Name: Biyomedikal Araştırma Sığır Akciğer: Görme Kılavuzlu Bronkoskopi, intrabronşiyal Aşılama ve In Vivo Örnekleme Teknikleri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Keşfedin sığır akciğerinde bronkoskopi yöntemleriyle solunum enfeksiyonları ve konakçı-patojen etkileşimlerini inceleme tekniklerini. Bu yöntem tekrarlanan örnekleme ile hastalık ilerlemesini uzun süre izlemeyi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Yazarlar, çalışmalarının finansmanı için Almanya Federal Eğitim ve Araştırma Bakanlığı'na (BMBF) çok müteşekkirdir. Ayrıca yazarlar, bronkoskopilerle ilgili teknik yardımları için Ines Lemser, Sylke Stahlberg, Ingolf Rücknagel ve hayvan evi (FLI, Almanya) ekibinde çalışan diğer tüm meslektaşlarına teşekkür eder. Maria-Christina Haase'ye (FLI, Almanya) literatür sağlama konusundaki yardımları için çok müteşekkirler. Ayrıca yazarlar, makalenin eleştirel okuması için Dr. Angela Berndt (FLI, Almanya) ve Nicolette Bestul'a (Wisconsin-River Falls Üniversitesi) şükranlarını sunarlar.

Etik Bildirimi Bu çalışma Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Avrupa ve Ulusal Kanun ile sıkı göre yürütülmüştür. Protokol Thüringen Eyaleti, Almanya (: 04-004/11 İzni Sayısı) Hayvan Deneyleri Etik ve Hayvanları Koruma Komitesi tarafından onaylandı. Tüm deneyler Hayvan Koruma yetkili kurumsal Temsilcisi gözetiminde yapıldı. Bronkoskopi kesinlikle genel anestezi altında yapıldı. Çalışma süresince, her türlü çaba rahatsızlık veya acı en aza indirmek için yapıldı. Genel notlar Tarif edilen teknikler yaklaşık 60-80 kg ağırlığında, yaşı, yaklaşık 6-8 hafta buzağılar için geliştirilmiştir. Diğer büyük hayvan türleri, yaş ve vücut ağırlığı farklıdır buzağıların kullanım için, teknik boyutunu ve ağırlığını uygun ve dikkate belirli bir hayvan türünün akciğer anatomisini almak için adapte edilmelidir. Tümkullanılan ekipman steril olması gerekmektedir. Chlamydia psittaci, insanlarda solunum ve genel hastalığa neden olabilir zoonotik bir bakteridir. Non-kuş C. Mevcut protokolde kullanılan psittasi gerginlik DC15 biyogüvenlik düzeyi 2 altında ele alınmalıdır. patojen ile enfekte hayvanlarla Tüm iş böyle bir solunum cihazı, bir sıçrama, su geçirmez tulum, lastik çizme ve eldiven gibi kişisel koruyucu ekipman giymiş yapılmalıdır. Uygun bir solunum cihazı giymek, büyük önem taşımaktadır C için enfeksiyonun doğal yol tarihi psittaci Aerogen olduğunu. Ambalajlama ve örnekleri etiketleme her şeyin hayvan konut birimini ayrılmadan önce üreticinin talimatlarına göre klamidya karşı bir dezenfektan etkili tedavi edilmelidir beri dezenfektan dayanıklı olmalıdır. 1.. Bronkoskopi için Animal hazırlanması <ol><li> Anestezik doz için buzağı ağırlığını belirler. </li><li> Bir intravenöz (IV) erişim i yerleştirinn Sol boyun damarı. </li><li> İlk olarak, yavaş yavaş sedasyon oluştuktan sonra, (2.0 mg / kg vücut ağırlığı) enjekte ketamin, daha sonra yaklaşık olarak 30 saniye boyunca (0.2 mg / kg vücut ağırlığı) enjekte ksilazin. </li><li> Masanın üzerine hayvan kaldırın ve sağ lateral pozisyonda yerleştirin. Hayvan yeterince masaya yerleştirildikten sonra IV erişim hala yerinde olup olmadığını kontrol edin ve gerekirse yeniden ayarlayın. Anestezi sırasında, düzenli olarak anestezi derinliğini belirlemek için göz kapağı refleksi kontrol edin. </li><li> Hayvan giderek nefes sonra, birisi dilini dışarı çekin ve boyun germek var. Hafif dönen hareketlerini kullanarak, hayvanın ağzında bir metal tüp spekulum yerleştirin. Gırtlak görünür oluncaya kadar, bir el feneri kullanarak, görme kontrol altında ileri spekulum itin. </li><li> Gerektiğinde 7 mg ksilazin ve ketamin 70 mg bir bolus enjekte edilerek bütün endoskopik işlem boyunca anestezi koruyun. </li></ol> . 2. Aşılama (Aşılama Siteler: Şekil 1) </p&gt; <ol><li> 1, 2, 3 inokulum ihtiva eden şırıngalar, ve 5 ml inokulum hazırlayın. </li><li> Endoskop çalışma kanalı içine bir teflon tüp yerleştirin. Tüp Endoskop ucundan çıkmamalıdır. </li><li> Metal spekulum aracılığıyla endoskop yerleştirin. Spekulum hafif readjustments gırtlak geçişini sağlamak için gerekli olabilir. Sağ tarafında kapalı dalları, monitörde resim hizalamak için yardımcı olur Bronş soluk borusu,. </li><li> Teflon tüpün sonuna kadar 5 ml inokulum ile şırınga takın. Inokulum tevdi edilecektir dalları içine tüp gidin ve istenilen miktarda (Sağ akciğer geçerli: Lobus medius: 0.5 ml, Lobus accessorius: 0.5 ml, Lobus caudalise: 0.5 ml ve 1.0 ml; Sol akciğer: Lobus kraniyalise, kraniyalise Pars : 0.5 mi, pars caudalis: 0.5 ml, Lobus caudalis: 1.5 mi). 1 ile şırınga takın ve# 160; tüp ml inokulum, sonra Bronş soluk borusu gidin ve inokulum mevduat (: 1.0 ml Lobus kraniyalise, caudalise Pars). Her zaman aynı sırayla bölgeselleştirmelerini yaklaşım yararlıdır. </li><li> Endoskop ve spekulum çıkarın. </li><li> Bir aktüatör her burun deliğine 1 ml inokulum püskürtün. </li><li> Geri ahıra hayvan getirmek ve uyanma için yüzükoyun pozisyonda yerleştirin. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilince kavuşana kadar sahipsiz veya diğer hayvanların şirket hayvan bırakmayın. Termoregülasyonda hayvanın yeteneği, genel anestezi altında azalmış olduğundan kurtarma kararlı, klimalı olmalıdır. Not: İlk klinik işaretler kullanılır patojene bağlı olarak, aşılamadan sonra yaklaşık 24-36 saat gerçekleşmelidir. </li></ol> . 3 Örnekleme Yöntemleri (Örnekleme Siteler: Şekil 2) <ol><li> 1,1-1,6 adımları tarif edildiği gibi hayvan hazırlayın. </li><li> Bronkoalveoler lavaj <ol><li> Bir su banyosunda her bir steril izotonik tuzlu su içinde 20 ml ihtiva eden 5 şırıngalar, koyun ve bunları, yaklaşık 38 ° C&#39;ye kadar ısınmasına izin </li><li> Endoskop çalışma kanalı içine bir lavaj kateteri takın, sonra metal spekulum içine endoskop yerleştirin ve endoskop daha öncesinde herhangi itti olamaz nerede &quot;kama pozisyonu&quot; ne ulaşana kadar sol akciğer ana bronş içine ileriye gidin. </li><li> Birbiri ardına, lavaj kateteri ile sıcak NaCl çözeltisi ile şırınga takmak, sıvıyı aşılamak ve doğrudan aspire. Bronkoalveoler lavaj sıvısı silikonlu cam şişelerde saklanır ve cam yüzeyine tutunmasını alveol makrofajlar önlemek için derhal kurtarma sonra buz koymak gerekir. Telkin tuzlu su miktarı ve geri kazanılan sıvı miktarını hem de not edin. </li><li> Çalışma kanalından lavaj kateteri çıkarın. </li></ol></li><li> Bronşiyal fırçalama<ol><li> Açıklanan protokol, bu Bifurcatio trakea olan, arzu edilen örnekleme konuma endoskop gidin. </li><li> Fırça ucu monitörde görünene kadar Endoskop çalışma kanalına takmadan önce tüp ile fırça örtün. </li><li> Ileri plastik tüp ile yaklaşık 5 cm fırça itin ve kolu iterek plastik tüp onu ortaya çıkarmak, daha sonra fırça edilecek konuma gidin. </li><li> Fırça ve bronş duvarı arasında temas sağlamak için endoskop gezinirken hafifçe ileri geri fırça iterek ve çekerek epitel aramaları dökülmek. Kanama oluşur ovuşturarak durdurun. Çalışma kanalı çekerek önce tüp ile fırça örtün. </li><li> Hafifçe slayt üzerinde fırça yuvarlayarak mikroskop slaytlar beş smear kadar hazırlayın. -20 ° C&#39;de 10 dakika, kuru hava ve saklamak için, soğuk metanol smear sabitleştirmek </li><li> Fırça olarak durulanabilirörneklenen hücrelerin amacına bağlı olarak çeşitli medya. Aynı fırça ile birden manşonlarla alarak, yalnızca mukoza zarını tahriş yok medyada durulayın emin olun. </li></ol></li><li> Transbronşial akciğer biyopsisi <ol><li> Açıklanan protokol, bu Lobus kraniyalise pars caudalis olan, arzu edilen örnekleme konuma endoskop gidin. Açık çalışma kanalı içine biyopsi forseps ekleme ve sorunsuz çalıştığından emin olmak için onu birkaç kez kapatmadan önce. </li><li> Hafif bir direnç oluşana kadar soluk borusu bronş kaudal şube içine biyopsi forseps itin. Geri 2-3 cm çekin forseps açık, ileriye yaklaşık 2 cm itmek, forseps kapatın, geri çekin ve çalışma kanalından forseps çıkarın. Bu biraz pratik gerektirir. </li><li> Dikkatli bir iğne veya küçük forseps kullanarak, biyopsi forseps doku kaldırmak. Dokunun bir başka kullanımına bağlı olarak, sıvı Nitr saklayınojen veya uygun bir sabitleme aracı. Bu otolitik işlemleri önlemek için kaldırılmasından sonra doğru gerçekleşmesi gerekir. </li></ol></li><li> Post-prosedürel tedavi <ol><li> Geri ahıra hayvan getirmek ve uyanma için yüzükoyun pozisyonda yerleştirin. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilince kavuşana kadar sahipsiz veya diğer hayvanların şirket hayvan bırakmayın. Termoregülasyonda hayvanın yeteneği, genel anestezi altında azalmış olduğundan kurtarma kararlı, klimalı olmalıdır. </li><li> Sonraki 24 saat pnömotoraks belirtileri için yakından hayvan izleyin. Hayvan tam kendine geldi zaman yem ve taze su sağlayın. </li></ol></li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Aşılamadan bir bronkoskopik yöntem geliştirilmiştir ve çeşitli bronkoskopik örnekleme yöntemi deney koşulları altında büyük hayvanlarda kullanılmak üzere adapte edilmiştir. Açıklanan teknikler bile endoskopi deneyimi az olan sınav için, öğrenmesi kolay. Bronkoskopi işlemi minimal invaziv ve aşılama yöntemleri yanı sıra, açıklanan örnekleme yöntemleri (BAL, transbronşiyal akciğer biyopsisi, bronşiyal fırçalama) ile ilişkili herhangi bir yan etkisi hiç hayvanların herhangi görüldü. İnsanlarda Transbronşial akciğer biyopsisi ile ilişkili komplikasyonlar kanama ve pnömotoraks 48, bunların hiçbiri bu prosedür uygulandı buzağılarda görüldü. Transbronşiyal akciğer biyopsisi daha zaman alıcı ve transkütan yöntemine göre daha ekipman gerektirir, ama daha az invaziv ve yara enfeksiyonu riski taşımıyor. Inoculat ve görsel olarak kontrol, endoskopik yöntemiyon akciğerin belirli bölgelerde patojenin bir tanımlanmış miktarının birikmesine izin verir. Bu nedenle, her aşılanmış hayvanlarda 32-34 çok tutarlı klinik ve patolojik bulgular elde edilir. Ancak, buzağılarda doğal enfeksiyon tüm özelliklerini benzemez. Solunum C&#39;lik bir modelinde doğal enfeksiyonları buzağıların genellikle apikal lob pnömoni gelişir, oysa psittaci enfeksiyon, aşılama açıklanan teknik patojen yerleştirme 34 siteleri ile ilişkili akciğer lezyonlarına yol açtı. Bu durum, büyük baş hayvanlar, doğal edinilmiş akciğer enfeksiyonu bağlamında deneysel bulguların ile yorumlayarak dikkate alınmalıdır. Videoendoskopik BAL akciğerin tanımlanmış bir örnekleme alanı sağlar. Deney amacıyla, bu kör koşullar altında bir burun kateter kullanımı ile karşılaştırıldığında daha avantajlıdır. Nedeniyle sığır akciğer anatomisi, körü körüne takılan kateter itmek olacaktırÇoğu durumda 53,54 doğru diyafram lob ed ve muayene yıkanır olduğu akciğer alanı üzerinde bir etkisi vardır. Yan yatma anestezi uygulanmış buzağıların endoskopik BAL bir başka avantajı,% 80&#39;den fazla bir telkin akışkanın yüksek ortalama iyileşme oranıdır. Diğer çalışmalar ile karşılaştırılması ayakta, sedasyon buzağılar, 133.3 ± 1.6 ml 46 bir iyileşme ve 127.13 ± 3.53 ml 45 kaudal lob içine sıvı 240 ml damlatılması sonra rapor edilir, ortaya koymaktadır. Sedasyon buzağılarda sternal yatma telkin sıvının% 51 kuyruk lob 43 kranial lobda ve% 62 geri olabilir. Bu, aşılanan sıvının yaklaşık yarısı dana dik olarak elde edilebilir anlamına gelir. Daha fazla numune hazırlama için gerekli BAL&#39;da miktarına bağlı olarak, bu istenen tüm deneyler yürütmek için yeterli malzeme bırakmayın olabilir. Sığırlarda BAL birçok araştırma grupları tarafından kullanılan ve birçok olmuşturfarklı parametreler çeşitli koşullar altında incelenmiştir. Birçok yazar bazal lob 43,45,46 arasında lavaj uygulandı, ancak lavaj için kullanılan sıvı miktarı araştırma grupları arasında farklılık gösterir. Bu zor, farklı yayınlardan bulguları karşılaştırmak için yapım, kazanılan hücre, protein ve diğer maddelerin seyreltme tutarsızlık yol açar. Bu nedenle, sığırlarda kullanım için hemen uygulamasından sonra elde edilir, 20 ml sıcak gövde, izotonik tuzlu su (toplamda 100 mi), beş fraksiyonları ile yıkanması tavsiye edilir. Büyük bir çap (örneğin,&gt; 2 mm) ile lavaj bir kateter kullanılarak, her fraksiyonun hacmi biraz kateterin kalır sıvının miktarına bağlı olarak, artan gerekmektedir. Sığır akciğer yüksek segmente anatomi metodik bir sınırlama yol açar; Akciğerin bir kısmından elde edilen sonuçlar, akciğer geri kalanı için doğru olmayabilir. Orada hiçbir yanabronş biyopsisi ve lavaj tarafından soruşturulduklarını tüm akciğer alan görüş kontrolü, muayene örneklenmiş alanlar sağlıklı veya hastalıklı olup olmadığını bilemeyiz. Bu nedenle, bu patojen patojenin daha yüksek bir geri kazanım oranına sahip ve hastalıklı akciğer alanlarının numune daha yüksek bir olasılık olması amacıyla daha önce aşılanmıştır yerleri örnek için çok önemlidir. Başka bir sınırlama kötü klinik durumun hayvanlarda artmış anestezi riski olduğunu. Tarif edilen yöntemler, ancak mümkün olduğu kadar düşük hayvanlar için yük tutmak için hastalık hafif ve orta şiddette modelleri kullanılmalıdır. Rumende gaz geliştirme bu türlerde anestezi riski artar gibi geviş getiren hayvanlarda genel anestezi, her zaman mümkün olduğunca kısa olmalıdır. Hayvanlar bronkoskopi geliştirilen gaz efflux izin hemen sonra yüzükoyun pozisyonda yerleştirilmesi gerekir ve tamamen anestezi kurtarıldı kadar yakından izlenmesi gerekir. Ayrıca, tarif edilen teknikler suita değildiraz 24 saat aralıklarla örnekleme için ble. Açıklanan protokol, diğer enfeksiyöz ajanlar adapte edilebilir. Çeşitli patojenlerin endoskopik aşılama C gibi tarif edilmiştir psittaci 32-34, Pasteurella haemolytica 38-40,42, Haemophilus somni 55 ve sığır viral ishal virüsü 44. Ayrıca, akciğer patojeni yatırma siteleri istenen modele uyarlanabilir. (I) Örnekleme siteleri aşılama yerle ilgili ve beklenen patolojik bulgulara dayanarak seçilmelidir: örnekleme siteleri seçerken, bazı önemli gerçekler dikkate alınmalıdır. Otopsi bakımı yapılacak olduğunda, (ii) ex vivo numune için yeterli Örneklenmemiş akciğer alanları bırakmak için özen gösterilmelidir. Onlar ekipman ile ulaşılabilir böylece (iii) Örnekleme sitesi yerleri seçilmelidir. Özellikle Transbronşial akciğer biyopsisi için, biyopsi forseps uzunluğu nedeniyle sınırlamalar vardır. (Iv) To örneklemenin sırası önemlidir, bronşiyal fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi Balf kontamine hangi, küçük kanamalara yol açabilir olduğunu. Bu nedenle, BAL zaman ilk elde edilmelidir. Diğer türlerde protokolünü kullanırken, türe özel akciğer anatomisi dikkate alınmalıdır.

Biyomedikal Araştırma Büyük Hayvan Modellerinin Değerleri Modern disiplinlerarası biyomedikal araştırmalarda, hayvan modelleri hala karmaşık etkileşimler aydınlatmak için vazgeçilmez - sağlık ya da bir hastalık durumu ile ilgili - memeli organizmalar içinde. Çalışmaların% 1&#39;den daha az evcil hayvanlar ile çalışırken biyomedikal araştırma 1 için model olarak sığır, at, koyun, kümes hayvanları ya da okudu bilim adamlarına layık olan 17 Nobel ödülü rağmen, hayvan deneyleri günümüzde büyük çoğunluğu, kemirgenler ile yapılmaktadır ya da hayvancılık. Küçük hayvanlar birçok pratik avantaj (yani düşük maliyetli, genetik yumuşaklık, yüksek verimlilik, çok sayıda genetik durumu, ve immünolojik aletleri ve kitleri) sunmak, ve genetiği değiştirilmiş fare modelleri genellikle belirli moleküler yollar keşfetmek mekanik çalışmalar gerçekleştirmek için kabul edilir. Kompleks sistemler, t biyomedikal araştırmaO biyolojik alaka ve fareler modellerinin klinik faydası daha şüpheli hale gelmektedir. Onlar yanıltıcı ve biyolojik karmaşıklık 2-9 tefrit riskini dayanamaz. Nedeniyle türler arası özelliklerine, tek bir hayvan türü tamamen insani durumu ayna olacak ve birden fazla model kullanımı disiplinlerarası bir biyomedikal araştırma yaklaşımı yararlı gibi görünüyor. Öteleme tıp bağlamında, büyük hayvanlar insan hem de hayvan sağlığı için 1 çift kullanımlı yüksek biyolojik alaka ile sonuç sağlama gibi karşılaştırmalı modelleri sunmak için fırsat sunuyoruz. Dikkate değer, insan genomu daha yakından laboratuvar kemirgen genom tarafından daha sığır genom tarafından benzetilen. Ayrıca diğer takson kıyasla, farelerin genom daha 10-12 yeniden düzenlenmiş olan, son zamanlarda teyit edilmiştir. Karmaşık bir araştırma tasarımı, hayvancılık kullanımı uniq sunuyorhayvan ödün vermeden tek-ve--aynı Individuum in vivo örneklerinin çeşitli tekrarlanan toplama intra-birey, uzun vadeli çalışmaların ue fırsattır. Bu nedenle, fonksiyonel inflamatuar ve morfolojik değişimler zaman 13 belli bir süre içinde aynı konuda izlenebilir. Bir Uygun Solunum Modeli Olarak Sığır Akciğer Nedeniyle akciğer anatomisi, solunum fizyolojisi ve pulmoner immünoloji önemli farklılıklar yüksek sayıda, fareler insan akciğer hastalığı birçok önemli patofizyolojik açıdan yeniden yoktur. Solunum hastalığı 2,9,14-16 hayvan modellerinde olarak kullanılırken bu dikkate alınmalıdır. Anatomi ve yapının özelikleri her memeli akciğer için mevcut olmakla beraber, fonksiyonel özellikleri (örn. akciğer hacimleri, hava akımları ve solunum mekaniği) nedeniyle benzer vücut ağırlıkları yetişkin insanlar ve buzağılar arasında daha iyi karşılaştırılabilir(50-100 kg). Aşağıdaki gibi sığır akciğer türe özgü özellikleri özetlenmiştir: sol akciğer (iki parçaya bölünmüş ve lobus caudalis olan lobus kraniyalise,) iki lob oluşur, sağ akciğer dört lob oluşur (lobus kraniyalise, lobus medius, lobus caudalis ve lobus accessorius). Çoğu diğer memelilerin akciğer anatomisi aksine, trakea sağ yan tarafında doğrudan sağ kranial lob dalları bronş. Anatomi subgros ile ilgili olarak, sığır akciğer Lobülasyonlu yüksek derecede ve nispeten düşük özgül akciğer uyum yol interstisyel doku 17,18 yüksek bir yüzdesi ve daha yüksek bir akciğer doku direncini 19 sunulur. Bu nedenle, gerekli olan nefes alma aktivitesi diğer türler 20,21 kıyasla oldukça yüksektir. Lobülasyonlu yüksek derecede bölümlerinin güçlü bağımsızlığı yol açar. Bu nedenle, inflammatory süreçler bağ dokusu septa ile sınırlı olup, hastalıklı ve sağlıklı kesimleri genellikle aynı lobda içinde yalan. Nedeniyle teminat hava yollarının eksikliği, sığır akciğer özellikle obstrüktif akciğer bozuklukları 13 ayna uygundur. Sığır akciğerde damar ile ilgili olarak, küçük bir pulmoner arter çok önemli bir düz kas tabakaları göstermektedir. Bu nedenle, dana da 22-24 yeniden pulmoner hipertansiyon veya vasküler köklü bir hayvan modeli olarak hizmet edebilir. Solunum yolu enfeksiyonları ile ilgili olarak, doğal olarak meydana gelen hastalıkların insanda karşılaştırılabilir hastalığına yakalanmış olan birçok benzerlik bu hayvan bulunmaktadır. Tipik örnekler, tüberküloz ile 25, respiratuvar sinsityal virüs buzağı 26-28 (RSV) enfeksiyonu ya da doğal olarak kazanılmış enfeksiyonları Chlamydia 29 bulunmaktadır. Bu nedenle, büyük bir hayvan modelleri doğal ev sahibi yakın durumu benzemektedir. Bu nedenle, en çok usef vardırul konukçu-patojen etkileşimlerine ve insan 30,31 karşılık gelen hastalığın patofizyolojisi karmaşık incelemek için. Solunum Chlamydia psittaci enfeksiyonu biyolojik ilgili model olarak, buzağı sığırlar bu patojenin 32-35 doğal konakları temsil beri seçildi. Hayvanlar ve insanlar arasında hastalık ya da olası bulaşma yolları patogenezi ile ilgili, bu modelden elde edilen bilgiler, sığır ve insan hem de etkisi ile bilgimizi genişletmek için yardımcı olacaktır. Modeli aynı zamanda akciğer C ortadan kaldırılması için genel kabul görmüş ve alternatif tedavi seçenekleri doğrulamak için yardımcı olabilir hem veteriner ve insan tıbbında ilgi yine, psittaci enfeksiyonlar,. Sığır Solunum Sistemi ve örnekler elde Uygulanan Teknikler Bu kağıt açıklar ve teknikleri ve tanı yöntemlerini göstermektedir applicablsığır akciğeri e ve memeli akciğer ve terapötik müdahale etkinliği üzerinde patojenin hem etkisini değerlendirmek için bir model olarak kullanılır. Bronkoskopi 1960&#39;lardan beri insan tıp yapılmıştır ve güvenli bir işlemdir 36 olarak kabul edilir. Buzağılarda deneysel bronkoskopi ilk kez 37 için 1968 yılında tarif edilmiştir. Patojenlerin intrabronşiyal uygulama Potgieter ve arkadaşları tarafından ileri sürülmüştür. Güvenilir bir yöntem buzağıların 38 alt solunum yolu hastalığı üretmek ve şimdi sığır araştırma 34,39,40 yaygın bir yöntemdir gibi. Videoendoskopik kontrol altında patojenin bir tanımlanmış miktarının intrabronşiyal aşılama akciğerde, enfeksiyöz ajanın seçici yerleştirme sağlar. Bu, tüm hayvanlarda 34 tutarlı klinik ve patolojik bulgulara yol açar nedeniyle patojen maruz kalma değişmiş olması beklenen akciğer bölgelerinde hedeflenen örnekleme sağlar. <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; bronkoalveoler lavaj sıvısı (BAL) akciğer inflamasyon varlığı ve şiddeti için iyi tanımlanmış bir göstergedir. Bronkoalveoler lavaj (BAL), solunum hastalıkları 41 çeşitli teşhisinde insan tıbbında standart bir prosedürdür. Canlı sığır, BAL geçen yüzyılın 42 geç yetmişli Wilkie ve Markham tarafından tanıtıldı. Bu sığır alt solunum yollarını incelemek için güvenli ve tekrarlanabilir bir teknik olarak kabul edildi. Nedeniyle esnek fiberoptik bronkoskop ile sağlıklı buzağılar 1988 Pringle vd. Yapılan BAL&#39;da sağlıklı hayvanlarda BALS parametrelerle ilgili yeterli verilerin eksikliği. Yazarlar ayrıca karşılaştırılabilir sonuçlar elde etmek için 43 deneysel koşullar altında BAL protokolleri standardize etmek gereğine işaret etti. BAL hala buzağılarda 44-46 in vivo bir örnekleme yöntemi olarak kullanılmaktadır. Bronş fırçalama yaygın olarak bir insan tıbbında kullanılanneoplastik lezyonlar veya mikrobiyolojik analizler 36 için örnek bir tanı aracıdır. Araştırma amacıyla, sitolojik fırçalama ile hasat epitel hücrelerinin birincil hücre kültürleri 47 elde edilebilir. Sığır olarak, mikrobiyolojik analizler için bronş manşonlarla kullanımının akciğer 43 mikrobiyal çevre karakterize etmek için tarif edilmiştir. Transbronşial akciğer biyopsisi akciğer doku örnekleri sağlar ve insanlarda akciğer hastalıkları yaygın için değerli bir tanı aracıdır. Iatrojenik pnömotoraks ve prosedür ile ilgili kanama, bu teknik ile ilişkili komplikasyonlar vardır. Bunların sıklığı insan hastalara 48&#39;deki yüzde birden az olduğu bildirilmektedir. TBAB gereken ekipmanın yüksek maliyet ve biyopsileri elde etmek için gerekli olan zamana bağlı olarak sığır kullanımı için yaygın bir yöntem değildir. Bunun yerine, deri, akciğer biyopsileri tarla koşullarında 49-51 altında daha uygundur.

<table><tbody><tr><td>Veteriner Video Endoskop</td><td>Karl Storz GmbH & Co. KG, Tuttlingen, Almanya</td><td>PV-SG 22&ndash; 140</td><td>çap: 9 mm, çalışma kanalı: 2,2 mm, çalışma uzunluğu 140 cm</td></tr><tr><td>Lavaj kateteri</td><td>Karl Storz GmbH & Co. KG, Tuttlingen, Almanya</td><td></td><td>çap: 2 mm; uzunluk: 180 cm, Luer-lock-adapter</td></tr><tr><td>Aktüatör</td><td>WEPA Apothekenbedarf GmbH & Co KG, Hillscheid, Almanya</td><td>32660</td><td>uzunluk: 60 mm</td></tr><tr><td>Biyopsi forseps</td><td>Karl Storz GmbH & Co. KG, Tuttlingen, Almanya</td><td>REF 60180LT</td><td>1.8 mm, tırtıklı, oval</td></tr><tr><td>Omnifix 20 ml, Luer-Lock</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Almanya</td><td>4617207V</td><td></td></tr><tr><td>Sitoloji fırçası</td><td>mtp GmbH, Neuhausen ob Eck, Almanya</td><td>110240-10</td><td>çalışma uzunluğu 180 cm, fırça uzunluğu: 15 mm, çap 1,8 mm</td></tr><tr><td>iv acess</td><td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Almanya</td><td>370-211</td><td>çap: 1,2 mm; uzunluk: 43 mm</td></tr><tr><td>Rompun 2% (ksilazin)</td><td>Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Almanya</td><td></td><td>0.2 mg/kg vücut ağırlığı</td></tr><tr><td>Ketamin %10 (ketamin)</td><td>bela-pharm GmbH & Co. KG, Vechta, Almanya</td><td></td><td>2.0 mg/kg vücut ağırlığı</td></tr><tr><td>İzotonik salin solüsyonu</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Almanya</td><td></td><td></td>3200950</tr><tr><td>SUB 6 su banyosu</td><td>CLF analytische Laborger&auml; te GmbH, Emersacker, Almanya</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Metal tüp spekulum</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td>çap: 3,5 cm; uzunluk: 35 cm</td></tr><tr><td>El feneri</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Sigmacote (Sigma-Aldrich Co. LLC) ile silikonize silikonlanmış</td> <td>cam şişeler</td><td>n/a</td><td>n/a</td></tr> <tr><td>Omnifix Luer 3 ml</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Almanya</td><td>4616025V</td><td></td></tr><tr><td>Omnifix Luer 5 ml</td><td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Almanya</td><td>4616057V</td><td></td></tr><tr><td>Sızdırmazlık tapaları</td><td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Almanya</td><td>900-3057</td><td></td></tr><tr><td>8</td><td></td> ml tamponda aşı <td>n/a</td><td>seyreltik patojen</td></tr></tbody></table>

biyomedikal araştırma sığır akciğer: görme kılavuzlu bronkoskopi, intrabronşiyal aşılama ve<em&gt; in vivo</em&gt; Örnekleme teknikleri

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

Solunum tıp araştırmalarında alternatif hayvan modelleri için devam eden bir arama var. Araştırmanın amacı bağlı olarak, akciğer hastalığı modeli olarak büyük hayvanlar genellikle farenin yapmak çok daha iyi, insan akciğer durum benzer. Büyük hayvanlarla çalışan hayvanlar da ödün vermeden uzun vadeli çalışmalar sağlar zaman, belli bir dersin tekrar tekrar aynı hayvanı örnek bir fırsat sunuyor. Amaç, solunum Chlamydia psittaci enfeksiyonu bir sığır modelinde in vivo kullanım için örnekleme yöntemlerini ortaya koymaktır. Numune alma çalışma sırasında, her bir hayvanda, çeşitli zaman noktalarında yapılmalıdır, ve numuneler, deney koşulları altında konakçı tepkisi, hem de patojen incelemek için uygun olmalıdır. Bronkoskopi, insan ve veteriner hekimliğinde değerli bir tanı aracıdır. Bu güvenli ve minimal invaziv bir işlemdir. Bu Kutuple intrabronşiyal buzağıların aşı hem de alt solunum yolu için örnekleme yöntem açıklanır. Videoendoskopik, intrabronşiyal aşılama tüm aşılanmış hayvanlarda çok tutarlı klinik ve patolojik neden olur ve, bu nedenle, bulaşıcı akciğer hastalığı modellerinde kullanılmak için çok uygundur. Açıklanan örnekleme yöntemleri, bronkoalveoler lavaj, bronş fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi. Tüm bu insan tıp değerli tanı araçlarıdır ve 6-8 hafta arası buzağılar için deneysel amaçlar için adapte olabilir. Elde edilmiş olan numuneler konukçuda akciğer iltihabı şiddetinin patojen saptanması ve tanımlanması için uygundur edildi.

Hastalık Kursu Hayvanların sağlığı üzerinde patojenin etkisi klinik muayene ile değerlendirilebilmektedir. Bizim solunum enfeksiyon modellerinde, hayvanlar günde iki kez incelenmiş ve klinik gözlemler, bir puanlama sistemi kullanılarak kaydedildi. Ek bilgiler örneğin başka in vivo örnekleme yöntemleri, kan toplama ve bezlerden veya akciğer fonksiyon ölçümü yapılarak yakalandı. Aşılama enfeksiyon 32-34 ilerlemesini tanımlamak için patolojik muayene sonra farklı zaman noktalarında gerçekleştirilmiştir. BALS Kurtarma Oranı Telkin sıvısının iyileşme oranı 83.05 ± 4.58% idi (ortalama ± SD). Patojen Algılama Patojenin rekültivasyon bronşiyal manşonlarla de yapılabilir. Ayrıca, çeşitli örneklerin PCR tarama patojeni tespit etmek mümkündür, örneğin, tissue biyopsi, sitoloji fırçası örnek BAL-hücreleri 52 veya faringeal sürüntü. Patojenin Görselleştirme akciğer biyopsisi ve BAL-hücrelerinin sedimantasyon preparatların dondurulmuş imüno (Şekil 3) gerçekleştirmek de mümkündür. Önceki deneylerde, kan örnekleri ve çubuklar (konjonktiva, dışkı, burun) ve PCR yayılması ve patojenin 32 dökülme karakterize etmek için yapıldı. Akciğer dokusunda lokal inflamasyon belirteçleri BAL sıvısında olarak, akciğer iltihabı, çeşitli parametreler incelenebilir. Akciğer iltihabı mevcut olduğunda, toplam hücre sayımı ve nötrofillerin oranı genellikle artar. Hücre farklılaşması için BAL-hücrelerinin sedimantasyon preparatları Giemsa göre boyanan ve immersiyon yağı (Şekil 4) kullanılarak ayırt edilebilir. BAL sıvısında hücresel ve oranlar sıvı santrifüj (, 20 dakika 300 x g) ile ayrılır. BALS-Süpernatan Akciğerde enflamatuar işlemler sırasında değiştirmek ve deney koşulları altında incelenebilir çeşitli işaretçileri içerir. Örnekler toplam protein ve eikosanoidlerin 29,34 vardır. Tarif edilen numunelerin olası başka bir kullanım şematik bir genel görünüşü Şekil 5&#39;te gösterilmektedir. <img alt="Şekil 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig1highres.jpg" width="500" /> Aşılama siteleri (sarı) sığır akciğer Şekil 1.. Plan. Numaraları inokulum farklı bronşlara tatbik edildiği sırasını göstermektedir. R: sağ; L: Sol. Sağ akciğer: 1 Lobus medius: 0.5 ml, 2 Lobus accessorius: 0.5 mi, 3 Lobus caudalis: 0.5 ml ve 1.0 ml 4; Sol akciğer: Lobus kraniyalise, <strong&gt; 5 pars kraniyalise: 0.5 ml, 6 pars caudalis: 0.5 ml, 7 Lobus caudalis: 1.5 ml, 8 Lobus kraniyalise, pars caudalis: 1.0 ml. <img alt="Şekil 2," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig2highres.jpg" width="500" /> . Şekil 2. aşılama siteleri (sarı) ve örnekleme siteleri ile sığır akciğer şeması:. Bronkoalveoler lavaj (mavi), bronşiyal fırçalama (yeşil) ve akciğer biyopsisi (turuncu) Tüm numuneler patojen tevdi edilmiştir bölgelerden elde edilir unutmayın önce. R: sağ, L: Sol. <img alt="Şekil 3," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig3highres.jpg" width="500" /> Chl ile aşılanmış bir buzağı Şekil 3 a.) Akciğer biyopsisi<html> amydia psittaci aşılamadan 4 gün sonra (dpi), b) bir dana BAL sıvısında hücresel tortu C ile aşılandı psittaci 9 dpi. Klamidya için immünohistokimyasal etiketleme. Chlamydial inklüzyonlar (oklar) akciğerde (a) ve alveolar makrofajlar (b) yer almaktadır. Hematoksilen counterstain. <img alt="Şekil 4," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig4highres.jpg" width="500" /> Şekil 4. C. ile aşılanmış bir buzağı BAL&#39;da Hücresel sediment psittaci 9 dpi. alveol makrofajlarının, (+) BAL sıvısında baskın hücre türüdür. Enflamatuar süreçler mevcut olduğunda nötrofil granülositler miktarı (*) artar. Modifiye Pappenheim boyama. es.jpg &quot;width =&quot; 600 &quot;/&gt; Şekil 5. Numune hazırlama için olası yöntemler. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51557/51557fig5highres.jpg" target="_blank">, bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için buraya tıklayınız.</a>

Bu makalede deneysel koşullar altında sığır bronkoskopik teknikler, yani bronkoskopik güdümlü aşılama, bronkoalveoler lavaj, bronş fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi açıklanır.

Biyomedikal Araştırma Sığır Akciğer: Görme Kılavuzlu Bronkoskopi, intrabronşiyal Aşılama ve<em&gt; In Vivo</em&gt; Örnekleme Teknikleri

There is an ongoing search for alternative animal models in research of respiratory medicine. Depending on the goal of the research, large animals as ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, solunum yolu enfeksiyonunun sığır modelinde konakçı-patojen etkileşimlerini incelemektir. Bu, hastalık seyri boyunca ilgili patojenin intrabronşiyal inokülasyonu ile buzağılarda solunum yolu enfeksiyonu indüklenerek gerçekleştirilir. Hayvandan bronkoalveoler lavaj yoluyla tekrarlayan örnekler alınır.Ardından, sırasıyla epitel hücrelerini ve alveol veya akciğer doku örneklerini elde etmek için bronşiyal fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsileri yapılır. Sonuç olarak, patojene özgü solunum yolu hastalığı; örneğin lavajdaki inflamatuar değişiklikler, sitoloji ve patojenin immünohistokimyasal tespiti ile doğrulanabilir. Transbronşiyal akciğer biyopsilerinde, bu büyük hayvan modelinin diğer mevcut hayvan modellerine ve kemirgenlere kıyasla temel avantajı, modelimizde tekrarlanan örneklemeler yoluyla aynı bireyde hastalığın seyrini uzun bir süre boyunca inceleyebilmemizdir.Bu yöntem, konakçı-patojen etkileşimleri hakkında in vivo bilgi sağlayabilse de, alternatif patojenler veya konakçı türler gibi diğer sistemlere de uygulanabilir. Anestezinin sürdürülmesi ve örnekleme sürecine yardımcı olan kişi, laboratuvarımızın veteriner hekimi olan Fisher olacaktır. İşleme başlamadan önce, üç şırıngayı sırasıyla bir, iki ve beş mililitre inokülum ile doldurun.Ardından anestezi onaylandıktan sonra, hayvanın dilini dışarı çekin ve boynunu gerin. Sonrasında, hafif döndürme hareketleri kullanarak metal bir spekulumu hayvanın ağzına yerleştirin. Larinks görünür olana kadar, bir el feneri yardımıyla alanı kontrol ederek spekulumu ileriye doğru itin.Ardından, bir endoskopun çalışma kanalına bir Teflon tüp yerleştirin. Tüp, endoskopun ucundan dışarı taşmamalıdır. Endoskobu spekulüm aracılığıyla yerleştirin.Endoskopun yerleştirilmesini sağlamak için spekulümde küçük ayarlamalar yapılması gerekebilir. Larinksi geçmek için, monitördeki görüntünün hizalanmasına yardımcı olmak amacıyla akciğerin sağ tarafına dallanan bronkus trake'yi kullanın. Ardından, beş mililitre inokülum içeren şırıngayı Teflon tüpün ucuna takın.Tüpü, inokülümün yerleştirileceği dallara doğru yönlendirin ve uygun miktarda inokülüm uygulayın. Ardından, bir mililitre inokülüm içeren şırıngayı tüpe takın. Bronş trakealarına ilerleyin ve inokülümü kodla dalına yerleştirin.Endoskopu ve spekulumu çıkarın. Ardından, son şırıngayı bir aktüatöre takın ve her bir burun deliğine bir mililitre inokülüm püskürtün. Hayvanı, uyanması için yüzüstü pozisyonda tekrar bölmesine yerleştirin.İyileşme ahırında klima bulunmalıdır. Genel anestezi altında hayvanın termoregülasyon yeteneği azaldığından, örnekleme için istenen zaman noktasında valv örnekleri toplamak amacıyla, her biri 20 mililitre steril izotonik salin içeren beş şırıngayı 38 °C'lik bir su banyosunda ısıtın. Ardından, endoskopun çalışma kanalına bir lavaj kateteri yerleştirin ve endoskopu metal spekuluma yerleştirin.Ardından, kama pozisyonuna ulaşılana ve endoskop daha fazla ileri itilemeyene kadar sol akciğerin ana bronşuna doğru ilerleyin. Sonra, sıvıyı instill etmek ve doğrudan aspire etmek için sıcak sodyum klorür çözeltisi içeren şırıngaları sırayla lavaj kateterine takın.Alveoler makrofajların cam yüzeye yapışmasını önlemek için, bronkoalveoler lavaj sıvısını geri kazanım işleminin hemen ardından buz üzerinde silikonize cam şişelerde saklayın. Hem verilen serum fizyolojik miktarını hem de geri kazanılan sıvı miktarını not edin. Ardından, epitel hücrelerini toplamak için lavaj kateterini çalışma kanalından çıkarın.Ardından, endoskobu istenen örnekleme konumuna yönlendirin. Örneğin, bu deneyde trake bifurkasyonuna; endoskop yerleştiğinde, bir bronş fırçasını tüp ile kaplayın ve fırça ucu monitörde görünene kadar endoskopun çalışma kanalına yerleştirin. Fırçayı ve plastik tüpü yaklaşık beş santimetre ileriye doğru itin.Ardından, fırçayı plastik tüpten çıkarmak için fırça sapını itin. Fırça konumlandığında, onu fırçalanacak bölgeye yönlendirin. Daha sonra, endoskopu yönlendirirken fırçayı nazikçe ileri geri itip çekin.Epitel hücrelerini sıyırmak için fırçanın bronş duvarıyla temas ettiğinden emin olun. Kanama meydana geldiğinde sıyırma işlemini durdurun. Ardından fırçayı tüp ile kapatın ve çalışma kanalından dışarı çekin.Epitel hücre kaplı kılları beş mikroskop lamına kadar nazikçe yuvarlayın ve yaymaları soğuk metanol içinde 10 dakika boyunca fikse edin. Ardından, lamların havada kurumasına izin verdikten sonra, transbronşiyal akciğer biyopsisi gerçekleştirmek üzere bunları minus 20 degrees Celsius'da saklayın. Sonrasında, endoskopu istenen örnekleme konumuna yönlendirin.Örneğin, bu deneydeki LOAs crans'ın pars Alis'i için, biyopsi forceps'ini çalışma kanalına yerleştirmeden önce, düzgün çalıştığından emin olmak için birkaç kez açıp kapatın ve ardından forceps'i hafif bir direnç hissedene kadar bronkus trakeasının coddle dalına doğru itin. Şimdi, iki ila üç santimetre geri çekin ve forceps'i açın. Forceps'i tekrar yaklaşık iki santimetre ileri itin ve ardından kapatın.Penseti çalışma kanalından geri çekerek çıkarın. Dokuyu biyopsi pensetinden dikkatlice çıkarmak için bir iğne kullanın ve otolitik süreçlerin oluşumunu önlemek için uygun bir tespit ortamında saklayın. Son olarak, buzağının bölmesinde dinlenmesine izin verdikten sonra, yem ve taze su sağlayarak hayvanı önümüzdeki 24 saat boyunca pnömotoraks açısından tekrar izleyin.Hayvan tamamen bilincini geri kazandığında, transbronşiyal akciğer biyopsilerinin dondurulmuş kesitleri immünohistokimyasal olarak boyanabilir. İnoküle edilen patojeni görselleştirmek için, örneklemeden dört gün önce klamidya C ile inoküle edilmiş olan bu hayvanın akciğerindeki kahverengi klamidyal inklüzyonları dikkate alın. İmmünohistokimyasal boyama, lavaj hücrelerinin boyanmasını sağlayarak hücre içi patojenlerin görselleştirilmesine olanak tanır.Örneğin bu görüntüde, bir buzağıdan alınan alveolar makrofajlarda mevcut olan klamidya inklüzyonları görülmektedir. İntrabronşiyal klamidya inokülasyonundan dokuz gün sonra CTAC gözlemlenebilir. Bronkoalveolar lavaj hücreleri, sitolojik boyama ile ayırt edilebilir.Alveoler makrofajlar, lavaj sıvısındaki baskın hücre tipidir. Bununla birlikte, enflamatuar süreçler mevcut olduğunda nötrofilik granülositlerin sayısı artar. Usul bir kez kavrandığında, doğru şekilde uygulandığı takdirde inokülasyon 10 ila 15 dakika, örnekleme ise 20 ila 30 dakika içinde tamamlanabilir.Bu videoyu izledikten sonra, anestezi altındaki hayvanlarda intrabronşiyal inokülasyonun nasıl yapılacağı ile bronkoalveoler lavaj sıvısı, bronşiyal fırçalama örnekleri ve transbronşiyal akciğer biyopsilerinin nasıl alınacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

the-bovine-lung-biomedical-research-visually-guided-bronchoscopy

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Biz düşük basınçlı emme kullanarak fiberoptik bronkoskopi ve bronkoalveoler lavaj için bir araştırma tekniği açıklar. Bu teknik, akciğer bronkoalveoler yüzeylerinden bağışıklık hücreleri hasat etmek için kullanılır. Lokal anestezik ve hafif bilinçli sedasyon (midazolam) kullanılır. Denekler prosedür iyi ve deneyim minimal yan etkileri tolere.

Araştırma Bronkoalveoler Lavaj (BAL); Yeterli Örnek Verim Alma

Bu videoda, deneysel bir ajanın distal sağ ve sol akciğere seçici olarak uygulanması için intrabronşiyal bir yaklaşım açıklanmaktadır. Öne çıkan protokolde, pulmoner fibroz için daha iyi bir model elde etmek için bleomisini intrabronşikal olarak bir fareye uygulayacağız.

İntrabronşiyal Doğum: Deneysel bir ajanı seçici olarak bir fare akciğerine uygulamak için bir teknik

Bu videoda, alınan domuz akciğerinden bronşiolar dokuları çıkarmak için uygulanan cerrahi bir prosedürü açıklıyoruz. Ex vivo bronşiolar doku, kronik akciğer enfeksiyonlarını incelemek için enfeksiyon modelleri geliştirmek için kullanılabilir.

Domuz bronşiolar doku ekstraksiyonu: Domuz akciğerlerinden bronşiolar doku kesitlerini incelemek için bir prosedür

Bu video, entübasyon ve bakteri süspansiyonlarının akciğer loblarına yerleştirilmesi yoluyla immünokompetan bir kemirgen modelinde akciğer enfeksiyonunun oluşumunu göstermektedir. Bu model, bağışıklığı yeterli hayvanlarda antibakteriyel etkinlik çalışmalarına olanak tanır.

İmmünkompetan Kemirgen Modellerinde Streptococcus pneumoniae'nin İntrabronşiyal Damlatılması

Insanlarda akciğer hastalıklarının durumunu taklit eden bir modelinin kullanılması, belirli bir hastalığın patofizyolojisi ve / veya etyolojisinin araştırılması için ve terapötik müdahale geliştirmek için çok önemlidir. Burada doğrudan fare akciğerlere eksojen malzemeleri teslim noninvazif bir entübasyon yöntemi sunulmuştur.

Noninvaziv Entübasyon Fare Akciğer Patolojisi ve Fizyolojisi Eğitim için

Akciğerin sağlık durumu, akciğer bronşiollerinde bulunan bağışıklık hücrelerinin türüne ve sayısına göre yansıtılır. Farelerin alt solunum yollarından yapışkan olmayan hücrelerin ve çözünür faktörlerin izolasyonunu ve çalışılmasını sağlayan bir bronkoalveolar lavaj tekniğini açıklıyoruz.

İnflamatuvar Hücre İnfiltrasyonunu İncelemek İçin Murin Akciğerlerin Bronkoalveoler Lavajı

Farelerde deneysel ajanlar intratracheal (It) yönetimi genellikle distal akciğerlere asimetrik teslim sonuçlanır.  Bu raporda, her akciğeri operatif olmayan canlı fareler içinde cannulate için doğrudan intrabronchial (ıB) yaklaşımı açıklanmaktadır.  Bu yaklaşım, bir akciğer için seçici olarak ajanlar yönetmek için kullanılabilir ya da her iki akciğerde simetrik Ajan teslim geliştirmek için adapte olabilir.

Fare akciğer Içinde seçici Ajan biriktirme geliştirmek için doğrudan Intrabronchial yönetim

Burada, zayıflatılmış BSL-2 onaylı Mycobacterium tuberculosis'un intravital görüntüleme protokolünü sunuyoruz. sürün akciğerinde kalıcı akciğer penceresi kullanarak. Bu yaklaşım, aynı akciğer mikro ortamında bakteriler lokalizasyonu, damar dinamikleri ve makrofaj alımı dahil olmak üzere erken konakçı-patojen etkileşimlerinin uzunlamasına, tek hücre çözünürlüklü analizini mümkün kılar.

Erken Intravasküler Enfeksiyonda Sönmüş Oksotrofik Mycobacterium Tuberculosis'in Sönük Oksotrofik Mycobacterium Tuberculosis'in Erken Intravasküler Enfeksiyonda

, Işitsel ve dinleme becerilerini katkıda bilişsel yetenekleri derinlemesine bir değerlendirme yapmak için bir test bataryası (IMAP) açıklanmıştır. Bu çocuk dostu ve dilsel boşa yönetmek için hızlı. Stimulus üretimi ve protokol yönetimi tekrarlanabilir prosedürleri sağlamak için bir yazılım platformu (IHR-STAR) ile kontrol edilir.

Dinlemede Making Sense IMAP Test Batarya:

Ex-Vivo Akciğer Perfüzyon (EVLP) insanlarda akciğer transplantasyonu daha kolay kullanılabilir donör havuzu organları değerlendirmek ve genişletmek için yeteneği sağlayarak haline izin verdi. Burada, bir sıçan EVLP programı ve gelecekteki genişleme için bir tekrarlanabilir model izin ayrıntılandırmaları gelişimini açıklar.

İzole Yöntemi<em&gt; Ex vivo</emBir Rat Modelinde&gt; Akciğer Perfüzyon: Sıçan EVLP Programı Geliştirme Öğrenilmiş Dersler

Keşfedin sığır akciğerinde bronkoskopi yöntemleriyle solunum enfeksiyonları ve konakçı-patojen etkileşimlerini inceleme tekniklerini. Bu yöntem tekrarlanan örnekleme ile hastalık ilerlemesini uzun süre izlemeyi sağlar.

Biyomedikal Araştırma Sığır Akciğer: Görme Kılavuzlu Bronkoskopi, intrabronşiyal Aşılama ve

Daha fazla video keşfet