <ol><li> Uzunluğu yaklaşık 2 mm arasında bir aort halkası kesin ve hassas bir şekilde (Şekil 6F-G) ayar kalibre edilmiş bir mikroskop kullanarak uzunluğunu ölçer. Krebs çözeltisi içinde kenara bu segmenti koydu. </li><li> 2 mm kesimleri (Şekil 6F) her biri arasında, mümkün olduğu kadar küçük bir aortik halka kesin. Lümen yukarı bakacak şekilde bir mikroskop cam slayt üzerinde bu küçük kesimi koyun ve bir kalibre mikroskop ayarı (Şekil 6H) kullanarak duvar kalınlığı ölçmek. </li><li> Krebs çözeltisi ile BAXS platformu üzerinde Petri kabı doldurup (Şekil 4C&#39;de ek), çekme iğneler üzerinde 2 mm aort halka segmenti yerleştirin. </li></ol></li></ol> ge = &quot;always&quot;&gt; <img alt="Şekil 5," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51454/51454fig5highres.jpg" width="500" /> Kür sonra Şekil 5. PDMS substrat imalat ve montaj. A), alt tabaka dikkatlice SU-8 2050 kalıp soyulmuş ve. B) PDMS&#39;nin yapılmış özelliklerini Sabitleştirilmesi Petri kabındaki bir kenara koymak ve üzerindeki tabakayı korumak için yardımcı olduğunu 4 kelepçeler üzerine monte alt tabakanın alt tabaka daha sonra kelepçe tutucu üzerine monte edilmiş 4 kelepçeler, (inset bakınız) üzerine monte edilir. D) montaj için hazır özellikleri ankraj ile kelepçeleri. C) Yüzey. E) Ayrıntılı resim. F alt-tabaka altında oluk PDMS dökme) Prosedür. Ok, yavaş yavaş kılcallık ile oluğu dolduran PDMS gösterir. 454fig6highres.jpg &quot;width =&quot; 500 &quot;/&gt; Şekil 6. Hazırlanması ve torakal aort izolasyon. A) uzunlamasına bir insizyon sayesinde cerrahi aletler ve ötenazi fare. B) hazırlanması, toraks ve akciğer lobs kaldırılır. C) aort dikkatle işlemek için kalp kullanılarak kaldırılır doku. D) kalp ve aort Krebs fizyolojik çözelti konur. Aort, tüm bağ dokuları kaldırarak temizlenir. Kalınlığı ölçümü için kullanılan küçük kesimleri ile birlikte sertlik değerlendirmesi için kullanılan kalp ve aort. F) Aort segmenti. GH) kesin uzunluğu (G) ve kalınlığını gösteren E) Detay resim (H) Her damar kesimleri ters bir mikroskop ve analiz programı kullanılarak değerlendirilmiştir.

<ol><li>Yim, E. K., Sheetz, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force-dependent+cell+signaling+in+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Force-dependent cell signaling in stem cell differentiation.</a> Stem Cell Res Ther. 3, (2012).</li>
<li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7, 265-275 (2006).</li>
<li>Wang, N., Tytell, J. D., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+at+a+distance%3A+mechanically+coupling+the+extracellular+matrix+with+the+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction at a distance: mechanically coupling the extracellular matrix with the nucleus.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 10, 75-82 (2009).</li>
<li>Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanobiology+and+diseases+of+mechanotransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Med%22%5BJournal%5D)">Mechanobiology and diseases of mechanotransduction.</a> Ann Med. 35, 564-577 (2003).</li>
<li>Janmey, P. A., Miller, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+mechanical+signaling+in+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of mechanical signaling in development and disease.</a> J Cell Sci. 124, 9-18 (2011).</li>
<li>Bukoreshtliev, N. V., Haase, K., Pelling, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+cues+in+cellular+signalling+and+communication%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Mechanical cues in cellular signalling and communication.</a> Cell Tissue Res. 352, 77-94 (2013).</li>
<li>Chen, Y., Pasapera, A. M., Koretsky, A. P., Waterman, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orientation-specific+responses+to+sustained+uniaxial+stretching+in+focal+adhesion+growth+and+turnover%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Orientation-specific responses to sustained uniaxial stretching in focal adhesion growth and turnover.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 110, (2013).</li>
<li>Rosenzweig, D. H., Matmati, M., Khayat, G., Chaudhry, S., Hinz, B., Quinn, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+Primary+Bovine+Chondrocytes+on+a+Continuously+Expanding+Surface+Inhibits+Dedifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Culture of Primary Bovine Chondrocytes on a Continuously Expanding Surface Inhibits Dedifferentiation.</a> Tissue Eng Part A. 18, 2466-2476 (2012).</li>
<li>Balachandran, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic+strain+induces+dual-mode+endothelial-mesenchymal+transformation+of+the+cardiac+valve%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Cyclic strain induces dual-mode endothelial-mesenchymal transformation of the cardiac valve.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 108, 19943-19948 (1994).</li>
<li>Steward, R., Cheng, C. M., Ye, J., Bellin, R., LeDuc, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+stretch+and+shear+flow+induced+reorganization+and+recruitment+of+fibronectin+in+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Mechanical stretch and shear flow induced reorganization and recruitment of fibronectin in fibroblasts.</a> Sci Rep. 1, (2011).</li>
<li>Wang, D., Xie, Y., Yuan, B., Xu, J., Gong, P., Jiang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+stretching+device+for+imaging+real-time+molecular+dynamics+of+live+cells+adhering+to+elastic+membranes+on+inverted+microscopes+during+the+entire+process+of+the+stretch%5BTitle%5D)+AND+%22Integr+Biol+%28Camb%29%22%5BJournal%5D)">A stretching device for imaging real-time molecular dynamics of live cells adhering to elastic membranes on inverted microscopes during the entire process of the stretch.</a> Integr Biol (Camb). 2, 288-293 (2010).</li>
<li>Haskett, D., Johnson, G., Zhou, A., Utzinger, U., Van de Geest, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microstructural+and+biomechanical+alterations+of+the+human+aorta+as+a+function+of+age+and+location%5BTitle%5D)+AND+%22Biomech+Model+Mechanobiol%22%5BJournal%5D)">Microstructural and biomechanical alterations of the human aorta as a function of age and location.</a> Biomech Model Mechanobiol. 9, 725-736 (2010).</li>
<li>Duprey, A., Khanafer, K., Schlicht, M., Avril, S., Williams, D., Berguer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+characterisation+of+physiological+and+maximum+elastic+modulus+of+ascending+thoracic+aortic+aneurysms+using+uniaxial+tensile+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Vasc+Endovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">In vitro characterisation of physiological and maximum elastic modulus of ascending thoracic aortic aneurysms using uniaxial tensile testing.</a> Eur J Vasc Endovasc Surg. 39, 700-707 (2010).</li>
<li>Tremblay, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+mechanical+properties+of+materials+used+in+aortic+arch+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">A comparison of mechanical properties of materials used in aortic arch reconstruction.</a> Ann Thorac Surg. 88, 1484-1491 (2009).</li>
<li>Khanafer, K., Duprey, A., Zainal, M., Schlicht, M., Williams, D., Berguer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+the+elastic+modulus+of+ascending+thoracic+aortic+aneurysm+at+different+ranges+of+pressure+using+uniaxial+tensile+testing%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+thoracic+and+cardiovascular+surgery%22%5BJournal%5D)">Determination of the elastic modulus of ascending thoracic aortic aneurysm at different ranges of pressure using uniaxial tensile testing.</a> The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 142, 682-686 (2011).</li>
<li>Van de Geest, J. P., Sacks, M. S., Vorp, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+aneurysm+on+the+biaxial+mechanical+behavior+of+human+abdominal+aorta%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">The effects of aneurysm on the biaxial mechanical behavior of human abdominal aorta.</a> J Biomech. 39, 1324-1334 (2006).</li>
<li>Guolla, L., Bertrand, M., Haase, K., Pelling, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force+transduction+and+strain+dynamics+in+actin+stress+fibres+in+response+to+nanonewton+forces%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Force transduction and strain dynamics in actin stress fibres in response to nanonewton forces.</a> J Cell Sci. 125, 603-613 (2012).</li>
<li>Wang, J. H., Goldschmidt-Clermont, P., Wille, J., Yin, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+of+endothelial+cell+reorientation+in+response+to+cyclic+mechanical+stretching%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Specificity of endothelial cell reorientation in response to cyclic mechanical stretching.</a> J Biomech. 34, 1563-1572 (2001).</li>
<li>Jungbauer, S., Gao, H., Spatz, J. P., Kemkemer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+characteristic+regimes+in+frequency-dependent+dynamic+reorientation+of+fibroblasts+on+cyclically+stretched+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Two characteristic regimes in frequency-dependent dynamic reorientation of fibroblasts on cyclically stretched substrates.</a> Biophys J. 95, 3470-3478 (2008).</li>
<li>Dahl, K. N., Ribeiro, A. J. S., Lammerding, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+shape%2C+mechanics%2C+and+mechanotransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Nuclear shape, mechanics, and mechanotransduction.</a> Circ Res. 102, 1307-1318 (2008).</li>
<li>Shivashankar, G. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosignaling+to+the+cell+nucleus+and+gene+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Biophys%22%5BJournal%5D)">Mechanosignaling to the cell nucleus and gene regulation.</a> Annu Rev Biophys. 40, 361-378 (2011).</li>
<li>Chiquet, M., Gelman, L., Lutz, R., Maier, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+mechanotransduction+to+extracellular+matrix+gene+expression+in+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">From mechanotransduction to extracellular matrix gene expression in fibroblasts.</a> Biochim Biophys Acta. 1793, 911-920 (2009).</li>
<li>Sullivan, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+A-type+lamin+expression+compromises+nuclear+envelope+integrity+leading+to+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Loss of A-type lamin expression compromises nuclear envelope integrity leading to muscular dystrophy.</a> J Cell Biol. 147, 913-920 (1999).</li>
<li>Lammerding, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lamin+A%2FC+deficiency+causes+defective+nuclear+mechanics+and+mechanotransduction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Lamin A/C deficiency causes defective nuclear mechanics and mechanotransduction.</a> J Clin Invest. 113, 370-378 (2004).</li>
<li>Tremblay, D., Andrzejewski, L., Leclerc, A., Pelling, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+and+microtubules+play+distinct+roles+in+governing+the+anisotropic+deformation+of+cell+nuclei+in+response+to+substrate+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Cytoskeleton%22%5BJournal%5D)">Actin and microtubules play distinct roles in governing the anisotropic deformation of cell nuclei in response to substrate strain.</a> Cytoskeleton. , (2013).</li>
<li>Cuerrier, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+over-expression+of+heat+shock+protein+27+attenuates+atherogenesis+and+enhances+plaque+remodeling%3A+a+combined+histological+and+mechanical+assessment+of+aortic+lesions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Chronic over-expression of heat shock protein 27 attenuates atherogenesis and enhances plaque remodeling: a combined histological and mechanical assessment of aortic lesions.</a> PLoS ONE. 8, (2013).</li>
<li>Tremblay, D., Cartier, R., Mongrain, R., Leask, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regional+dependency+of+the+vascular+smooth+muscle+cell+contribution+to+the+mechanical+properties+of+the+pig+ascending+aortic+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Regional dependency of the vascular smooth muscle cell contribution to the mechanical properties of the pig ascending aortic tissue.</a> J Biomech. 43, 2448-2451 (2010).</li>
<li>Barker, A. J., Lanning, C., Shandas, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+hemodynamic+wall+shear+stress+in+patients+with+bicuspid+aortic+valve+using+phase-contrast+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Quantification of hemodynamic wall shear stress in patients with bicuspid aortic valve using phase-contrast MRI.</a> Ann Biomed Eng. 38, 788-800 (2010).</li>
<li>Haga, J. H., Li, Y. S. J., Chien, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+basis+of+the+effects+of+mechanical+stretch+on+vascular+smooth+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Molecular basis of the effects of mechanical stretch on vascular smooth muscle cells.</a> J Biomech. 40, 947-960 (2007).</li>
<li>Frydrychowicz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-resolved+magnetic+resonance+angiography+and+flow-sensitive+4-dimensional+magnetic+resonance+imaging+at+3+Tesla+for+blood+flow+and+wall+shear+stress+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+thoracic+and+cardiovascular+surgery%22%5BJournal%5D)">Time-resolved magnetic resonance angiography and flow-sensitive 4-dimensional magnetic resonance imaging at 3 Tesla for blood flow and wall shear stress analysis.</a> The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 136, 400-407 (2008).</li>
<li>Boccafoschi, F., Mosca, C., Bosetti, M., Cannas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+mechanical+stretching+in+the+activation+and+localization+of+adhesion+proteins+and+related+intracellular+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">The role of mechanical stretching in the activation and localization of adhesion proteins and related intracellular molecules.</a> J Cell Biochem. 112, 1403-1409 (2011).</li>
<li>Yang, G., Crawford, R. C., Wang, J. H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proliferation+and+collagen+production+of+human+patellar+tendon+fibroblasts+in+response+to+cyclic+uniaxial+stretching+in+serum-free+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Proliferation and collagen production of human patellar tendon fibroblasts in response to cyclic uniaxial stretching in serum-free conditions.</a> J Biomech. 37, 1543-1550 (2004).</li>
<li>Goldyn, A. M., Rioja, B. A., Spatz, J. P., Ballestrem, C., Kemkemer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force-induced+cell+polarisation+is+linked+to+RhoA-driven+microtubule-independent+focal-adhesion+sliding%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Force-induced cell polarisation is linked to RhoA-driven microtubule-independent focal-adhesion sliding.</a> J Cell Sci. 122, 3644-3651 (2009).</li>
<li>Heo, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiber+stretch+and+reorientation+modulates+mesenchymal+stem+cell+morphology+and+fibrous+gene+expression+on+oriented+nanofibrous+microenvironments%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Fiber stretch and reorientation modulates mesenchymal stem cell morphology and fibrous gene expression on oriented nanofibrous microenvironments.</a> Ann Biomed Eng. 39, 2780-2790 (2011).</li>
<li>Zdero, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linear+and+torsional+mechanical+characteristics+of+intact+and+reconstructed+scapholunate+ligaments%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech+Eng%22%5BJournal%5D)">Linear and torsional mechanical characteristics of intact and reconstructed scapholunate ligaments.</a> J Biomech Eng. 131, (2009).</li>
</ol>

Yazarlar, hiçbir rakip mali çıkarlarını olmadığını beyan ederim.

Burada sunulan BAXS platformu tek hücre incelemelerden bütün dokulara, mechanobiology çalışmada çeşitli deneyler kolaylaştırır. Buna ek olarak, çok sayıda platformu, mekanik uyarma deneyleri ve çok eksenli gerilme testi için izin veren, son derece esnek ve yapılandırılabilir. Platform ayrıca, fizyolojik koşullar hücre ve dokuların bakımı sağlayan ve germe deneyler sırasında aynı anda mikroskopi için izin verir. Montaj kelepçeleri uygun bir dizi kullanırken, önceki bölümlerde açıklanan iki deney BAXS platformunun çok yön...

Mekanik mikro çevre dokuların gelişimi ve homeostazında ve ayrıca hastalık 1-6 derin bir etkiye sahip çoğalma, göç ve farklılaşma gibi birçok hücre fonksiyonları, önemli bir rol oynar. Yıllar geçtikçe, deneysel araçları çok sayıda mekanik hücreleri veya dokuları uyarmak ve temel mechanobiology anlayışımızı artırarak ve hastalıkların 6-17 başlamasını ve ilerlemesini okuyan amacı ile biyolojik dokuların mekanik özelliklerini ölçmek için kullanılır olmuştur. Ancak, sık sık belirli bir çalışmanın hedeflerine ulaşmak için birçok farklı deneysel cihazlarda güvenmek gerekir. Bu makale, mekanik özellikleri ve mekanik kuvvetler bütün doku uzunluk ölçekleri ile alt hücresel biyoloji oynadığı rolü araştırmak çalışmalar için izin veren bir tek, çok fonksiyonlu, iki eksenli germe (BAXS) platformu sunuyor. BAXS platformu quantificatio sağlar sadeceAyrıca, izole edilmiş dokular, mekanik özellikleri, ancak bu n in vivo meydana gelen germe yanıtlarını anlamak için canlı hücreler için, basit, karmaşık ve dinamik gerilme alanları uygulama yeteneğini kolaylaştırmaktadır. BAXS platform aynı zamanda hücre ve dokulara mekanik test ve tedirginlikler sırasında canlı hücre mikroskobu gerçekleştirmek için kapasitesini korur. BAXS platformu hücresel seviyede deformasyon alt-tabaka etkisini araştırmak ve biyolojik dokularda (Şekil 1A) üzerinde gerilme testleri yapmak için kullanılabilir, özel olarak yapılmış bir cihaz. Alüminyum bir ısıtıcı, bir standart 10-cm Petri için uygun ve bir sıcaklık kontrol ve kapton ısıtıcılar (Şekil 1 B) kullanarak, 37 ° C&#39;de herhangi bir fizyolojik çözüm sağlamak için imal edilmiştir. Bu BAXS platformu, bir ters faz kontrast ve / veya floresan mikroskop üzerine entegre ve eş zamanlı olarak görüntüleme (Şekil 1C) sağlar edilebilir.Kısaca, BAXS platformu hareketli parçalar birbirine dik iki eksen (Şekil 1D) boyunca yönlendirilmiş olan minyatür doğrusal hareket rulman slaytlar üzerine monte edilir ki, dört ses bobini lineer motorlar oluşur. Doğrusal bir konumlandırma aşamasında (Şekil 1E) kullanılacak olan bir sıkma sistemi, dikey hareketine izin vermek üzere dört motorlar her birine monte edilir. Her bir motorun konumu 500 nm &#39;lik bir çözünürlüğe (Şekil 1F) sahip bir optik kodlayıcı tarafından izlenir. Dört motorları bağımsız hareket komutlarını (Şekil 1G) yürütmek için optik enkoder geri bildirim kullanan bir hareket kontrolörü ile kontrol edilir. A LabVIEW arabirimi hücre veya doku numunelerinin, tamamen özelleştirilebilir statik ve dinamik deformasyon üretmek için yer değiştirme büyüklüğü, hız ve her motorun hızlandırılması üzerinde tam kontrol sağlar. Hücrelerde bir deformasyona neden için kullanılan teknik sadece allowin ile elde edilmektedirg kadar hücre sıkı bir şekilde, esnek ve şeffaf bir alt-tabakaya bağlı ve daha sonra BAXS platformun dört motorlar kullanılarak bu alt-tabakanın germe. BAXS platformu ses bobini motorlarda tabakayı takmak için kelepçeleri herhangi bir özel tasarlanmış set montaj sağlar. Bu amaçla, polidimetilsiloksan (PDMS) yapılmış bir esnek ve saydam alt-tabaka, (Şekil 2A-C ve Şekil 3) bağlı olabilir için kelepçeler bir dizi tasarlanmıştır. Kelepçeler fizyolojik çözeltiler maruz gibi, tüm parçaları sterilizasyon sağlamak için paslanmaz çelikten işlendi. Bu kelepçeler, dikkatli bir şekilde (Şekil 2B) germe esnasında alt-tabaka üzerindeki stresi en aza indirirken, resim kalitesini arttırmak için mikroskop amacı mümkün olduğu kadar yakın bir alt-tabakanın getirmek için tasarlanmıştır. Aynı BAXS platform da ADAp ile kelepçeler arasında uygun bir dizi ile, küçük doku örneklerinin sertliğini ölçmek için kullanılabilirted doku örnekleri ve kuvvetleri izlemek için bir yük hücresi için destekler. Çeşitli yaklaşımlar BAXS platformu motorlar için bir doku monte alınabilir; bu durumda, paslanmaz çelik böcek minutiens pim çekme testleri (Şekil 4A-B) gerçekleştirmek için vasküler dokuların açıklıktan kanca. Seçenek olarak ise, bir doğal açılmaksızın kalın dokuların doku kenarları ya da ses bobini motorlara bağlı ya da biyolojik yapıştırıcı ile küçük cam slaytlar yapıştırılmış ve kelepçeli motorlara bağlı kelepçeli konumda tutulabilir. Gerilme gerçekleştirmek için minyatür yük hücresi gereklidir test ve kolayca BAXS platformu motorların üzerine kurulmuştur ve bir germe döngüsü (Şekil 4C) sırasında doku üzerine etki eden kuvveti ölçmek için kullanılabilir. BAXS platformu dört motor oluşur gibi, ikinci bir yük hücresinin giriş bir iki dik doğrultuları boyunca çekme testi gerçekleştirmek için olanak sağlar. Bu özellik, bir quantif sağlar:y, aynı deney sırasında iki dikey yönde boyunca tek bir doku mekanik sertliği. Önemli olarak, tüm yapılandırmalarında, hücreler ya da ilgi doku numuneleri her zaman kullanıcı tarafından erişilebilen bir sıcaklık kontrollü banyosu içinde muhafaza edilmiştir. Bu yetenek, numunenin zamansal tepkisini incelemek amacıyla germe sırasında örnek farmakolojik maddelerin katılmasına olanak sağlamaktadır. Ters mikroskop optik eksen engelsiz kalır Ayrıca, mikroskopi bütün biçimlerinin hala kullanıcı için kullanılabilir. BAXS platformun dört motorlar bağımsız Son olarak, ilgi alanındaki örnek için çok yapılandırılabilir gerilme alanları uygulamak mümkündür. In vivo hücre ve dokuları maruz kompleks ve farklı olarak bu platformda daha uygun bir şekilde taklit olabilir germe anizotropik Geleneksel tek eksenli germe platformu 7,13,15,18,19 için. Ayrıca, fiziksel özelliklerigerilme alanının bir deney sırasında anında değiştirilebilir. Bu yetenekleri kullanıcı bir zamansal son derece karmaşık, anizotropik çok sayıda, ve mekansal olarak değişen gerilme alanları hücresel ve doku düzeyinde yanıt incelemek için izin verir. Bu makalede, avantajları ve sınırlamaları BAXS platformun yanı sıra tasarımı, çalışma prensiplerini ve tek bir hücre ve doku bütün deneyler için, deney detaylarını açıklar. <img alt="Şekil 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51454/51454fig1highres.jpg" width="500" /> BAXS platformun Şekil 1.. Bakış. Dört ses bobini motorlar platformu gerçekleştirmek için canlı ters bir mikroskop üzerine monte edilebilir) 37 ° C C&#39;de hücre ve dokuları korumak için kullanılan Petri ısıtıcının. B) Ayrıntılı resim gösteren BAXS platformu A) Üst görünüm germe deneyler sırasında hücre görüntüleme.D) ses bobini motorun detaylı resmini; bağlama sistemlerinin hareket kontrol. G) Detaylı resim için motorun gerçek zamanlı konumunu sağlayan optik encoder. F) Ayrıntılı resim dikey değiştirmesine izin lineer konumlandırma aşamasında platformunun hareketli parçası. e) Ayrıntılı resim Dört ses bobini motorlar dört optik enkoder girişleri ve güç çıkışları gösteren hareket denetleyicisi. <img alt="Şekil 2," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51454/51454fig2highres.jpg" width="500" /> Şekil 2,. Hücre germe deneyler için bağlama sistemi. Substrat olarak tutma İKLER ile kelepçenin silindirik kısmı etrafında sarılır. ° C) germe için ses bobini motorlara PDMS tabakayı bağlamak için kullanılan kelepçelerin ayrıntılarını gösteren, AB) Resimlerdees üstündeki oluğa oturan. Sonra tabaka üst oluğa özelliklerini demirleme / tabakayı itin vidalarını kullanılarak sabitlenir. Kelepçeler yerinde tabakayı tutan BAXS platformu D) İllüstrasyon. Ilave ona bağlı hücreler sadece bir kapak ve kayma mikroskop objektif üzerinde oturan substratın ayrıntılı bir görünüşünü gösterir. <img alt="Şekil 3," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51454/51454fig3highres.jpg" width="500" /> Şekil 3. Membran ve bağlama sisteminin malzemelerin Bill. Asıl parçaların boyutlarını gösteren resimler hücre germe deneyler gerçekleştirmek için çift eksenli platforma entegre. <img alt="Şekil 4," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51454/51454fig4highres.jpg" width="500" /> Şekil 4,. ExKüçük kalibreli damarların sertliği değerlendirilmesi, 1 mm çaplı fare aort deformasyona neden için kullanılan bir sıkma sistemi. AB) Detaylı resim için bir sıkıştırma sistemi geniş. Paslanmaz çelik pimler dikkatle damar hem de iğneler üzerinde kelepçeler gemi ve sabit motor ve sol kelepçe arasında bağlı bir yük hücresi tutan BAXS platformun. C) gösteren örnek kaymasına izin vermek için açık bir üçgen halinde şekillendirilir edilmiştir. Ilave pimler üzerine monte teknenin ayrıntılı bir üst görünüşünü gösterir.

<table><tbody><tr><td>PDMS</td><td>Ellsworth Yapıştırıcılar</td><td>184 SIL ELAST KİTİ 0.5KG</td><td>Bu protokolde kullanılan tabanın çapraz bağlayıcıya oranı 20:1'dir. Tozun cihazınızı kirletmesini önlemek için laminer bir başlıkta karıştırın&nbsp;</td></tr><tr><td>FluoSpheres floresan mikroküreler</td><td>Invitrogen</td><td>F8810</td><td>Işıktan uzak tutunuz.</td></tr><tr><td>Doğrusal ses bobini</td><td>Moticont</td><td>LVCM-051-051-01</td><td>Motro iki parça halinde gelir (mıknatıs ve bobin). İşlevsel olması için bilyalı rulman sistemi üzerine monte edilmesi gerekir.</td></tr><tr><td>Bilyalı kızak</td><td>Edmund Optics</td><td>NT37-360</td><td>Minyatür ve Küçük Doğrusal Hareket Bilyalı Kızaklar</td></tr><tr><td>Doğrusal konumlandırma aşaması</td><td>Edmund Optics</td><td>38-960</td><td>Merkez Sürücü 1.25 "Kare Doğrusal Öteleme Aşamaları</td></tr><tr><td>Optik kodlayıcı</td><td>GSI microE sistemleri</td><td>Mercury II 1600S - 0.5um çözünürlük</td><td>yansıtıcı artımlı kodlayıcı.</td></tr><tr><td>Hareket kontrolörü</td><td>Galil</td><td>DMC-2143 (DIN) -DC48 AMP-20440 ile</td><td>4 eksenli kontrolör 4 eksenli amplifikatör</td></tr><tr><td>Yük hücresi</td><td>Honeywell</td><td>31</td><td>0-150 g aralığında düşük minyatür yük hücresi</td></tr><tr><td>Böcek minutiens pimleri (0,20 mm)</td> <td>Pin Service Austerlitz Böcek pimleri</td><td></td><td>Açılmış üçgen şeklinde bükülmüş paslanmaz çelik pimler</td></tr><tr><td>SU-8 2050</td><td>Mikro Kimya</td><td>SU-8 2050</td><td>Kalıcı epoksi negatif fotorezist. Isı ve ışıktan uzak tutun</td></tr><tr><td>Hava-plazma tedavi sistemi</td><td>Glowresearch</td><td></td><td>Autoglow Oksijen Plazma Sistemi</td></tr><tr><td>Sıçan kuyruğu kollajen</td><td>Invitrogen</td><td>A10483-01</td><td>Kollajen I, Sıçan Kuyruğu 5 mg/ml</td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Invitrogen</td><td>R37605</td><td>DNA'ya özgü floresan boya. Buzdolabında saklayın.</td></tr><tr><td>Kapton (Poliimid Film) İzoleli Esnek Isıtıcılar</td><td>omega.ca</td><td>KHLV-0504/(10)-P</td><td>28 V esnek ısıtıcılar; 24 V</td></tr><tr><td>1/16 DIN Otomatik Ayarlı Sıcaklık ve Proses Kontrol Cihazları</td><td>omega.ca</td><td>CN63200-R1-LV</td><td>Sıcaklık kontrol cihazı ile tedarik edilebilir; 24 V besleme.</td></tr><tr><td>DMEM kültür ortamı</td><td>Hyclone</td><td>SH3024301</td><td>Dulbecco' s Modifiye 30 Eagle Medium. 4 & # 176'da tutun; C</td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin</td><td>Hidroklon</td><td>SV30010</td><td>Stokları donmuş halde tutun. Çalışma çözümünü 4 &# 176;C'de tutun.</td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu (FBS)</td><td>Hiklon</td><td>SH3039603C</td><td>Donmuş halde saklayın.</td></tr><tr><td>Tripsin% 0.05</td> <td>Hyclone</td><td>SH30236.02</td><td>Donmuş halde saklayın. Alt kültivasyon için hücre bağlantı proteinlerinin sindirimi</td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Wisent Inc</td><td>330-050-EL</td><td>HEPES-tamponlu tuz çözeltisi &nbsp;</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP358-1</td><td>HEPES tamponlu tuz çözeltisi / Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP366-500</td><td>HEPES tamponlu tuz çözeltisi / Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Fisher Scientific</td><td>M65-500</td><td>HEPES tamponlu tuz çözeltisi / Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Fisher Scientific</td><td>C614-500</td><td>HEPES tamponlu tuz çözeltisi / Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>Dekstroz</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP220-1</td><td>HEPES tamponlu tuz çözeltisi / Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP328-1</td><td>Krebs fizyolojik çözümü</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP362-500</td><td>Krebs fizyolojik çözeltisi</td></tr><tr><td>Karbojen% 95 O2 / 5% CO2</td><td>Lindle</td><td>DIN:02154749</td><td>Krebs fizyolojik çözelti oksijenasyonu</td></tr><tr><td>Nokodazol</td><td>Sigma</td><td>M1404</td><td>Mikrotübüller depolimerizasyon ajanı</td></tr><tr><td>Cytochalasin-D</td><td>Sigma</td><td>C8273</td><td>Aktin filamentleri depolimerizasyon ajanı</td></tr><tr><td>Anti-&alfa; - SMA-FITC</td><td>Sigma</td><td>F3777</td><td>Düz kas hücrelerinin içeriğini boyamak ve ölçmek için kullanılır</td></tr><tr><td>Picrosirius kırmızı leke</td><td>Fluka</td><td>43665</td><td>Kollajen içeriğini boyamak ve ölçmek için kullanılır</td></tr></tbody></table>

hücre ve doku mechanobiology applications a novel germe platformu

A Novel Stretching Platform for Applications in Cell and Tissue Mechanobiology

Hücre ve dokulara mekanik kuvvetlerin uygulama veya buna izin Araçları biyolojik dokuların mekanik özellikleri temel mekanobiyolojisinin anlaşılmasına önemli ölçüde katkıda bulunmuştur ölçmek olabilir. Bu teknikler yaygın olarak çeşitli hastalıkların başlangıcı ve ilerlemesi ağır mekanik ipuçları tarafından nasıl etkilendiğini göstermek için kullanılır olmuştur. Bu makalede, bir mekanik olarak hücreleri uyarmak ya da dokuların mekanik sertliğini ölçmek ya çok fonksiyonlu bir çift eksenli germe (BAXS) platformu sunmaktadır. BAXS platformu bağımsız olarak kontrol edilebilir, dört ses bobini motorundan oluşur. Tek hücre, bir karmaşık, dinamik ve mekansal olarak değişen gerilme alanları hücreleri ortaya çıkarmak için izin motorlara bağlı esnek bir alt-tabaka üzerinde kültürlenebilir. Tersine, bir güç yük hücresi dahil edilmesi ile, aynı zamanda, bir deformasyon döngüsüne maruz olduğu gibi primer dokularının mekanik özelliklerini ölçmek olabilir.Her iki durumda da, flanş uygun bir dizi tasarlanmış olması gerekir ve sıkı bir şekilde esnek substrat veya ilgilenilen doku tutmak için BAXS platformu motorlara monte edilmiştir. BAXS Platform germe deney sırasında numunenin yapısal veya biyokimyasal tepki incelemek için aynı anda iletilen ışık ve / veya flüoresan görüntüleme gerçekleştirmek için bir ters mikroskop üzerine monte edilebilir. Bu makalede, BAXS platformun tasarım ve kullanım deneysel ayrıntıları temin etmekte ve tek hücre ve bütün doku çalışmaları için sonuçlar sunulmaktadır. BAXS platformu gerginlik alt tabakaya ve izole edilmiş fare aorta sertliğini ölçmek için yanıt olarak tek bir fare miyoblast hücrelerinin çekirdeklerin içinde deformasyonunu ölçmek için kullanılmıştır. BAXS platformu alt-hücre, hücre ve doku bütün seviyelerde yeni mechanobiological anlayış sağlamak için çeşitli optik mikroskop ile kombine edilebilir çok yönlü bir araçtır.

Esneme Hücre BAXS platformu tek bir fare miyoblast hücrelerinde çekirdeğin mekanik yanıtını (C2C12)% 25 bir alt-tabaka deformasyona maruz araştırmak için kullanıldı. Miyoblast hücreleri, kas dokusunda bulunan ve sürekli olarak, in vivo olarak, mekanik gerilme ve sıkıştırma maruz kalmaktadır. , Hücre çekirdeğinin şekli ve mekanik özellikleri gen ifadesi ve transkripsiyon aktivitesi 20,21 düzenlenmesinde ve gelişimsel bozukluklar ve örneğin Hutchinson-Gilfo...

Bu makalede kompleks anizotropik çift eksenli mekanik deformasyona karşı tek bir hücre yanıtları araştırmak ve biyolojik dokuların mekanik özelliklerini ölçmek için kullanılabilen yeni bir germe platformu sunmak.

Hücre ve Doku mechanobiology Applications A Novel Germe Platformu

Tools that allow the application of mechanical forces to cells and tissues or that can quantify the mechanical properties of biological tissues have ...

Bu prosedürün genel amacı, tek hücrelerin karmaşık mekanik deformasyonlara verdiği yanıtları incelemek ve biyolojik dokuların mekanik özelliklerini nicelleştirmek için kullanılabilecek izotropik bir germe platformunun yeniliğini göstermektir. Bu işlem, öncelikle esnek membranın üretilmesi ve bu membranın bir dizi klempe monte edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, C two C 12 hücrelerinin membran üzerinde gece boyunca kültüre edilmesi ve ertesi gün klempelerin germe platformuna monte edilmesidir.Ardından, ikinci bir deney setinde, bir fare modelinden torasik aort dokuları alınır ve tüm bağ dokulardan temizlenir. Daha sonra aort dokusu, farklı bir klempler seti kullanılarak germe platformuna monte edilir. Son olarak, ters mikroskop kullanılarak nicelendirilebilen iki ortogonal yön boyunca hücrelerde deformasyon oluşturmak için germe platformu kullanılır.Alternatif olarak, doku sertliğini ölçmek için germe cihazına bir kuvvet transduseri entegre edilir. Bu tekniğin, tek eksenli veya çift eksenli hücre germe gibi mevcut tekniklere göre temel avantajı, hücrelerin tutunduğu şeffaf bir membran üzerinde iki dik yöndeki deformasyonu bağımsız olarak kontrol etmemize olanak tanıması ve böylece canlı hücre görüntülemesine imkan vermesidir. Mikroskopi ayrıca farklı bir kıskaç setinin dikkatli bir tasarımını gerektirir.Platforma dört dizimli bir kullanıcının entegrasyonu, biyolojik dokuların mekanik özelliklerinin kantifikasyonu için 10 hücreli testler gerçekleştirmemize olanak tanır. Bu video, hücresel düzeyde substrat deformasyonunun etkisini incelemek ve biyolojik dokular üzerinde çekme testleri yapmak için kullanılabilecek özel yapım bir düzenek olan Biaxial Stretching platformunu sunmaktadır. Biaxial stretching platformunun tasarımı ve özellikleri beraberindeki makalede detaylandırılmıştır; tek hücrelerin mekanik deformasyon etkisini incelemek için öncelikle hücrelerin yapışabileceği esnek ve şeffaf bir substrat üretilmelidir.Bu prosedüre başlamak için, 1,5 mililitrelik bir mikro santrifüj tüpüne 500 µL floresan mikroküre çözeltisi pipetleyin ve 16.200 ×g'de 10 dakika boyunca santrifüjleyin, süpernatantı atın ve 500 µL izopropanol ekleyip ardından beş dakika boyunca vorteksleyin. Büyük partikül agregatlarının çökelmesine izin vermek için tüpü karanlıkta gece boyunca kenara koyun ve ertesi sabah süpernatantı dikkatlice temiz bir mikro santrifüj tüpüne aktarın. Boncuk çözeltisi sonraki üç gün boyunca çökelmeye devam edeceğinden, bu çözelti beşten fazla substrat üretmek için kullanılabilir.Resus'un pellet'i askıya almasını önlemek önemlidir. PDMS kitiyle birlikte verilen kürleme ajanının 0,5 gramını 1,5 mililitrelik bir mikro santrifüj tüpüne boşaltın. 15 mikrolitre floresan boncuk ekleyin ve bir dakika boyunca vorteksleyin.Toplamda 90 µL boncuk eklemek için bu işlemi beş kez daha tekrarlayıp kenara ayırın. 10 g PDMS tartın, 0,5 g kürleme maddesi ekleyin, floresan boncuklarla destekleyin ve en az 12 dakika boyunca karıştırın. Ardından, transfer pipetini kullanarak boncuklu PDMS'den dört mg'ı, standart fotolitografi teknikleri kullanılarak önceden üretilmiş bir SUH 2050 haç şekilli kalıba aktarın.Kalıbın yüksekliği 320 µm ve alanı 13,4 cm²'dir; 428 µL veya 440 mg PDMS alabilir; PDMS'yi 80 °C'de iki saat boyunca kürleyin. Kürleme işleminden sonra substratı kalıptan soyun; substrat, mekanik özelliklerinde belirgin bir değişiklik göstermeden oda sıcaklığında bir Petri kabında iki hafta boyunca saklanabilir. PDMS damlacıklarını, nihai çapları yaklaşık 4 mm olacak şekilde bir Petri kabına dökün ve ters çevrilmiş halde 80 °C'de iki saat boyunca kürleyin; kürleme işlemi sırasında damlaların yassılaşmasını önlemek için kap ters konumda tutulmalıdır.Bu sabitleme özellikleri bir Petri kabında haftalarca saklanabilir. Substratı ve sekiz sabitleme özelliğini hava plazması ile işleyin; membranı klemplere monte etmek için, substrat üzerindeki kare şeklindeki oyuğun dört milimetre uzağındaki substratın her iki ucuna özellikleri bağlayın. Substratın her iki ucunu klemplerin oluklu silindirik kısmına sarın ve üstteki iki set vidası ile yerine sabitleyin.Dört klempi klemp tutucuya vidalayın. Ardından, substrat ile klemplerin oluklu kısmı arasındaki ara yüze PDMS dökün. Kürlenmemiş PDMS'i, 1,5 milimetrelik bir alyen anahtarı kullanarak oluklu silindirik kısım boyunca yayın.Kılcal hareketle tamamen dolana kadar oluklara PDMS dökün ve membrana hücre ekimi yapmadan önce düzeneği 80 °C'de iki saat boyunca kürleyin. Hava plazması. Substratı sterilize etmek ve kollajen kaplamaya olanak sağlamak için fonksiyonelleştirmek amacıyla tüm düzeneğe işlem uygulayın.Hücrelerin ekileceği substrat alanını, oda sıcaklığında bir saat boyunca, mililitresinde 16 mikrogram sıçan kuyruk kolajeni bulunan 0,02 molar asetik asidin bir mililitresi ile fonksiyonelleştirin. Hedeflenen nihai kolajen yoğunluğu santimetrekare başına beş mikrogramdır. Bir saat sonra, substratı fosfat tamponuyla üç kez durulayın ve oda sıcaklığında en az 10 dakika kurumaya bırakın. %10 fetal bovine serum ve %1 penisilin takviyeli 40 mikrolitre kültür medyumu ekleyin.Sübkratın orta kısmında, bir santimetrekarelik alanı kaplayacak şekilde 2000 hücre içeren Streptomisin. Bu örnekte, hücre yoğunluğu santimetrekare başına 20 hücredir. Ancak, hücre yoğunluğu deneysel gereksinimlere göre değiştirilebilir.Tüm düzeneği, hücreler içeren kültür ortamı damlasının bulunduğu substrat kısmı yukarı bakacak şekilde standart bir hücre kültürü inkübatörüne yerleştirin. Hücrelerin substrata sıkıca tutunmasını sağlamak ve buharlaşmayı önlemek için düzenek, substrat kısmı yukarı bakacak şekilde en az üç saat boyunca tutulmalıdır. Substrat üzerindeki damlaya 30 µL sıcak kültür ortamı eklenir.Üç saatten sonra her 45 dakikada bir, substratı tamamen daldırmak için tüm düzeneği taze kültür ortamı ile doldurulmuş bir Petri kabına ters çevirin ve hücrelerin çoğalması için gece boyu inkübe edin. Ertesi gün, düzeneği ters faz kontrastlı veya floresan mikroskoba yerleştirin. Kelepçeli substrat düzeneğini iki eksenli germe platformuna monte edin ve Petri kabı ısıtıcısının içindeki Petri kabını taze hazırlanmış HEPs tamponlu tuz çözeltisi ile doldurun.Bu fizyolojik solüsyon, normal doku kan ortamını taklit ederek hücrelerin mikroskop tablası üzerinde korunmasını sağlamak için kullanılır. Aynı biaksiyel germe platformu, küçük doku örneklerinin sertliğini nicelleştirmek için de kullanılabilir. Bu gösterimde izole fare aortları kullanılacaktır.Dokunun zarar görme riskini en aza indirmek için ötanazi uygulanmış fareden diyaframı, göğüs kafesini ve akciğer loblarını çıkarın. Kalbi aortaya bağlı tutun ve damara doğrudan dokunmaktan kaçının ancak kalbi manipüle ederek işlem yapın.Dokunun iç yapısını bozulmadan korumak için damar ile omurga arasını nazikçe keserek kalbi, aort kökünü ve torasik aortayı çıkarın. İnsizyon sırasında damarda herhangi bir uzamaya yol açmamaya dikkat edin. Kalbi ve aortayı, günlük olarak hazırlanan ve deneyler sırasında 37 °C'de tutulan Krebs çözeltisine derhal daldırın ve burada muhafaza edin.Cerrahi bir diseksiyon mikroskobu altında çalışarak, kan pıhtılarını temizlemek için aortu kesin ve Krebs çözeltisi ile dikkatlice yıkayın. Mikro makas ve pensler kullanarak bağ dokusunu temizleyin. Damarın tüm uzunluğunu korumak ve damar yönünü belirlemek için aort kökünü kullanmak önemlidir.Damarın sertliğini belirlemek için boş durumdaki damar boyutlarının bilinmesi gerekir. Yaklaşık iki milimetre uzunluğunda bir aort halkası kesin ve kalibre edilmiş bir mikroskop ayarı kullanarak uzunluğunu hassas bir şekilde ölçün. Bu segmenti Kreb çözeltisi içinde kenara ayırın.Ardından, iki milimetrelik segment çıkarıldıktan sonra aorttan kalan kısımlardan iki küçük aort halkası kesin. Bir halkayı iki milimetrelik segmentin öncesindeki aort kısmından, diğer halkayı ise iki milimetrelik segmentin sonrasındaki aort kısmından alın. Her iki aort halkasını, lümen kısmı yukarı bakacak şekilde bir mikroskop lamı üzerine yerleştirin ve kalibre edilmiş bir mikroskop ayarı kullanarak duvar kalınlığını ölçün.Aort duvar kalınlığı bu iki halka kullanılarak ölçülür ve ortalaması alınır. Biaxial germe platformundaki Petri kabını Krebs solüsyonu ile doldurun ve iki milimetrelik aorta halka segmentini çekme pinlerine yerleştirin. Bu protokolde, Biaxial germe platformu, %25 yer değiştirme deformasyonuna maruz kalan tekil fare miyoblast hücrelerindeki çekirdeğin mekanik yanıtını incelemek için kullanılmıştır.Standart ve saf tek eksenli germe işlemleri sonucunda elde edilen ilişkiler, bu temsilci sonuçlarda gösterilmektedir. Floresan boncuklar videonun ilk karesinde manuel olarak seçilir ve yatay ile dikey yönlerde maksimum germe miktarına ulaşılana kadar kareden kareye takip edilir. Bir MATLAB betiği, her kare için yeşil gerinim tensörü bileşenlerini otomatik olarak hesaplar ve motor yer değiştirmesine bağlı olarak gerinim kalibrasyon eğrisi oluşturur.Bu grafiklerde mavi ve kırmızı çizgiler, sırasıyla yeşil gerinmiş katmanın yatay ve dikey yönlerdeki bileşenlerine karşılık gelmektedir. Bu sonuçlar, Biaxial germe platformunun substratta iki dik yön boyunca deformasyon oluşturma kabiliyetlerini göstermektedir. Standart tek eksenli veya EŞ Biaxial gerinim alanlarının yanı sıra, biaxial germe platformu substratta karmaşık gerinim alanları da oluşturabilir.Panel G, aynı substratın x ekseni boyunca dört milimetre ve kırmızıyla belirtilen y ekseni boyunca 1,5 milimetre hafifçe gerilmesinin, substratta bası deformasyonu olmayan saf bir tek eksenli alan oluşturduğunu göstermektedir. Panel H, substratın dikey eksen boyunca uçları sabitlendiğinde, x ekseni boyunca 3,5 milimetre gerilmesinin %25'lik bir deformasyon ve kırmızıyla belirtilen %7'lik bir bası deformasyonu oluşturduğunu göstermektedir. Germe işlemi sırasında canlı hücre mikroskopi görüntülemesi yapabilme özelliği sayesinde, çekirdekler DNA'ya bağlanan canlı hücre floresan boyası ile boyanmış ve ardından burada gösterildiği gibi her bir dik germe ekseni boyunca %25 oranında gerilmiştir; her germe döngüsü fazı arasında, deforme olmamış ve deforme olmuş çekirdeğin kontrast görüntüleri ile epi-floresan görüntüleri elde edilmiştir. Deforme olmamış durumdaki ve çekirdeğin majör ve minör eksenleri boyunca sırayla gerildiği durumlardaki majör ve minör nükleer eksen uzunlukları bir ImageJ eklentisi kullanılarak belirlenmiş ve uzunluktaki bağıl değişimi hesaplamak için kullanılmıştır.Bu sütun grafiğindeki her bir eksen boyunca, X veya ana eksen maviyle, y veya ikincil eksen ise kırmızıyla gösterilmiştir. Çekirdeğin deforme olabilirliği, ana eksenine kıyasla ikincil ekseni boyunca önemli ölçüde daha yüksek bir deforme olabilirliği sergileyerek mekanik bir anizotropi gösterir. Aktin filamentlerinin veya mikrotübüllerin sırasıyla cyto D ve neol kullanılarak seçici olarak depolimerize edilmesi yoluyla, aktin ve mikrotübül sitoskeletinin nükleer deforme olabilirliğinin düzenlenmesindeki rolü incelenmiştir. Aktin filamentlerinin veya mikrotübüllerin depolimerize edilmesinin, çekirdeğin anizotropik deforme olabilirliğinde kayba yol açtığı saptanmıştır.Bu sonuçlar, sitoskeletal bileşenlerin kuvvetleri substrattan çekirdeğe ilettiği ve aynı zamanda çekirdeğin doğal mekanik davranışının korunması için gerekli olduğu bulgularını desteklemektedir. Deformasyon sırasında, ısı şok proteini 27 veya HP 27'nin kronik aşırı ifadesinin damar sertliği HSP aşırı ifadesi üzerindeki etkisini değerlendirmek için biaksiyal germe platformu da kullanılmıştır. Ateroskleroz eğilimli bir fare modelinde, APOE homozigot negatifi, intimal düz kas hücrelerini ve kolajen içeriğini artırarak ateroskleroz lezyonlarının histolojik kompozisyonunu değiştirir.Bu histolojik yeniden şekillenmenin damar mekanik özellikleri üzerindeki etkisini belirlemek için, aort sertliğini ölçmek amacıyla germe platformu kullanılmıştır. Bu grafik, aort damarının gerilmesiyle elde edilen tipik bir stres-gerinim eğrisini göstermektedir; sertlik ise %30 gerinimde hesaplanmıştır. Sertlik, eğriye kırmızı çizgi ile belirtilen teğetin eğimidir.HSP 27 aşırı ekspresyonu olan farelerin aort segmentlerinin sertliğinin, kontrol fare modeline kıyasla %41 oranında anlamlı düzeyde arttığı bulunmuştur. Mekanik değerlendirmenin damar ve plak histolojisi ile birleştirilmesi, HSP 27 aşırı ekspresyonunun artmış damar sertliği ve kolajen düz kas hücresi içeriği ile karakterize olduğunu göstermiştir. Bu sonuçlar, HSP 27'nin aterosklerotik lezyonların stabilitesini potansiyel olarak artırabileceğini ve dolayısıyla gelişimden sonra plak rüptür riskini azaltabileceğini düşündürmektedir.Bu teknik, biyomühendislik alanındaki araştırmacıların mekanik biyoloji uygulamaları için hücrelerin karmaşık ve izotropik mekanik deformasyona verdiği yanıtı keşfetmelerine, ayrıca hastalıklardaki biyolojik doku mekaniğini izlemelerine yeni bir yol sunmaktadır.

a-novel-stretching-platform-for-applications-cell-tissue

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu protokolde, teknolojinin dayandığı dikey yerinden mesajların microactuator dizi imalat, ve nasıl bu temel teknoloji, yüksek verimli mekanik dinamik hücre kültürü, hem de iki boyutlu ve üç boyutlu kültür yapmak için değiştirilebilir göstermektedir paradigmalar.

Mekanik Dinamik Hücre Kültürü için Microfabricated platformlar

Canlı hücrelerdeki mekanik zorlanmaya gerçek zamanlı tepkilerin ölçülmesine izin vermek için özel bir motor tahrikli mekanik aktüatör kullanılarak yeni bir görüntüleme protokolü geliştirilmiştir. Mekanobiyoloji ile ilgili olarak, sistem konfokal veya atomik kuvvet mikroskobu ile neredeyse gerçek zamanlı görüntülemeye izin verirken %20'ye kadar suşlar uygulayabilir.

Mekanik Stretch sırasında Canlı Hücre Görüntüleme

Hücre farklılaşması, iki matris bileşimi ve substrat malzeme özellikleri de dahil olmak üzere mikro-çevresel faktörlerin, bir ana bilgisayar tarafından kontrol edilir. Biz burada hücre farklılaşması ve microenvironmental bağlamında bir fonksiyonu olarak biyomekanik hücre substrat etkileşimleri hem değerlendirmek için çekiş kuvvet mikroskobu ile birlikte hücre mikrodiziler kullanan bir tekniği açıklar.

Hücre farklılaşması ve Çekiş Kuvvetleri Korelatif Analizi için Yüksek verim Hücre Mikroarray Platformu

Burada, connexin 43 arasındaki boşluk kavşağını bozacak ve bunun endotel biyomekaniği üzerindeki etkisini çekişler ve hücreler arası gerilimlerin gözlemi yoluyla ölçmek için mekanik tabanlı bir protokol salıyoruz.

Connexin 43 Yapısal Bozulma ile Perturbing Endotel Biyomekanik

Sunulan yöntem, canlı konfokal mikroskopiye izin verirken silikon kauçuğun içine gömülü 3D yumuşak hidrojellerin tek eksenli gerilmesini içerir. Dış ve iç hidrojel suşlarının karakterizasyonu ve fiber hizalaması gösterilmiştir. Geliştirilen cihaz ve protokol, hücrelerin çeşitli gerinim rejimlerine tepkisini değerlendirebilir.

Canlı Mikroskopi Görüntüleme Altında 3D Hidrojellerin Kontrollü Suşu

Bu çalışma, sitoplazmaya verilen manyetik mikroboncuklar yoluyla hücre çekirdeğine doğrudan mekanik kuvvet uygulamak ve eşzamanlı canlı hücre floresan görüntülemesi yapmak için yeni bir protokol sunmaktadır.

Çekirdek Mekanobiyolojisini Incelemek için 3D Manyetik Kuvvet Aktüatörü ve Çok Fonksiyonlu Floresan Görüntülemeyi Birleştirmek

Burada sunulan, mekano-düğüm-gözenek algılama (mekano-NPS) adı verilen elektronik tabanlı bir mikroakışkan platform kullanarak tek hücreleri mekanik olarak fenotiplemek için bir yöntemdir. Bu platform, hücrelerin hem elastik hem de viskoz biyofiziksel özelliklerini ölçerken 1-10 hücre / s'nin ılımlı verimini korur.

Mekano-Düğüm-Gözenek Algılama: Çok Parametreli Tek Hücreli Viskoelastik Ölçümler için Hızlı, Etiketsiz Bir Platform

Burada, pnömatik olarak çalıştırılan ve yüksek çözünürlüklü mikroskopi ile uyumlu çok yönlü bir eşbiaksiyel germe cihazı sunuyoruz.

Yüksek Büyütmeli Canlı Hücre Konfokal Floresan Mikroskobu için Equibiaxial Germe Cihazı

Burada, hücrelere izotropik ve tek eksenli dalga formları uygulayan, aynı zamanda ayarlanabilir sertliğe ve özelleştirilebilir protein matrislerine sahip substratlar üzerinde kültürü destekleyen yeni bir cihaz sunuyoruz. Bu basit ve ekonomik platform, araştırmacıların mekanik ipuçlarının hem temel çalışmalarda hem de hastalıkla ilgili bağlamlarda hücresel fonksiyonu nasıl düzenlediğini araştırmalarını sağlar.

In Vitro Hücresel Esneme ve Görüntüleme İçin Yeni Bir Platform

Uzun zincirli altın Alkan tiyoller oluşan Kendinden monte mono tabakaları (SAMs), protein desen ve hücre hapsi oluşumu için iyi tanımlanmış substratları sağlar. Microcontact baskı ile dolgu takip polidimetilsiloksan (PDMS) damga kullanarak hexadecanethiol glikol-sonlandırılır Alkan tiyol monomer damgalı hexadecanethiol bölgede sadece protein ve hücreler adsorbe bir desen üretir.

Protein ve hücre Etrafının İki Boyutlu Desenli Yüzeyler Oluşturma

Öğrenin, anizotropik germe platformu ile tek hücrelerin mekanik deformasyona yanıtlarını ve biyolojik dokuların mekanik özelliklerini nasıl inceleyeceğinizi. C2C12 hücreleri ve fare aort dokuları kullanılarak geliştirilen bu yöntem, hücre mekaniği ve doku mühendisliği alanlarında önemli uygulamalar sunar.

Hücre ve Doku mechanobiology Applications A Novel Germe Platformu

Daha fazla video keşfet