Name: Bir Colliculo-talamokortikal Fare Beyin Dilim modifikasyonu, 3-D Odası Bileşenleri baskı ve Multi-ölçekli Optik Görüntüleme birleştirilerek (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 5 s
Description: Keşfedin fare beyin dilimi hazırlama yöntemini, inferior kolikül ve işitsel korteks gibi dört ana işitsel yapıyı koruyarak. Flavoprotein görüntüleme ile bağlantıları değerlendirin ve işitsel bilgi işleme süreçlerini anlayın.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Ulusal Sağırlık ve Diğer İletişim Bozuklukları Enstitüsü Ödülleri R03-DC-012125 tarafından D. A. Llano'ya ve F31-DC-013501 B. J. Slater'a ve Carver Vakfı'na kısmen desteklenmiştir.
Yazarlar, kalsiyum görüntüleme ile ilgili teknik tavsiyeleri için Jason MacLean ve Matthew Banks'e teşekkür eder.

Tüm işlemler Illinois Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından kabul edildi. Bütün hayvanlar Laboratuar Hayvan Bakımı Akreditasyon Amerikan Derneği tarafından onaylanan hayvan bakım tesislerinde yerleştirildiler. Her girişimi kullanılan hayvanların sayısını en aza indirmek ve çalışmanın her aşamasında acıları azaltmak için yapıldı. Ve Dilimleme için Mouse Beyin çıkarılması 1. Hazırlık <ol><li> Perfüzyon ve dilim inkübasyon için hazırlayın. <ol><li> Yaklaşık 30 dakika dilimleme önce, kayıt veya görüntüleme öncesinde dilim kuluçka için yüksek sakaroz kesim çözümü ve düşük kalsiyum aCSF hazırlar. </li><li> Gerekli tüm araçları (büyük kör uç makas, küçük yaylı makas, anatomik forseps, büyük makas ya da giyotin, iris makas, kuyumcular forseps, 27G x 1/2 inç iğne ile 10 ml şırınga, 1 cm x 2 cm filtresi küçük bir parça dışarı Lay Kağıt ve sl için bir kırık uçlu Pasteur pipetiperfüzyon ve dilimleme ve perfüzyon tepsisini hazırlamak için buz transferi). </li><li> 32 o C su banyosunda ve çözüm kesim ile dolu bir kültür çanak oksijenli aCSF odasını kuluçka ayarlayın. </li></ol></li><li> Dilimleme için sahne kesme hazırlayın. <ol><li> Yaklaşık 1 cm 3 yumru bir beyin için Geri döndürmez ve 1,5 cm x 1,5 mm x 3 mm olarak kullanmak için% 3 agar küçük bir parça kesin IC desteklemek için kullanılacak. </li><li> Siyanoakrilat yapıştırıcı ile sahneye yanı sıra onlar 80 o açı oluşturacak şekilde döndürmez kilidin sağ tarafındaki yumru üzerine geri fren Tutkal. </li></ol></li><li> Beyin çıkarın. <ol><li> Derinden bir p12-P20 ketamin 100 mg / kg ve xylaxine 3 mg / kg (veya benzer etik kurul onaylı prosedür) ile (ideal p14-18) fare uyutmak. Not: ayak tutam yanıt eksikliği yoluyla uygun anestezi seviyesini kontrol edin. Hayvan anestezi kısaca altında olduğundan, göz merhem gereksizdir. </li><li> Künt kullanmamakas sona boyun kılıç şeklinde süreci göğüs kafesi maruz. <ol><li> Kılıç şeklinde sürecini bulun ve yaklaşık 1,5 cm yatay kesim yapmak. </li><li> Omuzlar önceki yatay kesilmiş uçlarından iki dikey keser, yaklaşık 1.5 cm Her olun. </li></ol></li><li> Diyafram ve kostokondral birleşme kesti kalbini ortaya çıkarmak. </li><li> Küçük yaylı makas ile, kalp tarafını dorsal ventral gelen, sağ atrium kesilmiş küçük, 2-5 mm yapın. </li><li> 27G x 1/2 inç iğne ile 10 ml şırınga kullanarak, sol ventrikül enjekte ve hızlı bir şekilde yüksek sakaroz kesim çözümü ile hayvan serpmek. </li><li> Kan net çalışır kez baş kaldırmak için büyük makas kullanın. Not: Biz sistematik perfüzyon yararını değerlendirildi değil. Ancak, bizim deneyim, bu genç farelerde transkardiyak perfüzyon neredeyse% 100 başarı ile yapılabilir ve kırmızı bl ortadan kaldırarak fayda varfloresan ve görüntüleme ile müdahale OOD hücreleri. </li><li> Kafatası açığa çıkarmak için orta hat cilt azaltın. </li><li> Bükülmüş iris makas kullanarak, daha sonra gözleri arasındaki kesim, dikkatle altına beyin zarar vermemeye orta hat dikiş alma bakımı boyunca posterior anterior kesilmiş başlayarak, gözler arasındaki kafatası kesti. Not: Dura genellikle kafatası ile kapalı geliyor. Gerekirse, dikkatlice beyni çıkarmadan önce dura kaldırın. </li><li> Kuyumcular forseps kullanarak, manivela kafatası açın ve dikkatlice beyin kaldırmak, sonra çözüm kesme beyin yerleştirin. Korteks zarar vermemek için özen gösterin. </li></ol></li></ol> 2. Dilimleme için Beyin hazırlanması <ol><li> Vibratome sahnede montaj için beyin hazırlamak. <ol><li> 90 o iki çizgi ile işaretlenmiş bir slayt ve alt soldan sağa doğru yukarıdan 17 o da diyagonal bir çizgi kullanarak, iki satır buluştuğu kullanarak, yukarı beyin dorsal yüzü koyun kesenBir jilet, düz bir yüzey oluşturarak rostral ucu beynin 2-4 mm kaldırın. </li><li> Yeni oluşturulan düz bir yüzeye beyin kaudal tarafı yukarı bakacak şekilde yerleştirin ve yatay ve dikey çizgi ile beynin orta hat ile beyin dorsal yüzeyini hizalayın. </li><li> 17 o hattı ile tıraş bıçağı hizalayın 30 o açıyla jilet yatırmak ve bir çift diyagonal kesim (koronal 17 yatay düzleme gelen o ve 60 o) sağ korteks yaklaşık 3 mm kaldırın. </li></ol></li><li> Vibratome sahnede beyin Montaj. <ol><li> Uzun boyut orta hatta dik olacak şekilde filtre kağıdı beynin ventral tarafta 1 cm x 2 cm küçük bir parça yerleştirin. </li><li> Dikkatlice geri dönme kilidi (ve yumru sol) önündeki alanda siyanoakrilat yapıştırıcı madde küçük bir miktar uygulanır. </li><li> Beyin ve Beyin kaudal parçası böylece pr tutkal çift çapraz kesilmiş beyin yüzünü yerleştirinyumru üzerine op ve beynin sağ tarafı Geri döndürmez aykırıdır. </li><li> Ince tüm yüzey dilimleme odası ile temas halinde olmasını sağlamak, beyinde bastırın. </li></ol></li></ol> 3. Colliculo-talamokortikal Dilim Edinme <ol><li> Çabuk, vibratome kesme sahne ve gerçekleşecek çözümü kesme sahne doldurun. </li><li> Beynin üst (ventral tarafı) ile bıçağını aynı hizaya getirin. </li><li> Beynin üst 1-1,5 mm çıkarın 300-500 mikron dilim çıkarın ve kaldırıldıktan sonra derinliğini değerlendirmek. Not: IC, MGB ve lateral genikulat nükleus (LGN) tüm görünür ve dentat girus bir &#39;C&#39; şeklinde iki 600 mikron dilim almak bir oluşturduğu zaman. Şekil 3A bakınız. </li><li> Holding (32 ° C) ısıtılmış odasında Yeri dilimleri. </li></ol> Dilim 4. Görüntüleme <ol><li> Flavoprotein otofloresans görüntüleme için hazırlık. <ol> &lt;li&gt; standart elektrofizyolojik kayıt odasındaki dilim perfüzyon için aCSF hazırlayın,% 95 O 2 /% 5 CO 2 ile kabarcık aCSF. </li><li> Uyarılması için cam elektrot çekin. O çok farklı uyarıcı elektrotlar ve yapılandırmaları (cam, tungsten, karbon fiber, monopoler, bipolar) flavoprotein otofloresans görüntüleme ile tüm iş çok iyi de birlikte unutmayın. </li><li> Bilgisayar, kamera, mikromanipülatör, ışık kaynağı, stimülasyon yazılımı, görüntü yakalama yazılımı açın. </li><li> Odasında dilim yükseltmek için özel köprü (Yan Malzeme kullanılabilir tasarım) yerleştirin oksijenli aCSF ile kayıt odasına serpmek. Not: Perfüzyon oranı kurmak herhangi bir birey ile değişebilir; 5-15 ml / dakika burada kullanılmıştır. </li><li> Inter yollar üzerinde arp dizeleri yerleştirerek önlemek için özen, dilim üzerinde özel olarak inşa harp yerleştirerek köprüden kaldırma gelen dilim önlemek için odasındaki sıvı seviyesini düşürmek, odasında dilim yerleştirinest (Şekil 1A). Dilim yukarıda ve aşağıda aCSF akışını korumak için dilim üzerinde yaklaşık 1-2 mm sıvı seviyesini artırın. Not: konumlandırma gerekiyorsa, kırık uç Pasteur pipet kullanın veya aCSF seviyesi yükselir ve çok dikkatli forseps kullanmanıza izin verir. </li><li> (Şekil 1A bakınız), aCSF ile dolu cam elektrot içine gümüş klorür elektrot yerleştirin mikromanipülatör içine cam elektrot yerleştirin ve izolatör uyarıcı bağlanmak ve dikkatle talamus giden IC / beyaz cevher cam elektrot yerleştirin. </li></ol></li><li> Otofloresans görüntü elde etme flavoprotein. <ol><li> (Sonsuzluk düzeltilmiş 2X makro objektif kullanılarak (NA 0.13)) 4 Hz görüntüleri ve 105 saniye boyunca bir kamera elektriksel uyarıcı olurken (her uyarım 0,05 Hz 40 Hz 2 msn bakliyat doku 1 sn beş kez oluşur) aydınlatırken toplayın mavi ışık 470-490 nm ve 515 nm üstünde yakalayan doku. Görüntü için ne olduğundan emin oluno karanlık, ne de dışarı üflenir bkz Şekil 3 başvuru için sütun bıraktı. Not: Toplama zamanı, toplama sıklığı ve stimülasyon frekansı deney gibi modifiye edilebilir ek materyalleri dahil özel bir program uyacak şekilde değiştirilebilir. </li><li> Matlab ve ek materyalleri mevcut özel yazılı programını kullanarak İhracat görüntüleri 0,05 Hz görüntülerin spektral güç analiz etmek. Ortaya çıkan görüntü Bağlı yollar gösterecektir. Not: Özel bir program görüntü üretmek için bir hızlı Fourier zaman serisinde piksel değerlerinin dönüşümü kullanır. </li></ol></li><li> Kalsiyum görüntüleme için hazırlık. <ol><li> ACSF yaklaşık 32 o C sıcaklığı korumak için bir ısıtma pedi üzerinde üst ve dilimin alt ve yeri hem de ulaşmasını sağlamak için bir 3 cm kültür çanak ve yükseltilmiş kültür membran kullanılarak küçük kuluçka odasına hazırlayın </li><li> % 95 O sıcak aCSF ve yavaş yavaş balonu ile küçük kuluçka odasına doldurun2 /% 5 CO 2. </li><li> 2 pluronik F-127 asit ul DMSO içinde 48 ul içinde çözülmüş, Fura-2AM 50 ug karıştırın. </li><li> Yükseltilmiş zarı ve dikkatli bir mikropipet kullanarak küçük kuluçka odasında Yeri dilim boyama doğrudan MGB yukarıdaki karışımı (veya diğer ilgi yapısını) ekleyin. </li><li> 1 saat - önce görüntüleme beyazlatma önlemek ve dilimler 45 dakika süre ile inkübe izin dilimleri örtün. </li><li> Fazla malzeme yıkayın 10-15 dakika ısıtılmış tutma odasına dilim çıkarın. </li><li> Uyarmak için hazırlık ve görüntü colliculo-talamokortikal dilim için 4.1.6 adımlar 4.1.1 izleyin. </li></ol></li><li> Kalsiyum görüntü elde etme. <ol><li> 365 nm ışık ile doku aydınlatıcı ve 510 nm üstünde floresan çekerken elektriksel 0.2 Hz&#39;de (her uyarım biri 2 msn darbe oluşur) beş kez dokusunu uyarma sırasında 25 saniye boyunca (bir 20X suya daldırma hedefi kullanarak) 10 Hz&#39;de görüntüleri toplayın. </li&gt; <li> Matlab ve yardımcı malzeme mevcut özel yazılı programını kullanarak İhracat görüntüleri 0.2 Hz görüntülerin spektral güç analiz etmek. Ortaya çıkan görüntü, aktif hücrelerin gösterecektir. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Llano, D. A., Slater, B. J., Lesicko, A. M., Stebbings, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+auditory+colliculothalamocortical+brain+slice+preparation+in+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">An auditory colliculothalamocortical brain slice preparation in mouse.</a> J. Neurosci. 111, 197-207 (2014).</li>
<li>Agmon, A., Connors, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thalamocortical+responses+of+mouse+somatosensory+%28barrel%29+cortex+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro%22%5BJournal%5D)">Thalamocortical responses of mouse somatosensory (barrel) cortex in vitro.</a> Neuro. 41, 365-379 (1991).</li>
<li>Cruikshank, S. J., Rose, H. J., Metherate, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auditory+Thalamocortical+Synaptic+Transmission+In+Vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Auditory Thalamocortical Synaptic Transmission In Vitro.</a> J Neurophysiol. 87, 361-384 (2002).</li>
<li>Lee, C. C., Sherman, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topography+and+physiology+of+ascending+streams+in+the+auditory+tectothalamic+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Topography and physiology of ascending streams in the auditory tectothalamic pathway.</a> PNAS. 107, 372-377 (2010).</li>
<li>MacLean, J. N., Fenstermaker, V., Watson, B. O., Yuste, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+visual+thalamocortical+slice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+meth%22%5BJournal%5D)">A visual thalamocortical slice.</a> Nat meth. 3, 129-134 (2006).</li>
<li>Crabtree, J. W., Isaac, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+intrathalamic+pathways+allowing+modality-related+and+cross-modality+switching+in+the+dorsal+thalamus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">New intrathalamic pathways allowing modality-related and cross-modality switching in the dorsal thalamus.</a> J. Neurosci. 22, 8754-8761 (2002).</li>
<li>McAlonan, K., Cavanaugh, J., Wurtz, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attentional+Modulation+of+Thalamic+Reticular+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Attentional Modulation of Thalamic Reticular Neurons.</a> J. Neurosci. 26, 4444-4450 (2006).</li>
<li>Weese, G. D., Phillips, J. M., Brown, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attentional+Orienting+Is+Impaired+by+Unilateral+Lesions+of+the+Thalamic+Reticular+Nucleus+in+the+Rat%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Attentional Orienting Is Impaired by Unilateral Lesions of the Thalamic Reticular Nucleus in the Rat.</a> J. Neurosci. 19, 10135-10139 (1999).</li>
<li>Zikopoulos, B., Barbas, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prefrontal+Projections+to+the+Thalamic+Reticular+Nucleus+form+a+Unique+Circuit+for+Attentional+Mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Prefrontal Projections to the Thalamic Reticular Nucleus form a Unique Circuit for Attentional Mechanisms.</a> J. Neurosci. 26, 7348-7361 (2006).</li>
<li>Kalatsky, V. A., Stryker, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+Paradigm+for+Optical+Imaging%3A+Temporally+Encoded+Maps+of+Intrinsic+Signal%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">New Paradigm for Optical Imaging: Temporally Encoded Maps of Intrinsic Signal.</a> Neuron. 38, 529-545 (2003).</li>
<li>Llano, D. A., Turner, J., Caspary, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diminished+cortical+inhibition+in+an+aging+mouse+model+of+chronic+tinnitus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Diminished cortical inhibition in an aging mouse model of chronic tinnitus.</a> J. Neurosci. 32, 16141-16148 (2012).</li>
<li>Ehret, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioural+studies+on+auditory+development+in+mammals+in+relation+to+higher+nervous+system+functioning%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Behavioural studies on auditory development in mammals in relation to higher nervous system functioning.</a> Acta otolaryngol. 99, 31-40 (1985).</li>
<li>Mikaelian, D., Ruben, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+hearing+in+the+normal+CBA-J+mouse%3A+correlation+of+physiological+observations+with+behavioral+responses+and+with+cochlear+anatomy%5BTitle%5D)+AND+%22Acta%22%5BJournal%5D)">Development of hearing in the normal CBA-J mouse: correlation of physiological observations with behavioral responses and with cochlear anatomy.</a> Acta. 59, 451-461 (1965).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bu protokol, işitsel sistem1'deki bilgi akışını incelemek için p12-20 faresinde daha önce tarif edilen bir kollikülo-talamokortikal beyin dilimi üzerindeki iyileştirmeleri açıklar. Bu yöntemin, tek bir dilimde daha fazla beyin bölgesi arasındaki bağlantıları koruyarak diğer benzer beyin dilimi preparatlarına göre bir takım avantajları vardır, bu da araştırmacılara ön beyindeki işitsel çekirdekler arasındaki etkileşimi ve etkileşimi anlamaları için yeni araçlar sağlar. Bu protokolde, önceki çalışmamız1</su...

Duyusal çevresi ve alt colliculus arasında bilgi ehemmiyetli işlem olmasına rağmen, bu işitsel korteks ulaşmadan önce işitsel sistemde, önemli ölçüde ek bir işlem vardır. Biz işlem yapılması ve bu dönüşüm beyin gelen duyusal bilgileri yorumlamak için izin verir nasıl bu nedenle çok az nasıl hakkında çok az şey biliyoruz. Olfaction hariç, duyuların her biri başlangıçta sinyal korteks yükselir olarak düşmektedir yüksek sadakat ile yönlendirilen periferik sinyaller ile çok benzer bir organizasyona sahiptir. Korteks daha sonra gelen bilgiyi modüle alt yapılarına projeksiyonlar gönderir. Bu karmaşık sistem in vivo hem de in vitro olarak preparatlar bir dizi çeşitli yollarla çalışılmıştır. Eski, tüm bağlantıların duyusal girdileri kontrol ve ölçüm yaparken, bağlantıların herhangi bir set incelemek için araştırmacı sağlayan bozulmamışherhangi bir alanda çıktı. Bu yaklaşımla, yoğun karmaşık çıkış sebebiyet veren, diğer duyusal girdilerin, uyarılma ve dikkat gibi diğer girdilerin, çok çeşitli hiçbir kontrole çok az var. In vitro beyin dilimleri tek bir set ya yakalamak için kesilmiş Araştırmacılar uyarmak ve afferentler veya beyin bölgelerinin çeşitli değerlendirmek için izin projeksiyonlar, ya da iki bağlı beyin alanları,. Bunlar genellikle talamus giriş veya talamus ve korteks onun çıkış ya 2-5 korunur talamokortikal veya tectothalamic ya dilimleri vardır. Bu preparatlar, farmakolojik, elektrik ve Optogenetic manipülasyon geniş bir çeşitliliği için izin verir. Bununla birlikte, sadece iki beyin bölgeleri, esas olarak bilgi aktarımı değerlendirmek ve talamus geçerken bilgi dönüşümünü değerlendirmek için kabiliyetinden yoksundur. Ayrıca dikkat modülasyonunda rol oynayabilir retikülo-talamik projeksiyon, 6-9 prBu dilim ESENT. Burada nasıl talamus kapıları ve filtreler bilgi benzersiz bir perspektif vermek için talamus çeşitli girdilerin araştırmacı kontrolü sağlar önceki hazırlık 1, üzerine iyileştirmeler göstermektedir. Biz çift tek hücre düzeyinde çeşitli girdilerin etkisini ölçmek için dilim bağlantısı ve büyük ölçekli aktivasyon analizi, nöronal nüfus analizi için talamus kalsiyum görüntüleme ve tek bir hücre kayıt değerlendirmek için flavoprotein otofloresans görüntüleme ile bu yeni dilim hazırlanması. Bu yaygın bağlantıları sürdürmek yardımcı olmak için biz de gelişmiş perfüzyon için dilim yükseltmek için yerinde beyin dilim ve bir köprü tutmak için, normal dilim çapa (aka &quot;harp&quot;) olarak değişiklikler bir dizi geliştirdik. Arp dilim çevreleyen ve arp dizeleri için özelleştirilebilir bağlantı noktaları için izin vermek için modifiye edilmiş at nalı şeklinde dizayn edilmiştir. Üç dizeleriEkli i) bir ii) bir AC kaudal kenarına IC kaudal kenarından uzanır ve iii) bir bir alana dilimin iç kenarına gelen diyagonal bir biçimde uzanır, dilim medial kenarı boyunca yatay olarak yer alacağı şekilde AC rostralinde (Şekil 1A bakınız). Dizeleri dilim bütünlüğünü korumaya yardımcı olmak için dilim bir basınç azalması miktarı izin arp (siyanoakrilat yapıştırıcı) ile yapıştırma çerçevede Küçük çentikler (Şekil 1B bakınız). Üç boyutlu baskı kullanarak, dokusu üstünde ve altında yapay beyin omurilik sıvısı (aCSF) ideal akışı için izin benzersiz özellikler, yanı sıra köprülere özel tasarım arp edebiliyoruz. Bu aynı zamanda yama kelepçe elektrofizyoloji için doku nüfuz ışık geniş alanları korur.

<table><tbody><tr>mM cinsinden <td>yüksek sükroz kesme çözeltisi</td><td></td><td></td><td>: 206 sükroz, 10.0 MgCl2, 11.0 glikoz, 1.25 NaH 2 <PO sub>4, 26 NaHCO3, 0.5 CaCl 2, 2.5 KCl, pH 7.4</td></tr><tr><td>mM cinsinden düşük kalsiyum aCSF</td><td></td><td></td><td>: 126 NaCl, 3.0 MgCl2, 10.0 glikoz, 1.25 NaH2PO4, 26 NaHCO3, 1.0 CaCl2, 2.5 KCl, mM cinsinden pH 7.4</td></tr><tr><td>aCSF</td><td></td><td></td><td>: 126 NaCl, 2.0 MgCl2, 10.0 glikoz, 1.25 NaH 2 PO sub<>4, 26 NaHCO3, 2.0 CaCl2, 2.5 KCl, pH 7.4</td></tr><tr><td>Uyaran İzolatör World</td><td>Precision Instruments</td><td>A360</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>D12345</td><td>Lot: 1572C502</td></tr><tr><td>Fura-2AM</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>F1201</td><td>Lot: 144912</td></tr><tr><td>Pluronic F-127</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>P3000MP</td><td>Lot: 1499369</td></tr><tr><td>Büyük kültür kabı</td><td>Fisherbrand</td><td>08-757-13</td><td>100 x 15 mm kültür kabı</td></tr><tr><td>Küçük kültür kabı</td><td>Falcon</td><td>353001</td><td>35 x10 mm kültür kabı</td></tr><tr><td>Yükseltilmiş kültür zarı</td><td>Millicell</td><td>PICMORG50</td><td>Dilimin her iki tarafında oksijenli sıvı perfüzyonunu korumak için kullanılır.</td></tr><tr><td>Flavoprotein görüntüleme floresan küpü</td><td>Olympus</td><td>UMNIB</td><td>470&ndash; 490 nm uyarma, 505 nm dikroik, 515 nm emisyon uzun geçirgen. Hemen hemen her yeşil floresan protein filtre küpünün burada çalışacağını bulduk.</td></tr><tr><td>Kalsiyum görüntüleme floresan küpü</td><td>Omega Optik</td><td>BX-18</td><td>XF1005 365 nm çıkış, XF2001 400 nm dikroik, XF3080 510 nm emisyon</td></tr><tr>Agar, <td>suda ağırlıkça %3</td><td>beyni</td><td></td><td></td> bloke etmek için</tr><tr><td>Viper si Stereo Litografi Cihazı</td><td>3D Sistemler</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

bir colliculo-talamokortikal fare beyin dilim modifikasyonu, 3-d odası bileşenleri baskı ve multi-ölçekli optik görüntüleme birleştirilerek

Modification of a Colliculo-thalamocortical Mouse Brain Slice, Incorporating 3-D printing of Chamber Components and Multi-scale Optical Imaging

Beynin duyusal bilgiyi işleme yeteneği, hem artan hem de azalan projeksiyon kümelerine dayanır. Yakın zamana kadar, bu iki sistemi ve nasıl etkileşime girdiklerini incelemenin tek yolu, in vivo preparatların kullanılmasıydı. Somatosensoriyel, görsel ve işitsel sistemlerde talamokortikal ve kortiko-talamik yolakları içeren akut beyin dilimleri ile büyük ilerlemeler kaydedilmiştir. İşitsel talamokortikal dilim1'deki son modifikasyonumuzda yaptığımız önemli iyileştirmelerle, ana işitsel orta beyin ve ön beyin yapılarının çoğu arasındaki projeksiyonları daha güvenilir bir şekilde yakalayabiliyoruz: inferior kollikulus (IC), medial genikülat cisim (MGB), talamik retiküler çekirdek (TRN) ve işitsel korteks (AC). Tüm bu bağlantıların bir kısmı korunduğunda, in vivo hazırlıklarla cevaplanabilecek soruları tamamlayan ayrıntılı soruları cevaplayabiliyoruz. Flavoprotein otofloresan görüntülemenin kullanılması, herhangi bir dilimdeki bağlantıyı hızlı bir şekilde değerlendirmemizi ve sonraki deneyi yönlendirmemizi sağlar. Bu dilimi kayıt ve görüntüleme teknikleriyle birlikte kullanarak, bilgi kortekse yükselirken işitsel ön beynin her noktasında bilgi işlemenin nasıl gerçekleştiğini ve azalan kortikal modülasyonun etkisini anlamak için artık daha donanımlıyız. Dilim odası bileşenleri oluşturmak için 3D baskı, çift taraflı perfüzyona ve dilim içindeki ağlara geniş erişime izin verir ve bu hazırlığı tam olarak kullanmak için yaygın bağlantıların anahtarını korur.

P15 fare elde colliculo talamokortikal fare beyin dilim bir örneği, Şekil 2&#39;de gösterilmiştir. İdeal bir dilim IC uyarıldığında etkinleştirilmiş tüm dört ana orta beyin ve ön beyin işitsel yapılar IC MGB, TRN ve AC içerecektir (Şekil 2A). Fourier analizi kullanarak, spektral güç periyodik ve stimülasyon frekansı 10 sürüklenen olan aktiviteyi gösteren bağlı beyin bölgeleri, elektrik stimülasyonu frekansında ölçülür. Bu protokol, özellikle orta beyin ve korteks arasında bir...

Farklı açılardan kullanarak fare yavru beyin kesmek için, biz büyük işitme orta beyin ve ön beyin yapılarının çoğu arasındaki bağlantıları yakalar önceden açıklanan akut beyin dilim üzerine geliştirmek.

Bir Colliculo-talamokortikal Fare Beyin Dilim modifikasyonu, 3-D Odası Bileşenleri baskı ve Multi-ölçekli Optik Görüntüleme birleştirilerek

The ability of the brain to process sensory information relies on both ascending and descending sets of projections. Until recently, the only way to study ...

Bu prosedürün genel amacı; inferior colus, işitsel talamus, talamik retiküler çekirdeğin işitsel kısmı ve işitsel korteks olmak üzere dört ana işitsel yapıyı içeren Calot Thal kortikal kesitini hazırlamaktır. Bu işlem, öncelikle beynin fareden çıkarılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım ise beynin dilimleme işlemine hazırlanması için bloklanmasıdır.Ardından, Calot talamik kortikal bağlantısını içeren kesitler elde etmek için beyni kesin. Son adım, bağlantısallığı değerlendirmek için flavoprotein görüntülemesini kullanmaktır. Nihayetinde, karotal kortikal bağlantıyı içeren beyin kesiti, orta ve ön beyindeki işitsel bölgelerde bilgi işlemenin daha iyi anlaşılması için çeşitli deneylerde kullanılabilir. Bu yöntemin görsel gösterimi kritiktir; çünkü beyni dilimlemeden önce bloklama adımları, sağlam projeksiyonlar elde etmenin anahtarı olan karmaşık çift açılı bir kesim gerektirdiğinden öğrenilmesi zordur.Tekniği, laboratuvarımdaki lisansüstü öğrencisi BJ Slater uygulamalı olarak gösterecektir. Kesme aşamasını dilimleme için hazırlamak amacıyla, beyin için destekleyici olarak kullanılacak yaklaşık bir santimetreküplük küçük bir 3%auger parçası ve inferior colliculus'u desteklemek için çıkıntı olarak kullanılacak 1,5 santimetre x 1,5 milimetre x 3 milimetre boyutlarında başka bir parça kesin. Ardından, destekleyici parçayı siyanoakrilat yapıştırıcı ile sahneye yapıştırın ve ardından çıkıntıyı, 90 derecelik iki çizgi ve sol üstten sağ alta doğru 17 derecelik diyagonal bir çizgiyle işaretlenmiş bir lam üzerinde 80 derecelik bir açı oluşturacak şekilde destekleyicinin sağ tarafına yapıştırın. Beyni, iki çizginin kesiştiği noktaya dorsal tarafı yukarı gelecek şekilde yerleştirin. Düz bir yüzey oluşturmak için bir jilet yardımıyla beynin rostral ucundan iki ila dört milimetre kesin.Ardından, beyni yeni oluşturulan düz yüzeye, içbükey tarafı yukarı gelecek şekilde yerleştirin. Beynin dorsal yüzeyini lam üzerinde işaretlenmiş yatay bir çizgiyle, beynin orta hattını ise dikey bir çizgiyle hizalayın. Daha sonra jileti 17 derecelik bir çizgiyle hizalayın.Beyni vibratom tablasına sabitlemek için jileti 30 derecelik bir açıyla eğin ve çift diyagonal kesimle sağ korteksten yaklaşık üç milimetre kaldırın. Filtre kağıdından küçük bir parçayı, uzun kenarı orta hatta dik olacak şekilde beynin ventral tarafına yerleştirin. Arka durdurucunun önündeki ve çıkıntının solundaki alana dikkatlice az miktarda siyanoakrilat yapıştırıcı uygulayın.Ardından, beynin çift diyagonal kesimli tarafını, beynin ön kısmı ve arka beyin çıkıntının üzerine desteklenecek, beynin sağ tarafı ise arka dayama noktasına yaslanacak şekilde yapıştırıcının üzerine yerleştirin. Bu prosedürde, kesim tablasını hızlıca vibratoma yerleştirin ve kesim solüsyonu ile bir tabla oluşturun. Sonrasında, bıçağı beynin üst kısmı ile hizalayın.Beynin üst kısmından 1 ila 1,5 milimetre kesin. Ardından, daha derine doğru ilerlerken 300 ila 500 mikrometrelik dilimler halinde keserek almaya devam edin. İnferior kollikulus, medial ate gövdesi ve lateral ICT çekirdeğinin tamamı görünür olduğunda, dentate gyrus C şeklinde görünmeli ve yapı hizalanmış olmalıdır.Yaklaşık iki adet 600 µm kalınlığında kesit elde edin. Bunlar karotal kortikal kesitlerdir. Ardından, bunları 32 °C'lik bekleme haznesine aktarın.Flavoprotein Otofloresans görüntüsünü elde etmek için görüntüleri dört hertz hızında 105 saniye boyunca toplayın. Dokuyu 470 ila 490 nanometre mavi ışıkla aydınlatın ve görüntünün ne çok karanlık ne de aşırı parlak olduğundan emin olarak 515 nanometrenin üzerini yakalayın. Ardından, bir kalsiyum görüntüsü elde etmek için dokuyu aktive etmek amacıyla elektriksel stimülasyon uygulayın.25 saniye boyunca 10 hertz hızında görüntüler toplayın. Dokuyu 365 nanometre ışıkla aydınlatın ve 510 nanometrenin üzerindeki floresanışı yakalayın. Yine, görüntünün ne çok karanlık ne de aşırı parlak (patlamış) olduğundan emin olun.Ardından, hücreleri aktive etmek için elektriksel stimülasyon uygulayın. Bu görüntü, Flavoprotein Otofloresansı ile beyin kesitindeki karotis kortikal bağlantının onaylanmasını göstermektedir. İnferior kolusa 0.05 hertz hızında verilen elektriksel stimülasyon, dört hertz hızında görüntülenmiş ve bu stimülasyondaki gücü göstermek için dört şeklinde işlenmiştir.Frekans, işitsel talamus, talamik retiküler çekirdek ve işitsel korteks sinaptik olarak aktive olur. Burada bağlantısız bir kesit yer almaktadır. İnferior kolikulusun elektriksel stimülasyonu ile aktivasyon yalnızca işitsel talamusta görülmüştür.Kesiklerden birinin hafifçe düzlem dışında olması nedeniyle tüm yol muhtemelen yakalanamamıştır. Alam kortikal projeksiyonları ile. Bu görüntü, işitsel korteksin atipik aktivasyonunu göstermektedir.İnferior colus'un elektriksel stimülasyonu, görünür bir sinyal olmaksızın işitsel korteksi aktive etti. İşitsel talamusta, talamusun hâlâ aktive olduğu ancak görüntü yüzeyinde yer almadığı muhtemeldir. Bu videoyu izledikten sonra, AAL talamik kortikal kesitinin nasıl elde edileceği ve bağlantısallığının nasıl değerlendirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

modification-colliculo-thalamocortical-mouse-brain-slice

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video ve tamamlayıcı malzeme, kronik bir...

Fare Visual Cortex İnceltilen kafatası Hazırlık Kronik Görüntüleme

Bu makalede, biz gerçekleştirmek için kolay ve görüntü yetişkin fare beyin damar ağacı kullanılabilir serebrovasküler döküm için basit ve pratik bir tekniği mevcut.

3D Görüntüleme ve Morfolojik Analizi Yetişkin Mouse Serebrovasküler Döküm

Biz milimetre yayılan ve beyin iltihabı olmadan ay dayanır farenin kafatasında bir görüntüleme penceresi oluşturmak için bir yöntem sunuyoruz. Bu yöntem de iki foton mikroskopi kullanılarak kan akımı, hücresel dinamiği ve hücre / vasküler yapının uzunlamasına çalışmalar için uygundur.

Fare Beyin Uzun vadeli Görüntüleme için Parlak ve Takviyeli inceltilmiş-kafatası Pencere

Video, fare yavrusu beyinlerinden kollikülo-talamokortikal beyin dilimlerinin hazırlanışını göstermektedir. İzole edilmiş bir beyin, işaretli bir slayt üzerinde hizalanır ve işitsel orta beyin ile ön beyni aynı düzlemde hizalamak için belirli bir açıyla kesilir. Beyin daha sonra bir vibratom kullanılarak dilimlenir ve ana işitme, orta beyin ve ön beyin yapılarını içeren dilimler, koruma için bir tutma odasına aktarılır.

Bir Fare Yavrusu Beyninden Kollikülo-Talamokortikal Dilimlerin Hazırlanması

Bu video, transgenik farelerde optik bir pencereden beynin nöral aktivite kaydını göstermektedir. Fareler, sinirsel aktivitelerin tespit edilmesini sağlayan bir floresan proteini eksprese eder. Kafatasının küçük bir kısmı, optik bir pencere takmak için dikkatlice çıkarılır ve daha sonra görüntülemeden önce ışığı engellemek için kafatası siyah çimento ile kaplanır.

Görüntü Sinirsel Aktivitelerine Transgenik Farelerin Beynine Optik Pencerelerin Yerleştirilmesi

Bu yazıda yüksek çözünürlüklü, floresan etiketli fare beyinleri ince beyin anatomisi ile, yeniden tam deneysel prosedürü açıklar. Açıklanan protokol numune hazırlama ve temizleme, görüntüleme, veri post-processing ve çok ölçekli görselleştirme için montaj örneği içerir.

Eşodaklı Işık Sac Mikroskobu ile Tüm Fare Brain mikron çaplı Çözünürlük Optik Tomografi

MRI taramaları (insan), 3D görüntüleme yazılımı ve immünohistolojik analiz kullanarak, beynin lateral ventriküllerindeki değişiklikleri belgeliyoruz. Lateral ventrikül hacim değişikliklerinin uzunlamasına 3D haritalanması ve yaşlanma veya hastalık nedeniyle insan beyninde meydana gelen periventriküler hücresel değişikliklerin karakterizasyonu daha sonra farelerde modellenir.

İnsanlar ve Mouse Periventriküler Doku Yanal ventrikülleri ve histolojik Karakterizasyonu 3D Modelleme

Burada, serbest hareket eden farelerde çoklu korteks tabakaları boyunca hücresel çözünürlük ile büyük ölçekli Ca 2+ görüntülemenin gerçekleştirilmesi için bir prosedür sunuyoruz. Yüzlerce aktif hücre, implante edilmiş bir prizma probu ile birleştirilmiş minyatür, başa monte mikroskop kullanarak eş zamanlı olarak gözlemlenebilir.

Çok Katlı Kortikal Ca<sup&gt; 2+</sup&gt; Prizmatik Problar ve Minyatür Floresan Mikroskopi ile Serbestçe Hareketli Fare Görüntüleme

Burada biz bir doku takas, floresan etiketleme ve büyük ölçekli görüntüleme sağlayan, böylece, görselleştirme yeni korteksimiz hücre tiplerinin üç boyutlu kuruluşun fare beyin dokusunun açıklayınız.

Hücresel Örgütü fare yeni korteksimiz yılında büyük ölçekli üç boyutlu görüntüleme

Burada, uyanık farelerde mikroglial dinamiklerin ve nöronal aktivitenin eşzamanlı görüntülenmesi için adeno ilişkili virüs enjeksiyonunu kraniyal pencere implantasyonu ile birleştiren bir protokolü tanımladık.

Uyanık Farelerde Mikroglial Dinamiğin ve Nöronal Aktivitenin Eşzamanlı Görüntülenmesi

Bu protokol, vahşi tip farelerde korteksi bozulmadan bırakırken iki foton mikroskobu ile tek nöron aktivitesinin görüntülenmesi ve kısmi korteks mutant farelerde geniş alan mikroskobu ile tüm SC'nin görüntülenmesi dahil olmak üzere, uyanık farelerin superior colliculus'unda (SC) kalsiyum yanıtlarını görüntüleme prosedürünü detaylandırır.

Fare Superior Colliculus'ta Kalsiyum Görüntüleme

Keşfedin fare beyin dilimi hazırlama yöntemini, inferior kolikül ve işitsel korteks gibi dört ana işitsel yapıyı koruyarak. Flavoprotein görüntüleme ile bağlantıları değerlendirin ve işitsel bilgi işleme süreçlerini anlayın.

Bir Colliculo-talamokortikal Fare Beyin Dilim modifikasyonu, 3-D Odası Bileşenleri baskı ve Multi-ölçekli Optik Görüntüleme birleştirilerek (Video) | JoVE Journal

Bir Colliculo-talamokortikal Fare Beyin Dilim modifikasyonu, 3-D Odası Bileşenleri baskı ve Multi-ölçekli Optik Görüntüleme birleştirilerek

Daha fazla video keşfet