Name: Nöronlar 3-D Görüntüleme ve Analiz Enfekte İn Vivo Ile Toxoplasma gondii (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 33 s
Description: Öğrenin, fare beyin kesilerinde Toxoplasma gondii kistleriyle enfekte nöronları 3 boyutlu görüntüleme ve analiz yöntemini. Konfokal mikroskopi ile parazit-hücre ilişkisini detaylı inceleyin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz yararlı tartışmalar için tüm Koshy laboratuar teşekkür ederim. Biz Patty Jansma ve tavsiye için Arizona Sinirbilim Anabilim Dalı Üniversitesi teşekkür ve görüntüleme yardım. Biz de onların Vibratome kullanımı için Porreca laboratuar teşekkür ederiz. Bu araştırma ABD Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH NS065116, AAK) tarafından desteklenmiştir.

Not: Fareler, Arizona Üniversitesi, yiyecek ve su ad libitum ile ışık / karanlık döngüsü ters yetiştirilen 12 saat olan bir sıcaklık ve nem kontrollü bir odada muhafaza edildi. Deneyler kurallar ve Arizona Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu onayı altında gerçekleştirilmiştir. Tüm çabalar acı en aza indirmek için yapılmıştır. Kre-raportör fareler, C57BL / 6 arka 11 ve ticari olarak temin edilebilir. 1. Fare Enfeksiyon Not: - 12, aşağıda tarif edilen Toxoplasma gondii fare enfeksiyon gibi bir yöntem, daha önce 10 yayınlanan çalışmalarda kullanılmıştır. <ol style="margin-left: 40px;"><li> Fibroblastlar (dikey paketleme) insan alın derisi Toxoplasma suşları büyümek Dulbecco Yüksek Glikoz kültürlenmiş Kartal Ortamı (DMEM),% 10 FBS ile takviye edilmiş, 100 U / ml penisilin, 100 mg / ml strept% 5 CO2 inkübatör içinde, bir T-25 balonuna omycin, ve 2 mM L-glutamin (cDMEM) parazitler, büyük parasitophorus vacuoles gelişimine dek. </li><li> Daha sonra, bir 27 gog iğne bağlanan bir 5 mi şırınga halinde bütün olarak solüsyon bir şişe içinde 2 kez şişenin tabanından hücreler kazıma ve 3 mi bir şırıngaya bağlanmış bir 25 gauge iğne yoluyla elde edilen solüsyon geçirilerek şırınga tahliye parazitler bu ters 15 ml konik bir tüp içinde yerleştirilmiştir. Şırıngaya pistonu bağlayın ve konik tüp içine parazit çözümü geçmektedir. </li><li> Santrifüj 300 x g, 10 dakika boyunca tüpü. Yüzer madde daha sonra 4-6 ml steril USP 1x Fosfat Tamponlu Salin (PBS), pH 7.4 (stok çözelti) pelet tekrar süspansiyon aspire. </li><li> Parazitler orta büyük karenin dört köşe ve orta kareler parazitlerin sayısını daha sonra yerleşmek saymak için stok solüsyonu 10 ul Hemasitometre yükleyin, 5-10 dakika bekleyin. </li><li> Paragraf seyreltin100K / 200 ul, uygun inokulum boyutuna the PBS daha sonra 200 ul toplam hacim periton içine (ip) enjekte fareler 1x. NOT: Bu prosedür için, fareler 100 K Tip III (CEP) PBS 1x 200 ul 13 takizoit aşılanmıştır. Toksoplazma diğer suşları ile fareler enfekte olduğunda, inokulum konsantrasyonunun hastalık oluşturma etkisi hesaba ayarlanması gerekebilir. </li></ol> 2. Perfüzyon ve Beyin Hasat Not: Bu kistlerin tepe numaraları fare beyninde bulunan olduğu zaman noktasını temsil eder Bu protokol, 21 gün sonra enfeksiyonu (dpi) yapıldı, ancak diğer zaman noktaları kullanılabilir. 17 - kist boyutu, sayısı, yeri ve varlığı ya da yokluğu fare zorlanma, parazit gerilme türü yanı sıra aşı miktarı 7,14 dahil olmak üzere birçok faktöre bağlıdır. Müfettişler tek tek fare ve Toxoplas için uygun inokülumu belirlemek gerekirma suşu o / o kullanır. <ol style="margin-left: 40px;"><li> Kur tüm cerrahi hasat aletleri (Şekil 1). </li><li> Her bir fare için, hazırlama ve buz üzerinde tutulur:% 0.9 sodyum klorid (NaCl) ile doldurulmuş 20 ml şırınga + 10 U / ml Heparin 1x steril USP PBS (Heparin / tuzlu su) içinde; 20 ml&#39;lik bir enjektör% 4 paraformaldehit (PFA) ile doldurulmuştur; 15 mi% 4 PFA ile sintilasyon şişesi. Birden fareleri için, daha sonra her bir perfüzyon için solüsyonu ile dolu yeni bir şırınga hazırlamak her fare için gerekli olan her bir çözeltinin toplam miktarı ile dolu bir beher hazırlar. </li><li> 200 ul / Ketamin / Ksilazin kokteyli vücut ağırlığı 25 g (24 mg / ml ve 4.8 mg / ml) ilgi günde fare ip anestezisi. Ayak tutam refleksi kontrol ederek anestezi düzeyi için fare izleyin. Fare bir firma ayak tutam hiçbir yanıt gösterir sadece bir kez protokol ile devam edin. Not: anestezi uygun seviyede ulaşılırsa Anestezi başka yöntemler sürece kullanılabilecektirprotokol ile devam. </li><li> Kapalı köpük platformda yatar pozisyonda fare yerleştirin. Sonra% 70 Etanol (EtOH) (Şekil 2A) ile göğüs ve karın sprey ayaklarına dört uzuvları dışarı Pin. Fare altında birkaç steril kağıt havlu eklenmesi perfüzyon sıvı taşma edilmesine yardımcı olmak için kullanılabilir. </li><li> Sadece forseps ile sternum altında kaldırın ardından cilde bir kesi yapmak için makas kullanın. Göğüs (Şekil 2B) ortaya çıkarmak için geri cilt çekin. </li><li> Süreci kılıç şeklinde kaldırın ve açık açık uzakta diyaframdan disseke edilir karaciğer açığa hemen diyaframın altında bir karın kesi yapmak. İki insizyon, solda diğeri diyafram aracılığıyla sağ ve kaburga altındaki birini yapın. Yaklaşık 1 / 2-2 / 3 yollu kadar sonra göğüs boşluğuna (Şekil 2C) açmak için geri yansır göğüs kafesi, sol ve sağ kesiler uzatın. NOT: Take bakım herhangi bir organ kesmek için değil ya da büyük kan damarları duperfüzyon kalitesini tehlikeye sokacaktır Bunu yaparken bu işlemi halka. </li><li> 10-20 ml% 4 PFA ve ardından 10-20 ml Heparin / tuzlu su ile transkardiyal serpmek. NOT: perfüzyon düzgün yapılırsa, karaciğer (Şekil 2D) tan kırmızı dönüşecektir. Eğer düzgün yapılmazsa, kan damarları görünür (Şekil 2E) olacaktır. </li><li> Onun karın üzerine fareyi çevirin, yeniden-pin ayakları daha sonra% 70 EtOH ile baş ve boyun sprey. Boyun tabanından cilt kaldırın ve bir kesi yapmak. Kafatası (Şekil 2F) açığa cilt çıkarın. Omuz seviyesinde baş başını kesmek. Yavaşça beyin kaldırmak, kafatası çıkarın ve% 4 PFA (Şekil 2G-lH) ile dolu bir sintilasyon şişesine içine yerleştirin. NOT: iyi perfüze Eğer, beyin görünür kan damarları (Şekil 2I) beyaz görünecektir. Beyin iyi perfüze değilse, kan damarları görünür (Şekil 2J) olacaktır. </li><li> Kıvılcımını yerleştirin4 ° C &#39;de% 4 PFA beyin yon şişe gece boyunca ışıktan sahiptir. Soğutulmuş 1X PBS ile donatılmış bir sintilasyon şişesine olmayan USP 1 x PBS&#39;de beyin ve transfer yıkayın. Işıktan kapalı 4 ° C &#39;de 1 x PBS&#39;de beyin, saklayın. NOT: Başarılı takas ve görüntüleme kadar bir ay süreyle 1x PBS içinde saklanan bölümler ile gerçekleştirilebilir, ancak PFA fiksasyon ters olacak ve PBS uzun süreli depolama gibi birkaç gün içinde beyin optimal görüntülerin daha az yol açabilecek bu bölümünde en iyi olduğunu olmuştur . Otofloresans ve artan bulanıklık bir ay veya daha uzun süre 1x PBS depolamadan sonra görüntülenmiş bazı bölümlerde not edilmiştir. </li></ol> 3. Beyin Kesit <ol style="margin-left: 40px;"><li> 1x PBS beyni çıkarın ve daha hassas sağlamak için bir beyin matrisi (Şekil 3A) içine yerleştirin ve hatta beynin içinden keser. Varsa, beyincik ve koku ampuller keserek, ve daha sonra 2 veya 3 bölüme koronal beyin kesti. <br /&gt; Not: Kırpma ve beyin kesme bir beyin matris yardımı olmadan yapılabilir. Vibratome kesme mesafesi bağlıdır koronal kesme bölümlerinin sayısı kullanılır. sagital ve koronal bölümleri en sık nöroanatomik tanımlama için kullanılır ama beyin, herhangi bir yönde kesitli olabilir. </li><li> Siyanoakrilat ile bir örnek montaj blok üzerine her beyin bölümü yapıştırın. Destek için beyin bölümünde (Şekil 3B) arkasında% 5 agaroz jel küçük bir blok yapıştırmayın. NOT: Diğer destek mekanizmaları kullanılabilir, ancak destek olmadan, Vibratome düzensiz kesitlerinin neden beyne itebilir. </li><li> Vibratome kalın bölümler 4 hızı ve 9 genliği ayarlanmış 160 mikron (görüntüleme için kullanılan objektif çalışma mesafesi) içine doku kesin. Not: hız ve genliği ayarlar özellikle makineye bağlı olarak ayarlanabilir, daha yumuşak bölümleri elde etmek için kullanılır. Ayarları iseDoğru değil, sonuç düzensiz bölümleri, doku ya da sohbet işaretleri yırtılma olabilir. </li><li> Onlar bir hafta içinde temizlenmiş olacak eğer 1x PBS soğutulmuş taze dolu bir parıldama şişesine, içine doku bölümleri toplayın. Bölümler bir hafta içinde temizlenmiş olacak değilseniz, -20 ° C&#39;de karyo-koruyucu solüsyon ve mağaza ile dolu 1.5 ml mikrosantrifüj tüpler içine yer bölümleri. </li></ol> Beyin Doku Bölüm 4. Optik Takas NOT: Bu protokol daha önce yayımlanmış bir yönteme 8 modifiye edilmiştir. <ol style="margin-left: 40px;"><li> 1x PBS +% 2 Tween-20 (Gl / PBST),% 25,% 50,% 75 ve% 90 hacim / hacim Gliserol hazırlayın. </li><li> Karyo-koruyucu olarak ise, 1 x PBS içerisinde çalkala ve% 25 Gl / PBST 10 ml su ihtiva eden bir parıltı şişesine transfer 1x PBS bölümleri çıkarmak ya da. 12 saat süre ile, maruz ışığa kapalı 4 ° C sıcaklıkta bir çalkalayıcı üzerinde yer tüpe konulmuştur. </li><li> Tüm bölümler bo battı olduğunu onaylayınŞişenin ttom. Kesitler daha sonra 12 saat süre ile, ışığa maruz kalma ile ilgili kapalı, 4 ° C&#39;de bir çalkalayıcı üzerinde 10 ml% 50 Gl / PBST ile şişe ve yerini doldurmak karşılamak için yeterli bırakarak,% 25 Gl / PBST aspire. % 75 Gl / PBST sonra% 90 Gl / PBST için bu işlemi tekrarlayın. Maksimal takas ulaşmak için 24 saat boyunca% 90 Gl / PBST bölümleri bırakın. Takas işleminin boyunca, kademeli optik takas (Şekil 4) gözlemlemek. NOT: çözüm bölümleri şişenin dibine battı hemen sonra değişti, bu süreç hızlandırılmış olabilir. % 75 ve% 90 çözümlerinde, bölümler şişenin dibine tüm yol lavabo olmaz ama ortada yüzer. </li></ol> 5. Montaj Beyin Doku Bölümler <ol style="margin-left: 40px;"><li> Bir ara parçası oluşturmak için 5 parçaya bir numaralı 1.5 lamel kesin. Şekil 5A gösterilen kesikli çizgiler boyunca lamel puan ve kırmak için bir cetvel ve elmas uçlu kalem kullanın. Sil to bir pencere oluşturmak için düz cam slayt 4 dış parçaları düzenlemek, parça merkezi, ve sonra doğru konfigürasyonda (Şekil 5B) slayt için aralama parçaları yapıştırmak için dikişleri üzerine şeffaf tırnak cilası fırça. NOT: boşluk slayt ve temizlenmiş bölümleri montajı için lamel arasında gerekli alan oluşturmak için kullanılır. lamel gerekli herhangi bir boyut penceresi oluşturmak için farklı şekillerde kesilebilir. Önceden kesilmiş köpük ara parçaları da ticari olarak temin edilebilir. Oje tamamen kuruması için, en az bir gün önce montaj bölümlere ayırıcılar ile slaytlar yapmak en iyisidir. </li><li> Ucu ile plastik bir transfer pipeti kullanarak bir slayt aktarın bölümleri kesti. % 90 Gl / PBST ile çevredeki doldurmak için emin olun. Dikkatle emin herhangi bir kabarcıkları tanıtmak için değil yapım bölümler üzerinde bir lamel düşük. Aşırı Gl / PBST bir tüy bırakmayan silin uzakta wicked olabilir. </li><li> Görüntü GFP + RFP içeren nöronlar + <em&gt; Konfokal mikroskop hemen (Şekil 7A-B) Daha sonra mağaza slaytlar düz ve 4 ° C&#39;de ışıktan kaplı ile Toxoplasma gondii kistler. NOT: Alternatif, mühür tamamen çevresindeki tüm kenarları saklamak ve daha sonra görüntülü slaytlar. Slayt mühür net oje kullanımı isteğe bağlıdır ve bir daha fazla işlem için daha sonraki bir tarihte slayt bölümleri kaldırmak olsaydı daha zor lamel kaldırmak için yapabilir. </li></ol> 6. Görüntüleme NOT: Herhangi bir mikroskop yüksek çözünürlüklü z yığınları elde yeteneğine sahip olduğu kullanılabilir. <ol style="margin-left: 40px;"><li> Başlangıçta 10X de odak düzlemi bulduktan sonra, bir 20X objektif değiştirmek ve bir GFP + hücre içinde bulunan bir kist tespit etmek bölümü üzerinden tarama. Görüş alanında ilgi (ROI) bölgesi Merkezlenmesi. </li><li> 40X objektif değiştirin. Emin olmak için tüm ROI ile yukarı ve aşağı odaklanın tüm hücre ve cySt görebilir. NOT: Görüntüler 40X / 1.30 Yağ DIC M27 amacı ile bir konfokal mikroskop kullanılarak elde edilmiştir. </li><li> Yüklü görüntüleme yazılımı kullanarak, kist ile tüm hücreyi içeren bir z-yığını edinin. Görüntüler elde etmek için kullanılan ortalama ayar, Şekil 6&#39;da gösterilmiştir. NOT: Ayarlar her araştırmacılar doku kesitlerinde ve mikroskop özelliklerine bağlı olarak ayarlanması gerekebilir. </li><li> 64 projeksiyonlar sayısını ayarlayarak tam dönme görünüm elde 1. projeksiyonlar sayısını ayarlayarak z-yığını maksimum projeksiyon görüntü elde. NOT: Diğer yazılım paketleri mevcuttur ve maksimum projeksiyon elde etmek için kullanılabilir, dönme gibi z-yığın görüntüleri diğer görünümler. </li><li> Görüntü analiz yazılımı ile görüntüyü analiz. </li></ol>

<ol><li>Luft, B., Remington, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasmic+encephalitis+in+AIDS%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Toxoplasmic encephalitis in AIDS.</a> Clin Infect Dis. 15 (2), 211-222 (1992).</li>
<li>Hill, D., Dubey, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasma+gondii%3A+transmission%2C+diagnosis+and+prevention%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Infect%22%5BJournal%5D)">Toxoplasma gondii: transmission, diagnosis and prevention.</a> Clin Microbiol Infect. 8 (10), 634-640 (2002).</li>
<li>Ingram, W. M., Goodrich, L. M., Robey, E., Eisen, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mice+infected+with+low-virulence+strains+of+Toxoplasma+gondii+lose+their+innate+aversion+to+cat+urine%2C+even+after+extensive+parasite+clearance%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Mice infected with low-virulence strains of Toxoplasma gondii lose their innate aversion to cat urine, even after extensive parasite clearance.</a> PloS one. 8 (9), 75246(2013).</li>
<li>Evans, A. K., Strassmann, P. S., Lee, I. -P., Sapolsky, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+Toxoplasma+gondii+cyst+distribution+in+the+forebrain+associate+with+individual+variation+in+predator+odor+avoidance+and+anxiety-related+behavior+in+male+Long-Evans+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Behav+Immun%22%5BJournal%5D)">Patterns of Toxoplasma gondii cyst distribution in the forebrain associate with individual variation in predator odor avoidance and anxiety-related behavior in male Long-Evans rats.</a> Brain Behav Immun. 37, 122-133 (2013).</li>
<li>Ferguson, D. J., Hutchison, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+host-parasite+relationship+of+Toxoplasma+gondii+in+the+brains+of+chronically+infected+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Virchows+Arch+A+Pathol+Anat+Histopathol%22%5BJournal%5D)">The host-parasite relationship of Toxoplasma gondii in the brains of chronically infected mice.</a> Virchows Arch A Pathol Anat Histopathol. 411 (1), 39-43 (1987).</li>
<li>Ferguson, D. J., Graham, D. I., Hutchison, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathological+changes+in+the+brains+of+mice+infected+with+Toxoplasma+gondii%3A+a+histological%2C+immunocytochemical+and+ultrastructural+study%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Exp+Pathol%22%5BJournal%5D)">Pathological changes in the brains of mice infected with Toxoplasma gondii: a histological, immunocytochemical and ultrastructural study.</a> Int J Exp Pathol. 72 (4), 463-474 (1991).</li>
<li>Melzer, T. C., Cranston, H. J., Weiss, L. M., Halonen, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+Cell+Preference+of+Toxoplasma+gondii+Cysts+in+Murine+Brain%3A+A+Confocal+Study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neuroparasitology%22%5BJournal%5D)">Host Cell Preference of Toxoplasma gondii Cysts in Murine Brain: A Confocal Study.</a> J Neuroparasitology. , (2010).</li>
<li>Selever, J., Kong, J. -Q., Arenkiel, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+approach+to+high-resolution+fluorescence+imaging+in+semi-thick+brain+slices%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A rapid approach to high-resolution fluorescence imaging in semi-thick brain slices.</a> J Vis Exp. (53), (2011).</li>
<li>Koshy, A., Fouts, A., Lodoen, M., Alkan, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasma+secreting+Cre+recombinase+for+analysis+of+host-parasite+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Toxoplasma secreting Cre recombinase for analysis of host-parasite interactions.</a> Nat Methods. 7 (4), 307-309 (2010).</li>
<li>Koshy, A. a, Dietrich, H. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasma+co-opts+host+cells+it+does+not+invade%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+pathog%22%5BJournal%5D)">Toxoplasma co-opts host cells it does not invade.</a> PLoS pathog. 8 (7), (2012).</li>
<li>Madisen, L., Zwingman, T. a, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+robust+and+high-throughput+Cre+reporting+and+characterization+system+for+the+whole+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain.</a> Nat Neurosci. 13 (1), 133-140 (2010).</li>
<li>Caffaro, C. E., Koshy, A. s, Liu, L., Zeiner, G. M., Hirschberg, C. B., Boothroyd, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+nucleotide+sugar+transporter+involved+in+glycosylation+of+the+Toxoplasma+tissue+cyst+wall+is+required+for+efficient+persistence+of+bradyzoites%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+pathog%22%5BJournal%5D)">A nucleotide sugar transporter involved in glycosylation of the Toxoplasma tissue cyst wall is required for efficient persistence of bradyzoites.</a> PLoS pathog. 9 (5), (2013).</li>
<li>Saeij, J. P. J., Boyle, J. P., Boothroyd, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+among+the+three+major+strains+of+Toxoplasma+gondii+and+their+specific+interactions+with+the+infected+host%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+parasitology%22%5BJournal%5D)">Differences among the three major strains of Toxoplasma gondii and their specific interactions with the infected host.</a> Trends in parasitology. 21 (10), 476-481 (2005).</li>
<li>Dubey, J. P., Lindsay, D. S., Speer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((a+Structures+of+Toxoplasma+gondii+tachyzoites%2C+bradyzoites%2C+and+sporozoites+and+biology+and+development+of+tissue+cysts%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">a Structures of Toxoplasma gondii tachyzoites, bradyzoites, and sporozoites and biology and development of tissue cysts.</a> Clin Microbiol Rev. 11 (2), 267-299 Forthcoming.</li>
<li>Prandota, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Possible+Link+Between+Toxoplasma+Gondii+and+the+Anosmia+Associated+With+Neurodegenerative+Diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Alzheimers+Dis+Other+Demen%22%5BJournal%5D)">Possible Link Between Toxoplasma Gondii and the Anosmia Associated With Neurodegenerative Diseases.</a> Am J Alzheimers Dis Other Demen. 29 (3), 205-214 (2014).</li>
<li>Berenreiterová, M., Flegr, J., Kuběna, A., Němec, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+distribution+of+Toxoplasma+gondii+cysts+in+the+brain+of+a+mouse+with+latent+toxoplasmosis%3A+implications+for+the+behavioral+manipulation+hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">The distribution of Toxoplasma gondii cysts in the brain of a mouse with latent toxoplasmosis: implications for the behavioral manipulation hypothesis.</a> PloS one. 6 (12), 28925(2011).</li>
<li>Ferguson, D. J., Hutchison, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+ultrastructural+study+of+the+early+development+and+tissue+cyst+formation+of+Toxoplasma+gondii+in+the+brains+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitol+Res%22%5BJournal%5D)">An ultrastructural study of the early development and tissue cyst formation of Toxoplasma gondii in the brains of mice.</a> Parasitol Res. 73 (6), 483-491 (1987).</li>
<li>De Chiara, G., Marcocci, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infectious+agents+and+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Infectious agents and neurodegeneration.</a> Mol Neurobiol. 46 (3), 614-638 (2012).</li>
<li>Scott, C. a, Rossiter, J. P., Andrew, R. D., Jackson, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+abnormalities+in+neurons+are+sufficient+to+explain+the+clinical+disease+and+fatal+outcome+of+experimental+rabies+in+yellow+fluorescent+protein-expressing+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Structural abnormalities in neurons are sufficient to explain the clinical disease and fatal outcome of experimental rabies in yellow fluorescent protein-expressing transgenic mice.</a> J Virol. 82 (1), 513-521 (2008).</li>
<li>Ke, M. -T., Fujimoto, S., Imai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SeeDB%3A+a+simple+and+morphology-preserving+optical+clearing+agent+for+neuronal+circuit+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">SeeDB: a simple and morphology-preserving optical clearing agent for neuronal circuit reconstruction.</a> Nat Neurosci. 16 (8), 1154-1161 (2013).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Enfekte konak hücrelerde hücresel değişiklikler gibi HIV, kuduz, ve Chlamydia 18,19 gibi diğer hücre içi organizmalar ile enfeksiyonlarda hastalık sonuçları ile bağlantılı olduğunu göz önüne alındığında, bize MSS arasında meydana samimi etkileşimleri çalışmak için izin verecek bir teknik geliştirdi hücre ve Toxoplasma ev sahipliği. Burada anlatılan yöntem kronik olarak enfekte nöronların verimli görüntüleme sağlayarak bu hedefe gerçekleştirir. Bu yöntemin gelişmesi önce, bu tür bir görüntüleme zaman ...

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/video/52237">"3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii"</a>. The ordering of the authors was inverted. The order has been updated from:
 Anita A. Koshy, Carla M. Cabral
to:
Carla M. Cabral, Anita A. Koshy

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/video/52237">"3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii"</a>.

Erratum: 3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii

Bu yöntemin genel amacı yüksek çözünürlük, zorunlu hücre içi parazit Toxoplasma gondii ile enfekte olan bireysel nöronlar üç boyutlu görüntüler elde etmektir. Toksoplazma sık sık insanları ve kemirgenler içeren geniş ara konak aralığı, en başarılı parazitlerin biri olarak kabul edilir. Insanlarda ve kemirgenler hem de, kontamine yiyecek veya su tüketilmesi yoluyla akut enfeksiyondan sonra, Toxoplasma formunu yavaş-kopyalayan onun hızlı kopyalayan formu (tachyzoite) dönüştürme ve encysting ile MSS kalıcı enfeksiyona neden yapabiliyor (bradyzoite ). Bağışıklığa sahip bireylerde bu gizli merkezi sinir sistemi enfeksiyonu nispeten asemptomatik olduğu düşünülmektedir, ancak, AİDS hastalarında ya da transplant alıcıları gibi bağışıklık sistemi baskılanmış kişilerde, parazitin açılma ölümcül Toksoplazma ensefalit 1,2 yol açabilir. Buna ek olarak, son çalışmalar hamekanizma bilinmemektedir olsa Toksoplazma latent infeksiyon, kemirgenler 3,4 davranışsal değişikliklere yol açabilir göstermiştir ettik. Şaşırtıcı, CNS- Toxoplasma etkileşimin önemini vurgulayarak, bu verilere rağmen, nispeten daha az, özellikle hücresel ve moleküler düzeyde, bu ilişki hakkında bilinmektedir. Beyin-parazit etkileşimi bile basit yönlerini incelemek için yeteneği teknolojik sınırlamalar kısmen engel olmuştur. Örneğin, işin çoğunluğu nöronlar kistler elektron mikroskobu (EM) 5,6 ile yapılmıştır devam ettiği hücrelerin olduğunu gösteren. EM yüksek çözünürlük verir rağmen, zaman alıcı, emek yoğun ve pahalı. İmmünofloresan (IF) tahlilleri son zamanlarda EM 7 tarafından yapılan işi onaylamak için konfokal mikroskobu ile birlikte kullanılmıştır. Deneyleri gerçekleştirmek için teknik olarak kolay ve nispeten ucuz, ama under bu teknikleri kullanarak IFtand kist ve enfekte nöron arasındaki mekansal ilişki süresi, teknik olarak zor alıcı ve değerli bilgiler kaybına yol açabilir seri rekonstrüksiyon gerektirir. Böylece, biz MSS toksoplazma fare modeli ile kullanılan ve EM veya immünohistokimyasal (İHK) olmadan görüntü enfekte nöronların tamamını bize izin verir edilebilir bir yöntem geliştirdik. Böyle bir teknik geliştirerek, biz nispeten hızlı ve ucuz bir şekilde enfekte hücre ve kist arasındaki ilişkiyi keşfetmeye hücresel başlayabilirsiniz. Geliştirdiğimiz yöntem parazit proteinleri 9,10 ile enjekte edilmiş in vivo hücrelerinde işaretleri bir sistem ile konfokal mikroskopi 8 ile optik takas ve görüntüleme kalın beyin bölümleri için yeni teknikler birleştirir. Bu sistemde, Toksoplazma rekombinasyonu 11 Kre-aracılı sonra yeşil floresan protein (GFP) ifade Cre raportör fareleri enfekte </em&gt; Kırmızı floresan proteini (RFP) ifade konak hücrelere 9 içine Cre recombinase enjekte suşları. Bu kombinasyon MSS enfeksiyonu kurulduktan sonra, enfekte fare beyin hasat kalın beyin bölümleri kesip, hızla RFP + kistleri bularak görüntüye uygun alanları belirlemek için bize izin verir. Bu GFP konakçı hücre GFP + hücrelerinin sayısı parazitleri 10 içermez, enfeksiyon parazitlerin Cre enjeksiyon yalnızca bağlıdır olup olarak dikkat etmek önemlidir. Bu protokolün amacı görüntü tüm enfekte nöronlar edebilmek için olduğu gibi, odak sadece GFP + ayrıca bir RFP + kist ihtiva nöronlar üzerinde, ancak protokol de görüntü GFP + / RFP kullanılabilir - nöronlar. Enfekte beyin hasat ve bölümlere sonra, bölümler gliserol takas yoluyla şeffaf hale getirilir. Bölümlerin uygun bölgeler daha sonra konfokal mikroskopi, arkadaşları ile görüntülüenfekte olmuş bir ev sahibi hücreleri ve bunların bir bütün olarak, keseli parazitlerin belirtilenlerin benzeri görüntüleme. Burada bir tanımlama için tam protokol, optik takas ve görüntüleme enfekte nöronlar sağlamak.

<table><tbody><tr><td>Vibratome Serisi 1000 Kesit Sistemi</td><td>Technical Products International, Inc.</td><td></td><td>Diğer vibratomlar uyumludur</td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP229-1</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP337-500</td><td></td></tr><tr><td>Premium Slaytlar</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-544-2</td><td></td></tr><tr><td>#1.5 Lameller</td><td>VWR</td><td>48393 251</td><td></td></tr><tr><td>Elmas Scriber</td><td>VWR</td><td>52865-005</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss LSM 510 Meta konfokal mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>LSM 510</td><td></td></tr><tr><td>Ketaject&reg; Ketamin HCl Inj., USP 100 mg / ml</td><td>Western Medical Supply, Inc.</td><td>4165</td><td></td></tr><tr><td>AnaSed&reg; Enjeksiyon Ksilazin 20 mg / ml</td><td>Lloyd Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ZsGreen Fareler</td><td>Jackson Laboratuvarları</td><td>7906</td><td>B6. Cg-Gt (ROSA) 26Sortm6 (CAG-ZsGreen1) Hze / J</td></tr><tr><td>Cerrahi ekipman</td><td></td><td></td><td>Başparmak forseps; İnce makas yana açılı, keskin-keskin; Keskin-keskin makas; Kelly kanama durdurucular; Mayonez makası; Mikro spatula.</td></tr><tr><td>İnsan Sünnet Derisi Fibroblastları (HFF) hücreleri</td><td></td><td></td><td>Bunlar insan sünnet derisinden elde edilen birincil hücrelerdir. Bunları kendi bünyemizde yapıyoruz ancak dış satıcılardan satın alınabilir.</td></tr><tr><td>Dulbecco'nun Yüksek Glikozlu Modifiye Eagles Ortamı (DMEM)</td><td>HyClone</td><td>SH30081.01</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin Streptomisin Çözeltisi, 100x</td><td>Corning</td><td>30-002-Cl</td><td></td></tr><tr><td>200 mM L-alanil-L-glutamin</td><td>Corning</td><td>25-015-Cl</td><td></td></tr><tr><td>25 cm2 Eğimli boyun şişesi</td><td>Fisher Scientific</td><td>1012639</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Salin, 1x Olmadan Kalsiyum ve Magnezyum</td><td>VWR</td><td>45000-446</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Salin, 10x, USP Steril Ultra Saf Sınıf</td><td>amresco</td><td>K813-500ml</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu</td><td>Gibco</td><td>26140-079</td><td></td></tr><tr><td>Parlak Çizgili Hemositometre</td><td>Sigma-aldrich</td><td>Z359629-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Fare Beyin Dilimleyici Matrisi</td><td>Zivic Instruments</td><td>BSMAS005-1</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Klorür</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP358-1</td><td></td></tr><tr><td>Domuz bağırsak mukozasından elde edilen heparin sodyum tuzu</td><td>Sigma-aldrich</td><td>H3393-100KU</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit</td><td>Fisher Scientific</td><td>O4042-500</td><td></td></tr><tr><td>20 ml Tek Kullanımlık Sintilasyon Şişeleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>FS74500-20</td><td></td></tr><tr><td>Alkol, Etil, %95, 190 Kanıt</td><td>Şirket İçi</td><td>17212945</td><td>Bu ürün, şirket içi bir depodan satın alınmıştır. Diğer şirketler uyumludur.</td></tr><tr><td>Imaris Software</td><td>Bitplane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clear oje</td><td></td><td></td><td>Diğer markalar uyumludur</td></tr><tr><td>Luer-Lok VWR ile 10 ml Şırınga</td><td></td><td>BD309604</td><td>Diğer şırıngalar uyumludur</td></tr><tr><td>Üç Musluk</td><td></td><td></td><td>Herhangi bir marka uyumludur</td></tr><tr><td>Hipodermik iğne</td><td></td><td></td><td>Herhangi bir marka uyumludur - fareyi sabitlemek için kullanılır.</td></tr><tr><td>Hücre Sıyırıcı</td><td></td><td></td><td>Herhangi bir marka uyumludur</td></tr><tr><td>25 G x 12" Boru, Güvenlik Kan Alma Seti, Luer Adaptörlü</td><td>Greiner Bio-One</td><td>450099</td><td>Diğer markalar uyumludur</td></tr></tbody></table>

nöronlar 3-d görüntüleme ve analiz enfekte İn vivo ile toxoplasma gondii

3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii

Toxoplasma gondii, insanlarda ve kemirgenler dahil olmak üzere, geniş bir konak yelpazesi ile bir obligat hücre içi parazit. Hem insanlarda hem de kemirgenler ise, Toxoplasma beyinde bir ömür boyu kalıcı enfeksiyon oluşturur. Bu beyin enfeksiyonu gelişmekte olan fetus ya da beyinde kazanılmış bağışıklık yetmezliği sendromu (AİDS) hasta için bu tercihte ve sebat gibi bağışıklık sistemi baskılanmış kişilerde, çoğu immün sistemi kişilerde asemptomatik iken yıkıcı nörolojik hastalığa yol açabilir. Böylece,-beyin-Toxoplasma etkileşim Toksoplazma tarafından üretilen semptomatik hastalığı kritik, henüz biz merkezi sinir sistemi (MSS) ve parazit hücreleri arasındaki hücresel veya moleküler etkileşim az bir anlayışa sahip olduğu açıktır. CNS fare modelinde bu nöronlar parazit devam ettiği hücreler 30 yıldır bilinmektedir toksoplazmozis, ama çok az bilgi hangi kullanılabilirnöronun parçası genellikle (soma, dendrit, akson) bulaşmış ve bu hücresel ilişki suşları arasında değişir eğer. Bölümünde, bu eksikliği görüntüleme zorluk sekonder ve bir hayvandan bütün enfekte nöronlar görselleştirme olduğunu. Bu tür görüntüler tipik seri kesitlerinin ve elektron mikroskobu veya immün sonra konfokal mikroskobu ile görüntülü doku dikiş gerektirir. Çeşitli teknikler birleştirerek, burada açıklanan yöntem immün gerek kalmadan üç boyutlu görselleştirme ve bireysel, kronik olarak enfekte nöronların analizini sağlayan, tespit ve kistler içeren görüntü tüm hücreleri kalın bölümlerin kullanımını (160 mikron) sağlayan, elektron mikroskobu veya seri kesit ve dikiş. Bu tekniği kullanarak, parazit ve enfekte nöron arasındaki hücresel ilişkiyi anlamak başlayabilirsiniz.

Şekil 7, A ve B, bu yeni olduğu kist içeren iki farklı 160 mikron kalınlığında kesitler aynı zamanda Şekil 7B'de kist-hücre vücut mesafenin bir temsili ölçüm. Şekil gelen GFP + nöronlar göstermektedir Şekil 7, iki temsili görüntüleri içerir Protokol, bir bütün olarak enfekte nöron olarak gösterebilir. Şekil 7C, bu görüntüleme tekniği ile birlikte, kist ve hücre gövdesi (Imaris 7.7) arasındaki mesafeyi ölçmek ...

Bu protokolü kullanarak, biz görselleştirme ve encysting parazitin enfekte nöron arasındaki mekansal ilişkinin analizini sağlayan parazit Toxoplasma gondii ile enfekte farelerde görüntü 160 mikron kalınlığında beyin bölümlerine başardık.

Nöronlar 3-D Görüntüleme ve Analiz Enfekte İn Vivo Ile Toxoplasma gondii

Toxoplasma gondii is an obligate, intracellular parasite with a broad host range, including humans and rodents. In both humans and rodents, Toxoplasma ...

Bu prosedürün genel amacı, Toxoplasma Gandhi kistleri ile enfekte olmuş nöronları tam olarak görselleştirmektir. Bu, ilk intraperitoneal enfekte Cree muhabir farelerinin M kirazını eksprese eden ve CRE rekombinazını konakçı hücrelere enjekte etmek üzere tasarlanmış parazitlerle gerçekleştirilir. CNS enfeksiyonu kurulduktan sonra, ikinci adım, heparin salin ile trans kardiyal perfüzyon ve ardından% 4 paraldehit yapmaktır.Daha sonra beyni hasat edin, koku ampullerini çıkarın ve atın, kalan beyni iki yarıya bölün, ardından yarımları 160 mikron kalınlığında bölümlere ayırın. Son adım, bölümleri dereceli gliserol PBS ara çözeltileri ile temizlemek ve bunları konfokal mikro mikroskopi ile görüntüleme için slaytlara monte etmektir. Sonuç olarak, görüntüler 3 boyutlu render ve analize izin veren yazılımlarla analiz edilebilir ve bu yöntem kist ile enfekte nöronlar arasındaki hücresel ilişkiyi göstermek için kullanılabilir.Bu tekniğin seri olarak, kesit alma, boyama ve kalın kesitleri yeniden yapılandırma gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, her ikisi de teknik olarak zor ve zaman alıcı olabilen boyama ve rekonstrüksiyon gereksinimlerini ortadan kaldırmasıdır. Bu prosedürü göstermek, laboratuvarımdan bir araştırma uzmanı olan Carla Cabral olacak. Bu prosedüre, Toxoplasma Gandhi ile enfekte olmuş fare beynini, beyincik ve koku alma ampullerini hassas ve hatta keserek bir beyin matrisine yerleştirerek başlayın.Sonra beyni iki koronal bölüme ayırın. Her beyin bölümünü Sano acrl ile bir numune montaj bloğuna sabitleyin. Daha sonra, destek için beyin bölümünün arkasına küçük bir %5 Aros jel bloğu yapıştırın.Dokuyu 160 mikronluk sabitleme bölümlerine kesin, dört hızda ve dokuz genlikte ayarlanmış bir viome ile. Ardından, doku kesitlerini bir hafta içinde temizleneceklerse, taze soğutulmuş bir XPBS ile doldurulmuş bir parıldama şişesine aktarın. Bölümler bir hafta içinde temizlenmeyecekse, kriyo koruyucu solüsyonla doldurulmuş 1,5 mililitrelik mikro santrifüj tüplerine koyun ve eksi 20 santigrat derecede saklayın.Şimdi bir XPBS'de hacim başına %25, %50, %75 ve %90 hacim gliserol artı %20 arasında hazırlayın. Daha sonra, bölümleri bir XPBS'den çıkarın veya kriyo koruyucu içindeyse, bunları bir XPBS'de durulayın ve 10 mililitre% 25 Gliserol PBST içeren bir parıldama şişesine aktarın. Kapalı şişeyi bir çalkalayıcı üzerine yerleştirin.Işığa maruz kalmamak için şişeyi örtün ve 12 saat boyunca dört santigrat derecede inkübe edin. 12 saat sonra, tüm bölümlerin şişenin dibine battığını onaylayın. % 25 gliserol PBST'yi aspire edin, bölümleri kaplayacak kadar bırakın.Daha sonra 10 mililitre% 50 gliserol PBST içeren bir şişe yapın. Şişeyi bir çalkalayıcıya yerleştirin ve ışıktan koruyun, 12 saat daha dört santigrat derecede inkübe edin. Bu işlemi% 75 gliserol PBST ve% 90 gliserol PBST için tekrarlayın, burada bölümler şişenin ortasında yüzer kalacaktır.Maksimum açıklığa ulaşmak için bölümleri %90 gliserol PBST'de 24 saat bırakın. Şimdi 1.5 numaralı kapak fişini bir cetvel ve elmas uçlu bir kalemle beş parçaya bölerek bir ara parça oluşturun. Orta parçayı atın ve bir pencere oluşturmak için dört dış parçayı düz bir cam slayt üzerine yerleştirin.Ardından, ara parçanın parçalarını doğru konfigürasyonda slayta yapıştırmak için dikişlerin üzerine şeffaf oje sürün. Ardından, ucu kesilmiş plastik bir pipet kullanarak bölümleri bir slayta aktarın. Çevredeki alanı %90 gliserol PBST ile doldurduğunuzdan emin olun.Ardından, bölümlerin üzerine dikkatlice bir kapak fişi yerleştirin ve herhangi bir kabarcık oluşturmamaya dikkat edin. Fazla gliserol PBST, tüy bırakmayan bir mendille dışarı atılabilir. Sonra. RFP pozitif Toxoplasma Gandhi kistleri içeren GFP pozitif nöronları konfokal mikroskopla görüntüleyin, bittiğinde slaytları düz bir şekilde saklayın ve dört santigrat derecede ışıktan kapalı tutun.Burada, RFP pozitif kistler içeren GFP pozitif nöronların maksimum projeksiyon görüntüleri gösterilmektedir. Bu, hücrenin 3D rotasyonel bir filmidir. Bu görüntü, kistin kenarı ile hücre gövdesinin kenarı arasındaki mesafenin iris tarafından oluşturulan doğrudan hat ölçümünü göstermektedir.Bu örnekte, mesafe 149 mikron olarak ölçülmüştür ve burada, kist ile hücre gövdesi arasındaki ortadan ortaya ve kenardan kenara ölçümü gösteren IMS tarafından oluşturulan bir 3D film verilmiştir. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, bu prosedürü takiben uygun şekilde gerçekleştirilirse dört ila beş gün içinde yapılabilir. Kistin normal nöronal fonksiyonu bozup bozmadığı gibi soruları cevaplamak için enfekte dendritler ve enfekte olmamış dendritler arasındaki baton sayısını saymak gibi ek analizler yapılabilir.

3-d-imaging-analysis-neurons-infected-vivo-with-toxoplasma

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Biz sürekli fare mikroglia görselleştirme ve dolaşımdaki monositler için bir yöntem...

Kronik İki foton için İnce kafatası Pencere Tekniği In vivo</emNöro-inflamasyon Modelleri murin mikroglia> Görüntüleme

Toxoplasma gondii doku kültürü modelleri taklit edilebilmektedir çevresel strese yanıt olarak bir kist formuna dönüşür. Bu video makrofajlar kemik iliği kaynaklı aktive veya fibroblast hücreleri büyüme orta pH değerini değiştirerek kist oluşumunu incelemek için teknikler gösterilmiştir.

Aktif Kemik İliği türetilen Makrofajlar ve Bradyzoite Koşullar Toxoplasma gondii Kist Duvar Oluşumu

Bir roman olarak lusiferaz ve in vivo görüntüleme sistemleri (IVIS) olarak kullanılması klinik gelişmeler ortaya çıkmadan hastalığın bitiş noktaları tespit etmek anlamına gelir. IVIS bizim gelecekteki çalışma için daha doğru bir hastalık modeli sağlayan, gerçek zamanlı olarak birden fazla gün içinde encephalitic virüs istilasına görselleştirmek için izin verdi. Bu da bize daha hızlı şu anda kullanılan hayvan modellerinde daha antiviral ve aşıların potansiyel koruyucu özellikleri tanımlamak için...

Bir Nöro-İnvazif encephalitic Virüs Vivo Görüntüleme Sistemleri (IVIS) Algılama

Kaynak: Zaeck, L.,  et al. Solventten Arındırılmış Beyin Dokusunda Kuduz Virüsü Enfeksiyonunun Yüksek Çözünürlüklü 3D Görüntülenmesi. J. Vis. Uzm. (2019).  Bu video, enfeksiyon ilerlemesini değerlendirmek için kuduz virüsü (RABV) ile enfekte olmuş fare beyin dokusunun hazırlanması ve görüntülenmesi sürecini göstermektedir. Floresan işaretleyicilerle doku boyama, dehidrasyon, temizleme ve konfokal lazer tarama mikroskobu için montaj dahil olmak üzere üç boyutlu bir temsilin oluşturulmasıyla...

Fare Beyin Dokusunda Kuduz Virüsü Enfeksiyonunun Üç Boyutlu Görüntülenmesi

Biz yüksek hızlı 3D canlı hücre floresan ışık mikroskobu ve yüksek çözünürlüklü kriyo-elektron tomografi birleştiren bir karşılıklı mikroskopi yöntemi açıklanmaktadır. Biz burada görüntüleme, dinamik ana HeLa hücreleri ile etkileşime küçük bir HIV-1 parçacıkların bağıntılı yöntemin özelliği göstermektedir.

Dinamik Etkileşimler 3D Yapısal Analiz için karşılıklı Mikroskopi

Ince yapı analizi için nöronal işlemleri korumak için, camsı bir buz tabakası içinde süspansiyon haline numune verecek şekilde flaş dondurma, ardından elektron mikroskobu taramalarında primer nöron kaplanması için bir protokol açıklar. Bu örnekler nanometre ölçeğinde yapıları görselleştirmek için bir kriyo-elektron mikroskobu ile muayene edilebilir.

Cryo-Elektron Tomografi kullanma Frozen-hidratlı Devlette neurites görselleştirme İlköğretim Nöronlar hazırlanması

Yeni, immünostasyon uyumlu doku Temizleme teknikleri gibi solvent temizlenmiş organların nihai 3D görüntüleme kuduz virüsü beyin enfeksiyonu ve karmaşık hücresel çevre 3D görselleştirme sağlar. Kalın, antikor etiketli beyin dokusu dilimleri, görüntüleme derinliğini artırmak ve konfetik lazer tarama mikroskobu ile 3D analizini sağlamak için optik olarak şeffaf hale gelmiştir.

Solvent-temizlenmiş beyin dokusu kuduz virüs enfeksiyonu yüksek çözünürlüklü 3D görüntüleme

Açıklanan boru hattı, gigabaytlardan daha büyük elektron mikroskobu veri kümelerinin tüm hücre morfolojilerini ayıklamak için segmentasyonu için tasarlanmıştır. Hücreler 3B olarak yeniden oluşturulduktan sonra, bireysel ihtiyaçlar etrafında tasarlanmış özelleştirilmiş yazılım, görüntüleme tıkanıklığının üstesinden gelmek için sanal gerçekliği kullanarak doğrudan 3D olarak nitel ve nicel bir analiz yapmak için kullanılabilir.

Glial ve Nöronal Hücrelerin 3D Rekonstrüksiyonu ve Sanal Gerçeklik Analizi Için Bir Yöntem

Mevcut protokol, bozulmamış, temizlenmiş organ ve dokulardaki çoğalan ve uykuda olan Trypanosoma cruzi parazitlerini ve T hücrelerini görselleştirmek ve hassas bir şekilde ölçmek için ışık tabakası floresan mikroskopisi ve otomatik yazılım destekli yöntemleri açıklamaktadır. Bu teknikler, tedavi sonuçlarını değerlendirmek için güvenilir bir yol sağlar ve parazit-konakçı etkileşimlerine yeni bakış açıları sunar.

Sağlam Berraklaştırılmış Organlarda Tripanosoma Cruzi ile Enfekte Hücrelerin, Uykuda Olan Amastigotların ve T Hücrelerinin Kantitatif 3D Görüntülenmesi

Bu makale, insana özgü bir anti-CD19 monoklonal antikorun radyo-etiketlenmesi için metodolojiyi ve bunun in vivo PET görüntüleme, ex vivo gama sayımı ve otoradyografi yaklaşımlarını kullanarak bir fare multipl skleroz modelinin periferik dokularındaki B hücrelerini ölçmek için nasıl kullanılacağını detaylandırmaktadır.

Pozitron Emisyon Tomografisi Kullanılarak Deneysel Otoimmün Ensefalomiyelit Fare Modelinde CD19+ B Hücrelerinin Görüntülenmesi

Burada, enfeksiyon sırasında patojenik bakterilerin organ çapında tespit edilmesini ve floresan raportör aktivitelerinin miktarını belirlemeyi sağlayan bir prosedürü açıklıyoruz.

Mikrobiyal enfeksiyonların yüksek çözünürlüklü üç boyutlu tüm organ tomografisi

Öğrenin, fare beyin kesilerinde Toxoplasma gondii kistleriyle enfekte nöronları 3 boyutlu görüntüleme ve analiz yöntemini. Konfokal mikroskopi ile parazit-hücre ilişkisini detaylı inceleyin.

Nöronlar 3-D Görüntüleme ve Analiz Enfekte İn Vivo Ile Toxoplasma gondii

Daha fazla video keşfet