Fare Serebral Hipoksi-iskemi sırasında Eşzamanlı PET / MR Görüntüleme

Bu prosedürün genel amacı, hipoksik iskemik yaralanmanın başlangıcı sırasında aynı anda bir emisyon tomografisi ve manyetik rezonans görüntüleme verilerini elde etmektir. Bu, bir farede tek taraflı olarak ortak karotis arteri ilk kez bağlayarak gerçekleştirilir. İkinci adım, hayvanı görüntüleme için hazırlamak ve temel PET ve MRI verilerini elde etmektir.

Son adım, hipoksik bir meydan okuma sırasında ve sonrasında görüntüleme verilerinin elde edilmesidir. Sonuç olarak, hipoksi sırasında ve sonrasında lezyonda su difüzyonundaki ve grip deoksi glukoz alımındaki değişiklikleri göstermek için eş zamanlı PET ve MRG edinimi kullanılır. Bu yöntem, inme sırasında fizyoloji ve biyokimyadaki dinamik değişiklikler hakkında bilgi sağlayabilir, ancak gözlemlenen sistemin kararlı durumda olmadığı, ancak değişmekte olduğu diğer durumlarda da uygulanabilir.

Burada gösterilen aletlerle, dış cepheye uygun şekilde yerleştirilmiş steril bir cerrahi alan hazırlayın. Isıtma yastığını açın ve 37 santigrat dereceye ulaştığından emin olun. Prosedüre başlamadan önce.

Fareyi% bir ila% 3 flor kullanarak uyuşturun ve gözlere oftalmik merhem sürün. Sırtüstü pozisyona getirin ve ayak parmağınızı sıkıştırarak sedasyonu onaylayın. Daha sonra, bir ila iki pamuklu çubuk kullanarak alt boyun ve üst göğüs bölgesine detory kremi uygulayın.

Yaklaşık iki dakika bekleyin ve ardından alan tüysüz hale geldiğinde ıslak gazlı bez kullanarak saçı ve kremi çıkarın. Kesi bölgesini Betadine ile içeriden dışarıya dairesel bir şekilde uygulayarak sterilize edin. Steril cerrahi eldivenler giyin ve alt boynun orta hattı boyunca bir santimetrelik bir kesi yapmak için cerrahi makas kullanın.

Dış cildi cerrahi makasla çevredeki fasyadan dikkatlice ayırın. İki MCFE günah mikro iris dikiş forseps kullanarak. Bağ dokusunu çıkarın.

Hafızalı yağ yastıkçıkları arasına girin ve sağ ortak karotis arteri fasyadan ayırın. Damarlara zarar vermemeye veya vagus sinirini rahatsız etmemeye özen gösterin. Ardından, sağ ortak karotis arteri dışsallaştırmak için forsepsleri kullanın.

Stabil bir pozisyonda, sağ ortak karotis arterin altından altı adet ipek sütürün iki ila üç santimetresini geçmesini önlemek için birkaç damla salin uygulayın ve çift kare bir düğüm kullanılarak bağlanın. Daha sonra ikinci bir dikiş uzunluğu kullanarak ligasyonu tekrarlayın. Sağ ortak karotis arteri yeniden konumlandırın ve steril bir sünger uçlu çubuk kullanarak açıklıktaki fazla sıvıyı temizleyin.

Daha sonra insizyonu altı OTT ipek sütür ile kapatın ve lidokaini topikal olarak kilogram başına yedi miligrama kadar uygulayın. Cerrahi ağrı yönetimi için kurumunuza özel yönergeleri izleyin. Fare görüntülemeye hazır olana kadar iyileşme sırasında cerrahi sonrası izleme gerçekleştirin.

Önce oksijen ve nitrojen hava kaynaklarını açarak oksijen ve nitrojen akış ölçerlerin çalışmasını kontrol edin. Ardından akış ölçerleri dakikada bir litre akış hızında açın. Oksijen akışını dakikada 114.3 miligrama ve nitrojen akışını dakikada 1.150 grama ayarlayın.

Daha sonra anestezi, solunum pedi ve ısıtıcı sistemlerinin güvenli ve işlevsel bir şekilde konumlandırıldığından emin olarak hayvan yatağını hazırlayın. Ardından, görüş alanı içindeki hayvan yatağına radyo izleyici içeren referans işaretleyiciler takın. Fareyi flor ile uyuşturuyorsunuz ve kateter yerleştirmeye hazırlamak için kuyruğunu önceden ısıtıyorsunuz.

Hazır olduğunda, heparinize salin ile önceden doldurulmuş bir PE 10 kateterinden beş santimetreye kadar yerleştirin. IV hattını yerleştirme yerinde bir damla siyanoakrilat yapıştırıcı ile sabitleyin. Daha sonra hayvanı hazırlanan hayvan yatağına aktarın.

Kurumayı önlemek için farenin gözlerine yeniden oftalmik merhem sürün ve üst kesici dişlerini diş çubuğunun etrafına yerleştirerek ve kulak çubuklarını yerine yerleştirerek hayvanın kafasını stabilize edin. Dakikada 0,5 ila bir litre arasında bir ila %2 flor akışına başlayın. Bir rektal prob termometresi yerleştirin, sıcaklık ve solunum okumalarının işlevsel olduğundan emin olun.

Daha sonra, 200 mikrolitre salin içinde yaklaşık 600 mikro küri radyoizleyici dozunu bir mililitrelik bir şırıngaya çekin ve bir şırınga pompasına yerleştirin. Yaklaşık üç metre heparinize PE 10 hortumunu şırıngaya ve diğer ucunu kuyruk ven kateter hattına bağlayın. MRI bobininin konumunun ve özellikle anestezi tüpünün herhangi bir hat ve kablonun dolaşmadığını kontrol edin.

Beynin merkezinin, MRI bobini, PET sistemi ve MRI mıknatısının merkezleri ile aynı hizada olduğundan emin olun. Ardından hayvan yatağını dikkatlice mıknatısın deliğine doğru kaydırın. Empedans ve frekans uyumsuzluklarını en aza indirmek için bobin üzerindeki ayar düğmelerini çevirerek MRI bobininin ayarını ve eşleştirmesini gerçekleştirin.

Ardından, nadir bir gezi pilotu dizisi seçin ve bir keşif görüntüsü elde etmek için diziyi tarama kontrol penceresinden çalıştırın. Hayvanın konumunu kontrol edin ve gerekirse beyin merkezlenene kadar konumunu ayarlayın. Ardından şimleri sıfır değerine sıfırlayın.

Şimdi bir nokta çalıştırın. 3.9 milimetre x altı milimetre x dokuz milimetrelik dikdörtgen bir hacim kullanarak beyindeki spektroskopik tarama dizisini çözün. Kireç çizgisi genişliği makro komutunu kullanarak su hattı genişliğini kontrol edin.

Yarı maksimum değerde tam genişlik kabul edilebilirse, elde edilen dilim planı istendiği gibi hizalandığında, geometrik düzenleyiciyi kullanarak difüzyon ağırlıklı görüntüleme taraması için dilim planını konumlandırın. Sonraki tüm taramalar için bu dilim planını tarama kontrol penceresine kopyalayın ve görüntü alımına başlayın. Daha sonra, PET alımı hazırlanmış ve başlamaya hazır durumdayken, infüzyon pompasını başlatın Kateterden gelen salin enjekte edildikten sonra PET alımına başlayın.

Radyo izleyicinin girişini yakalamak için. Sayım oranını izleyin ve başarılı bir enjeksiyonun göstergesi olan sayımlarda kademeli bir artış olup olmadığına bakın. 10 ila 15 dakika sonra, medikal hava akışını kapatarak ve %8 oksijen ve %92 nitrojen sağlamak için oksijen ve nitrojen akış ölçerleri hemen açarak hipoksik zorluğu başlatın.

Bu noktada, hipoksik tehdidi başlattıktan hemen sonra flor izini %0.8'e düşürün. Önceki tarama kurulumunu kullanarak difüzyon ağırlıklı görüntü alımına başlayın. İlk tarama tamamlandıktan hemen sonra ikinci bir difüzyon ağırlıklı görüntü alımına başlayın.

Akış ölçerleri kapatarak, tıbbi hava akışını eski haline getirerek ve flor konsantrasyonunu %1 ila %2'ye geri döndürerek hipoksik zorluğu sona erdirinHipoksi sonrası difüzyon ağırlıklı görüntüleme taraması yapın, ardından infüzyon pompasını kapatın ve geometri düzenleyiciyi kullanarak eksenel ve sagital düzlemlerde anatomik görüntüler elde edin. Edinim görüş alanının beyni kapsadığından emin olun. Bu yöntemi kullanarak, difüzyondaki değişiklikler, beklendiği gibi bir inme başlatıldıktan sonra hızlı bir şekilde tespit edilebilir.

Beynin tıkalı tarafındaki belirgin difüzyon katsayısı değerleri yaralanma ilerledikçe azalır. Gösterilen. İşte FDG alımını gösteren bir hayvanın koronal ve enine dilimleri. Evcil hayvan görüntüsü ön plandadır ve görselleştirme için arka planda anatomik bir MRI görüntüsü ile aşılanmış olarak kaydedilir.

Görünür difüzyon katsayısındaki değişikliklerle eş zamanlı olarak, hipoksik zorluğa başladıktan sonra FDG alımında yarım küre farklılıklar gözlenebilir. Üç vakanın ikisinde, EPS sonrası EPS alımı, hipoksi sonrası kontralateral alıma göre azalmıştır. Bu doğru olmasa da, tüm durumlarda muhtemelen hayvan değişkenliği nedeniyle, Beyindeki diğer fizyolojik parametreleri veya hedefleri gözlemlemek için bu genel prosedürü farklı MRI ve evcil hayvan kontrastı ile kullanabiliriz.