Name: Matrix Modifikasyon Bağlı Hücresel Yapışma ve De-yapışma Real-time Değişiklikleri Tedbir Hücre-substrat Empedans ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 11 s
Description: Öğrenin, endotelyal hücrelerde matris modifikasyonuna bağlı hücre yapışma ve de-yapışma süreçlerini hücre-substrat empedans ve canlı hücre görüntüleme ile gerçek zamanlı ölçme yöntemini.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (NHMRC) Proje Hibe 568721 (SRT) ve kısmen UNSW Tıp Fakültesi Araştırma Bursu (MDR) tarafından finanse edilmiştir.

1. Genel Endotel Hücre Kültürü
<ol>
	<li>EGM-2 ortamında (% 5 fetal sığır serumu, büyüme faktörleri ve hidrokortizon hariç üretici tarafından sağlanan tüm takviyeleri içeren EGM-2 mermi kiti ile) jelatin kaplı doku kültürü şişelerinde (doku kültürü yüzeyini 15 dakika boyunca RT'de PBS'de% 0.1 w / v jelatin ile kaplayın) sığır aort endotel hücrelerinin (pasaj 4-9)</li> kültürü.
	<li>Hücreler birleşime yakın olduğunda (1: 4 bölünmeden sonra tohumlamadan yaklaşık 3 gün sonra), hücreleri 37 ° C'de PBS'de% 0.05 w / v tripsin ve/% 0.02 w / v EDTA ile muamele ederek hasat edin. Hücrelerin çoğu ayrıldıktan sonra, tripsini söndürmek için tam EGM-2 ortamı ekleyin ve ardından santrifüjleyin (100 x g, 5 dakika).</li>
	<li>Endotel hücrelerinin fibronektine de novo yapışması (Deney 1: Bölüm 2) ve daha sonra bu substrat üzerinde yerleşik yapışma ile endotel hücrelerinin adezyonun kaldırılması (Deney 2: Bölüm 3) ile ilgili çalışmalar için hücreleri hazırlayın.
	<ol>
		<li>Hasat edilen hücreleri bir kez% 1 w / v sığır serum albümini (BSA) ve yeniden santrifüj (100 x g, 5 dakika) içeren serumsuz Medium 199 ile yıkayın.</li>
		<li>2.5 x 105 hücre / ml (hücre-substrat empedans ölçümleri) veya 5 x 105 hücre / ml'de (canlı hücre görüntüleme analizleri) %1 w/v BSA içeren serumsuz Ortam 199'daki hücreleri yeniden askıya alın ve kullanmadan önce 37 ° C'de koruyun. 
		NOT: Hücrelerin yapışma tepkileri sıcaklık farklılıklarına karşı oldukça hassastır (örneğin, konveksiyon etkilerinden dolayı), bu nedenle aşağıdaki protokoller sırasında hücreleri işlemek ve tedavi etmek için kullanılan tüm ekipman ve solüsyonlar 37 °C'lik sabit bir sıcaklıkta tutulmalıdır.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Deney 1: Doğal ve MPO-Oksitlenmiş Fibronektin Üzerinde De Novo Endotel Hücre Adezyonunun Ölçülmesi (Hücre-substrat Empedansı)
NOT: Deney 1, fibronektinin MPO aracılı oksidasyonunun, askıya alınmış endotel hücrelerinin de novo yapışmasını destekleme yeteneğini ne derece bozduğunu inceler.
<ol>
	<li>Fibronektini 96 oyuklu altın hücre-substrat empedans mikroelektrot dizileri üzerine kaplayın. PBS'ye 5 μg / ml'de 80 μl / kuyu saflaştırılmış sığır fibronektini ekleyin, 37 ° C'de 2 saat inkübe edin ve çözeltiyi çıkarın.</li>
	<li>MPO'nun yüzeye bağlı fibronektine bağlanmasına izin vermek için fibronektin kaplı yüzeyleri MPO ile inkübe edin. Hank'in dengeli tuz çözeltisine (HBSS) 20 nM'de 80 μl / kuyu saflaştırılmış insan nötrofil MPO ekleyin ve 37 ° C'de 0,5 saat inkübe edin.</li>
	<li>Bağlanmamış MPO'yu çıkarmak için yüzeyleri HBSS ile iki kez yıkayın.</li>
	<li>MPO katalizli, HOCl'ye bağlı fibronektin oksidasyonunu başlatmak için 80 μl / kuyucuk HBSS içeren mikroelektrot dizi plakasının kuyucuklarına H2O2 (0-10 μM nihai konsantrasyon) ekleyin ve 37 ° C'de 0,5 saat daha inkübe edin.</li>
	<li>MPO katalizli reaksiyonların ilgili inhibitörlerinin veya modülatörlerinin etkisini incelemek için (örneğin, alternatif MPO enzim substratları, enzim inhibitörleri veya antioksidanlar; ayrıntılar için9'a bakınız), bunlarıH2O2ilavesinden hemen önce HBSS'ye ekleyin.</li>
	<li>0,5 saat sonra, artık yüzeye bağlı oksitleyici türleri söndürmek için yüzeylere metiyonin uygulayın; yani, kafa karıştırıcı hücresel aktiviteler uygulayabilen reaktif proteine bağlı kloraminler. Oyuk başına 80 μl HBSS'de 10 mM metiyonin ekleyin ve 37 ° C'de 10 dakika inkübe edin.</li>
	<li>BSA ile yüzeyleri engelleyin. PBS'de %0,2 w/v oranında 80 μl/kuyu BSA ekleyin, 37 ° C'de 2 saat inkübe edin ve çözeltiyi çıkarın. 
	NOT: Artık kaplanmamış yüzey bölgeleri, hücre yapışmasını destekleyecektir ve bunların yapışkan olmayan bir protein (yani BSA) ile bloke edilmesi, hücresel yapışma tepkilerinin kesinlikle kullanılan saflaştırılmış hücre yapışkan matrisine, bu durumda fibronektine bağlı olmasını sağlar.</li>
	<li>Yüzeyleri HBSS. ile iki kez yıkayın
	NOT: Yukarıdaki yüzey işlemlerinden hiçbiri hücre-substrat okumalarını önemli ölçüde etkilemez.</li>
	<li>Tohum süspanse endotel hücreleri (yaklaşık 2.5 x 105 hücre / ml'de 200 μl / kuyu ekleyin,% 1 BSA içeren serumsuz Ortam 199'da hazırlanır; bkz. 1.3) doğal veya MPO ile oksitlenmiş fibronektin kaplı yüzeyler üzerine.</li>
	<li>Hücreleri tohumladıktan hemen sonra (yani, herhangi bir hücre bağlanması ve yayılmasından önce), mikroelektrot dizi plakasını inkübatör portuna monte edin (% 5 CO2 varlığında 37 ° C'lik bir inkübatöre yerleştirilmiştir).
	<ol>
		<li>Cihaz yazılımını kullanarak, sonraki hücre-substrat empedansı ('hücre indeksi') değerlerini, hücre yapışmasının yokluğunda elde edilen ilk arka plan değerlerine normalleştirmek için hemen 'boş' bir okuma yapın.</li>
		<li>Sürekli hücre indeksi verilerinin alımını başlatın (en az bir hücre indeksi okuması/dak).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Hücreleri 37 ° C ve% 5 CO2'de 2 saat boyunca inkübe edin, bu süre zarfında maksimum hücre bağlanması ve yayılmasının sağlandığı bir süre; bu, hücre indeksi değerlerinin platosu ile yansıtılır (bkz. Şekil 3A). 
	NOT: Önceki deney (Deney 1), fibronektinin ilk MPO aracılı oksidasyonunun, endotel hücrelerinin bu substrat üzerinde hücre yapışması oluşturma yeteneğini nasıl sınırladığını inceler. Aşağıdaki deney (Deney 2), MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun, bu substrat üzerine yerleşik yapışma ile endotel hücrelerinde hücre matrisi yapışmasında (yani yapışmanın kesilmesi) azalmayı nasıl desteklediğini incelemektedir. Bu iki deneydeki tedaviler, MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun zamanlaması dışında (yani, hücre yapışmasından önce - Deney 1; hücre yapışmasından sonra - Deney 2) temelde aynıdır.</li>
</ol>
3. Deney 2: MPO Aracılı Fibronektin Oksidasyonuna Yanıt Olarak Fibronektinden Endotel Hücre Deadezyonunun Ölçülmesi (Hücre-substrat Empedansı ve Canlı Hücre Görüntüleme)
<ol>
	<li>Hücre-substrat empedans ölçümleri için fibronektini 96 oyuklu altın mikroelektrot dizileri üzerine kaplayın (PBS'de 5 μg/ml'de 80 μl/kuyu fibronektin ekleyin ve 37 °C'de 2 saat inkübe edin) veya canlı hücre görüntüleme analizleri için 35 mm cam tabanlı hücre kültürü kapları (PBS'de 5 μg/ml'de 2 ml/tabak fibronektin ekleyin ve 37 °C'de 2 saat inkübe edin).</li>
	<li>BSA ile yüzeyleri engelleyin. 3.1'de belirtilen hacimlerde PBS'de ağırlıkça %0.2 BSA ekleyin ve 37 ° C'de 2 saat inkübe edin.</li>
	<li>MPO'nun fibronektine bağlanmasına izin vermek için yüzeyleri MPO ile inkübe edin. 3.1'de belirtilen hacimlerde HBSS'ye 20 nM saflaştırılmış insan MPO'su ekleyin ve 37 ° C'de 0.5 saat inkübe edin.</li>
	<li>Bağlanmamış MPO'yu çıkarmak için yüzeyleri HBSS ile iki kez yıkayın.</li>
	<li>Tohum süspanse endotel hücreleri (serumsuz Ortam 199'da hazırlanır, % 1 w / v BSA içerir; bkz. 1.3) doğal veya MPO içeren fibronektin kaplı yüzeylere.
	<ol>
		<li>96 kuyulu hücre-substrat empedans mikroelektrot dizisine 2.5 x 105 hücre / ml'de 200 μl / kuyu ekleyin.</li>
		<li>35 mm cam tabanlı hücre kültürü kaplarına 5 x 105 hücre/ml'de 2 ml / tabak ekleyin.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Hücreleri tohumladıktan hemen sonra (yani, herhangi bir hücre bağlanması ve yayılmasından önce):
	<ol>
		<li>96 kuyulu mikroelektrot dizi plakasını hücre-substrat empedans inkübatör portuna (% 5 CO2 varlığında 37 ° C'lik bir inkübatöre yerleştirilmiştir) monte edin ve hücre indeksi verilerinin sürekli alımını başlatmak için 'boş' okumalar yapın (bkz. Bölüm 2.10).</li>
		<li>35 mm cam tabanlı hücre kültürü kaplarını %5 CO2 varlığında 37 °C'lik bir inkübatöre aktarın.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Maksimum hücre bağlanmasına ve yayılmasına izin vermek için hücreleri 37 °C'de 2 saat inkübe edin (bkz. Bölüm 2.11).</li>
	<li>96 kuyulu mikroelektrot dizi plakasını (bu noktada hücre indeksi okumalarını duraklatın) veya 35 mm cam tabanlı hücre kültürü kabını 37 °C inkübatörden kısaca çıkarın, hücre süpernatantını çıkarın ve ısıtılmış (37 °C) HBSS ekleyin (adım 3.1'e göre hacimler). 
	NOT: HBSS, tam kültür ortamı yerine MPO katalizli oksidatif reaksiyonlar incelenirken kullanılır, çünkü ikincisi oksidasyon reaksiyonlarına müdahale eden oksitlenebilir türler içerir.</li>
	<li>MPO katalizli reaksiyonların (alternatif enzim substratları, enzim inhibitörleri veya antioksidanlar) veya hücre sinyal inhibitörlerinin (örneğin, aktomiyosin kasılmasını inhibe etmek için 40 μM blebbistatin) inhibitörlerinin / modülatörlerinin etkisini incelemek için bunları şimdi ekleyin.</li>
	<li>Mikroelektrot dizi plakasını hemen 37 °C inkübatör portuna (bu noktada hücre indeksi okumalarını yeniden başlatın) veya 35 mm cam tabanlı hücre kültürü kabını 37 °C inkübatöre geri yerleştirin ve hücrelerin HBSS'de 0,5 saat 
	NOT: HBSS'de 0,5 saatlik dengelemeden sonra, hücre indeksi değerleri biraz daha düşük değerlerde stabilize olur; Hücreleri enzim substratları, enzim ve hücre sinyal inhibitörleri veya antioksidanlarla önceden inkübe ederken, önce bunların dengelemeden sonra elde edilen değerleri önemli ölçüde etkilemediğinden emin olun.</li>
	<li>MPO katalizli, HOCl'ye bağımlı fibronektin oksidasyonunu ve yapışmayı giderin.
	<ol>
		<li>96 kuyulu mikroelektrot dizi plakası kullanan hücre empedansı çalışmaları için:
		<ol>
			<li>Mikroelektrot dizi plakasını inkübatörden çıkarın ve hücre indeksi ölçümlerini duraklatın.</li>
			<li>HBSS'ye H2O2(son konsantrasyon 0-10 μM) ekleyin ve tekrarlanan pipetleme ile hafifçe karıştırın.</li>
			<li>Hemen, mikroelektrot dizisini 37 °C inkübatör portuna yeniden monte edin ve hücre indeksi okumalarının alımını yeniden başlatın.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>35 mm cam tabanlı hücre kültürü kabı kullanılarak yapılan canlı hücre görüntüleme çalışmaları için:
		<ol>
			<li>Kültür kabını inkübatörden çıkarın ve canlı hücre filmlerini kaydetmek için uygun DIC optiklere sahip 63X su objektif lensi ile donatılmış ters konfokal bir mikroskobun 37 °C ısıtılmış bir aşamasına monte edin.</li>
			<li>Hücrelere odaklanın ve DIC optiklerini optimize edin (Köhler aydınlatması, önyargı geciktirme ve kamera ofseti/kazancı; ayrıntılar için bkz.13).</li>
			<li>DIC filmini başlatın ve 1 dakika boyunca tedavi edilmemiş hücrelerin temel okumalarını kaydedin.</li>
			<li>H2O2(son konsantrasyon 0-10 μM) ekleyin ve tekrarlanan pipetleme ile hafifçe karıştırın. Mikroskobu yeniden odaklayın (gerekirse) ve istenen süre boyunca tedavi edilen hücrelerin DIC filmlerini kaydetmeye devam edin.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Veri Analizi ve Sunumu
<ol>
	<li>Hücre-substrat empedans verileri
	<ol>
		<li>Ham verileri (zamana karşı hücre dizini) bir elektronik tabloya aktarın.</li>
		<li>Hücre yapışma giderme çalışmaları için (Deney 2: Bölüm 3), MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun başlamasından hemen önce kaydedilen değerleri 1 değerinde ayarlayarak verileri normalleştirin (yani, 3.11.1.1'de H2O2 ilavesinden hemen önce). 
		NOT: Bu, MPO aracılı fibronektin oksidasyonu ile ortaya çıkan hücre indeksi değerlerindeki nispi değişikliklerin, kuyucuklar arasındaki mutlak hücre indeksi değerlerindeki küçük başlangıç farkları tarafından maskelenmemesini sağlar.
		<ol>
			<li>Verileri normalleştirilmiş hücre indeksi (y ekseni) ve zamana (x ekseni) karşı grafikleri olarak sunun.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Canlı hücre görüntüleme verileri (Deney 2: Bölüm 3'teki hücre yapışma giderme çalışmaları)
	<ol>
		<li>Standart bir görüntü analiz programında (örneğin, ImageJ yazılımı) MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun başlamasından hemen önce ve sonra kaydedilen DIC canlı hücre görüntüleme filmlerini açın.</li>
		<li>En az iki ayrı DIC filminde, rastgele birden fazla hücre seçin ve yansıtılan alanlarını, zar kenarlarını manuel olarak izleyerek ve kapalı piksellerin sayısını ölçerek sıralı kareler halinde (örneğin, 1 dakikalık aralıklarla) ölçün.</li>
		<li>Ham verileri (zamana karşı öngörülen hücre alanı) bir Excel elektronik tablosuna aktarın ve MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun başlamasından hemen önce kaydedilen değerleri 1 değerinde ayarlayarak hücre alanı verilerini normalleştirin (yani, 3.11.2.3'te H2O2 eklenmesinden hemen önce).</li>
		<li>Verileri, normalleştirilmiş hücre alanı (y ekseni) ve zamana (x ekseni) karşı bir grafiği olarak sunun.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Wu, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+focal+adhesions+and+barrier+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Endothelial focal adhesions and barrier function.</a> J Physiol. 569, 359-366 (2005).</li>
<li>Geiger, B., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+architecture+and+function+of+matrix+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Perspect+Biol%22%5BJournal%5D)">Molecular architecture and function of matrix adhesions.</a> Cold Spring Harb Perspect Biol. 3, (2011).</li>
<li>Rees, M. D., Kennett, E. C., Whitelock, J. M., Davies, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxidative+damage+to+extracellular+matrix+and+its+role+in+human+pathologies%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Oxidative damage to extracellular matrix and its role in human pathologies.</a> Free Radic Biol Med. 44, 1973-2001 (2008).</li>
<li>Cox, T. R., Erler, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodeling+and+homeostasis+of+the+extracellular+matrix%3A+implications+for+fibrotic+diseases+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Remodeling and homeostasis of the extracellular matrix: implications for fibrotic diseases and cancer.</a> Dis Model Mech. 4, 165-178 (2011).</li>
<li>Baldus, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+transcytosis+of+myeloperoxidase+confers+specificity+to+vascular+ECM+proteins+as+targets+of+tyrosine+nitration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Endothelial transcytosis of myeloperoxidase confers specificity to vascular ECM proteins as targets of tyrosine nitration.</a> J Clin Invest. 108, 1759-1770 (2001).</li>
<li>Baldus, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+mapping+of+pulmonary+and+vascular+nitrotyrosine+reveals+the+pivotal+role+of+myeloperoxidase+as+a+catalyst+for+tyrosine+nitration+in+inflammatory+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Spatial mapping of pulmonary and vascular nitrotyrosine reveals the pivotal role of myeloperoxidase as a catalyst for tyrosine nitration in inflammatory diseases.</a> Free Radic Biol Med. 33, 1010-1019 (2002).</li>
<li>Thomas, S. R., Witting, P. K., Drummond, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redox+control+of+endothelial+function+and+dysfunction%3A+molecular+mechanisms+and+therapeutic+opportunities%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxid+Redox+Signal%22%5BJournal%5D)">Redox control of endothelial function and dysfunction: molecular mechanisms and therapeutic opportunities.</a> Antioxid Redox Signal. 10, 1713-1765 (2008).</li>
<li>Rees, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloperoxidase-derived+oxidants+selectively+disrupt+the+protein+core+of+the+heparan+sulfate+proteoglycan+perlecan%5BTitle%5D)+AND+%22Matrix+Biol%22%5BJournal%5D)">Myeloperoxidase-derived oxidants selectively disrupt the protein core of the heparan sulfate proteoglycan perlecan.</a> Matrix Biol. 29, 63-73 (2010).</li>
<li>Rees, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+subendothelial+matrix+oxidation+by+myeloperoxidase+triggers+myosin+II-dependent+de-adhesion+and+alters+signaling+in+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Targeted subendothelial matrix oxidation by myeloperoxidase triggers myosin II-dependent de-adhesion and alters signaling in endothelial cells.</a> Free Radic Biol Med. 53, 2344-2356 (2012).</li>
<li>Solly, K., Wang, X., Xu, X., Strulovici, B., Zheng, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+real-time+cell+electronic+sensing+%28RT-CES%29+technology+to+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Assay+Drug+Dev+Technol%22%5BJournal%5D)">Application of real-time cell electronic sensing (RT-CES) technology to cell-based assays.</a> Assay Drug Dev Technol. 2, 363-372 (2004).</li>
<li>Giaever, I., Keese, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micromotion+of+mammalian+cells+measured+electrically%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Micromotion of mammalian cells measured electrically.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88, 7896-7900 (1991).</li>
<li>Vissers, M. C., Thomas, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypochlorous+acid+disrupts+the+adhesive+properties+of+subendothelial+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Hypochlorous acid disrupts the adhesive properties of subendothelial matrix.</a> Free Radic Biol Med. 23, 401-411 (1997).</li>
<li>Ziv, N. E., Schiller, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Interference+Contrast+%28DIC%29+Imaging+of+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Differential Interference Contrast (DIC) Imaging of Living Cells.</a> CSH Protoc. 2007, (2007).</li>
<li>Kennett, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peroxynitrite+modifies+the+structure+and+function+of+the+extracellular+matrix+proteoglycan+perlecan+by+reaction+with+both+the+protein+core+and+the+heparan+sulfate+chains%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Peroxynitrite modifies the structure and function of the extracellular matrix proteoglycan perlecan by reaction with both the protein core and the heparan sulfate chains.</a> Free Radic Biol Med. 49, 282-293 (2010).</li>
<li>Sen, S., Ng, W. P., Kumar, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contractility+dominates+adhesive+ligand+density+in+regulating+cellular+de-adhesion+and+retraction+kinetics%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Contractility dominates adhesive ligand density in regulating cellular de-adhesion and retraction kinetics.</a> Ann Biomed Eng. 39, 1163-1173 (2011).</li>
<li>Wildt, B., Wirtz, D., Searson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmed+subcellular+release+for+studying+the+dynamics+of+cell+detachment%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Programmed subcellular release for studying the dynamics of cell detachment.</a> Nat Methods. 6, 211-213 (2009).</li>
</ol>

Yazarların yapacak herhangi bir açıklaması yoktur.

Hücre-matris yapışma ve yapışma giderme işlemleri, hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntüleme analizleri kullanılarak yüksek zamansal çözünürlükle gerçek zamanlı olarak doğru bir şekilde ölçülebilir. Bu gerçek zamanlı yaklaşımlar, zayıf zamansal çözünürlük sağlayan hücre yapışmasının uç nokta analizlerine göre büyük bir avantaj sağlar. Bu analizler, yüksek zamansal çözünürlükle hızlı adezyon giderme tepkilerini doğru bir şekilde ölçerek, matris modifikasyonlarına verilen morfolojik tepkilerin nasıl düzenlendiğin...

Hücreler ve kendi çevre hücre dışı matris arasındaki kararlı yapışkan temas doku homeostazının muhafaza için gereklidir. Örneğin, kan damarlarında endotel altı matris endotelyal hücre yapışma endotelyal tabakanın bütünlüğünü ve düzenleme, yarı geçirgen bir bariyer vasküler 1 olarak homeostatik fonksiyonunu korumada bir rol oynar. aktin hücre iskeleti mekanik merkezi yönlendirilmiş aktomizin çekme güçlerine karşı hücre zarı konumunu belirlemede önemli bir rol oynadığı hücre-matris arayüz de hücre-matris yapışma ve yapışkan temas bölgelerinde matris moleküllerini yapışkan ile birleştirilir. Mutlaka hücre-matriks arayüzünde güçler dengesini, hızla bir olay alter hücre-matriks yapışmasını değiştiren Ekstrasellüler uyaranlara &quot;dış-iç sinyal&quot; transdüksiyonunda sonuçlanan, mekano duyarlı sinyal proteinleri tarafından &#39;algılanan&#39;. Bu çapraz-konuşma bahisrinde hücreleri ve kendi çevre hücre dışı matris hücre şekli, motilite, işlev proliferasyonu ve hayatta kalma 2 kontrol edilmesinde anahtar bir rol oynar. Çeşitli pato-fizyolojik süreçler (embriyonik gelişme, iltihaplanma, yara iyileşmesi, kanser metastazı) matris derecelendirme oksidanlar ve / veya enzimler 3,4 yapışkan matris maddeleri dinamik yeniden ile karakterize edilir. Örneğin, kan damarlarında endotel altı matris proteinleri yapışkan (örneğin, fibronektin) bağlı reaktif oksidanlar lokal üretimi için insan iltihaplı hastalıklarda değiştirilmesi veya bozulması için önemli bir hedef olarak implike edilmiştir (örneğin, hipokloröz asit, HOCl) lökositten türetilmiş bir enzimle inflamatuar damar hastalığı (Şekil 1) 5-9 esnasında subendotelyuma içinde birikir miyeloperoksidaz (MPO),. MPO türetilmiş oksidanlar ve diğer matris-modifiye, uyarıcıya tepki olarak hücre-matris yapışma değişiklikler lik olanda endotel fonksiyonu ve bariyer bütünlüğünü bozarak endotel hücre sinyal, morfolojisi ve canlılığı, değiştirerek, örneğin; ely patolojik süreçlerin çeşitli sırasında vasküler homeostazı değiştirerek önemli roller oynamaya. Ancak, hücre dışı matriks değişiklikler yapışık hücrelerin morfolojik ve hücre sinyal tepkiler sadece anlaşılmaya başlıyor. Matris değişiklikler hücre yapışması dinamikleri ve yapışma-bağımlı hücre sinyal yolları değişiklikleri sürücü anlamak için, teknikler doğru yüksek zamansal çözünürlüğe sahip, gerçek zamanlı hücre-matriks yapışma değişiklikleri ölçmek olduğunu gereklidir. Burada, biz tamamlayıcı hücre-substrat empedansını ve bu kriterleri yerine getirmek ve non-invaziv bir şekilde hücre yapışmasını ve de-yapışma süreçleri ölçmek için bir platform sağlamak canlı hücre görüntüleme teknikleri tarif. Biz göstermek nasıl bu hücre-substrat empedans ve canlı hücre görüntüleme beğenmeağrıları hali hazırda hücre eki dinamiklerini izlemek ve doğal ve modifiye matris substratlar üzerine (örneğin, de novo hücre yapışması) yayılma ve (ii) (örneğin, de-yapışma hücre-matris ayrılma dinamiklerini ölçmek için (i) için kullanılabilir ) matris-modifiye uyaranlara maruz yapışık hücreler tarafından. XCELLigence hücre alt-tabaka empedans biyosensör sistemi 96 oyuklu altın mikroelektrot dizileri yüzeyinde elektrik empedansı ölçmek suretiyle hücre-matris temas alanının bir sürekli ölçme, &quot;hücre dizini &#39;, boyutsuz bir değerdir ve bu elektrik empedans ölçümleri ifade eden Ayrıca (yalıtım) hücre zarı ve elektrot yüzeyi 11 arasındaki ortalama mesafe değişikliklere duyarlı varlık iken, hücre-substrat teması 10 (Şekil 2) alanına büyük ölçüde orantılıdır. Hücre indeksi değerleri bakımından bir başka artış da sıkı hücre-hücre temas tha oluşması ile elde edilirt, bu çalışmada açıklanan deneyler içinde geçerli değil 11 koşullarını paraselüler akım akar kısıtlamak. Hızlandırılmış diferansiyel girişim kontrast resim analizi ile, zaman içinde hücre çıkıntı yapan alanının ölçümü (DIC), filmler hücre alt-tabaka temas alanında değişiklik tamamlayıcı ölçümünü sağlar ve kesin yapısı ve dinamikleri ile ilgili ek bilgiler sağlar Hücre-substrat empedans yaklaşımı ile ölçülebilir morfolojik değişimler. Özellikle, (örneğin, fibronektin): (i) yapıştırıcı, alt endotelial matris proteinlerinin oksidasyon MPO aracılı nasıl kullanıldığını izlemek arıtıldı fibronektin ve (ii) tetikler hücre-matris de üzerine süspansiyon endotel hücreleri de novo yapışmasını azaltır, bu yaklaşımların bir uygulama tarif fibronektin kurulan yapışması ile endotel hücreleri -yapışma. Paralel hücre sinyal gerçekleştiren ilgili Biochem kullanarak zamanla analizleri ilenik deneyler (örneğin, Western blot), yapışma bağımlı hücre sinyal olayları adezyon / de-yapışma süreçleri ve ilgili değişiklikleri arasındaki zamansal ve nedensel ilişki belirlenebilir. Bu yaklaşımlar en son MPO subendotelyal yatakları ile katalize hücre dışı matris oksidasyon önceden var olan aktomizin kasılma güçleri 9 tarafından tahrik edilen endotel hücrelerinin hücre-matris yapışma hızlı kayıp tetikler olduğunu göstermek için kullanılmıştır. Önemlisi, hem hücre yapışması değişiklikler ve tespit edilecek sinyal yapışma bağımlı hücre arasındaki zamansal ilişki sağlayarak, bu yaklaşımlar MPO kaynaklı matris modifikasyonu ve hücresel de-yapışma Src kinaz gibi önemli yapışma-bağımlı hücre sinyal yolları değişiklikleri tetikler olduğu tespit bağımlı paxillin fosforilasyon ve miyosin hafif zincir II fosforilleme (Şekil 1) 9. Redoks-bağımlı sinyal, inv Bu modhücre-matris yapışmasını bozan hücre dışı oksidatif reaksiyonları ile hücre içi sinyal olaylarının aktivasyonu SORUN hücrenin yeni bir şekli &quot;dışarıdan içeriye redoks sinyal&quot; (Şekil 1) olarak adlandırılan sinyalizasyon temsil 9. Genel olarak, bu tamamlayıcı hücre alt-tabaka empedans biyosensör ve canlı hücre görüntüleme teknikleri matris düzenleyici uyarı ya da maddeler, hücre yapışması dinamiği, morfoloji değişiklikleri sürücü kadar farklı ifşa ve çeşitli tabi olan farklı yapışık hücre türleri içinde sinyalizasyon değerli olmalıdır Deneysel ayarları. Aşağıdaki protokol de novo endotel hücre yapışması (Deney 1) ve endotel hücre de-yapışma (Deney 2) süreçleri üzerinde MPO-aracılı matris oksidasyon etkisini ölçmek açıklamaktadır. MPO fibronektin ve diğer yapıştırıcı subendotelyal hücre dışı matriks proteinleri ve bize heyecanla bağlanıres (H2O 2) klorid iyonu (Cı -) dönüştürmek için hidrojen peroksit, bu matris proteinleri ile lokal olarak reaksiyona girer ve hücre yapışma özelliklerini (Şekil 1) 8,9 bozan yüksek reaktif bir klorlama oksitleyici hipokloröz asit (HOCI) &#39;e, 12.

<table><tbody><tr><td>96 kuyulu altın hücre-substrat empedans mikroelektrot dizisi</td><td>ACEA Biosciences / Roche</td><td>E-Plate 96</td><td>tek kullanımlık plaka, xCELLigence sistemi</td></tr><tr><td>blebbistatin</td><td>Sigma</td><td>B0560</td><td>kas dışı miyozin-II</td></tr><tr><td>Sığır Aort Endotel Hücrelerinin seçici inhibitörü, kriyoprezervasyonlu&nbsp;</td><td>Lonza</td><td>BW-6001</td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td><td>Sigma</td><td>05470</td><td></td></tr><tr><td>EGM-2 BulletKit</td><td>Lonza</td><td>CC-3162</td><td>endotel hücre büyüme ortamı kiti</td></tr><tr><td>Fibronektin, sığır plazmasından liyofilize toz</td><td>Sigma</td><td>F-4759</td><td></td></tr><tr><td>Florodish 35 mm cam tabanlı hücre kültürü kabı</td> Dünya <td>Hassas Aletler</td><td>FD35-100</td><td>Sığır</td></tr><tr><td>derisinden elde edilen jelatini</td> görüntülemek için optik kalitede cam tabanlı hücre kaplama kabı <td>Sigma</td><td>G9391</td><td>hücre kültürü substratı</td></tr><tr><td>Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisi</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>14025076</td><td></td></tr><tr><td>Hidrojen peroksit</td><td>Merck</td><td>107298</td><td></td></tr><tr><td>Medium-199</td><td>Life Technologies</td><td>11150-059</td><td>serumsuz hücre ortamı</td></tr><tr><td>Metiyonin</td><td>Sigma</td><td>M9500</td>, <td>miyeloperoksidaz tarafından üretilen klorlu oksidanları söndürür Miyeloperoksidaz</td></tr><tr><td>, İnsan Polimorfonükleer Lökositleri</td><td>Millipore</td><td>475911</td><td></td></tr><tr><td>RTCA MP Enstrümanı / xCELLigence hücre substratı empedans sistemi ACEA</td><td>Biosciences / Roche</td><td></td><td>, RTCA analizörü, RTCA (Çoklu Plaka) MP istasyonu ve RTCA kontrol ünitesinden oluşur</td></tr><tr><td>Tripsin-EDTA (%0,5)</td><td>Gibco</td><td>15400-054&nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

matrix modifikasyon bağlı hücresel yapışma ve de-yapışma real-time değişiklikleri tedbir hücre-substrat empedans ve canlı hücre görüntüleme kullanma

Using Cell-substrate Impedance and Live Cell Imaging to Measure Real-time Changes in Cellular Adhesion and De-adhesion Induced by Matrix Modification

Hücre-matris yapışma hücre morfolojisini kontrol ve sinyalizasyon önemli bir rol oynar. Hücre-matris yapışma (örneğin, miyeloperoksidaz ve diğer matris düzenleyici oksidanlar / iltihap sırasında ortaya çıkan enzimler) bozan etmenler de hastalıkların bir dizi hücresel fonksiyonu, fenotip ve canlılığı patolojik değişiklikleri tetikleyerek söz konusu olmaktadır. Burada, (a patofizyolojik matris düzenleyici uyarıcı olarak endotel hücreleri ve myeloperoksidaz ile), hücre-alt-tabaka empedans ve canlı hücre görüntüleme teknikleri kolayca doğru hücre yapışmasının ve matris modifikasyonu ile indüklenen de yapışma gerçek zamanlı değişiklikleri ölçmek için kullanılabilir açıklanmıştır Yüksek zamansal çözünürlüğe sahip ve non-invaziv bir şekilde. XCELLigence hücre alt-tabaka empedans sistemi sürekli altın mikroelektrot diziler üzerinde yetiştirilen hücreler, hücre-alt-tabaka ara yüzeyinde elektrik empedansı ölçmek suretiyle hücre-matris yapışma alanını ifade etmektedir. Resim analizi zaman atlamalı ayırıcısıcaklık üzerindeki girişim zıtlık filmler hücre-matris temas alanında değişiklikleri temsil eden zaman içinde, tek tek hücrelerin öngörülen alan değişiklikleri ifade etmektedir. Her iki teknik doğru hücresel yapışma ve de-yapışma süreçlerine hızlı değişiklikler ölçmek. Mikroelektrot biyosensör dizileri Hücre-substrat empedans sağlam, yüksek hacimli ölçümler için bir platform sağlar. Canlı hücre görüntüleme hücre-substrat empedans ölçümleri ile sayısal morfolojik değişikliklerin doğası ve dinamikleri ile ilgili ek detay sağlamak analizleri. Bu tamamlayıcı yaklaşımlar hücre içi hücre dışı matris bileşenleri miyeloperoksidaz-katalize oksidatif modifikasyonu hızlı hücre yapışması, morfolojisi değişiklikler ve endotel hücreleri sinyal tetikler nasıl değerli yeni anlayışlar sağlar. Bu yaklaşımlar, diğer matris-modifiye uyarılara ve ilgili diğer yapışıcı hücreler (örneğin, epitelyal hücreleri) yanıt olarak hücre yapışma dinamiğini çalışmak için de geçerlidir.

MPO aracılı fibronektin oksidasyonuna yanıt olarak endotel hücrelerinin fibronektinden ayrılmasının gerçek zamanlı kantifikasyonu (Deney 2). Endotel hücre süspansiyonlarının doğal (MPO içermeyen) fibronektin veya MPO taşıyan fibronektin üzerine ekilmesi, hücre-substrat empedans ölçümlerindeki hücre indeksi değerlerinin platoya ulaşmasıyla değerlendirildiğinde, 2 saat içinde maksimum hücre tutunması ve yayılmasıyla sonuçlanır (Şekil 3A). Deney 1'de detaylandırılan protokole göre gerçekleş...

Burada, hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntüleme analizleri ile hücre adezyonu ve adezyonu giderme süreçlerini invaziv olmayan bir şekilde yüksek zamansal çözünürlükle sürekli olarak ölçmek için bir protokol sunuyoruz. Bu yaklaşımlar, matris modifikasyonu tarafından tetiklenen hücre adezyon/adezyonu kaldırma süreçlerinin dinamiklerini ve bunların adezyona bağlı sinyalleşme olaylarıyla zamansal ilişkisini ortaya koymaktadır.

Matrix Modifikasyon Bağlı Hücresel Yapışma ve De-yapışma Real-time Değişiklikleri Tedbir Hücre-substrat Empedans ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma

Cell-matrix adhesion plays a key role in controlling cell morphology and signaling. Stimuli that disrupt cell-matrix adhesion (e.g., myeloperoxidase and ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntüleme kullanarak, matriks modifiye edici ajanlara maruz kalan endotel hücrelerdeki hücre matriks adezyonundaki hızlı değişimleri gerçek zamanlı olarak nicelleştirmektir. Bu deneyde, patofizyolojik olarak ilgili bir matriks modifiye edici ajan olarak hem enzimi myeloperoksidaz kullanılmıştır. Bu işlem, öncelikle yüzeylerin adezyon sağlayıcı bir matriks substratı oluşturmak amacıyla fibronektin ile kaplanmasıyla gerçekleştirilir.Ardından, miyoperoksidaz veya MPO'nun fibronektine bağlanmasına izin verilir. Daha sonra süspansiyon halindeki endotel hücreler yüzeylere yerleştirilir ve maksimal hücre tutunması ile fibronektin üzerine yayılımın sağlanması için inkübe edilir. Son olarak, MPO aracılı fibronektin oksidasyonunu başlatmak amacıyla hücreler hidrojen peroksite maruz bırakılır.Hücre matris adezyonundaki sonraki hızlı değişimler, ardından hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntüleme analizi kullanılarak gerçek zamanlı olarak nicelleştirilir. Sonuçlar, NPO aracılı fibronektin oksidasyonunun tetiklediği endotelyal hücre matris adezyonundaki hızlı kayıpların, hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntüleme ile yüksek zamansal çözünürlükte, etiketsiz bir şekilde ve gerçek zamanlı olarak nicelleştirilebileceğini göstermektedir. Bu tekniklerin avantajı, hücre matris adezyonundaki değişimleri yüksek zamansal çözünürlükle sürekli olarak nicelleştirebilmeleridir; bu da matris modifikasyonlarının, hücre morfolojisindeki ve adezyon bağımlı sinyal iletim süreçlerindeki alt akış değişimlerini nasıl yönlendirdiğine dair önemli yeni içgörüler sağlayabilecekleri anlamına gelir.Bu protokoller, MPO'nun matris kaplama veya proteazlar gibi diğer matris modifiye edici ajanlarla değiştirilmesiyle ya da endotel hücreler dışındaki epitel hücreler gibi adezyonlu hücre tiplerinin kullanılmasıyla kolayca uyarlanabileceği için daha geniş bir öneme sahiptir. Başlamak için, hücre substrat empedans ölçümleri amacıyla 96 kuyucuklu altın mikro elektrot dizilerini kaplamak için kuyucuk başına 80 µL fibronectin ekleyin veya canlı hücre görüntüleme analizi için cam tabanlı hücre kültürü kaplarına 2 mL fibronectin ekleyin. Dizileri ve/veya kültür kaplarını 37 °C'de iki saat boyunca inkübe edin.Ardından yüzeyleri bloke etmek için %0,2 BSA ekleyin ve 37 °C'de iki saat daha inkübe edin. Sonra, HBSS içinde saflaştırılmış insan miyelo peroksidaz ekleyin ve 30 dakika inkübe edin. Daha sonra, bağlanmamış MPO'yu uzaklaştırmak için yüzeyleri iki kez HBSS ile yıkayın.Ardından, metin protokolüne göre hazırlanan mililitre başına 250.000 süspansiyon halindeki endotel hücreyi, doğal veya MPO taşıyan fibronektin kaplı yüzeylere sahip 96 kuyucuklu hücre substratı empedans mikro elektrot dizileri üzerine ekleyin. 35 milimetrelik cam tabanlı hücre kültürü kapları için, mililitre başına 500.000 hücre içeren iki mililitre ekleyin. Hücreleri ektikten hemen sonra, mikro elektrot dizisi plakalarını 37 °C ve %5 karbondioksit içeren hücre substratı empedans inkübatör portuna yerleştirin.Hücre indeksi verilerinin sürekli kazanımını başlatmak için boş okumalar yapın. 35 milimetrelik cam tabanlı hücre kültürü kaplarını 35 °C, %5 karbon dioksit içeren bir inkübatöre aktarın. Maksimum hücre yapışması ve yayılmasına izin vermek için iki saat boyunca inkübe edin.İnkübasyondan sonra, hücre indeksi okumalarını durdurun ve mikroelektrot dizisi plakasını veya cam tabanlı kabı kısa süreliğine inkübatörden çıkarın, supernatantı aspire edin ve inhibitörlerin, MPO modülatörlerinin, katalize reaksiyonların veya hücre sinyal iletim inhibitörlerinin etkilerini incelemek için ısıtılmış HBSS ekleyin. Bunları kültürlere ilave edin. Bu noktada, dizi plakasını hemen inkübatör portuna veya cam tabanlı kabı inkübatöre geri yerleştirin ve hücrelerin 30 dakika boyunca dengelenmesini sağlayın.Hücre empedans çalışmaları için NPO katalizörlü hipokloröz asit bağımlı fibronektin oksidasyonunu ve adezyon kaybını başlatmak için, mikroelektrot dizisi plakasını inkübatörden çıkarın ve hücre indeksi ölçümlerini duraklatın. HBSS'ye hidrojen peroksit ekleyin ve tekrarlayan pipetleme ile nazikçe karıştırın; ardından mikroelektrot dizisini hemen inkübatör portuna geri yerleştirin ve 35 milimetrelik cam tabanlı kaplar kullanarak canlı hücre görüntüleme çalışmaları için hücre indeksi okumalarını yeniden başlatın. Kabı inkübatörden çıkardıktan sonra, 63 x su daldırma objektif lensi ile donatılmış ters konfokal mikroskobun 37 derece Celsius ısıtmalı tablasına yerleştirin.Canlı hücre videoları kaydetmek için DIC optikleri kullanılmalı; hücrelere odaklanmalı ve buradaki kılavuzlara göre DIC optikleri optimize edilmelidir. DIC videosunu başlatın ve işlem görmemiş hücrelerin bazal değerlerini bir dakika boyunca kaydedin, ardından hidrojen peroksit ekleyip tekrarlanan pipetleme ile nazikçe karıştırın, mikroskobun odağını yeniden ayarlayın ve işlem görmüş hücrelerin DIC videolarını gerekli süre boyunca kaydetmeye devam edin. Hücre substrat empedans verilerini analiz etmek için, önce verileri hücre adezyonu için bir hesap çizelgesine aktarın.Çalışmalar, canlı hücre görüntüleme verilerini analiz etmek için normalleştirilmiş hücre indeksi ile zamanın grafiklerini sunarak, MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun başlatılmasından hemen önce kaydedilen değerleri bire eşitleyerek verileri normalleştirir. Image J gibi bir görüntü analiz programında, MPO aracılı fibronektin oksidasyonunun başlatılmasından hemen önce ve sonra kaydedilmiş en az iki ayrı DIC canlı hücre görüntüleme videosunu açın, rastgele birden fazla hücre seçin ve ardışık karelerde membran kenarlarını manuel olarak çizerek ve çevrelenen piksel sayısını belirleyerek projeksiyon alanlarını ölçün. Son olarak verileri, normalleştirilmiş hücre alanı ile zamanın bir grafiği olarak sunun; endotel hücre süspansiyonlarının fibronektin veya MPO taşıyan fibronektin üzerine yerleştirilmesi, hücre alt tabakasındaki hücre indeksi değerlerinin plato çizmesiyle değerlendirildiği üzere, iki saat içinde maksimum hücre tutunması ve yayılmasıyla sonuçlanır.Doğal veya NPO taşıyan fibronektin üzerinde maksimum hücre adezyonu sağlandıktan sonra yapılan empedans ölçümlerinde; NPO tarafından katalize edilen hipokloröz asit aracılı hedefli fibronektin oksidasyonu (NPO'ların ko-substratı olan Hidrojen peroksit ilavesi ile başlatılır), hücre-substrat empedansı ve burada gösterilen canlı hücre görüntülemesi ile ölçüldüğü üzere, hücre matrisi temas yüzey alanında hızlı bir azalmaya neden olur; hidrojen peroksit tedavisine yanıt olarak NPO taşıyan fibronektine bağlı endotel hücrelerinde görülen bu hızlı hücresel de-adezyon, yalnızca hidrojen peroksit ile tedavi edilen hücrelerde görülmez. BLEBSistatin ile miyozin iki motor fonksiyonunun inhibe edilmesi, hücre-substrat empedansı ve canlı hücre görüntülemesi ile ölçülen endotel hücre de-adezyon hızını inhibe ederek, MPO katalizli hücre altı matris oksidasyonuna yanıt olarak gelişen hücresel de-adezyon ve kontraksiyonun ACTO-miyozin çekme kuvvetleri tarafından yönlendirildiğini belirler. Bu yöntemler hücre adezyonundaki çok hızlı değişimleri doğru bir şekilde ölçebildiği için, adezyon değişiklikleri ile SARK fosforilasyonu veya fokal adezyon sinyalleri gibi adezyona bağımlı sinyal süreçlerindeki alt akım değişiklikleri arasındaki nedensel ilişkilere dair kritik bilgiler sağlayabilir; bu süreçler, Western blotting kullanılarak paralel deneylerle zaman içinde kolaylıkla ölçülebilir.

using-cell-substrate-impedance-live-cell-imaging-to-measure-real-time

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu kağıt kültürü canlı hücreleri mekanik uyarılması için entegre bir atom operasyon okuyucu kuvvet optik görüntüleme mikroskop öğretmeyi hedefliyor. Bir adım-adım protokol sunulmuştur. Mekanik stimülasyonu canlı hücre yanıtı gösteren bir temsilci veri seti sunulmaktadır.

Tümleşik Optik ve Atomik Kuvvet Mikroskobu eğitimi Mekanik Uyarım Canlı Hücre Tepki

Hem molekülleri etkileşen hücrelerin yüzeylerinde demirlemiş olan reseptör-ligand etkileşimi kinetiği ölçmek için bir yapışma frekans tahlil açıklanmıştır. Bu mekanik tabanlı test mikropipet basınçlı bir insan adezyon sensörü olarak kırmızı kan hücresi ve integrin αLβ2 ve hücrelerarası adezyon molekülü-1 reseptörleri ve ligandlar etkileşim olarak kullanarak örneklenir.

Yapışma için Frekans Testi Yerinde</emHücre-Hücre Arayüz Çapraz Junctional Moleküler Etkileşimler> Kinetik Analizi

Hücre göçü gibi hücresel süreçleri, geleneksel iki boyutlu, sert plastik yüzeyler üzerinde çalışılmıştır. Bu rapor doğrudan protein lokalizasyon görselleştirme ve daha fizyolojik ilgili üç boyutlu bir matris içinde göç eden hücrelerin protein dinamiklerini analiz etmek için bir teknik anlatılmaktadır.

Üç boyutlu Matrix floresan etiketli Proteinler ifade Geçiş Hücreler Canlı hücre Görüntüleme

Biz invadopodia aracılı matriks yıkımı görselleştirmek için floresan jelatin kaplı mikroskop lamelleri üretmek için prototip yöntem açıklanmaktadır. Mevcut yazılımını kullanarak hesaplama teknikleri karışık bir popülasyon içindeki ve bütün mikroskobik alanı kapsayan çok hücreli grupları için tek hücreler ile matris proteolizin sonuç seviyeleri ölçülmesi için sunulmuştur.

Tek ve Çok hücreli Bağlamlarda Invadopodia aracılı Ekstrasellüler Matriks Proteoliz Kantitatif Ölçümü

Mekanik özellikler ve hücre dışı matris mikro güçlü hücre 3D göç etkiler. In vitro bir yöntem, nüfus ve tek tek hücre düzeylerde biyofiziksel değişken ortamlarda uzaysal hücre göçü davranışı incelemek için, tarif edilmektedir.

Konsantrik Jel Sistemi 3D Hücre Göç Matrix mikroçevresinin biyofiziksel Rolü Eğitim için

Bu akış yapışma deneyi T hücresi epitel hücre etkileşimleri basit, çok etkili bir model sağlar. Bir şırınga pompası kayma gerilimi oluşturmak için kullanılır ve konfokal mikroskopi ölçümü için görüntü yakalar. Bu çalışmaların amacı, etkili akış koşulları kullanılarak T hücre yapışmasını ölçümüdür.

T Lenfosit-Yapışma Molekülü Etkileşimleri Çalışmaları Yapışma Altında Kesme Stres Testi

Hızlı ve yüksek çözünürlüklü izin gelişmiş bir mikroskop düşsel hem, izole plazma zarı ve çevredeki hücre içi hacim sunulacak. Yüksek edinme hesaplı en fazla 3,5 canlı görüntüleme deneyler bir kurulum disk ve toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik entegrasyon sağlar görüntü yığını başına s.

Hücreleri tarafından seçilmiş adezyon oluşumunda görselleştirme gelişmiş Disk-toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik

Bu yöntem, hücresel yapışmanın erken dinamiklerini ölçmek ve ankraja bağlı hücrelerin fibronektin üzerine yayılması için yararlıdır. Ayrıca, bu tetkik hücre yayılımı ve / veya hücre adezyonu ile ilgili hücre içi sinyal yolları üzerinde değişmiş redoks homeostaz etkilerini araştırmak için kullanılabilir.

Oksidatif Stres Sırasında Fibronektin Üzerine Hücresel Adezyon Dinamiğinin İncelenmesi ve Epitel Hücrelerinin Yayılması

Kanser, farklı organlara metastaz yeteneği nedeniyle ölümcül bir hastalıktır. Kanser hücrelerinin çeşitli tedavi koşulları altında göç ve işgal yeteneğini belirlemek terapötik stratejilerin değerlendirilmesi için çok önemlidir. Bu protokol glioblastoma kanser hücre hattının gerçek zamanlı metastatik yeteneklerini değerlendirmek için bir yöntem sunar.

Empedans tabanlı Gerçek Zamanlı Kanser Hücre Göçü ve İstilası Ölçümü

Makalede, 1) odak yapışıklıklarının büyüklüğü ve sayısı ile 2) hücre şekil indeksi ve MCF7 hücrelerinin eşzamanlı monolayers konfokal görüntülerinden dağılımının nicelikselleştirilmesi açıklanmaktadır.

MCF7 HücreLi Monokatmanlarda Hücre-Substrat Adezyon Alanı ve Hücre Şekli Dağılımlarının Ölçülmesi

İnvaziv hücre alt popülasyonlarını gerçek zamanlı olarak tespit etmek ve yakalamak için bir yaklaşım açıklıyoruz. Deneysel tasarım, hücrelerin elektrik empedansındaki değişiklikleri izleyerek Gerçek Zamanlı Hücresel Analiz kullanır. Kompleks dokulardaki invaziv kanser, immün, endotel veya stromal hücreler yakalanabilir ve ko-kültürlerin etkisi değerlendirilebilir.

Ko-kültürlerden İnvaziv Hücre Alt Popülasyonlarının Gerçek Zamanlı Tespiti ve Yakalanması

Öğrenin, endotelyal hücrelerde matris modifikasyonuna bağlı hücre yapışma ve de-yapışma süreçlerini hücre-substrat empedans ve canlı hücre görüntüleme ile gerçek zamanlı ölçme yöntemini.

Matrix Modifikasyon Bağlı Hücresel Yapışma ve De-yapışma Real-time Değişiklikleri Tedbir Hücre-substrat Empedans ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma (Video) | JoVE Journal

Matrix Modifikasyon Bağlı Hücresel Yapışma ve De-yapışma Real-time Değişiklikleri Tedbir Hücre-substrat Empedans ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma

Daha fazla video keşfet