Name: Nöral Kök Hücre Sayım klonal Tahliller Kullanma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Öğrenin, nöral kök hücrelerin klonal koşullarda nörosfer oluşumu ve farklılaşması kullanılarak sayımını. Bu 13 günlük yöntem, kök hücre belirteçlerini değerlendirmek ve hücreleri saflaştırmak için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz bu araştırmayı finanse etmek için Bilim, Teknoloji ve Araştırma (A * STAR), Singapur Ajansı teşekkür ederiz.

Hayvanların tedavisi hayvan departmanı tarafından ((http://www.brc.astar.edu.sg/index.php?sectionID-11) IACUC ve NACLAR kurallarına uygun olarak yapılan ve kabul edildi. Not: Neurosphere kültürleri / 6 fareleri, daha önce 5 açıklandığı embriyonik (E14) C57BL ön beyin hazırlandı. Kültür Klon Örnek Neurospheres 1. (Gün 1) <ol><li> EGF (nihai konsantrasyon: 20 ng / ml), bFGF (nihai konsantrasyon: 10 ng /: B27 eki ile Dulbecco Modifiye Eagle Ortamı / Besin F-12 (DMEM / F12) orta birleştirerek (1x nihai konsantrasyon) MGK büyüme ortamı hazırlamak ml) ve penisilin / streptomisin (nihai konsantrasyon: 1 x). </li><li> 1 ml MGK büyüme ortamı ve oda sıcaklığında, 7 dakika için 1 ml 0.05 N sodyum hidroksit içinde E14.5 fare Neurospheres ayrıştırmaları. Pipet hücreleri yukarı ve aşağı bazen süspansiyon hücreleri tutmak için. nötr 0.05 N hidroklorik asit, 1 ml ekleyinAlkali ize. Not: Neurosphere hücreleri 10 cm&#39;lik kültür kabı başına 20.000 hücre / ml&#39;de tohumlanmıştır ve 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 seviyesinde 5 gün boyunca kültürlenmektedir. beklenen verim sonra 10 cm çanak başına yaklaşık 10 milyon hücredir. Bu hücreler daha sonra ayrılmış ve adımlar sırasıyla 1.2 ve 1.3, tarif edildiği gibi klonal yoğunluğunda tohumlanır. <ol><li> Tripan Mavisi boyama ve hemasitometre kullanarak hücre sayımı gerçekleştirin. </li></ol></li><li> 96 oyuklu bir çanak / ml veya daha düşük 100 uL MGK büyüme ortamında 50 hücre yoğunluğunda Tohum tek E14.5 fare neurosphere hücreleri. Klonal Neurospheres üretmek için B 37 ° C&#39;de 1 için,% 5 CO2 hücreleri inkübe edin. NOT: Hücreler birbirine temas etmeyecek şekilde Klonalite bu yoğunlukta Neurosphere oluşumu sırasında sağlanmaktadır. </li></ol> Klimalı ortamda için Neurospheres 2. Kültür (Gün 3) <ol><li> Adım 1.2&#39;de tarif edildiği gibi E14.5 fare Neurospheres ayrıştırmaları. </li><li> E&#39;den Tohum tek hücre10 cm&#39;lik bir kültür kabı içinde 10 ml MGK büyüme ortamında 20,000 hücre / ml yoğunluğunda 14.5 fare Neurospheres. Toplu kültürlenmiş Neurospheres oluşturmak için 5 gün süreyle 37 ° C,% 5 CO2 hücreleri inkübe edin. </li></ol> Orta Klima neurosphere 3. Hazırlama (Gün 8) <ol><li> 700 uL karıştırılarak kaplama çözeltisi hazırlayın% 0.01 Poli-L-lisin (PLL), 70 1 mg ul / ml laminin ve Fosfat Tamponlu Salin 6.230 uL (PBS). </li><li> Ceket, 37 ° C &#39;de 2 saat süre ile PLL / laminin çözeltisi 7 mL, 10 cm&#39;lik kültür çanağı. </li><li> 10 ml serolojik pipet kullanarak 15 ml konik santrifüj tüpüne tüm dökme kültürlenmiş Neurospheres aktarın. Oda sıcaklığında 1 dakika boyunca 171 x g&#39;de santrifüj Neurospheres tamamen supernatant çıkarın. </li><li> ve fetal sığır serumu (FBS) (nihai konsantrasyon:% 0.5) Ad (1x nihai konsantrasyon) B27 DMEM / F12 ortamı birleştirerek MGK farklılaşma ortamı hazırlayınneurospheres MGK farklılaşma orta d 10 ml. yukarı pipet ve bir kaç kez aşağı neurospheres tekrar süspansiyon. </li><li> Aspire PLL / 10 cm kültür çanak laminin ve 10 ml PBS ile bir kez yıkayın. PLL / Laminin kaplı 10 cm kültür çanak tüm neurospheres aktarın. 37 ° C sıcaklıkta O / N inkübe, neurospheres% 5 CO2 çanak uyması. </li></ol> Örnek neurospheres NFU 4. Belirlenmesi (Gün 8) <ol><li> (; Bölüm 1 gün 1 numaralı seribaşı) iyi bir mikroskop altında her oluşturulan neurospheres sayısını. NOT: NFU verir kaplı 100 hücre başına oluşan neurospheres sayısını belirler. </li></ol> 50-de Chambered lamel örnek neurospheres 5. Transferi (Gün 8) <ol><li> Ceket, 37 ° C &#39;de 2 saat süre ile PLL / laminin kaplama solüsyonu 10 uL 50-kuyucuklu odacıklı lamel her bir. NOT: tarif edildiği gibi kaplama çözeltisi hazırlayın3.1 adım. </li><li> PBS her biri 30 mL içeren 3 x 50 mL konik santrifüj tüpü hazırlayın. Steril forseps kullanarak, kaplamalı 50-iyi odacıklı lamel çıkarın. Kaplama çözüm yıkayın, ikinci ve daha sonra PBS üçüncü tüp ardından PBS ilk tüp içine odacıklı lamel batırın. </li><li> odacıklı lamel kuyulardan kalan sıvıyı aspire. </li><li> Yavaşça 96 oyuklu çanak her bir yanı, tüm orta ve Neurospheres pipet ve tek bir 10 cm&#39;lik kültür tabağına aktarın. </li><li> Mikroskop altında, 10 uL pipet ile donatılmış bir P10 mikropipet kullanarak bir örnek neurosphere seçin. sadece tek bir neurosphere 2 mcL pipet sütun ayarlayarak her zaman alınır emin olun. Her neurosphere için yeni bir pipet kullanın. </li><li> kaplanmış 50-iyi odacıklı lamel bir kuyunun merkezi üzerine neurosphere aktarın. </li><li> Tekrarlayın odacıklı lamel conta her bir kuyu kadar 5.5 ve 5.6 adımlarıBir neurosphere ins. Not: Neurospheres bir laminer akış başlığı içinde ya da sıra üzerine yerleştirilmişlerdir mikroskop altında aldı edilebilir. </li><li> odacıklı lamel her bir kuyunun 10 uL MGK&#39;nın farklılaşma orta ekleyin. MGK farklılaştırma ortamının kurumasını önlemek için çanak kenarları boyunca bir 10 cm&#39;lik kültür kabı ve pipet PBS odacıklı lamel yerleştirin. bir 10 cm kültür çanak iki odacıklı lamelleri kadar yerleştirin. Gece boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 seviyesinde (10 cm kültür kabı içinde ihtiva) bölmeli lamel inkübe edin. </li></ol> Örnek Neurospheres 6. Farklılaşma (Gün 9) <ol><li> 15 ml konik santrifüj tüpüne (bölüm 3 itibaren) toplu kültür neurospheres gelen farklılaşma ortamı aktarın. farklılaşma orta 2-3 mL koparmasını yapıştırılır hücreleri önlemek için kültür çanak kalmasını sağlamak. 20 ml steril şırınga kullanarak, bir 0.2 μ içinden farklılaşma orta geçmesim filtre herhangi bir hücre veya enkaz kaldırmak için. </li><li> geri yapıştırılır hücreleri içeren 10 cm kültür çanak filtrelenmiş farklılaşma orta aktarın. </li><li> Steril forseps kullanarak, yavaşça örnek Neurospheres aşağıya bakacak şekilde ters çevrilmiş bir şekilde farklılaşma ortamına odacıklı lamel yerleştirin. 37 ° C &#39;de 3 gün boyunca farklılaşma ortamı ile odacıklı lamel inkübe,% 5 CO2. Not: Örnek Neurospheres farklılaşma ortamı ile temas halindedir, ancak altında farklılaşan hücreler ile temas halinde. </li></ol> Farklılaştırılmış Neurospheres 7. Tespit (Gün 12) <ol><li> Yavaşça steril forseps kullanarak 10 cm kültür çanak odacıklı lamel çıkarın. Yavaşça koşullu orta yıkayın PBS içine lamel batırın. </li><li> lamel silikon conta soyulabilir. lamel bozulmaması için nazikçe ve yavaşça bu gerçekleştirin. nerede inci tarafında dikkat edinE farklılaşmış Neurospheres yapıştırılır. </li><li> lamel ölçülerine parafın filmi kesmek bir parça üzerine,% 4 paraformaldehid (PFA) Pipet 1 mi. Yavaşça PFA ile temas aşağı bakacak neurospheres ile parafin film üzerinde lamel yerleştirin. Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca Neurospheres saptamak. Dikkat: PFA toksik hem sıvı hem de buhar şeklinde ve yanabilir. buharı solumaktan kaçının ve Göz ve cilt ile temasa geçin. Her zaman bir havalandırmalı davlumbaz PFA anlaştım. </li><li> parafın film parçası üzerine PBS pipetle 1 ml. hafifçe Neurospheres, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca PBS ile temas içinde aşağı doğru bakacak şekilde lamel yerleştirerek Neurospheres yıkayın. </li><li> Adımı yineleyin 7.4 iki kez daha. </li></ol> Farklılaştırılmış Neurospheres 8. O4 Boyama (Gün 12) <ol><li> PBS içinde% 3 sığır serum albümini (BSA) hazırlayın. parafın film parçası üzerine% 3 BSA pipetle 1 ml. hafifçe placin tarafından neurospheres engelleg, oda sıcaklığında 30 dakika süreyle BSA ile temas içinde (Neurospheres aşağı bakacak şekilde) lamel. </li><li> Pipet 1 fare anti-O4 IgM antikorunun ml: parafın film parçası üzerine (3: 1,% BSA içinde 300 seyreltme) ve antikor ile temas içinde aşağı gelecek şekilde neurospheres parafin film lamel. O4 boyama oda sıcaklığında 2 saat süre ile meydana izin verin. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi PBS ile iki kez lamel yıkayın. </li><li> Yeşil fluoresan boya konjüge-anti-fare IgM ikincil antikor pipetle 1 ml (1: 500% 3 BSA içinde seyrelti) parafın film parçası üzerine ve antikor ile temas içinde aşağı gelecek şekilde neurospheres parafin film lamel . karanlıkta oda sıcaklığında 1 saat bekletin. NOT: itibaren bu adımdan karanlık bir ortamda immün gerçekleştirin. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi PBS ile iki kez lamel yıkayın. </li></ol> 9. Tuj1 ve glial fibriller asidik protein (GFAP) boyamaFarklılaştırılmış neurospheres (Gün 12) <ol><li> % 3 BSA: Triton X-100 (% 0.5 son konsantrasyon) eklenerek çözelti Su-geçirimli hazırlayın. parafın film parçası üzerine çözelti Su-geçirimli Pipet 1 ml. Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca su-geçirimli çözeltisi ile temas içinde aşağı gelecek şekilde neurospheres parafin film lamel yerleştirin. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi PBS ile iki kez lamel yıkayın. </li><li> Fare pipetle 1 ml anti-Tuj1 IgG 2a antikoru (1: 500% 3 BSA içinde seyreltme) ve tavşan anti-GFAP IgG antikoru (1: 3% BSA içinde 1000 seyrelti) parafın film ve bir yer örtücü bir parça üzerine ilgili antikorlarla temas aşağı gelecek şekilde neurospheres parafin filmi. Tuj1 ve GFAP boyama oda sıcaklığında 2 saat süre ile meydana izin verin. NOT: Her iki antikor, tek bir çözelti halinde elde edilebilir. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi PBS ile iki kez lamel yıkayın. </li><li> Kırmızı floresan boya Pipet 1 mLkonjüge-anti-fare IgG 2a (1: 3% BSA içinde 500 dilüsyon) ve uzak-kırmızı flüoresan boya konjüge-anti-tavşan IgG (1: 3% BSA içinde 500 dilüsyon) parafın film ve yerde bir parça üzerine ikincil antikorlar antikorlar ile temas aşağı bakacak neurospheres ile parafin film üzerine lamel. Oda sıcaklığında 1 saat bekletin. NOT: Her iki antikor, tek bir çözelti halinde elde edilebilir. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi PBS ile iki kez lamel yıkayın. </li><li> PBS içinde 300 nM&#39;ye 4 &#39;, 6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) stok çözeltisi ile seyreltilir. çekirdek boyama için oda sıcaklığında 2 dakika için DAPI ile temas içinde aşağı gelecek şekilde neurospheres parafin film parafın film ve bir yer örtücü bir parça üzerine DAPI Pipet 1 ml. </li><li> Aşama 7.4 de tarif edildiği gibi, iyonu giderilmiş su ile bir kez PBS ile ve iki kez de lamel yıkayın. Uygun bir montaj orta kullanarak bir cam slayt lamel monte edin ve oda sıcaklığında O / N kurumasını bekleyin. </li></ol> 10. ImaFarklılaştırılmış neurospheres ging (Gün 13) <ol><li> 40x kullanarak bir konfokal mikroskop altında görüntü Neurospheres. sırasıyla, oligodendrosit, nöronlar ve astrositler algılamak için 488 nm, 594 nm ve 647 nm lazerler kullanın. </li><li> unipotent, bipotent ve tripotent neurospheres yüzdesini belirlemek. Not: - oligodendrosit nöron ve astrositler 5,14,15,26 Etkili üç nöral soy ayırt etmek neurosphere yeteneği belirlenir. Oligodendrosit O4 (bölüm 8) için pozitif boyama ile tanımlanır. Nöronlar Tuj1 (Bölüm 9) pozitif boyama ile tanımlanır. Astrositler GFAP (bölüm 9) için pozitif boyama ile tespit edilir. Bir unipotent neurosphere soy sadece birine ayırır ve pozitif O4, GFAP veya Tuj1 biri için leke gerekir. Bir bipotent neurosphere herhangi iki soy içine ayıran ve olumlu O4 ve GFAP veya O4 ve Tuj1 veya GFAP ve Tuj1 için leke gerekir. Farklı bir tripotent neurosphereÜç soy içine ara ürünlerinin pozitif O4, GFAP ve Tuj1 için leke gerekir. </li><li> Aşağıdaki formülü kullanarak ilgi popülasyonda MGK sıklığının saptanması: MGK frekans = (tripotent neurospheres NFU x%) /% 100. </li></ol>

<ol><li>Ahmed, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+culture+of+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biochem%22%5BJournal%5D)">The culture of neural stem cells.</a> J. Cell. Biochem. 106 (1), 1-6 (2009).</li>
<li>Reynolds, B. A., Tetzlaff, W., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multipotent+EGF-responsive+striatal+embryonic+progenitor+cell+produces+neurons+and+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A multipotent EGF-responsive striatal embryonic progenitor cell produces neurons and astrocytes.</a> J. Neurosci. 12 (11), 4565-4574 (1992).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255 (5052), 1707-1710 (1992).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+and+Population+Analyses+Demonstrate+That+an+EGF-Responsive+Mammalian+Embryonic+CNS+Precursor+Is+a+Stem+Cell%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Clonal and Population Analyses Demonstrate That an EGF-Responsive Mammalian Embryonic CNS Precursor Is a Stem Cell.</a> Dev. Biol. 175 (1), 1-13 (1996).</li>
<li>Narayanan, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-Cell+mRNA+Profiling+Identifies+Progenitor+Subclasses+in+Neurospheres%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+and+Dev%22%5BJournal%5D)">Single-Cell mRNA Profiling Identifies Progenitor Subclasses in Neurospheres.</a> Stem Cells and Dev. 21 (18), 3351-3362 (2012).</li>
<li>Uchida, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+isolation+of+human+central+nervous+system+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Direct isolation of human central nervous system stem cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 97 (26), 14720-14725 (2000).</li>
<li>Capela, A., Temple, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LeX%2Fssea-1+Is+Expressed+by+Adult+Mouse+CNS+Stem+Cells%2C+Identifying+Them+as+Nonependymal%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">LeX/ssea-1 Is Expressed by Adult Mouse CNS Stem Cells, Identifying Them as Nonependymal.</a> Neuron. 35 (5), 865-875 (2002).</li>
<li>Capela, A., Temple, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LeX+is+expressed+by+principle+progenitor+cells+in+the+embryonic+nervous+system%2C+is+secreted+into+their+environment+and+binds+Wnt-1%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">LeX is expressed by principle progenitor cells in the embryonic nervous system, is secreted into their environment and binds Wnt-1.</a> Dev. Biol. 291 (2), 300-313 (2006).</li>
<li>Corti, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+murine+neural+stem%2Fprogenitor+cells+based+on+Prominin-1+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of murine neural stem/progenitor cells based on Prominin-1 expression.</a> Exp. Neurol. 205 (2), 547-562 (2007).</li>
<li>Nagato, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prospective+characterization+of+neural+stem+cells+by+flow+cytometry+analysis+using+a+combination+of+surface+markers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Prospective characterization of neural stem cells by flow cytometry analysis using a combination of surface markers.</a> J. Neurosci. Res. 80 (4), 456-466 (2005).</li>
<li>Kim, M., Morshead, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+Populations+of+Forebrain+Neural+Stem+and+Progenitor+Cells+Can+Be+Isolated+Using+Side-Population+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Distinct Populations of Forebrain Neural Stem and Progenitor Cells Can Be Isolated Using Side-Population Analysis.</a> J. Neurosci. 23 (33), 10703-10709 (2003).</li>
<li>Murayama, A., Matsuzaki, Y., Kawaguchi, A., Shimazaki, T., Okano, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+analysis+of+neural+stem+cells+in+the+developing+and+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric analysis of neural stem cells in the developing and adult mouse brain.</a> J. Neurosci. Res. 69 (6), 837-847 (2002).</li>
<li>Rietze, R. L., Valcanis, H., Brooker, G. F., Thomas, T., Voss, A. K., Bartlett, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+a+pluripotent+neural+stem+cell+from+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Purification of a pluripotent neural stem cell from the adult mouse brain.</a> Nature. 412 (6848), 736-739 (2001).</li>
<li>Tham, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CSPG+Is+a+Secreted+Factor+that+Stimulates+Neural+Stem+Cell+Survival+Possibly+by+Enhanced+EGFR+Signaling%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">CSPG Is a Secreted Factor that Stimulates Neural Stem Cell Survival Possibly by Enhanced EGFR Signaling.</a> PLoS ONE. 5 (12), e15341(2010).</li>
<li>Gan, H. T., Tham, M., Hariharan, S., Ramasamy, S., Yu, Y. H., Ahmed, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+ApoE+as+an+autocrine%2Fparacrine+factor+that+stimulates+neural+stem+cell+survival+via+MAPK%2FERK+signaling+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Identification of ApoE as an autocrine/paracrine factor that stimulates neural stem cell survival via MAPK/ERK signaling pathway.</a> J. Neurochem. 117 (3), 565-578 (2011).</li>
<li>Ramasamy, S., Narayanan, G., Sankaran, S., Yu, Y. H., Ahmed, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cell+survival+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Neural stem cell survival factors.</a> Arch. Biochem. Biophys. 534 (1-2), 71-87 (2013).</li>
<li>Ahmed, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factors+and+neural+stem+cell+self-renewal%2C+growth+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Adh.+Migr%22%5BJournal%5D)">Transcription factors and neural stem cell self-renewal, growth and differentiation.</a> Cell Adh. Migr. 3 (4), 1-12 (2009).</li>
<li>Gritti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotent+Neural+Stem+Cells+Reside+into+the+Rostral+Extension+and+Olfactory+Bulb+of+Adult+Rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Multipotent Neural Stem Cells Reside into the Rostral Extension and Olfactory Bulb of Adult Rodents.</a> J. Neurosci. 22 (2), 437-445 (2002).</li>
<li>Gritti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+and+Fibroblast+Growth+Factors+Behave+as+Mitogenic+Regulators+for+a+Single+Multipotent+Stem+Cell-Like+Population+from+the+Subventricular+Region+of+the+Adult+Mouse+Forebrain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Epidermal and Fibroblast Growth Factors Behave as Mitogenic Regulators for a Single Multipotent Stem Cell-Like Population from the Subventricular Region of the Adult Mouse Forebrain.</a> J. Neurosci. 19 (9), 3287-3297 (1999).</li>
<li>Vescovi, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+cloning+of+multipotential+stem+cells+from+the+embryonic+human+CNS+and+establishment+of+transplantable+human+neural+stem+cell+lines+by+epigenetic+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Isolation and cloning of multipotential stem cells from the embryonic human CNS and establishment of transplantable human neural stem cell lines by epigenetic stimulation.</a> Exp. Neurol. 156 (1), 71-83 (1999).</li>
<li>Azari, H., Louis, S. A., Sharififar, S., Vedam-Mai, V., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural-Colony+Forming+Cell+Assay%3A+An+Assay+To+Discriminate+Bona+Fide+Neural+Stem+Cells+from+Neural+Progenitor+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells.</a> J. Vis. Exp. (49), e2639(2011).</li>
<li>Louis, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enumeration+of+Neural+Stem+and+Progenitor+Cells+in+the+Neural+Colony-Forming+Cell+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Enumeration of Neural Stem and Progenitor Cells in the Neural Colony-Forming Cell Assay.</a> Stem Cells. 26 (4), 988-996 (2008).</li>
<li>Coles-Takabe, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Don%27t+look%3A+growing+clonal+versus+nonclonal+neural+stem+cell+colonies%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Don't look: growing clonal versus nonclonal neural stem cell colonies.</a> Stem Cells. 26 (11), 2938-2944 (2008).</li>
<li>Mori, H., Fujitani, T., Kanemura, Y., Kino-Oka, M., Taya, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observational+examination+of+aggregation+and+migration+during+early+phase+of+neurosphere+culture+of+mouse+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biosci.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Observational examination of aggregation and migration during early phase of neurosphere culture of mouse neural stem cells.</a> J. Biosci. Bioeng. 104 (3), 231-234 (2007).</li>
<li>Singec, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+actual+sensitivity+and+specificity+of+the+neurosphere+assay+in+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Defining the actual sensitivity and specificity of the neurosphere assay in stem cell biology.</a> Nat. Methods. 3 (10), 801-806 (2006).</li>
<li>Yu, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification%2C+Visualization%2C+and+Molecular+Signature+of+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+and+Dev%22%5BJournal%5D)">Purification, Visualization, and Molecular Signature of Neural Stem Cells.</a> Stem Cells and Dev. 25 (2), 189-201 (2016).</li>
<li>Yu, Y. H. C1qR1 is comparable with LeX and Prom1 as a neural stem cell marker. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYu%2C+YH+%22Identification+of+mouse+embryonic+neural+stem+cell+surface+markers%22">Identification of mouse embryonic neural stem cell surface markers</a>. , Chapter 3.5, Figure 3.17 (2012).</li>
<li>Tham, M. Neural colony-forming cell assay. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTham%2C+M+%22A+role+for+chondroitin+sulfate+proteoglycan+in+regulating+the+survival+and+growth+of+neural+stem+cells%22">A role for chondroitin sulfate proteoglycan in regulating the survival and growth of neural stem cells</a>. , Chapter 3.6.3, Figure 3.22A (2009).</li>
<li>Yuan, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-Surface+Marker+Signatures+for+the+Isolation+of+Neural+Stem+Cells%2C+Glia+and+Neurons+Derived+from+Human+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Cell-Surface Marker Signatures for the Isolation of Neural Stem Cells, Glia and Neurons Derived from Human Pluripotent Stem Cells.</a> PLoS ONE. 6 (3), e17540(2011).</li>
<li>Hall, P. E., Lathia, J. D., Miller, N. G. A., Caldwell, M. A., Ffrench-Constant, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrins+Are+Markers+of+Human+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Integrins Are Markers of Human Neural Stem Cells.</a> Stem Cells. 24 (9), 2078-2084 (2006).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir rakip mali çıkar beyan etmemektedir.

Biz hee klonal koşullarda NSC&#39;lerde numaralandırma açıklar. Kritik adımlar, taze MGK büyüme ve farklılaşma ortam maddesinin kullanımını ve ayrıca kaplamak için taze hazırlanmış PLL / laminin çözeltisinin kullanımı odacıklı lamelleri, hem de kültür kaplarına içerir. Bu neurospheres optimal büyüme ve farklılaşma koşulları sağlar. kaliteli antikorların kullanımı etkili nöronlar ve glia, hem de diğer neurospheres ile temas halinde olmayan klonal neurospheres seçici toplama tespit etmek için, önemlidir. Ayrıca, o kadar kuru değil aldı neurospheres sağlamak için önemlidir. Her 10 neurospheres çekme sonra her oyuğa farklılaşma orta 10 uL eklemek için tavsiye edilir. Farklı örneklerden neurospheres arasında çapraz karışmayı önlemek için, numune başına bir adet 10 cm&#39;lik bir tabakta bir odacıklı lamel kullanılması önemlidir. İki lamelleri (farklı numune, her ihtiva Neurospheres) yerleştirilir iseAynı 10 cm çanak, bir lamel Neurospheres belirli soy içine ayırt etmek için diğer lamel içinde neurospheres eğilimi değiştiren faktörleri serbest olabilir. Aynı 10 cm&#39;lik bir tabakta iki lamelleri da örnekler arasında karıştırmak neden olabilir. NFU veya MGK frekans beklenenden daha düşük olması durumunda, düşük geçit sayısı Neurospheres kullanıldığından emin olun. Sağlıklı düşük geçiş Neurospheres koşullandırılmış ortam üretilmesi için kullanılması da önemlidir. Neurospheres örneğin 96 gözlü tabak içinde küçük çaplı olan kuyularda kültürlenir Ardından, o zaman manevra ve bir mikropipet kullanılarak Neurospheres almak zor olacaktır. Bu durumda, önceki çekme için, bir 6-yuvalı tabak olarak, daha büyük bir kültürü çanak Neurospheres aktarın. aldı neurospheres Bazı kültür ve immün sırasında odacıklı lamel kapalı kaldırabilir. kültür sırasında odacıklı lamel hareketini ve daha az yoğun yıkama en aza indirmek,immün sırasında ing, neurospheres ayrılmasını önlemek için yardımcı olacaktır. İlk çalışmalar sadece NFA 7,11,13 kullanarak NSCs sayısal. NSC&#39;lerde ve erken NPS hem neurospheres 5 oluşturmak Ancak, NFA MGK frekansını overestimates. Louis et al. NCFCA 21,22 şekilde bilinmektedir NSCs ölçmek için bir yöntem geliştirdi. NCFCA klonalite sağlamak için kollajen bazlı bir matris içinde tek hücre kültür edilmesini içerir, ve çapı 2 mm üzerinde Neurospheres yalnızca NSC&#39;lerde oluşturduğu gösterilmiştir. NCFCA benzer şekilde, klonalite bu protokol boyunca sağlanır. Bu klonal yoğunlukta Neurospheres oluşturma ve odacıklı lamelleri olarak Neurospheres farklılaştırarak elde edilir. odacıklı lamelleri kullanılması bir çok avantaj bahşeder. odacıklı lamel her bir örnek neurosphere böylece diğer örnek neurospheres ile fiziksel temas olan farklılaşma sırasında klonalite sağlanmadan ayırt etmek için izin verir.odacıklı lamel Örnek Neurospheres sürekli konması ve en farklılaşmasını sağlamak için izin vermek için farklılaşma ortamına süspansiyon yerleştirilebilir. farklılaşması sırasında koşullandırılmış ortam ve serum yokluğunda, neurospheres sağkalım düşürür ve Neurospheres çok astrositler (Tham M Ahmed S, yayınlanmamış) oluşturur. Buna ek olarak, immüno neurospheres uygun zaman uzun süre saklanabilir ve odacıklı lamelleri mikroskop cam slaytlar doğrudan monte edilebilir. bir hızla, iyi odacıklı küçük de neurosphere bulmak bir görüntü yakalamak ve bir sonraki kuyuya taşıyabilirsiniz Buna ek olarak, immüno neurospheres görüntüleme kolay yapılır. Biz bu yazıda 27 ve NCFCA 28 anlatılan protokol ikisini de kullanarak E14.5 fare neurosphere kültüründe MGK frekansı belirledik. ikisi de benim tarafından belirlenen E14.5 fare neurospheres NSC frekansthods karşılaştırılabilir. NCFCA multipotent ve uzun vadeli kendini yenileme kapasitesine sahip NSCs sıralar. Bizim yönteminden MGK frekans NCFCA gelen karşılaştırılabilir olduğundan, bizim protokolden okuma MGK frekansını abartma görünmüyor. NCFCA tamamlanmak üzere üç hafta gerektirir ve özellikle hücre kaplama ve orta ikmal içerir. Burada açıklanan protokol gerçekleştirmek için 13 gün gerektirir ve farklı adımların serisi, örneğin, neurosphere toplama ve immün içerir. Bu protokol NSCs numaralandırmak için alternatif bir yöntem olarak hizmet verebilir. Araştırmacılar kendi örneklerinde MGK frekansını doğrulamak için NCFCA ve bu protokolü hem de kullanabilirsiniz. Bu protokolün bir sınırlama önemli adımlar bir dizi olması tüm gün 8. 50-de odacıklı lamel klimalı ortamın hazırlanması, örnek neurospheres NFU belirlenmesi ve örnek neurospheres transferi üzerinde yapılacak olması dekar üzerinde yapılany 8. Tek bu adımları tamamlamak için zaman alabilir. Buna ek olarak, verimli bir şekilde bu adımları gerçekleştirmek için pratik gerektirir. Neurospheres yaygın MGK fonksiyonu ve davranışlarını incelemek için kullanılır olmuştur. Ancak, Neurospheres NSC&#39;lerde ve NP hem oluşmaktadır. Bu nedenle, MGK biyoloji çalışma neurospheres arasında NSCs ettirecek önemlidir. Şu anda, hücre yüzeyi markerleri, boya çıkarma özelliği ve hücre boyutu ve ayrıntı NSC&#39;lerde 6,7,9-13,29,30 zenginleştirilmesi için kullanılmıştır. Bu protokol potansiyel MGK belirteçleri ile NSC&#39;lerde zenginleştirme ölçmek için ve kesin MGK işaretleyici aramayı kolaylaştırmak için kullanılabilir. Dört yeni çalışmalar MGK frekansını 5,14,15,26 numaralandırmak için bu protokolü kullanılır.

Nöral kök hücreler (NSC&#39;lerde) kendini yenilemek ve multipotent vardır, merkezi sinir sistemi (MSS) hücrelerdir. NSC&#39;lerde ilk embriyonik ön beyin gelişimi sırasında belirlenen ve bu tür lateral ventriküllerin subventricular bölge (SVZ) ve hipokampus dentat girus (DG) gibi belirli bölgelerde yetişkin beyinde devam etmeye devam edilir. MGK hatlarının bir dizi böyle Batten hastalığı 1 olarak inme ve diğer nörolojik hastalıkların tedavisi için klinik çalışmalarda kullanılmaktadır. NSC&#39;lerde ve nöral atalarıdır (NPS) Neurospheres adlandırılan 3 boyutlu sfero yapılarını yüzen olarak kültüründe yayılır. Embriyonik ve yetişkin kortikal hücre, epidermal büyüme faktörü (EGF) ve temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF) 2-4 mevcudiyetinde bölmek olabilir saptandığında neurosphere kültür sistemi, 1990&#39;ların başında Reynolds ve Weiss tarafından geliştirilmiştir. Neurospheres C heterojen bir karışımı oluşurfarklı gelişim aşamalarında 5 de alt sınıflar oluşan arşın. Özellikle nedeniyle NPS varlığı neurospheres elde edilen verileri kullanarak NSCs çalışmaya zordur. Bu nedenle, neurospheres gelen NSCs ettirecek önemlidir. Bu, dört ana yöntem, in vitro olarak NSC&#39;lerde zenginleştirilmesi için kullanılmıştır. Ana hücre yüzeyi markerlerinin kullanımı. Lewis-X (Lex) ve (aynı zamanda Prominin1 olarak da bilinir) CD133 MGK 6-9 işaretleme kalemler en önemli hücre yüzeyi vardır. Sindekan-1, Çentik 1 ve integrin beta1 NSC&#39;lerde 10 ettirecek diğer yüzey proteinleridir. İkincisi boya dışlama olduğunu. Fluoresan DNA bağlanma boya Hoechst 33342 üzerinden pompa için eşsiz bir yeteneği vardır yan popülasyonu, hücrelerin, NSC&#39;lerde 11 zenginleştirilmiş olduğu gösterilmiştir. Üçüncü morfolojik seçim kullanılmasıdır. Artan hücre boyutu ve ayrıntı hücreler muadillerinden 5,12,13 daha NSCs liman olduğu gösterilmiştir. Dördüncü MGK su eklenmesidirKültür ortamına rvival faktörler. Bu Kondroitin sülfat proteoglikan eklenmesinin gösterilmiş ve apolipoprotein E NSC hayatta kalmasına katkıda bulunur ve bu yüzden MGK frekansı 14,15 artar. Transkripsiyon faktörleri de dahil olmak üzere pek çok belirteçler NSC&#39;lerde 16,17 ile ilişkili olsa da, bu markerlerin hiçbiri saflığına NSCs ettirecek edebiliyoruz. Kesin MGK belirteçlerin eksikliği nedeniyle, bu NSCs ölçmek ve in vitro NPS onları ayırmak için bir sorundur. İlk çalışmalar NSCs 7,11,13 ölçmek için neurosphere formasyonu deneyi (NFA) kullanılır. Bu tahlilde, hücreler ayrışmış Neurospheres oluşturmak üzere kültürlenir ve neurospheres sayısı belirlenir kaplı her 100 hücre için oluşturulan. Bu değer Neurosphere Formasyonu Birimi (NFU) olarak adlandırılır. Tüm Neurospheres NSC&#39;lerde kaynaklanan eğer NFU MGK frekansını eşittir. Bununla birlikte, her iki Neurospheres NS tarafından oluşturulan gibi NFU MGK frekansı tahminini fazla olduğu gösterilmiştirCs ve erken NPS 5. Böylece, sadece neurosphere oluşumuna dayanan NSCs numaralandırmak için yanlıştır. Bu onların yeteneklerine göre NSCs ölçmek mümkün olabilir, kendini yenilemek yoğun çoğalmaya ve multipotent neurospheres oluşturur. Duyarlı EGF ve bFGF olan NSC&#39;lerde, genellikle en az on pasajları hayatta ve böylece kültür 4,18-20 geniş kendini yenileme kapasitesini gösterir. hem duyarlı EGF ve bFGF olan NPS, aynı zamanda, uzun bir süre için bir kaç geçişleri ancak için Neurospheres oluşturabilir. Bu nedenle, yaygın iyi niyetli NSC&#39;lerde en az on geçişleri için neurosphere oluşumuna dayanan adil bir doğrulukla numaralandırılan edilebileceği kabul edilmiştir. Çalışmaların çoğunda, ancak, kendini yenileme nedeniyle genellikle on geçişleri için gerekli olan uzun deneysel zaman ikincil veya üçüncül neurosphere oluşumu dayalı olarak ölçülür. Bu nedenle, ikincil NFA geniş kendini yenileme yeteneği bahsi karşılaştırma için kullanılabilirween popülasyonları, ama doğru MGK frekansını numaralandırmak için kullanılamaz. NSC&#39;lerde NP kıyasla daha büyük bir çoğalma yeteneğine sahiptir. NSC&#39;lerde Bu özellik Louis ve arkadaşları tarafından kullanılmıştır. Nöral koloni oluşturan hücre deneyi (NCFCA) 21,22 - MGK sayımı için bir test geliştirmek için. Bu deneyde, tek hücreler kolajen ihtiva eden yarı katı matris içinde 3 hafta içinde kültürlenir. Bu kültür koşulları altında, çapı 2 mm üzerinde Neurospheres hücreler, tripotent ve uzun bir dönem için kendi kendine yenileyebilir gösterilmiştir. Bu hücreler NSC&#39;lerde olarak tanımlanır. Bu nedenle, NSC&#39;lerde etkin bir NPS ayırt edilir. NSC&#39;lerde astrositler, oligodendrositler ve nöronlar içinde farklılaşan yeteneğine sahiptir. neurospheres farklılaşması için, büyüme faktörleri kaldırılır ve serum, kültür ortamına ilave edilir. Her üç sinir soy o neurosphere başlatılan daha sonra hücre bir neurosphere gözlenen ise benBir MGK s. Ancak, farklılaşma denemesi bazı sınırlamalar vardır. İlk olarak, farklılaşması için kullanılan kültür koşulları üç nöral soylarının üretimi için uygun olmayabilir. Aslında, tek neurosphere farklılaşma sürecinde, çok hücre ölümü meydana gelir ve çok astrosit nesil (Tham M ve yayınlanmamış Ahmed S) meydana gelir. İkincisi, klonalitenin sorunu var. NSC&#39;lerde, oluşumu ve neurospheres farklılaşma doğru sayım için, her neurosphere tek bir hücreden kaynaklanan klonal koşullar altında gerçekleştirilmesi gerekir. Toplu süspansiyon kültürlerinde, toplama hücresel ve neurosphere seviyelerinde 23-25 hem de oluşur. Her neurosphere neurosphere sayma ve multipotency değerlendirilmesini karmaşık hale birden fazla hücre veya neurospheres, ortaya için nedenle, mümkündür. Son kanıtlar hücrelerinin toplanması 0.5 hücre / aşağıda uL veya ve düşük kaplama yoğunluğunda meydana gelmez gösterir kültür plakaları neu sırasında taşınır zamanrosphere oluşumu 15. Böylece klonalite sağlayacak kadar düşük yoğunlukta hücrelerin kültürlenmesi. Şu anda, NCFCA NPS gelen NSCs ayırt ve MGK frekansını numaralandırmak için en sık kullanılan yöntemdir. NCFCA Ancak üç hafta nispeten uzun bir zaman alır. Burada, multipotent Neurospheres oluşturulması için NSC&#39;lerde yeteneklerine göre MGK frekans numaralandırmak için bir protokol açıklar. Bu protokol gerçekleştirmek için sadece 13 gün sürer. kollajen matris neurospheres hareketini önlediği NCFCA klonalite sağlamaktadır. Bu protokolde kullanılan kültür koşulları, aynı zamanda klonalite boyunca muhafaza edilmesini sağlar. Örneğin, 50-çukurlu odacıklı lamelleri kullanımı Neurospheres birbirlerine temas etmeden ayırt etmesini sağlar. Ayrıca, neurospheres (Şekil 1) farklılaşma potansiyelinin en üst düzeye çıkarmak farklılaşma sırasında nörotrofik faktörler malzemeleri orta klimalı kullanın.

<table><tbody><tr><td>15 mL konik santrifüj tüpleri&nbsp;</td><td>BD</td><td>352096</td><td></td></tr><tr><td>50 mL konik santrifüj tüpleri&nbsp;</td><td>BD</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>20 mL steril şırınga&nbsp; &nbsp;</td><td>BD</td><td>300141</td><td></td></tr><tr><td>50 mL steril şırınga&nbsp;</td><td>BD</td><td>300144</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu (FBS)&nbsp;</td><td>Biowest</td><td>S1810</td><td></td></tr><tr><td>Fare anti-Tuj1 IgG2a antikoru</td><td>Covance</td><td>MMS-435P-100</td><td></td></tr><tr><td>Tavşan anti-GFAP IgG antikoru</td><td>Dako</td><td>Z033401</td><td></td></tr><tr><td>Hemositometre ve nbsp;</td><td>Hausser Scientific</td><td>3100</td><td></td></tr><tr><td>Laminer akış başlığına takılan mikroskop&nbsp;</td><td>Leica</td><td>MZ6</td><td></td></tr><tr><td>Cam slaytlar</td><td>Marienfeld-superior</td><td>1000200</td><td></td></tr><tr><td>Fare anti-O4 IgM antikoru&nbsp;</td><td>Merck Millipore</td><td>MAB345</td><td></td></tr><tr><td>Hydromount</td><td>Ulusal Teşhis</td><td>HS-106</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Nikon Eclipse</td><td>TS100-F</td><td></td></tr><tr><td>Laminer akış başlığı</td><td>NuAire</td><td>NU-543</td><td></td></tr><tr><td>96 oyuklu kültür kapları</td><td>NUNC</td><td>167008</td><td></td></tr><tr><td>10 cm kültür kapları&nbsp;</td><td>NUNC</td><td>150350</td><td></td></tr><tr><td>Parafin filmi</td><td>Parafilm</td><td>PM999</td><td></td></tr><tr><td>İnsan Epidermal Büyüme Faktörü (EGF)&nbsp;</td><td>Peprotech</td><td>AF-100-15</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant insan temel Fibroblast Büyüme Faktörü (bFGF)&nbsp;</td><td>Peprotech</td><td>100-18B</td><td></td></tr><tr><td>0.2 & M filtresi&nbsp;</td><td>Sartorius Stedim</td><td>16534-K</td><td></td></tr><tr><td>0.45 & mikro; m filter</td><td>Sartorius Stedim</td><td>16555-K</td><td></td></tr><tr><td>1.0 N Sodyum Hidroksit (NaOH)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2770</td><td></td></tr><tr><td>1.0 N Hidroklorik asit (HCl)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H9892</td><td></td></tr><tr><td>Tripan Mavisi&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-Lizin (PLL)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8920</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit (PFA) tozu&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>Toksik Sığır</td></tr><tr><td>Serumu Albümin (BSA) tozu&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>50 kuyucuklu lameller&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7735</td><td></td></tr><tr><td>Isı fonksiyonlu karıştırma plakası&nbsp;</td><td>Stuart</td><td>UC152</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 orta Thermo</td><td>Fisher Scientific</td><td>11320-033</td><td></td></tr><tr><td>B27 takviyesi</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>17504044</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Laminin</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>23017-015</td><td></td></tr><tr><td>Ca2+ ve Mg2+ (DPBS) içermeyen 1x Fosfat Tamponlu Salin (DPBS)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14190144</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 keçi anti-fare IgM antikoru</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A21042</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 keçi anti-fare IgG 2a antikoru</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A21135</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 keçi anti-tavşan IgG antikoru</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A31573</td><td></td></tr><tr><td>4 ',6'-diamidino-2-fenilindol dihidroklorür (DAPI) &nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>D3571</td><td></td></tr><tr><td>Hücre kültürü santrifüjü</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>&nbsp; RT1 75002383</td><td></td></tr><tr><td>Pastör pipetleri</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10006021</td><td></td></tr><tr><td>CO2 inkübatörü</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Havalandırmalı çeker ocak</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aspiratörü</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Konfokal mikroskop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikropipetler</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikropipet uçları</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plastik pipetler</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Çok kanallı pipetler</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cam beher</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril forseps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pH metre</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

nöral kök hücre sayım klonal tahliller kullanma

Enumeration of Neural Stem Cells Using Clonal Assays

astrositler, nöron ve oligodendrositleri - nöral kök hücreler (NSC&#39;lerde) kendini yenilemek ve üç büyük nöral soyları üretmek için yeteneği var. NSC&#39;lerde ve nöral progenitörler (NPS) neurospheres in vitro genel olarak kültürlenir. Bu protokol klonal şartlar altında belirli bir hücre popülasyonunda MGK sıklığını belirlemek için nasıl ayrıntılı olarak anlatılmaktadır. Protokol klonal neurospheres üretilmesine olanak sağlayan bir yoğunlukta hücreler tohumlama ile başlar. Neurospheres sonra odacıklı lamelleri transfer ve neurospheres farklılaşma potansiyeli maksimize şartlandırılmış ortamda, içinde klonal şartlarda ayrılır. Son olarak, MGK frekans neurosphere oluşumu ve multipotency yeteneklerine göre hesaplanır. Bu protokolün Kamu aday MGK belirteçlerin değerlendirilmesi, NSC&#39;lerde saflaştırılması ve NPS gelen NSCs ayırt yeteneği vardır. Bu yöntem çok s olan gerçekleştirmek için 13 gün sürerGeçerli yöntemlere göre daha Hörter MGK frekansını numaralandırmak için.

Biz NSC&#39;lerde için zenginleştirmek için Lex, bilinen bir hücre yüzeyi MGK işaretleyici 7 yeteneğini değerlendirmek için bu protokolü kullanılır. Bu çalışmadan elde edilen veriler NSC&#39;lerde protokolde klonal tahliller kullanılarak numaralandırılır nasıl göstermek için kullanılacaktır. E14.5 fare neurosphere hücreleri, anti-Lex antikoru ile inkübe edilmiştir. Daha sonra, Lex (Lex -) eksprese etmeyen Lex (Lex +) ve hücrelerinde bulunmuştur (FACS) flüoresanslı etkinleştirilmiş hücre 50 hücre / ml&#39;de ekildi ve 1 wk klonal Neurospheres oluşturmak için bırakılmıştır. Time-lapse görüntüleme Neurospheres 50 hücreleri üretilen gösterir / ml klonal (Şekil 2). Lex + ve Lex için NFU - hücreler tespit edildi. Hücreleri (Şekil 3g) - Lex + hücre Lex ile karşılaştırıldığında önemli ölçüde daha yüksek neurosphere oluşum yeteneğine sahip olduğu gösterilmiştir. Oluşturulan Neurospheres sonra ayırt edildiklonal koşullar altında, daha sonra boyanmış (Şekil 3a-e) &#39;de görüntülenmiştir. Hücreleri (Şekil 3F) - Lex + hücreleri önemli ölçüde daha fazla tripotent Lex daha Neurospheres oluşturur. MGK frekansı sonra NFU ve tripotent neurospheres (Şekil 3g)% &#39;si olarak hesaplanmıştır. Lex dayalı seçim, bir MGK işaretleyici olarak Lex doğrulayarak, 14&#39;ten fazla kat MGK frekansını zenginleştirir. Biz de bu protokol 27 ve NCFCA 28 kullanılarak E14.5 fare neurospheres MGK frekansını tespit ettik. Her iki yöntem de E14.5 fare neurospheres yaklaşık% 2 karşılaştırılabilir MGK frekansını bildirmektedir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/54456/54456fig1.jpg" /> Klonal Koşullarında Neurosphere Farklılaşma için Şekil 1. Protokol. Klonal koşullarda yetiştirilen Numune neurospheres tek tek her PLL / Laminin-c yerleştiriliriyi bir 50-iyi odacıklı lamel oated ve / N O uymak için izin verdi. Aynı gün, dökme kültürlenmiş Neurospheres PLL / laminin ile kaplanmış 10 cm tabak farklılaşma ortama yerleştirilmiş ve / nO yapışmaya izin verilir. Toplu kültürlenmiş neurospheres ertesi gün, kıvamlandırılmış ortam filtre edildi ve tekrar 10 cm çanak içine yerleştirilmiştir. Örnek neurospheres sonra klimalı ortama ters ve 3-4 gün 28 için. Farklılaştırmak için izin verilen <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54456/54456fig1large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/54456/54456fig2.jpg" /> E14.5 neurospheres türetilen Şekil klonal neurosphere 2. Büyüme. Hücreler ayrılmış ve 96-yuvalı tabak ml / 50 hücre tohumlandı. Bireysel hücreler zaman atlamalı görüntüleme ile 6 gün boyunca takip edildi. o görüntüleriBir neurosphere içine büyüyen ne tür hücre gösterilir. neurosphere klonalite tutar unutmayın. (A) 0 gün; (B) 1.19.45; (C) 2.95.37; (D) 3.32.76; (E) 4.46.53; (F) 5.61.44; İlk sayısı gün belirtir burada, ikinci sayı gün fraksiyonuna değinmektedir, ve üçüncü sayı h fraksiyonuna değinmektedir. 10X büyütme. Ölçek çubuğu, 100 mikron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54456/54456fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/54456/54456fig3.jpg" /> Şekil Klon Neurospheres ve MGK Frekansı Numaralama 3. Farklılaşma. Tek neurospheres 3 gün 50-iyi odacıklı lamel toplanmış ve ayırt edildi. Bir tripotent neurosphere sta bir temsilcisi görüntü(a) DAPI ile daimi olarak tutturulabilir ve (b) GFAP için immuno, (c) Tuj1 ve (d) O4. (D) - (e) (a) kaplamayı gösterir. Ölçek çubuğu, 65 mikron. (F) unipotent, bipotent ve tripotent Lex + ve Lex tarafından üretilen neurospheres% - hücreleri (ortalama ± SEM, n = 3). Lex + ve Lex (g) MGK frekans -. NFU ürünü ve tripotent neurospheres% olarak hesaplanmıştır hücrelerin <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54456/54456fig3large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Nöral kök hücreler (NSC&#39;lerde) kendini yenilemek ve üç sinir soy içine ayırt edebilirsiniz hücrelere bakın. Burada, klonal koşullarda neurosphere oluşumu ve farklılaşmayı kullanarak belirli bir hücre popülasyonu MGK sıklığını belirlemek için bir protokol açıklar.

Nöral Kök Hücre Sayım klonal Tahliller Kullanma

Neural stem cells (NSCs) have the ability to self-renew and generate the three major neural lineages &#8212; astrocytes, neurons and oligodendrocytes. ...

Bu prosedürün genel amacı, nörosfer oluşumu ve klonal koşullar altında farklılaşma yoluyla belirli bir popülasyondaki nöral kök hücre frekansını belirlemektir. Bu yöntem; aday nöral kök hücre belirteçlerinin değerlendirilmesi, nöral kök hücrelerin saflaştırılması ve nöral kök hücrelerin nöral öncül hücrelerden ayırt edilmesi gibi nöral kök hücreler alanında temel kullanım alanlarına sahiptir. Bu yöntemin avantajları, nöral kök hücre frekansını belirlemeye yönelik mevcut yöntemlerden daha kısa olan 13 günlük bir sürede gerçekleştirilmesi ve klonal koşullar altında uygulanmasıdır.Bu prosedüre başlamak için birinci günde, DMEM F12 medyumunu B27, EGF, BFGF ve penisilinle streptomisin ile birleştirerek NSC büyüme medyumunu hazırlayın. Ardından, E14.5 fare nörosferlerini bir mililitre NSC büyüme medyumu ve bir mililitre 0.05 normal Sodyum Hidroksit içerisinde oda sıcaklığında yedi dakika boyunca ayrıştırın. Hücreleri süspansiyon halinde tutmak için ara ara pipetle yukarı aşağı çekin, ardından alkaliyi nötralize etmek için bir mililitre 0.05 normal hidroklorik asit ekleyin.Ardından, trypan-blue boyama ve bir hemositometre kullanarak hücre sayımı gerçekleştirin. Bunun ardından, tekli E14.5 fare nörosfer hücrelerini, 96 kuyucuklu bir plakta 100 µL NSC büyüme ortamı içerisinde, mililitre başına 50 hücre veya daha düşük bir yoğunlukta ekleyin. Klonal nörosferler oluşturmak için hücreleri 37 °C'de, %5 CO2 ortamında bir hafta boyunca inkübe edin.Şartlandırılmış ortam için nörosferleri kültürlemek amacıyla, üçüncü günde E14.5 fare nörosferlerini ayrıştırın ve tek hücreleri 10 santimetrelik bir kültür kabında, 10 mililitre NSC büyüme ortamında mililitre başına 20.000 hücre yoğunluğunda ekleyin. Ardından, toplu kültürlenmiş nörosferler üretmek için hücreleri 37 °C, %5 CO2 ortamında beş gün boyunca inkübe edin. Sekizinci günde; 700 mikrolitre %0,01 poly-L-lysine, 70 mikrolitre laminin (mililitre başına 1 mg ekleyerek) ve 6.230 mikrolitre PBS karıştırarak kaplama solüsyonunu hazırlayın.Ardından, 10 santimetrelik bir kültür kabını yedi mililitre poli-L-lizin laminin çözeltisi ile 37 °C'de iki saat boyunca kaplayın. 10 mililitrelik bir serolojik pipet kullanarak, dökme kültürlenmiş tüm nörosferleri 15 milimetrelik konik bir santrifüj tüpüne aktarın. Nörosferleri oda sıcaklığında bir dakika boyunca 171 ×g'de santrifüjleyin ve süpernatantı tamamen uzaklaştırın.Ardından, DMEM F12 medyumunu B27 ve FBS ile birleştirerek NSC diferansiyasyon medyumunu hazırlayın. Nörosferlerin üzerine 10 mililitre NSC diferansiyasyon medyumu ekleyin ve nörosferleri yeniden süspand etmek için pipetle birkaç kez yukarı aşağı çekin. Sonrasında, 10 santimetrelik kültür kabındaki poli-L-lizin laminini aspire edin ve 10 mililitre PBS ile bir kez yıkayın.Tüm nörosferleri poli-L-lizin laminin kaplı 10 santimetrelik kültür kabına aktarın; nörosferlerin kaba yapışması için 37 °C ve %5 CO2'de gece boyunca inkübe edin. Sekizinci günde, mikroskop altında her kuyucukta oluşan nörosfer sayısını sayın; ardından 50 kuyucuklu bir chambered cover slip'in her kuyucuğunu 10 µL poli-L-lizin laminin kaplama solüsyonu ile 37 °C'de iki saat boyunca kaplayın. Daha sonra, her biri 30 mL PBS içeren üç adet 50 mL'lik konik santrifüj tüpü hazırlayın.Steril penset kullanarak kaplanmış 50 kuyucuklu oda bölmeli lamı çıkarın, kaplama solüsyonunu yıkamak için oda bölmeli lamı sırasıyla birinci, ikinci ve ardından üçüncü PBS tüpüne daldırın. Sonrasında, oda bölmeli lamın kuyucuklarında kalan sıvıları aspire edin. 96 kuyucuklu plağın her bir kuyucuğundaki tüm besiyerini ve nörosferleri nazikçe tek bir 10 santimetre kültür kabına aktarın.Pipet sütunu iki mikrolitreye ayarlanarak her seferinde yalnızca tek bir nörosferin alındığından emin olun; mikroskop altında, 10 mikrolitrelik pipet ucu takılmış bir P10 mikro pipet kullanarak örnek bir nörosfer seçin. Nörosferler mikroskop altında, laminer akışlı kabinde veya tezgahta seçilebilir. Ardından, nörosferi kaplanmış 50 kuyucuklu oda bölmeli lamelin bir kuyucuğunun merkezine aktarın.Odacıklı lamın her bir kuyusunda bir nörosfer yer alana kadar işlemleri tekrarlayın. Ardından, odacıklı lamın her bir kuyusuna 10 µL NSC diferansiyasyon medyumu ekleyin. Odacıklı lamı 10 cm'lik kültür kabına yerleştirin.10 santimetrelik bir kaba iki adede kadar bölmeli lam yerleştirilebilir. NSC farklılaşma ortamının kurumasını önlemek için kabın kenarları boyunca PBS pipetleyin. Bölmeli lamı 37 °C'de, %5 CO2 ortamında gece boyunca inkübe edin.Dokuzuncu günde, dökme kültürdeki nörosferlerden elde edilen kondisyonlu medyumu 15 mililitrelik konik santrifüj tüpüne aktarın. Hücreleri veya kalıntıları temizlemek için, 20 mililitrelik steril bir şırınga kullanarak kondisyonlu medyumu 0,2 mikrometrelik bir filtreden geçirin. Ardından, filtrelenmiş kondisyonlu medyumu tekrar 10 santimetrelik kültür kabına aktarın.Ardından, steril pensler kullanarak, örnek nörosferler aşağı bakacak şekilde hazne dizaynlı lamellenin ters çevrilmiş halini kondisyonlu medyumun üzerine nazikçe yerleştirin. Hazne dizaynlı lamelliyle beraber örneği 37 °C ve %5 CO2 ortamında üç gün boyunca inkübe edin. 12. günde, steril pensler kullanarak hazne dizaynlı lamelli 10 cm'lik kültür kabından nazikçe çıkarın.Koşullandırılmış medyumu yıkamak için lam örtüsünü yavaşça PBS'ye batırın. Ardından, lam örtüsünün kırılmasını önlemek için nazik ve yavaş bir şekilde hareket ederek silikon contayı lam örtüsünden soyun. Diferansiye olmuş nörosferlerin yapışık olduğu tarafı not edin.Ardından, kapatma camı boyutunda kesilmiş bir parafin film parçası üzerine 1 mm %4 paraformaldehit pipetleyin. Kapatma camını, nörosferler paraformaldehit ile temas edecek şekilde aşağı bakacak şekilde parafin filmin üzerine nazikçe yerleştirin ve nörosferleri oda sıcaklığında 20 dakika boyunca sabitleyin. Burada, tekil nörosferler seçilmiş ve 50 kuyucuklu bölmeli bir kapatma camında üç gün boyunca farklılaştırılmıştır.Bu görüntü, dapi ile boyanmış ve GFAP, TUJ1 ve O4 için immünostaynlanmış tripotent bir nörosferin temsili bir görüntüsüdür. Bu görüntü dapi, GFAP, TUJ1 ve O4'ün üst üste bindirilmiş halini göstermektedir. Bu protokol, bilinen bir NSC belirteci olan LeX'in NSC'leri zenginleştirme yeteneğini değerlendirmek için kullanılır. Bu grafik, LeX pozitif ve LeX negatif hücreler tarafından üretilen unipotent, bipotent ve tripotent nörosferlerin yüzdesini göstermektedir. LeX pozitif hücreler, LeX negatif hücrelere göre anlamlı derecede daha fazla tripotent nörosfer üretmektedir.Bu tablo, LeX pozitif ve LeX negatif hücrelerin NSC frekansının, NFU ile tripoten nörosferlerin yüzdesinin çarpımı olarak hesaplandığını göstermektedir. Bu videoyu izledikten sonra, nöral kök hücre frekansını saymak için nörosferlerin klonal koşullar altında nasıl kültüre edilebileceğini ve diferansiye edilebileceğini iyi bir şekilde anlamış olmalısınız. Bu yöntemi uygularken, nörosferler için optimal büyüme ve diferansiyasyon koşullarını sağlamak amacıyla taze hazırlanmış büyüme ve diferansiyasyon medyaları ile taze hazırlanmış kaplama solüsyonu kullanmak önemlidir.Bu yöntem bir kez öğrenildikten sonra, nöral kök hücre sıklığını belirlemek için kullanılan mevcut yöntemlere kıyasla daha kısa bir süre olan 13 günde gerçekleştirilebilir. Bu yöntem, yeni kök hücreleri zenginleştirmek ve kesin bir nöral kök hücre belirteci tanımlamak için nöral koloni oluşturan hücre testi gibi mevcut yöntemlerle birlikte kullanılabilir.

enumeration-of-neural-stem-cells-using-clonal-assays

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Canlı hücreler tam sayısının Bilgi, birçok doku kültürü manipülasyonlar için gereklidir. Bu protokol, canlı ve ölü hücreleri arasındaki ayrım ve hemasitometre kullanarak hücrelerin miktarını nasıl açıklamaktadır. Insan sinir kök / prekürsör hücrelerinin (hNSPCs) sayma açıklar olsa da, diğer hücre türleri için kullanılabilir.

İnsan Nöral Kök Hücreler Sayma

Bu video protokolü yetişkin fare periventriküler bölge nöral kök hücreler oluşturmak ve genişletmek için neurosphere assay yöntemi gösterir ve bir tekrarlanabilir neurosphere kültürleri elde edebilirsiniz sağlamak için teknik bilgiler sağlar.

Neurosphere Testi Yetişkin Fare Nöral Kök Hücre İzolasyonu ve Genişleme

Bu video protokolü iyi niyetli nöral kök hücreler nöral prekürsör hücrelerin koloni oluşturan nöral hücre çalışması ile oluşan karışık bir nüfus nasıl ayrımcılık ve numaralandırmak göstermektedir.

Hücre Testi Şekillendirme Sinir-Koloni: Sinir Progenitör Hücreler Bona Fide Sinir Kök Hücreler Ayırım Bir Testi

Bu video protokolü akış sitometrisi teknolojisi kullanılarak fiziksel (boyutu ve iç boyu) ve floresan özelliklerine bağlı olarak kök sinir hücrelerini yenilenebilir bir kaynaktan (NSC'lerde) den nöronal progenitör hücre üretimi ve daha sonra saflaştırma için yeni bir yöntem gösterilmektedir.

Neuroblast Test: Akım Sitometri Kullanımı Farklılaşan Nöral Kök Hücre Döl nöronal Progenitör Hücrelerinin üretilmesi ve zenginleştirilmesi için bir Testi

Yetişkin beyin hasat nöral kök hücreler sinir sistemi gelişiminin temel araştırma rejeneratif tıpta potansiyel klinik uygulamaları keşfetmek için çeşitli uygulamalar kullanılmaktadır artmaktadır. Bu deneysel sonuçların ses için kritik bu hücreleri büyümek için kullanılan yalıtım ve kültür koşullarında titiz kontrolü yapar.

Yetişkin Kemirgen Beyin konvansiyonel ve konvansiyonel olmayan Bölgelerinden Nöral Kök Hücreler Büyüyen

Burada subventricular bölgesi ve bireysel yetişkin farelerin kıvrımlarının gelen yapışkan tek katman veya neurospheres ya gibi, sinir öncü hücre kültürlerinin eş zamanlı üretimi için ayrıntılı bir protokol açıklar.

Bir Fare, İki Kültür: İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kültür Bireysel Farelerde iki Nörojenik Bölgeler&#39;den Kök Hücre

Yetişkin memeli omuriliği, kültürde izole edilebilen ve genişletilebilen nöral kök/progenitör hücreler (NSPC'ler) içerir. Bu protokol, erişkin omuriliğinin periventriküler bölgesinden sıçandan ve insan organ nakli donörlerinden üretilen NSPC'lerin toplanmasını, izolasyonunu, kültürünü ve geçişini açıklar.

Periventriküler Yetişkin Rat Bölgesinde ve İnsan Omurilik gelen Nöral Kök / Progenitör Hücreler izolasyonu

Sinirsel nüfus tarafından hızlandırılmış video mikroskobu esaslı bilgisayar yazılımı Post-processing takip izlemek için sağlam bir protokol açıklanmıştır. Bu yöntem canlı görüntüleme deneyler sırasında seçili bir popülasyondaki biyolojik olayları tanımlamak için güçlü bir araç temsil eder.

Tek hücreli Monitor hücre biyolojisi ve birden çok sinir nüfus Lineage ilerlemesini izleme ve ardından görüntüleme yaşamak

Burada fare embriyonik gelişim sırasında hematopoetik kök hücre öncüleri klonal analizi için metodoloji mevcut. Endotel hücre ortak kültür ve fenotipik özellikleri ve tek hematopoetik öncüleri potansiyelini engraftment karakterize nakli ile embriyonik aort-erbezi-mesonephros bölgesinden tek hücre dizin sıralama birleştirin.

Embriyonik hematopoetik kök hücre öncüleri endotel hücre niş ortak kültürü ile kombine sıralama tek hücre dizini kullanarak klonal analizi

Bu protokolün amacı, belirli bir lokal nöral devrenin kemogenetik manipülasyonuna yanıt olarak yetişkin nöral kök/progenitor hücrelerin davranışını analiz etmek için bir yaklaşım tanımlamakta.

Yetişkin hipokampal sinirsel precursor hücrelerinin devre spesifik Yönetmeliği

Burada, erişkin murin subventriküler bölgesinden izole edilen genişletilmiş nöral kök hücrelerde (NSC'ler) gen iletim verimliliğini artırmak için tasarlanmış bir nükleofeksiyon sistemini açıklıyoruz. Bulgular, bu yöntemin NSC'lerde gen bozulmasını önemli ölçüde iyileştirdiğini, geleneksel transfeksiyon protokollerinin etkinliğini aştığını ve hücre sağkalım oranını artırdığını göstermektedir.

Erişkin Murin Subventriküler Bölgesinden Nöral Kök Hücrelerin İzolasyonu, Genişlemesi ve Nükleofeksiyonu

Öğrenin, nöral kök hücrelerin klonal koşullarda nörosfer oluşumu ve farklılaşması kullanılarak sayımını. Bu 13 günlük yöntem, kök hücre belirteçlerini değerlendirmek ve hücreleri saflaştırmak için kullanılır.

Nöral Kök Hücre Sayım klonal Tahliller Kullanma

Daha fazla video keşfet