Name: Besleyici içermeyen şartlar Sendai virüs kullanılarak insan periferik T hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: Keşfedin, insan periferik T hücrelerinden besleyici içermeyen koşullarda Sendai virüs vektörleri kullanarak iPS hücreleri üretme yöntemini. Bu teknik rejeneratif tıpta güvenliği artırır ve klinik uygulamalar için hastalık modellemesi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz teknik yardım için Tıp Keio Üniversitesi School Yoshiko Miyake, Sayaka Kanaami, Chihana Fujita, Miho Yamaguchi, Natsuko Henmi ve Rei Ohno teşekkür ederiz. Bu çalışma kısmen sağlığı araştırma sonuçlarının pratik kullanımını hızlandırmak için bir Ar-Ge Sistemleri destek programı ve Rejeneratif Tıp Gerçekleşmesi için Karayolları Programı tarafından finanse edildi.

1. aktiflediği insan T hücrelerindeki hazırlayın <ol><li> Damarından bir donörden tam kan heparinize 10 ml toplayın. <ol><li> Venipunktür önceden donörlerin aydınlatılmış onam. Venipunktür kalifiye ve eğitimli personel tarafından yapılmalıdır. </li><li> Steril ekipman ve aşağıdaki uygun biyogüvenlik kurallarına elde edilen kan örnekleri taşıyınız. </li></ol></li><li> 10 ml D-PBS ile bütün kan heparinize 10 ml seyreltik (-). </li><li> Yeni 50-ml konik tüp içine 15 ml Ficoll solüsyonu (Ficoll Paque PREMIUM) koyun. </li><li> Adım 1.3 Ficoll çözeltisi üzerine Adım 1.2 hazırlanan 20 ml kan çözümü Katman. Elektrikli bir pipet kullanılarak, kan solüsyonu tüpün iç duvarı boyunca yavaş yavaş Aşama 1,2 çalıştırmak hazırlandı sağlar. Kan çözümü ve Ficoll çözüm karıştırmak için dikkatli olun. </li><li> Oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 400 x g&#39;de santrifüjleyin. &quot;Yavaş&quot; santrifüj yavaşlama hızını ayarlayın. Not: Santrifüj işleminden sonra, beyaz bir incetabaka bir üst sütlü plazma tabakası ve alt net bir Ficoll katmanı arasında ortaya çıkar. Bu beyaz ince tabaka mononükleer hücreleri içerir. </li><li> Bir 1 ml pipet ile yeni bir 50-ml&#39;lik konik tüpe tek çekirdekli hücre katmanı aktarın. Ficoll çözüm dahil vermemek için dikkatli olun. </li><li> D-PBS (-) ekleyin, oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de, toplam 10 ml&#39;lik bir hacme ve santrifüj mononükleer hücrelerine temin etmektedir. </li><li> Süpernatantı atın. Tek-çekirdekli hücreleri, ve oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj (-) D-PBS, 10 ml ekleyin. </li><li> Süpernatantı atın toplanan mononükleer hücrelere KBM502 orta 1 ml ekleyin ve hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. X 10 6 5 üzerinde tek çekirdekli hücreler, uygun bir ayırma Ficoll kullanılarak, tam kanın heparinize 10 ml elde edilebilir. </li><li> D-PBS içinde 10 ug / ml&#39;lik bir konsantrasyonda, bir anti-insan CD3 antikoru solüsyonu hazırlayın (-). Sörf emmek 6-çukurlu plaka anti-insan CD3 antikoru solüsyonu ilaveHer bir ası de ve en az 30 dakika boyunca% 5 CO2 inkübatörde 37 ° C&#39;de inkübe çanak. </li><li> Her bir anti-insan CD3 antikor çözüm çıkarın ve D-PBS ile bir kez yıkanır (-) tohum hücreleri hemen önce. </li><li> KBM502 ortam içinde anti-insan CD3 antikoru ile kaplanmış 6-yuvalı plakalar üzerinde 2.5 x 10 5 hücre / cm2 yoğunluğunda Aşama 1,9 hazırlandı Tohum mononükleer hücreleri. T hücreleri konfluansa ulaşana kadar bir ortam değişikliği olmadan 3-7 gün boyunca% 5 -CO 2 inkübatörde 37 ° C&#39;de inkübe edilir. Bu dönemde, T-hücreleri, hem süspansiyon haline getirilmiş ve yapışan hücreler bulunmaktadır. </li></ol> SeV Vektörler 2. Infect İnsan T hücrelerinin <ol><li> 3-7 gün kültürden sonra, pipetleme orta mevcut aktive edilmiş T hücreleri toplamak. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g &#39;de 15 ml konik tüp ve santrifüj aktarın. </li><li> Süpernatantı ve 1 ml taze KBM502 orta ekleyin. Hücreleri saymak ve 1 plaka.5 x 10 6 hücre, bir anti-CD3 antikoru ile kaplanmış 6-çukurlu plakanın her oyuğuna (2 ml taze KBM502 ortamı içerisinde). </li><li> Buz üzerinde Zeiss OCT3 / 4-SeV / TSΔF, Sox2-SeV / TSΔF, Klf4-SeV / TSΔF ve c-myc (HNL) -SeV / TS15ΔF arasında SeV çözüm çözülme. </li><li> Zeiss OCT3 / 4-SeV / TSΔF, Sox2-SeV / TSΔF, Klf4-SeV / TSΔF ve c-myc (HNL) ihtiva eden SeV çözümler ekleyin -SeV / TS15ΔF ayrı ayrı gözlere, enfeksiyon çokluğunda her (MOI) Bir başka 24 saat süreyle% 5 -CO 2 inkübatörde 37 ° C&#39;de inkübe 10. bölgesinin. </li></ol> 3. İnsan T Hücreleri SeV Vektörler kaldır <ol><li> 24 saat enfeksiyondan sonra, bir pipetle enfekte hücreleri toplamak. Yapışan hücreler varsa, onlar kolayca defalarca yukarı ve aşağı onları pipetleme ayrılabilir. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g &#39;de 15 ml konik tüp, ve santrifüj aktarın. </li><li> SeV vektörleri içeren süpernatant kaldırmak ve 2 ml taze KBM502 orta ekleyin. EAC içinde Replate hücrelerkuyuların h. Ek bir 24 saat boyunca bir% 5 -CO 2 inkübatörde 37 ° C&#39;de inkübe edilir. </li></ol> Bir Matrigel Katman 4. reseed Hücreler <ol><li> 4 ° C &#39;de (Bu çalışmada kullanılan özel markasıyla Malzeme Listesi bakınız) ve DMEM / F12 ortamı içinde 10 ml 0.2 ml eritilmesi çözülme matris jel bazal membran matrisi çözeltisi hazırlayın. Not: The Matrix jeli (bu çalışmada kullanılan belirli bir marka için malzemeler listesi bakınız) 4 ° C&#39;de tamamen çözülmüş olması O / N çözülme gerekiyor. Kullanmadan önce kadar buz üzerinde tutun. </li><li> 100 mm&#39;lik tabaklara tabak başına Levha 5 mi bazal membran matrisi çözeltisi ve tohum hücreleri önce en az 30 dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin. En az iki adet 100 mm çanağı bir deney için ihtiyaç vardır. </li><li> , Pipetleme SeV enfekte olmuş hücreleri toplamak, oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de 15 ml konik tüp, ve santrifüj aktarın. </li><li> Süpernatantı ve 1 ml taze KBM502 orta ekleyin. Ce sayısınıHemasitometre kullanarak lls Adım 4.2 ve plaka hazırlanan 100 mm yemeklerinden bazal membran matris çözümü kaldırmak 1 × 10 5 ve 1 × 10 6 hücre 100 mm bazal membran matris kaplı üzerinde (10 ml taze mTeSR orta olarak) yemekler. Son olarak, koloniler kolayca çekilen hangi plakayı kullanın. </li><li> % 5 CO 2 inkübatör O / N 37 ° C &#39;de çanak inkübe edin. </li><li> 10 orta değiştirmek mi her gün mTeSR orta eti. Not: enfeksiyondan sonra yaklaşık 20-30 gün, yakından embriyonik kök hücreler (EKH) benzer koloniler görünecektir. </li></ol> 5. T-hücresinden alınan iPSCs aç <ol><li> 4 ° C &#39;de (Bu çalışmada kullanılan özel markasıyla Malzeme Listesi bakınız) ve DMEM / F12 ortamı içinde 10 ml 0.2 ml eritilmesi çözülme matris jel bazal membran matrisi çözeltisi hazırlayın. </li><li> Levha 1, 6-çukurlu plaka içinde çukur başına bazal membran matrisi çözeltisi ve en oda sıcaklığında bırakınkoloniler almadan önce en az 30 dakika. </li><li> MTeSR ortamının 20 ul, 96 oyuklu bir plaka Dolgu ile sabitleştirilir. </li><li> 20 ul pipet kullanarak stereomicroscope altında EKH benzer koloniler seçin. Not: Şekil 1B gösterildiği gibi EKH ve iPSCs kolonileri yuvarlak ve düzdür. </li><li> Aşama 5.3 mTeSR ortamı ile doldurulmuş 96 oyuklu bir plakaya transfer seçilmiş kolonileri. </li><li> 200 ul pipet kullanarak stereomicroscope altında küçük öbekler halinde koloni kırmak için aşağı yukarı pipet ve dikkatle her kuyuya mTeSR orta 200 ul ekleyin ve. 5.2 de hazırlanan gelen bazal membran matrisi çözeltisi çıkarın ve mTeSR orta 2 ml bazal membran matris ile kaplanmış 6-çukurlu plakanın bir oyuğuna, her bir koloni koyun ile sabitleştirilir. </li><li> 2 orta değiştirmek mi her gün mTeSR orta eti. </li></ol> 6. T hücre-türevi iPSCs korumak T hücresi kaynaklı iPSCs korunabilirve insan ve insan iPSCs EKH aynı teknikler kullanılarak muhafaza edilmiştir. IPSC kolonileri büyümek kez aynı prosedürü tekrar ederek büyük yemeklerin içine genişletin. <ol><li> Her 1-2 gün mTeSR orta değiştirin. </li><li> Koloniler Konfluent hale geldiğinde her 5-7 gün, insan iPSCs ve üreticinin talimatlarına göre insan EKH için ayrılma çözümü kullanarak geçiş hücreleri. </li></ol>

<ol><li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126, 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).</li>
<li>Hayes, M., Zavazava, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+to+generate+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Strategies to generate induced pluripotent stem cells.</a> Methods Mol Biol. 1029, 77-92 (2013).</li>
<li>Gonzalez, F., Boue, S., Izpisua Belmonte, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+making+induced+pluripotent+stem+cells%3A+reprogramming+a+la+carte%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Methods for making induced pluripotent stem cells: reprogramming a la carte.</a> Nat Rev Genet. 12, 231-242 (2011).</li>
<li>Loh, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+T+cells+from+human+peripheral+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of T cells from human peripheral blood.</a> Cell Stem Cell. 7, 15-19 (2010).</li>
<li>Seki, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+terminally+differentiated+circulating+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of induced pluripotent stem cells from human terminally differentiated circulating T cells.</a> Cell Stem Cell. 7, 11-14 (2010).</li>
<li>Staerk, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+peripheral+blood+cells+to+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human peripheral blood cells to induced pluripotent stem cells.</a> Cell Stem Cell. 7, 20-24 (2010).</li>
<li>Nishimura, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+rejuvenated+antigen-specific+T+cells+by+reprogramming+to+pluripotency+and+redifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of rejuvenated antigen-specific T cells by reprogramming to pluripotency and redifferentiation.</a> Cell Stem Cell. 12, 114-126 (2013).</li>
<li>Vizcardo, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+Human+Tumor+Antigen-Specific+T+Cells+from+iPSCs+Derived+from+Mature+CD8+T+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Regeneration of Human Tumor Antigen-Specific T Cells from iPSCs Derived from Mature CD8 T Cells.</a> Cell Stem Cell. 12, 31-36 (2013).</li>
<li>Sampsell-Barron, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xeno-free+adaptation+and+culture+of+human+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Xeno-free adaptation and culture of human pluripotent stem cells.</a> Methods Mol Biol. 1001, 81-97 (2013).</li>
<li>Thomson, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282, 1145-1147 (1998).</li>
<li>Minegishi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+optineurin+E50K-TBK1+interaction+evokes+protein+insolubility+and+initiates+familial+primary+open-angle+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">Enhanced optineurin E50K-TBK1 interaction evokes protein insolubility and initiates familial primary open-angle glaucoma.</a> Hum Mol Genet. 22, 3559-353367 (2013).</li>
<li>Tanaka, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelin-1+induces+myofibrillar+disarray+and+contractile+vector+variability+in+hypertrophic+cardiomyopathy-induced+pluripotent+stem+cell-derived+cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Heart+Assoc%22%5BJournal%5D)">Endothelin-1 induces myofibrillar disarray and contractile vector variability in hypertrophic cardiomyopathy-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes.</a> J Am Heart Assoc. 3, e001263(2014).</li>
<li>Ludwig, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+human+embryonic+stem+cells+in+defined+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions.</a> Nat Biotechnol. 24, 185-187 (2006).</li>
<li>Kishino, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+peripheral+T+cells+in+defined+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Derivation of transgene-free human induced pluripotent stem cells from human peripheral T cells in defined culture conditions.</a> PLoS One. 9, e97397(2014).</li>
<li>Masaki, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+Sendai+virus-mediated+gene+transfer+to+vasculature%3A+a+new+class+of+efficient+gene+transfer+vector+to+the+vascular+system%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Recombinant Sendai virus-mediated gene transfer to vasculature: a new class of efficient gene transfer vector to the vascular system.</a> FASEB J. 15, 1294-1296 (2001).</li>
<li>Li, H. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cytoplasmic+RNA+vector+derived+from+nontransmissible+Sendai+virus+with+efficient+gene+transfer+and+expression%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">A cytoplasmic RNA vector derived from nontransmissible Sendai virus with efficient gene transfer and expression.</a> J Virol. 74, 6564-6569 (2000).</li>
<li>Ikeda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+Sendai+virus-mediated+gene+transfer+into+adult+rat+retinal+tissue%3A+efficient+gene+transfer+by+brief+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Recombinant Sendai virus-mediated gene transfer into adult rat retinal tissue: efficient gene transfer by brief exposure.</a> Exp Eye Res. 75, 39-48 (2002).</li>
<li>Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+induction+of+transgene-free+human+pluripotent+stem+cells+using+a+vector+based+on+Sendai+virus%2C+an+RNA+virus+that+does+not+integrate+into+the+host+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Jpn+Acad+Ser+B+Phys+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome.</a> Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-362 (2009).</li>
<li>Macarthur, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human-induced+pluripotent+stem+cells+by+a+nonintegrating+RNA+Sendai+virus+vector+in+feeder-free+or+xeno-free+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells+Int%22%5BJournal%5D)">Generation of human-induced pluripotent stem cells by a nonintegrating RNA Sendai virus vector in feeder-free or xeno-free conditions.</a> Stem cells Int. , 564612(2012).</li>
<li>Iida, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sendai+virus+vector%3A+vector+development+and+its+application+to+health+care+and+biotechnology%5BTitle%5D)+AND+%22Uirusu%22%5BJournal%5D)">Sendai virus vector: vector development and its application to health care and biotechnology.</a> Uirusu. 57, 29-36 (2007).</li>
<li>Yoshida, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+repopulation+of+cytoplasmically+gene+transferred+hematopoietic+cells+by+temperature-sensitive+mutant+of+recombinant+Sendai+viral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Comm%22%5BJournal%5D)">In vivo repopulation of cytoplasmically gene transferred hematopoietic cells by temperature-sensitive mutant of recombinant Sendai viral vector.</a> Biochem Biophys Res Comm. 361, 811-816 (2007).</li>
<li>Bitzer, M., Armeanu, S., Lauer, U. M., Neubert, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sendai+virus+vectors+as+an+emerging+negative-strand+RNA+viral+vector+system%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gene+Med%22%5BJournal%5D)">Sendai virus vectors as an emerging negative-strand RNA viral vector system.</a> J Gene Med. 5, 543-553 (2003).</li>
<li>Seki, T., Yuasa, S., Fukuda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+a+small+amount+of+human+peripheral+blood+using+a+combination+of+activated+T+cells+and+Sendai+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Generation of induced pluripotent stem cells from a small amount of human peripheral blood using a combination of activated T cells and Sendai virus.</a> Nat Protoc. 7, 718-728 (2012).</li>
<li>Okano, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+Sendai+virus+vectors+for+activated+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Recombinant Sendai virus vectors for activated T lymphocytes.</a> Gene Ther. 10, 1381-1391 (2003).</li>
<li>Okita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+nonviral+method+to+generate+integration-free+human-induced+pluripotent+stem+cells+from+cord+blood+and+peripheral+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">An efficient nonviral method to generate integration-free human-induced pluripotent stem cells from cord blood and peripheral blood cells.</a> Stem Cells. 31 (3), 458-466 (2013).</li>
<li>Zhang, X. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+reprogramming+of+human+peripheral+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Genom+Proteom+Bioinform%22%5BJournal%5D)">Cellular reprogramming of human peripheral blood cells.</a> Genom Proteom Bioinform. 11 (5), 264-274 (2013).</li>
<li>Su, R. J., Neises, A., Zhang, X. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+iPS+Cells+from+Human+Peripheral+Blood+Mononuclear+Cells+Using+Episomal+Vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of iPS Cells from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells Using Episomal Vectors.</a> Methods Mol Biol. , (2014).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip ya da ifşa etmek çıkarları çatışan var.

Matrigel, mTeSR ortamı ve SeV vektörlerinin bir kombinasyonunu kullanarak serumsuz ve besleyicisiz koşullarda insan periferik T hücrelerinden iPSC'ler üretmek için bir protokol açıklıyoruz. iPSC'lerin klinik uygulamaları için, iPSC'leri kararlı bir şekilde üretmek için bir protokole ve hücre örneklemesi için daha az invaziv bir yönteme sahip olmak önemlidir. Matrigel ve mTeSR ortamının kombinasyonu ile iPSC'lerin üretilmesi, nakavt serum replasman (KSR) ortamı ve besleyici hücrelere göre daha düşük yeniden programlama verimliliği göstermesine rağmen, bu kombinasyon, donörlerden16 kararlı iPSC üretimi sağlar. Kararlı iPSC üretimi ve daha az invaziv hücre örneklemesi, iPSC üretimi için donör sayısını artırabilme avantajına sahiptir. 
Eksi iplikli bir RNA virüsü olan SeV vektörleri, konakçı genomuna entegre değildir. Bu nedenle, faktör indüksiyonunun yeniden programlanması20-24 adımında tümör oluşumu risklerinden kaçınılabilir. Ek olarak, bir besleyici katman yerine tanımlanmış kültür ortamı ve matrigelin bir kombinasyonunu kullanan besleyicisiz koşullar, bilinmeyen eksojen faktörlere maruz kalmanın potansiyel risklerini en aza indirmeyi mümkün kılar. Bu tekniklerin füzyonu, rejeneratif tıp için daha az invaziv ve daha güvenli bir iPSC teknolojisi sağlar16.
Bu protokoldeki önemli adımlar, insan T hücrelerini aktive etme (Adım 1) ve onları SeV vektörleri ile enfekte etme (Adım 2) adımıdır. SeV enfeksiyonundan sonra en uygun zamanda kültür kabında ESC benzeri koloni elde edilmediğinde, aşağıdakiler dikkate alınmalıdır. İlk olarak, T hücresi aktivasyonundan önce mononükleer hücrelerin birleşmesi uygun olmayabilir çünkü T hücrelerinin optimal aktivasyonu SeV enfeksiyonu için kritik öneme sahiptir25,26. Çok yüksek mononükleer hücre yoğunluğu, T hücrelerinin uygun aktivasyonuna müdahale ederek hücre ölümüne yol açar. Mononükleer hücrelerin çok düşük yoğunluğu, T hücrelerinin uygun aktivasyonunu ve çoğalmasını da bozar. Bu nedenle, mononükleer hücrelerin birleşmesi kontrol edilmeli ve buna göre ayarlanmalıdır. İkincisi, SeV vektörlerinin dozu yeterli olmayabilir. iPSC kolonilerinin indüksiyon etkinliği, virüsün dozajına bağlıdır6. SeV enfeksiyonundan sonra ESC benzeri bir koloni gözlenmezse, virüs dozajını 15-20'lik bir MOI'ye kadar artırma seçeneği düşünülmelidir. iPSC koloni farklılaşması belirtileri gözlenirse, ortamın değiştirilme sıklığı gün aşırı veya kolonilerin daha büyük olduğu her güne kadar artırılabilir. 
Bu protokoldeki sınırlama, bu yöntemin virüssüz olmamasından ibarettir. Hücre yeniden programlaması için SeV ticari olarak kolaylıkla temin edilebilmesine rağmen, kullanıcıların ekipmanı uygun biyogüvenlik seviyesine göre hazırlaması gerekir. Entegrasyonsuz iPSC'ler oluşturmak için başka bir yöntem olarak, epizomal vektörler şimdiye kadar27-29 kullanılmıştır. Epizomal vektörler, daha düşük biyogüvenlik seviyesine sahip ekipmanlarla kullanılabilse de, epizomal vektörler, konakçı genomuna son derece düşük oranlarda eklenebilir. Bu nedenle, SeV kullanırken olduğu gibi transgenlerin kaybolduğunu doğrulamak için ek kontroller gereklidir.
Bu tekniğin hayvansal kaynaklı ürünlerden tamamen arınmış olmaması gibi bir sınırlama daha vardır. Matrigel, anti-CD3 mAb, ayrışma solüsyonu ve SeV solüsyonu gibi bazı substratlar hayvansal ürünlerden türetilir ve bu nedenle ksenojenik patojenlerin transfer edilme riski ile ilişkilidir. Bununla birlikte, kültür sistemindeki hayvan kaynaklı substratların azaltılması, daha düşük risk nedeniyle iPSC teknolojisinin klinik uygulaması için anlamlıdır.

iPSCs rejeneratif tıp 1-3 için hücre çığır kaynağı olarak büyük ilgi çekmiştir. Bugüne kadar, iPSCs üretilmesi için çeşitli yöntemler 4,5 bildirilmiştir. Bunlar arasında, insan T hücrelerinden üretilen iPSCs çünkü cep örnekleme 6-8, daha az invazif yöntemin özel ilgi olmuştur. Buna ek olarak, T hücrelerinden türetilen iPSCs T hücre reseptörü (TCR) geninin yeniden düzenlenmesi içerir ve dolayısıyla antijen-spesifik T hücrelerinin 9,10 kaynağıdır. Bu nedenle, T-hücresi türevli iPSCs üreten güvenli rejeneratif tıp devam edebilmek için yararlıdır. Bu yöntem, öngörülemeyen patojenite riskini azaltma kavramına dayanmaktadır. IPSCs güvenli klinik uygulama için bu patojenlere 11 maruz kalma riskini azaltmak için çok önemlidir. Daha önce pluripotent kök hücrelerin bir çok kültür sistemlerinde, fetal sığır serumu ve besleme hücreleri esas reaktif olarak kullanılmaktadır12 s. IPSC üretimi öngörülemeyen patojenik riskini azaltmak için Ancak, kültür sistemi, bu reaktiflerin iki çıkarılması tercih edilir. Buna ek olarak, bu yöntem, hasta ve besleyici hücreler zahmetli preparatından invaziv hücre örnekleme önüne geçme avantajına sahiptir. T hücresi türevli iPSCs önce hastalığı araştırma 13,14 başarıyla kullanılmıştır, bu yöntem, aynı zamanda hastaların hastalığa özgü iPSCs üretilmesi için kullanılabilir ve yararlıdır. Bir gen taşıyıcı olarak Sendai virüsü (SeV) vektörü kullanılarak T hücre yeniden programlama yöntemleri arasında, yüksek verimlilik, 7,16 ile iPSCs üreten bir yöntemdir. SeV tek iplikli bir RNA virüsüdür ve replikasyon için bir DNA faz gerek yoktur, çünkü ek olarak, iPSC üretimindeki kullanımı konakçı genomu 17-19 kırılma önler. Bu nedenle, serum-fr insan periferik T hücrelerinden iPSCs üretilmesi için protokoller kurdukee ve matrigel, mTeSR ortamı bir kombinasyonu kullanılarak besleyici içermeyen koşulları ve SeV vektörler.

<table><tbody><tr><td>Ficoll-Paque PREMIUM</td><td>GE Healthcare</td><td>17-5442-02</td><td></td></tr><tr><td>Saflaştırılmış NA/LE fare anti-insan CD3</td><td>BD Pharmingen</td><td>555336</td><td></td></tr><tr><td>Sığır albümin fraksiyonu V çözeltisi</td><td>Gibco</td><td>15260-037</td><td></td></tr><tr><td>mTeSR1 orta kit</td><td>KÖK HÜCRE</td><td>5850</td><td>Kullanmadan önce oda sıcaklığında ısıtın</td></tr><tr><td>Ayrışma Çözeltisi</td><td>ReproCELL</td><td>RCHETP002</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS(&ndash;)</td><td>Wako</td><td>045-29795</td><td></td></tr><tr><td>SeV Vektör kiti CytoTune-iPS ver.1.0</td><td>DNAVEC</td><td>DV-0303c</td><td>Kullanmadan önce buz üzerinde çözdürün</td></tr><tr><td>100 mm doku kültürü kabı</td><td>Falcon</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>96 oyuklu doku kültürü plakası</td><td>Falcon</td><td>353078</td><td></td></tr><tr><td>6 oyuklu doku kültürü plakası</td><td>Falcon</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>15&#160; ml Santrifüj Tüpü</td><td>Greiner Bio-One</td><td>188271</td><td></td></tr><tr><td>50&#160; ml Santrifüj Tüpü</td><td>Greiner Bio-One</td><td>227261</td><td></td></tr></tbody></table>

besleyici içermeyen şartlar sendai virüs kullanılarak insan periferik t hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Human Peripheral T Cells Using Sendai Virus in Feeder-free Conditions

Son zamanlarda, iPSCs rejeneratif tedaviler için hücrelerin yeni kaynağı olarak dikkat çekmiştir. Üreten iPSCs için ilk yöntem invaziv biyopsi ve transgenlerin retroviral genomik yerleştirilmesi ile elde edilen dermal fibroblastlar dayanıyordu olsa da, bu dezavantajları önlemek için birçok çaba olmuştur. İnsan periferal T-hücreleri iPSCs üretilmesi için benzersiz bir hücre kaynağıdır. T hücrelerinden türetilen iPSCs T hücre reseptörü (TCR) genlerinin yeniden düzenlemeleri içerir ve antijen-spesifik T hücrelerinin bir kaynağıdır. Buna ek olarak, genom içinde T hücresi reseptörü yeniden düzenleme Bireysel hücre serilerinin etiket ve nakledilen ve donör hücreleri ayırt etmek için bir potansiyele sahiptir. IPSCs güvenli klinik uygulama için, zararlı ajanlara yeni oluşturulan iPSCs ortaya çıkma riskini en aza indirmek için önemlidir. Fetal büyükbaş hayvan serumu ve besleme hücreleri pluripotent kök hücre kültürü için gerekli olmasına rağmen, bu riskini azaltmak için kültür sistemi kaldırmak için tercih ediliröngörülemeyen patojenli. Bu gidermek için, tanımsız patojenlere iPSCs ortaya çıkma riskini azaltmak için Sendai virüsü kullanılarak insan periferik T hücrelerinden iPSCs üretilmesi için bir protokol kurduk. Sendai virüsü taşıma, uygun biyogüvenlik düzeyi ile ekipman gerektirir rağmen, Sendai virüsü bozar genom ekleme olmadan T hücrelerinin aktive henüz yüksek verimlilik ile. Bu protokol, aktive edilmiş T hücre kültürü ve Sendai virüsü bir kombinasyonu kullanılarak besleyici içermeyen koşullar, insan periferik T hücrelerinden iPSCs üretilmesini göstermektedir.

<html> Bu protokol kullanılarak, kullanıcı kararlı bir şekilde insan periferik T hücrelerinden iPSCs elde edebiliyoruz. . Birkaç geçiş sonrası tespit olmayan birden çok verici olgu ve sev arasında bir hücrenin yeniden programlanması verimliliği% 0.005 16 Şekil 1A T üretilmesi için prosedürün şematik hücre türevli gösterir - SeV ve Matrigel ile T hücrelerinden iPSC üretimi yaklaşık% 0.002 gösterdi Matrigel ve mTeSR ortamı kullanılarak besleyici içermeyen koşullarda iPSCs. Çevresi 20-30 gün sev ile enfeksiyondan sonra, iPSC koloniler ESC koloni gibi morfolojisi (Şekil 1B) tarafından kabul edilmektedir. Immünofloresan boyama tipik pluripotent hücre belirteçleri ekspresyonunu gösterdi (Nanog, Zeiss OCT3 / 4, SSEA4, TRA-1-60 ve TRA-1-81), T hücresi kaynaklı iPSCs besleyici içermeyen koşullar (Şekil 1C) altında elde edilen. &quot;Width =&quot; 700 &quot;/&gt; Şekil 1. (A): Bu çalışmada, besleyici içermeyen koşullar altında yeniden programlama T hücreleri için protokol şematik. (B): besleyici içermeyen koşullar altında kan örneği gün sonra 27 bulunan tipik bir ESC benzeri iPSC koloni. (C)., T hücresi kaynaklı iPSCs ALP boyanması ve pluripotense ve yüzey markörleri için immünofloresan boyama (Nanog, Zeiss OCT3 / 4, SSEA4, TRA-1-60 ve TRA-1-81) besleyici içermeyen koşullar altında elde <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53225/53225fig1highres.jpg" target="_blank">edin Bu rakamın büyük halini görmek için buraya tıklayın.</a>

Bu protokol, yeniden programlama faktörleri içeren matrigel ve Sendai virüs vektörlerinin bir kombinasyonunu kullanarak, besleyicisiz koşullarda insan periferik T hücrelerinden indüklenmiş pluripotent kök hücrelerin (iPSC'ler) nasıl üretileceğini açıklar.

Besleyici içermeyen şartlar Sendai virüs kullanılarak insan periferik T hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Recently, iPSCs have attracted attention as a new source of cells for regenerative therapies. Although the initial method for generating iPSCs relied on ...

Bu prosedürün genel amacı, besleyici hücre içermeyen (feeder-free) koşullarda insan periferik T hücrelerinden indüklenmiş pluripotent kök hücreler veya IPC'ler üretmektir. Bu yöntem, iPS hücrelerinin klinik kullanıma nasıl uygulanabileceği dahil olmak üzere rejeneratif tıp alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, iPS hücrelerinin olası zararlı faktörlerin dahil edilmediği koşullarda kültüre edilebilmesidir, bu da patojenite riskini azaltır.Bu tekniğin önemi, invaziv hücre örneklemesinin azaltılması ve geliştirilen IPS hücrelerinin tanımlanmamış patojenlere maruz kalma riskinin düşürülmesi nedeniyle, klinik olarak ilgili IPS hücre tabanlı tedavilere kadar uzanmaktadır. Bu nedenle, söz konusu yöntem IPS hücrelerinin klinik tedavilerine dair içgörü sağlayabilir. Ayrıca, hastalık modelleme koşulları gibi diğer alanlarda da uygulanabilir.10 mililitre heparinli tam kanın 10 mililitre DPBS ile seyreltilmesiyle aktive edilmiş insan T hücrelerini hazırlamaya başlayın. 50 mililitrelik konik bir tüpe 15 mililitre fol çözeltisi ekleyin. Seyreltilmiş kanı, çözeltinin üzerinde bir katman oluşturacak şekilde tüpün iç duvarı boyunca yavaşça pipetleyerek ekleyin.Ara yüzeyin bozulmamasına dikkat edin. Tüpü oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 400 ×g hızında santrifüjleyin. Santrifüj sonrası; altta şeffaf bir tabaka, mononuclear hücreleri içeren ince beyaz bir tabaka ve üstte sütümsü bir plazma tabakası olmak üzere üç tabaka gözlemleyin.Mononükleer hücre tabakasını, herhangi bir fit hole çözeltisini aktarmadan yeni bir 50 mililitrelik konik tüpe transfer edin. Ardından, toplam hacmi 10 mililitreye tamamlamak için DPBS ekleyin. Tüpü oda sıcaklığında beş dakika boyunca 200 ×g hızda santrifüjleyin.Süpernatantı atın, hücreleri 10 milliliters DPBS ile yıkayın, tüpü 200 times G hızında beş dakika boyunca santrifüjleyin ve süpernatantı uzaklaştırın. Ardından hücrelere 1 milliliter KBM 5 0 2 besiyeri ekleyin ve hücre sayısını belirlemek için bir hemositometre kullanın; hücre kültür kabını hazırlamak için altı kuyucuklu bir plakanın kuyucuklarını PBS içinde 10 micrograms per milliliter anti-human CD three antikor çözeltisi ile kaplayın. Plakayı 37 degrees Celsius sıcaklıkta ve %5carbon dioxide ortamında en az 30 dakika boyunca inkübe edin.İnkübasyondan sonra, antikor çözeltisini plaketten uzaklaştırın ve bir kez PBS ile yıkayın; mononükleer hücreleri, kaplanmış altı kuyucuklu plakalarda, toplam iki mL KBM 502 ortamı içerisinde, santimetrekare başına 2,5 × 10⁵ hücre yoğunluğunda ekin. Hücreleri, ortamı değiştirmeden üç ila yedi gün boyunca inkübe edin; bu sürenin sonunda T hücreleri konfluens seviyesine ulaşmalıdır. Üç ila yedi günün ardından, aktive olmuş T hücrelerini ortamla birlikte 15 mL'lik konik tüpe aktarın ve 200 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatantı uzaklaştırın ve bir mL taze KBM 502 ortamı ekleyin.Hücreleri sayın ve anti-CD3 antikor kaplı altı kuyucuklu bir plağın her bir kuyucuğuna 2 mL KBM 502 ortamında 1,5 × 10⁶ hücre ekleyin; ardından OC3-SOX2, KLF4, c-MYC ve L Sendai virüs solüsyonlarını buz üzerinde çözdürün. Her bir mühendislik ürünü Sendai virüsünü, 10'luk bir enfeksiyon multiplicitiesi (MOI) ile her bir kuyucuğa ayrı ayrı ekleyin. 37 °C'de ve %5 karbondioksit ortamında 24 saat inkübe edin. Daha sonra enfekte hücreleri bir pipetle toplayın ve 15 mL'lik konik bir tüpe aktarın.Hücreleri 200 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Süpernatantı uzaklaştırın ve iki mililitre taze KBM 5 0 2 besiyeri ekleyin. Hücreleri altı kuyucuklu bir plakadaki kuyucuklara yerleştirin ve bir hücre kültürü inkübatöründe 24 saat boyunca inkübe edin.Hücreleri ekmek için öncelikle bazal membran matrisi çözeltisini dört derece Celsius'ta gece boyunca çözdürün; çözülen çözeltinin 0.2 mililitresini 10 mililitre DMEM/F12 ortamında çözün. Bazal membran matrisi çözeltisinin beş mililitresini 100 milimetrelik kaplara dağıtın. Hücre ekimi öncesinde matrisin kabı kaplamasına izin vermek için plakaları en az 30 dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin. Bu sırada, SAI virüsü ile enfekte edilmiş T hücrelerini 15 litrelik konik tüpe toplayın ve 200 ×g hızında beş dakika boyunca santrifüjleyin.Ardından pelletle bir mililitre taze KBM 5 0 2 besiyerinde resüspansiyon yapın ve 30 dakikalık inkübasyon süresinden sonra hücreleri hemositometre kullanarak sayın. İki plakadaki bazal membran matrisi çözeltisini uzaklaştırın, ardından 1 x 10⁵ hücreyi ve ayrı olarak 1 x 10⁶ hücreyi, ipsc'ler için besleyici hücre içermeyen bir kültür besiyeri olan 10 mililitre taze M-T-E-S-R besiyerinde resüspande edin. Her bir hücre süspansiyonunu ayrı bir 100 milimetrelik plakaya pipetleyin.Plakayı bir hücre kültürü inkübatöründe inkübe edin. 20 ila 30 gün sonra gün aşırı olarak besiyerini değiştirin. Embriyonik kök hücre kolonilerine benzeyen koloniler oluşmalıdır.Her bir kuyucukta bir mililitre bazal membran matriks çözeltisini oda sıcaklığında 30 dakika inkübe ederek altı adet duvar plakası hazırlayın. Bu sırada, IPSC kolonileri içeren kültür plakalarını bir stereo mikroskop altında inceleyin ve kolonileri 20 mikrolitrelik bir pipetle kazıyarak tekil kolonileri izole edin. Her bir koloniyi, 20 mikrolitre M-T-E-S-R besiyeri içeren bir kuyucuğa ve 96'lı duvar plakasına aktarın.Koloniler aktarıldıktan sonra, her kuyucuğa 200 µL M-T-E-S-R besiyeri ekleyin ve koloniyi dağıtmak için pipetle yukarı-aşağı çekme işlemi yapın. Alt bazal membran matriks çözeltisi altı kuyucuklu plakalardan uzaklaştırıldıktan sonra, tek bir koloniden hücreleri her kuyucuğa aktarın, ardından iki mL M-T-E-S-R besiyeri ekleyin, hücreleri bir hücre kültürü inkübatöründe inkübe edin ve besiyerini besleyici hücresiz kültür ve serumsuz besiyeri kullanarak gün aşırı değiştirin; iPSC'ler insan periferik T hücrelerinden üretilmiştir. İmmünofloresan boyama; Nanog, OCT4, SSEA4, TRA-1-60 ve TRA-1-81 dahil olmak üzere tipik pluripotent hücre belirteçlerinin ekspresyonunu ortaya koymuştur.Bu türetilmiş IPSE hatlarında. Bu prosedürü uygularken, tüm adımları tüm önemli sterilite ve biyogüvenlik hususlarını dikkate alarak gerçekleştirmenin önemli olduğunu unutmamak gerekir.

generation-induced-pluripotent-stem-cells-from-human-peripheral-t

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Biz, insan faktörleri Oct4, Sox2, Nanog ve Lin28 lentivirüs aracılı teslim kullanarak insan somatik hücre alınan uyarılmış pluripotent kök hücreleri üretimi için protokol göstermektedir. Pluripotency morfolojisi ve embriyonik kök (ES) hücre-spesifik belirteçler varlığı teyit edilmiştir.

Stemgent İnsan TF lentivirüs İnsan Fibroblastlar yeniden programlanması Bağlı Pluripotent Kök Hücre Üretimi ayarla

Burada tek bir lentiviral yeniden programlanması vektörü kullanılarak periferal kan 3-4 ml insan iPSCs üretimi için basit ve etkili bir protokol göstermektedir. Hazır kan hücrelerinin yeniden programlanması daha geniş bir araştırma toplum için erişilebilir kılarak IPSC teknoloji kullanımı hızlandırmak için vaat ediyor.

STEMCCA lentiviral Vektör Kullanma Çevresel Blood İnsan İsteyerek Pluripotent Kök Hücre Üretimi

Bu video, periferik kan mononükleer hücrelerinin (PBMNC'ler) Sendai virüsü kullanılarak indüklenmiş nöral kök hücrelere (iNSC'ler) yeniden programlanmasını göstermektedir. Sendai virüsü, hücreleri yeniden programlamak için verimli ve güvenli bir araç sunan, entegre olmayan bir virüstür.

Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinden (PBMNC'ler) İndüklenmiş Nöral Kök Hücrelerin (iNSC'ler) Üretilmesi: PBMNC'leri iNSC'lere Yeniden Programlamak için Sendai Virüsü Tabanlı Bir Prosedür

Pluripotent kök hücreler, embriyonik veya uyarılmış pluripotent kök (iPS) hücreleri ya, kardiyomiyositler dahil olmak üzere insan farklılaşmış hücrelerin, değerli bir kaynak oluşturmaktadır. Burada, bir embriyoid organları tabanlı protokol ile fonksiyonel insan kardiyomiyositlerin elde etmek için bunları nasıl kullanacağınızı gösteren, iPS hücrelerin kalp indüksiyon üzerinde durulacak.

İnsan kardiyomiyositleri Üretimi: Besleyici-ücretsiz İnsan Bağlı Pluripotent Kök Hücre A Farklılaşma Protokolü

Burada, biz tutarlı sonuç ve geliştirilmiş verimlilik gösterir Sendai virüs ile transgen-özgür insan iPSCs içine insan somatik hücreleri yeniden programlamak için kurulan yöntem sunuyoruz.

Sendai-virüs ile İnsan Somatik Verimli Üretimi İnsan uyarılmış pluripotent kök hücrelerin

Bir yöntem de periferik kan hücrelerinden zenginleştirilen hematopoietik projenitör hücrelerinden insan nöral kök hücrelerini elde etmek için geliştirilmiştir.

Periferik kan Hematopoetik Progenitör Hücreleri İnsan Sinir Kök Hücre Doğrudan İndüksiyon

Uyarılmış pluripotent kök hücreler (iPSCs), klinik uygulamalar ve temel araştırma için hastaya özgü dokuların bir kaynağı temsil eder. Burada, non-entegre epizomal plasmidleri kullanılarak viral içermeyen iPSCs içine donmuş buffy kat elde edilen insan periferal kan mononükleer hücreleri (PBMNCs) yeniden programlamak için detaylı bir protokol mevcut.

Bütünleşmeyen episomal plasmidler kullanılarak dondurulmuş Buffy tüylerdeki uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Bu protokolün amacı, melanom tümörüne sızan lenfositlerin indüklenmiş pluripotent kök hücrelere yeniden programlanması için protokolü göstermektir.

İnsan Melanom tümör-süzücü lemfositler ile ilgili uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Periferik kan mononükleer hücrelerinin (PBMC'ler) indüklenmiş pluripotent kök hücrelere (iPSC'ler) yeniden programlanması için bir protokol öneriyoruz. Transdüksiyon kan hücrelerini santrifüjleme ile matris kaplı plakalara kaplayarak, iPSC'ler yüzen hücrelerden başarılı bir şekilde indüklenir. Bu teknik, PBMC'ler ve CBMC'ler gibi hücreler için basit ve etkili bir yeniden programlama protokolü önerir.

Sendai Virüs ve santrifüj kullanılarak Kan Hücreleri indüklenmiş pluripotent kök hücre Üretimi

Bu protokol, insan yetişkin periferik kan hücrelerinden entegrasyon gerektirmeyen iPSC'lerin verimli bir şekilde üretilmesi için ayrıntılı bir yöntemi açıklar. Yeniden programlama faktörlerini ifade etmek için dört oriP/EBNA bazlı epizomal vektörün kullanılmasıyla, KLF4, MYC, BCL-XL veya OCT4 ve SOX2, 1 mL periferik kandan binlerce iPSC kolonisi elde edilebilir.

Epizomal vektörlerin kullanılması insan periferik kan mononükleer hücrelerinden entegrasyon içermeyen uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Keşfedin, insan periferik T hücrelerinden besleyici içermeyen koşullarda Sendai virüs vektörleri kullanarak iPS hücreleri üretme yöntemini. Bu teknik rejeneratif tıpta güvenliği artırır ve klinik uygulamalar için hastalık modellemesi sağlar.

Besleyici içermeyen şartlar Sendai virüs kullanılarak insan periferik T hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi (Video) | JoVE Journal

Besleyici içermeyen şartlar Sendai virüs kullanılarak insan periferik T hücrelerinden uyarılmış pluripotent kök hücrelerin üretilmesi

Daha fazla video keşfet