Name: Myeloproliferatif tümörün İletimi-Transplantasyon Fare Modeli (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: Keşfedin, transdüksiyon-transplantasyon yöntemiyle farelerde hematopoietik hücrelerde gen ifadesi oluşturmayı. Bu teknik, hematolojik maligniteleri ve normal hematopoiezi incelemek için hızlı model geliştirmeyi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma V Foundation Scholar (AGF) ve MPN Research Foundation (AGF) tarafından desteklenmektedir.

Bu çalışma onaylanmış ve California, Irvine Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından önerileri doğrultusunda gerçekleştirilmiştir. Tüm işlemler izofluran anestezi altında yapılan ve tüm çabaları acı en aza indirmek için yapılmıştır. Ekotropik retrovirüs 1. Üretim <ol><li> ticari bir maksi-hazırlık kiti ve sezyum klorür arıtma kullanarak en az 1 ug / ml bir konsantrasyonda yüksek kaliteli plazmidler hazırlayın. Not: Bu, bir MSCV omurgası (CALR 7,8 bu durumda) ilgili geni kodlayan vektör ve (vs GFP, Neo) seçim işaretleyici olarak ekotropik bir paketleme plazmiti kodlayan gag-pol-env içerir (de ifade burada plazmid gibi). </li><li> DMEM çözülme ve genişletme düşük geçiş 293T hücreleri, penisilin / streptomisin (D10) ile,% 10 FBS ve L-glutamin ile takviye edilmiştir. Nemlendirilmiş bir 10 cm doku kültürü ile muamele edilmiş çanak levha 5 x 10 6 hücredoku kültürü, 37 ° C&#39;de kuluçka% 5 CO2. </li><li> kültür içinde, 293T hücreleri genişletmek. Transfeksiyondan bir gün önce, bir vakum şişesi içine, 1 ml PBS ve aspirat süpernatan ilave edilerek hücrelerin yıkanması. </li><li> Hücreleri tripsinize edin için, 2 mi% 0.05 tripsin ekleyip inkübe yemekler 2 nemlendirilmiş bir doku kültürü kuluçka makinesi içinde - 3 dakika 37 ° C&#39;de ve% 5 CO2. </li><li> , Trypsinization durdurmak 15 ml konik tüp çanak 3 ml D10 ve transfer hücreleri ekleyin. 10 dakika boyunca 400 xg&#39;de hücreleri dönerler. </li><li> 2 ml D10 bir termos ve tekrar süspansiyon hücre pelet haline Süpernatant aspire. </li><li> hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak. </li><li> Tohum oluşturulan virüs başına üç 10 cm doku kültürü ile tedavi edilen yemeklerin içine çanak başına 2 x 10 6 hücre. NOT: En iyi sonuçlar için, hücreler 30 aşmasına izin vermez - transfeksiyon veya kötü virüs verim elde edilebilir anda% 50 izdiham. </li><li> Transfeksiyondan hemen önceve bir termos içine aspire medya 5 ml taze D10 ile değiştirin. </li><li> Her 10 cm Petri kabı bağımsız bir 1.5 mL steril mikrosantrfuj tüp hazırlanması transfekte edilmesi. </li><li> Pipet her mikrosantrifüj tüpe düşük serum ortamında 760 ul, daha sonra dikkatlice doğrudan ortama transfeksiyon reaktif 40 ul ekleyin. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında doku kültürü kaputu inkübe edin. </li><li> ilgili gen (boş vektör kullanılarak 15 ug varsa) olarak her bir ilgili tüp plazmid 5 ug MSCV vektörünün 30 ug ekleyin ve aşağı yukarı pipetleme yavaşça karıştırın. ilave bir 15 dakika boyunca doku kültürü kaputu oda sıcaklığında inkübe edin. NOT: Daha küçük vektörler yüksek viral verim sahip olma eğilimindedir. </li><li> Dikkatle damla damla, ilgili 10 cm Petri kabı içine her reaksiyon (yaklaşık 800 ul) toplam hacmi ekleyin ve hafifçe karıştırın yanlara doğru çanak eğin. nemlendirilmiş doku cu hücreleri dönünlture inkübatör. </li><li> doku kültürü kuluçka makinesi içinde bir 8 saat veya bir gece inkübe edildikten sonra, yavaşça aspire bir vakum şişesi içine ortam ve taze D10, 10 ml ile değiştirin. </li><li> 48 saat sonra, transfeksiyondan &#39;de 35 ml şırınganın içine süpernatan toplamak ve hücre debrisini uzaklaştırmak için 0.45 um&#39;lik bir membrandan filtre. </li><li> İSTEĞE BAĞLI: 293T hücreleri ve ek virüs yerleştirin 10 ml taze D10 geri 72 saat sonrası transfeksiyon hasat edilebilir. </li><li> Hiçbir ek virüs tahsil edildiğinde biyolojik tehlike atık 293T hücrelerinin imha edin. </li><li> (Örneğin virüs titresi 1 ml veya BM enfeksiyonu için 6.5 ml için) tek kullanımlık birimlere kısım viral süpernatant. -80 ° C&#39;de, sıvı azot ve mağaza virüsü ile flaş dondurma virüsü. NOT: onlar büyük ölçüde virüs titresi azaltmak olarak tekrarlanan donma / çözülme döngüleri kaçının. </li></ol> 2. Sitometrisi ile Bağıl Viral titresi belirlemek <ol><li> 3T3 hücreleri çözülme ve D10 korumak. 10 cm Kültür hücreleridoku kültürü CO2, 37 ° C&#39;de, nemlendirilmiş bir doku kültürü inkübatörü içinde çanak muamele edilmiş ve% 5. </li><li> üç kopya halinde viral titresi gerçekleştirin. vakum balona 1 ml PBS ve aspirat süpernatant ekleyerek hücreleri yıkayın, hücreler hazırlamak. </li><li> Hücreleri tripsinize edin için, 2 mi% 0.05 tripsin ekleyip inkübe yemekler nemlendirilmiş bir doku kültürü inkübatörü içinde, 37 ° C&#39;de ve% 5 CO2. </li><li> , Trypsinization durdurmak 15 ml konik tüp çanak 3 ml D10 ve transfer hücreleri ekleyin. 10 dakika boyunca 400 xg&#39;de hücreleri dönerler. </li><li> 2 ml D10 bir termos ve tekrar süspansiyon hücre pelet haline Süpernatant aspire. </li><li> hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak. </li><li> Tohum 3T3 beş 60 mm doku kültürü ile muamele edilmiş kaplarına 1 x 10 5 hücre yoğunluğunda hücreler ve gece boyunca inkübe edilir. </li><li> 3, 1:10 1:30, ve 1: 1 ml toplam D10 kullanılarak çözündürüldü viral süpernatanın 100 dilüsyonları 1 sağlayın. Ayrıca virüssüz kontrolünü içerir. </li><li> beni aspirebir vakum şişesi içine 3T3 hücrelerinden çap ve D10, 4 ml ile değiştirin. </li><li> Viral süpernatan seyreltileri ile 3T3 hücreleri Yerleşimi ve her bir çanak 8 ug / ml bir son konsantrasyona kadar polibren ekleyin. 37 ° C&#39;de doku kültürü kuluçka makinesi içinde 48 saat ve% 5 CO2 inkübe edin. </li><li> flow sitometri ile göreli viral titresi belirlemek: <ol><li> Hücreleri yıkamak için, bir vakum balona medya aspire ve 5 ml PBS ekleyin. </li><li> vakum şişe içine PBS aspire. 1 mi% 0.05 tripsin ilave edin ve 2 37 ° C de inkübe - 5 dakika çanak hücreleri ayırmak için. </li><li> plaka kalan hücreleri ayırmak için aşağı 3 ml D10 ekleyin ve yukarı pipet ve. 10 dakika boyunca 400 xg&#39;de FACS tüp ve santrifüj hücreleri aktarın. </li><li> süpernatant süzün ve 3 ml PBS ile yıkama hücreleri. 10 dakika ve decant süpernatant 400 x g&#39;de santrifüj. 200 ul PBS içinde süspanse. </li><li> 9 bir akış sitometre üzerinde çalıştırın hücreler. t içinde 30.000 olayları - 20.000 arasında toplayıno (SSC vs FSC tarafından belirlenen) hücre kapısı yaşamak ve GFP + ve GFP yüzdesini hesaplamak - hücreler. Not: bir viral titresi olarak kabul edilebilir olarak kabul edilir zaman viral süpernatan verim, en az% 50, GFP + 3T3 hücrelerinin 1:30 seyreltme. Eğer en az% 50, GFP + hücreleri, bu seyreltme sonuçlar daha sonra optimal iletim sonuçlar elde edilebilir. Viral titresini belirlemek için hesaplama Limon ve ark uyarlanmıştır. , Blood (1997) 9. </li><li> Virüs titresi = parçacık oluşturan birimler (PFU) / ml = [(GFP + hücrelerin frekansı x 3T3 hücre sayısı) yardımıyla yüzücünün (mi) / hacim] x seyreltme faktörü: göreli virüs titresini belirlemek için denklem kullanır. </li></ol></li></ol> 3. transduce Donör Kemik İliği Hücreleri <ol><li> kemik iliği için donör fareler hazırlamak için (BM) hasat önce% 5 Birleştirilen tamamlayıcı olan bir akış oranı ile izofluran buharlaştırıcı ile fareler anestezi/ Dakika, 1 L oksijen. reaksiyonunu değerlendirmek için ayak sıkıştırın. NOT: (az 8 haftalık) Donör fareler (8 gün önce transplantasyon) 5 gün önce kemik iliği hasat hazırlanmalıdır. Bir donör fareler en az 2 alıcılar için yeterli hücre sağlar. </li><li> Enjekte 150 mg / kg, 27 G x ½ &quot;iğne kullanılarak, anestezi uygulanmış farelerde retroorbital enjeksiyon yoluyla 5-fluorourasil (5-FU). DİKKAT! 5-FU, bir anti-kanser kemoterapötik madde. Her zaman yetkili bir kimyasal bir davlumbaz veya kanallı biyogüvenlik kabini içinde 5-FU anlaştım. 5-FU ile tedavi edilen farelerin uygun etiketleme belirlemek için kurumun laboratuvar ve hayvan güvenliği komitesi danışın. <ol><li> yan anestezi fare getirin ve göz kafası biraz çıkıntı şekilde başparmak ve işaret parmağı hem de kullanılarak dizginlemek. </li><li> medial canthus ve yukarı bakacak şekilde eğim ile iğne yanal ile başlayarak, bir 45 ° iğneyimedial yönde açısı ° ve iğne yarım takıldığında durdurun. Yavaşça hücreleri enjekte ve dikkatlice iğneyi kaldır. NOT: Bu teknik doğru yapılırsa, göz hafifçe geri çekilmelidir ve hiçbir direnç iğne sokulması üzerine keçe edilmelidir. </li><li> Böyle şişme veya kanama gibi yaralanma herhangi bir işaret için fareyi inceleyin. </li></ol></li><li> Hasat kemik iliği 5 gün (transplantasyonundan 3 gün önce), 5-FU tedavisi sonrası. <ol><li> / Dakika, 1 L% 5 Birleştirilen ilave oksijen akış hızı ile izofluran buharlaştırıcı ile fareler anestezi. reaksiyonunu değerlendirmek için ayak sıkıştırın. </li><li> servikal dislokasyon ile fare Kurban. kürk ıslak hale gelinceye kadar% 70 EtOH ile cömertçe püskürtülerek fare sterilize edin. </li><li> diseksiyon makas kullanarak, deride bir kesi yapmak ve uzak bacak kaslarından fasya teşrih. Sonra, kalça femur ve ayak bileğinde tibia kesilmesinin fare uzak bacak teşrih. </li><li> virajBir &quot;L&quot; şeklinde bacak ve diseksiyon makas ile diz eklemi keserek her bacak kemiği ayırın. </li><li> her bacak kemiğin distal uçlarında kıkırdak kaldırmak için, kıkırdak devre kadar yavaşça bacak kemik bir uca doğru kas kazımak için kesme makasları kullanın. </li><li> 27 x g ½ inç iğne ile bir şırınga kullanılarak, PBS ile yıkayın, her bacak kemiği 50 ml konik bir tüp içinde 100 uM bir naylon membran üzerinde% 2 FBS ile takviye edilmiştir. Kemik kadar yıkayın kemik hasat hücrelerin sayısını arttırmak için beyaz olur. </li><li> tek bir hücre süspansiyonu elde etmek için 50 mL konik tüp içine naylon membran aracılığı ile hücreler arasında püre bir şırınga pistonu kullanın. diğer fare bacak ile tekrarlayın. </li></ol></li><li> 4 ° C&#39;de santrifüje hücreler 400 x g&#39;de 10 dakika ve süpernatan atılır. Süspanse BM 5 mi amonyum klorit, potasyum (ACK) tampon içinde, kırmızı kan hücreleri lize etmek için. 10 dakika boyunca buz üzerinde inkübe hücreleri. </li><li> hücre parçalama durdurmak için PBS ile tüp doldurun. Centri4 ° C&#39;de fuge hücreler 400 x g&#39;de 10 dakika ve süpernatan atılır. BM pelet kırmızı rengi varsa parçalama adımı yineleyin. </li><li> 5 ml PBS içinde süspanse ve hemasitometre kullanarak tripan mavi dışlama hücreleri saymak. </li><li> DMEM% 20 FBS, L-glutamin, penisilin / streptomisin ile takviye içeren 2x ön-Stim kokteyl m başına 2 x 10 6 hücre yeniden süspanse hücre, IL-3, (14 ng / ml), IL-6 (24 ng / mi) ve SCF (112 ng / ml). Plaka 6 yuvalı plakalar içinde oyuk başına 2 mi. </li><li> 37 ° C&#39;de gece boyunca inkübe hücreleri ve% 5 CO2. </li><li> içeren her BM hücrelerinin viral süpernatan 2 ml ilave edilir ve polybrene (ug / ml 8 mg) ekleyin. 1,500 x g&#39;de 90 dakika boyunca 30 ° C &#39;de dönel Plakalar daha sonra gece boyunca bir doku kültürü kuluçka makinesine plaka dönüş. </li><li> Pipet hücresi konik tüpler içine süspansiyonu ve 400 x g&#39;de 10 dakika boyunca 4 ° C&#39;de santrifüj plaka atın yoktur. 2 ml yeniden süspanse hücreleri taze 2x öncesi stim kuyu başına kokteyl ve özgün kuyulara geri dönün. </li&gt; <li> Adımları 3,7-3,9 yineleyerek bir 2. spinoculation gerçekleştirin. </li></ol> Alıcı Fare içine 4. Nakli Donör Hücreleri <ol><li> 24 saat önce BM hücrelerinin enjeksiyonu için ölümcül doz, toplam vücut ışınlaması ile &lt;nakli için singeneik alıcı fareler hazırlayın. NOT: BALB / c farelerde için ölümcül doz ışınlama tipik 800-900 cGy ve C57B / 6 10 1,000-1,200 cGy olduğunu. doz tipik olarak, en azından 3-4 saat aralıklı ışınlama iki oturum ayrılmıştır. </li><li> yavaşça konik tüpler içine süpernatant pipetleme 6 kuyucuğu aşama 3.11, hasat transdüksiyona donör hücrelerinden devam etti. Kalıntı hücreleri toplamak ve 50 ml konik tüp eklemek 1 ml PBS ile iyice her yıkama. </li><li> oyuklara% 0.05 tripsin 0.5 ml ilave edilir ve 5 dakika boyunca doku kültür inkübatörü içinde 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> kuyulara 1 ml D10 ekleyin ve yumuşak pipetleme kalan hücreleri ayırmak. ilgili tüp hücreleri ekleme400 x g&#39;de 10 dakika boyunca 4 ° C&#39;de santrifüj ile adım 4.2 ve pelet s. </li><li> 400 x g&#39;de 10 dakika boyunca 4 ° C&#39;de PBS ve santrifüj ile hücreler yıkanır. tripan mavi dışlama hemasitometre kullanarak 5 ml PBS içinde süspanse ve saymak hücreleri. Not: vektör, bir GFP etiketi vardır, o zaman, bir akış sitometresiyle GFP pozitif hücrelerin yüzdesi miktarı belirlenir. </li><li> Farelere enjeksiyon için 100 ul PBS - 50, 2 x 10 6 hücre - 5 x 10 5 süspanse edin. </li><li> steril bir 27 G x ½ &quot;iğne kullanılarak anestezi farelere retroorbital enjeksiyon yoluyla hücreleri enjekte edilir. NOT: Diğer enjeksiyon teknikleri kuyruk ven, dalak, ya da femoral içerir. <ol><li> reaksiyonunu değerlendirmek için izofluran ve tutam ayak kullanarak fare anestezisi. </li><li> yan fare yerleştirin ve göz kafası biraz çıkıntı şekilde başparmak ve işaret parmağı hem de kullanılarak dizginlemek. </li><li> konik yukarı bakacak şekilde, n eklemek45 ° açıyla medial canthus lateral eedle. NOT: Bu teknik doğru yapılırsa, göz hafifçe geri çekilmelidir ve hiçbir direnç iğne sokulması üzerine keçe edilmelidir. </li><li> Böyle şişme veya kanama gibi yaralanma herhangi bir işaret için fareyi inceleyin. NOT: Aşağıdaki nakli fareler birkaç hafta için düşük kan sayımı var ve bu yüzden enfeksiyona duyarlı olacaktır. antibiyotikler veya asitleştirilmiş su kullanımı ile profilaksisi kullanılabilmektedir. </li></ol></li><li> Nakil sonrası bir ay flow sitometri engrafted donör hücreleri bir göstergesi olarak periferik kanda% GFP ölçün. NOT: Tek başına GFP hücrelerinin engraftman başarısını belirleyemiyor. Viral iletimi başarısız olmuş olabilir ama engraftmınt meydana gelmiş olabilir. Bu durumda, hiçbir GFP + hücreler tespit ama nakledilen hücrelerin melezleşmesi başarılı olacaktır. <ol><li> periferik kan b 10 ul alıny 21 G x 1 ½ &quot;şırınga ile safen bacak ven delinmesiyle ve pıhtılaşmasını önlemek için PBS içinde 100 mM EDTA ekleyin. </li><li> 10 dakika boyunca buz üzerinde, kan ve eritmek için 1 mi ACK ekleyin. 10 dakika boyunca 400 x g&#39;de santrifüj ile pelet hücreleri. </li><li> Aspire bir vakum şişesi içinde yüzer ve 1 ml PBS ilave lizis durdurmak için% 2 FBS ile takviye edilmiştir. 10 dakika boyunca 400 x g&#39;de santrifüj ile pelet hücreleri. </li><li> 100 ul PBS içinde bir vakum şişe ve tekrar süspansiyon pelet aspire süpernatan% 2 FBS ile takviye edilmiştir. </li><li> Bir akış sitometresinde örnekleri çalıştırın ve (SSC vs FSC tarafından belirlenir) canlı hücre kapısının içinde 300.000 olayları toplamak ve GFP + ve GFP yüzdesini hesaplamak - hücrelerinden 9. </li></ol></li><li> Ayrıca 1 ay nakil sonrası da, hastalığın ilerlemesini izlemek için otomatik bir veteriner hematoloji analizörü 18 kullanılarak tam kan sayımı (CBC) gerçekleştirin. NOT:% oranında hastalığı izlemeye devam edinAylık periferik kan ve CBC GFP. </li><li> Denemeyi sonlandırmak için, yanıt değerlendirmek için izofluran ve tutam ayak kullanarak fare uyutmak. histopatoloji için servikal dislokasyon ve hasat dalak ve kemik iliği tarafından fare Kurban. NOT: Deneyin uzunluğu öznel ve bitiş tarihi beklenen hastalık fenotipi dayalı değerlendirilmelidir. </li></ol>

<ol><li>Daley, G. Q., Van Etten, R. A., Baltimore, D. Induction of chronic myelogenous leukemia in mice by the P210bcr/abl gene of the Philadelphia chromosome. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDaley%2C+GQ+%22Science%28New+York%2C+N.Y.%29%22">Science(New York, N.Y.)</a>. 247 (4944), 824-830 (1990).</li>
<li>Wernig, G., Mercher, T., Okabe, R., Levine, R. L., Lee, B. H., Gilliland, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+Jak2V617F+causes+a+polycythemia+vera-like+disease+with+associated+myelofibrosis+in+a+murine+bone+marrow+transplant+model%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Expression of Jak2V617F causes a polycythemia vera-like disease with associated myelofibrosis in a murine bone marrow transplant model.</a> Blood. 107 (11), 4274-4281 (2006).</li>
<li>Lacout, C., Pisani, D. F., Tulliez, M., Gachelin, F. M., Vainchenker, W., Villeval, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((JAK2V617F+expression+in+murine+hematopoietic+cells+leads+to+MPD+mimicking+human+PV+with+secondary+myelofibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">JAK2V617F expression in murine hematopoietic cells leads to MPD mimicking human PV with secondary myelofibrosis.</a> Blood. 108 (5), 1652-1660 (2006).</li>
<li>Zaleskas, V. M., Krause, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+pathogenesis+and+therapy+of+polycythemia+induced+in+mice+by+JAK2+V617F%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Molecular pathogenesis and therapy of polycythemia induced in mice by JAK2 V617F.</a> PloS One. 1, e18(2006).</li>
<li>Bumm, T. G. P., Elsea, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+murine+JAK2V617F-positive+myeloproliferative+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Characterization of murine JAK2V617F-positive myeloproliferative disease.</a> Cancer Res. 66 (23), 11156-11165 (2006).</li>
<li>Marty, C., Pecquet, C., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMarty%2C+C+%22Calreticulin+mutants+in+mice+induce+an+MPL-dependent+thrombocytosis+with+frequent+progression+to+myelofibrosis%22">Calreticulin mutants in mice induce an MPL-dependent thrombocytosis with frequent progression to myelofibrosis</a>. , Blood. (2015).</li>
<li>Klampfl, T., Gisslinger, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+mutations+of+calreticulin+in+myeloproliferative+neoplasms%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms.</a> N. Engl. J. Med. 369 (25), 2379-2390 (2013).</li>
<li>Araki, M., Yang, Y., et al. Activation of the thrombopoietin receptor by mutant calreticulin in CALR-mutant myeloproliferative neoplasms. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAraki%2C+M+%22Blood%22">Blood</a>. , (2016).</li>
<li>Limón, A., Briones, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Titer+Retroviral+Vectors+Containing+the+Enhanced+Green+Fluorescent+Protein+Gene+for+Efficient+Expression+in+Hematopoietic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">High-Titer Retroviral Vectors Containing the Enhanced Green Fluorescent Protein Gene for Efficient Expression in Hematopoietic Cells.</a> Blood. 90 (9), 3316-3321 (1997).</li>
<li>Duran-Struuck, R., Dysko, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+bone+marrow+transplantation+%28BMT%29%3A+providing+optimal+veterinary+and+husbandry+care+to+irradiated+mice+in+BMT+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Assoc.+Lab.+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Principles of bone marrow transplantation (BMT): providing optimal veterinary and husbandry care to irradiated mice in BMT studies.</a> J. Am. Assoc. Lab. Anim. Sci. 48 (1), 11-22 (2009).</li>
<li>Gavrilescu, L. C., Van Etten, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+Replication-Defective+Retrovirus+by+Transient+Transfection+of+293T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Production of Replication-Defective Retrovirus by Transient Transfection of 293T cells.</a> J. Vis. Exp. (10), (2007).</li>
<li>Challen, G. A., Boles, N., Lin, K. K., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+Hematopoietic+Stem+Cell+Identification+And+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Mouse Hematopoietic Stem Cell Identification And Analysis.</a> Cytometry A. 75 (1), 14-24 (2009).</li>
<li>Ergen, A. V., Jeong, M., Lin, K. K., Challen, G. A., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+mouse+side+population+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Bio.+%28Clifton%2C+N.J.%29%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of mouse side population cells.</a> Methods Mol. Bio. (Clifton, N.J.). 946, 151-162 (2013).</li>
<li>Weksberg, D. C., Chambers, S. M., Boles, N. C., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD150-+side+population+cells+represent+a+functionally+distinct+population+of+long-term+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">CD150- side population cells represent a functionally distinct population of long-term hematopoietic stem cells.</a> Blood. 111 (4), 2444-2451 (2008).</li>
<li>Oguro, H., Ding, L., Morrison, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SLAM+family+markers+resolve+functionally+distinct+subpopulations+of+hematopoietic+stem+cells+and+multipotent+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">SLAM family markers resolve functionally distinct subpopulations of hematopoietic stem cells and multipotent progenitors.</a> Cell Stem Cell. 13 (1), 102-116 (2013).</li>
<li>Li, J., Kent, D. G., Chen, E., Green, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+myeloproliferative+neoplasms%3A+JAK+of+all+grades%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model.+Mech%22%5BJournal%5D)">Mouse models of myeloproliferative neoplasms: JAK of all grades.</a> Dis. Model. Mech. 4 (3), 311-317 (2011).</li>
<li>Mullally, A., Lane, S. W., Brumme, K., Ebert, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloproliferative+neoplasm+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Hematol.+Oncol.+Clin.+North+Am%22%5BJournal%5D)">Myeloproliferative neoplasm animal models.</a> Hematol. Oncol. Clin. North Am. 26 (5), 1065-1081 (2012).</li>
<li>Scil animal care company GmbH. , Source: 
 <a target="_blank" href="http://www.scilvet.us/company-downloads">http://www.scilvet.us/company-downloads</a> (2005).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bu protokol, hastalığın şoförü olarak CALRdel52 mutasyonu myelofibrotik doğru ilerledikçe bir esansiyel trombositemi gibi hastalık özetlemek için farelerde kemik iliği nakli nasıl gerçekleştirileceği ayrıntılı bir açıklamasını sağlar. artan trombositler, megakaryositler genişlemesi ve kemik iliği fibrozis CALRdel52 sonuçlarını ifade eden hücrelerin başarılı nakli. Kemik iliği nakli çok aşamalı bir süreçtir gibi, teknik bir hata çıkar, hatta fare ölüm geni eksprese eden hücrelerin kötü engraftman önlemek için önlenebilir...

İletimi transplantasyon farelerde hematolojik maligniteler modellemek için yararlı bir yöntemdir. Bu teknik geri BCR-ABL1 ektopik ifadesi sadakatle farelerde 1 kronik miyeloid lösemi özetlemek olabilir ilk gösteriye kadar uzanan miyeloid malignitelerini çalışmak için özellikle değerli olmuştur. Bu teknik daha sonra miyeloproliferatif neoplazmı (MPN) mutasyona uğramış JAK2 V617F ve MPL W515K / L yoğun çalışma kolaylaştırmıştır. MPN olgun miyeloid hücreleri ve kemik iliği fibrozisi aşırı ile karakterize hematolojik kanserlerde bir grup. Bu hastalıklar, genel olarak, JAK2, MPL veya CALR ya somatik mutasyon kazanmış bir hematopoietik kök hücrenin klonal büyümesi ortaya çıkar. İletimi-transplantasyon JAK2 V617F ve MPL W515K / L modelleri sergi polisitemi vera ve miyelofibrozisin 2 klinik özellikleri - 5 &lt;/ Sup&gt;. Son zamanlarda, kalretikülin mutasyonlu MPN bir fare modeli de transdüksiyon transplantasyon yöntem 6 oluşturuldu. Bu fareler artmış trombositler, megakaryositler sayısının artması, ve kemik iliği fibrozisi olan bir esansiyel trombositemi benzeri hastalığı gelişebilir. Birlikte, bu modeller MPN moleküler patogenezi içgörü kazanmak için fırsat değil, aynı zamanda geliştirmek ve klinik öncesi ortamda terapötiklerin çalışma kapasitesi sağlamıştır sadece. Bu yazının CALRdel52 mutasyon odaklanarak iletim-transplantasyon metodolojisi ayrıntılı bir açıklamasını sağlar. Bu teknik, bir mutant ışınlanmış singeneik alıcı farelere yapısını ifade eden retroviral kalıt kemik iliği hücrelerinin nakli kapsar.

<table><tbody><tr><td><güçlü > Hücre Hatları< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Corning</td><td>MT-10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>293T hücreleri</td><td>ATCC</td><td>CRL-11268</td><td></td></tr><tr><td>3T3 hücreleri</td><td>ATCC</td><td>CRL-1658</td><td></td></tr> <tr><td>< güçlü >Plazmidler< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EcoPak, pCL-Eco</td><td>Addgene</td><td>12371</td> <td>olarak da bilinirEcoPak plazmid ve standart 293T hücrelerinin yerine EcoPack 2-293 gibi retroviral paketleme hücre hatları kullanılabilir. Ek &gamma;-retrovirüs zarfı ve ambalaj plazmitleri Addgene ve diğerlerinden temin edilebilir.</td></tr><tr><td>MSCV-IRES-GFP (MIG)Addgene</td><td></td> <td>20672</td><td>Ek &gamma;-retroviral transfer plazmitleri Addgene ve diğerlerinden temin edilebilir.</td></tr><tr><td><güçlü > Sarf Malzemeleri< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>27 G x 1/2 "iğneler</td><td>BD</td><td>305620</td><td></td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu</td><td>Corning</td><td>MT-35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin / streptomisin / L-glutamin</td><td>Corning</td><td>MT-30-009-CI</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin-EDTA (% 0.05)</td> <td>Corning</td><td>MT-25-052-CI</td><td>Ev yapımı</td></tr><tr><td>PBS</td> olabilir<td>Corning</td><td>MT-21-031-CV</td><td></td></tr><tr><td>10 cm tabaklar</td><td>Fisher</td><td>172931</td><td></td></tr><tr><td>15 ml konik tüpler</td><td>Fisher</td><td>12565268</td><td></td></tr><tr><td>60 mm tabaklar</td><td>Fisher</td><td>150288</td><td></td></tr><tr><td>Polybrene</td><td>Fisher</td><td>NC9840454</td><td></td></tr><tr><td>5-FU</td><td>Fisher</td><td>A13456-06</td><td></td></tr><tr><td>100 &# 181; m hücreli süzgeçler</td><td>Fisher</td><td>22363549</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik tüpler</td><td>Fisher</td><td>12565270</td><td></td></tr><tr><td>6 oyuklu plaka</td><td>Fisher</td><td>130184</td><td></td></tr><tr><td>FACS tüpleri</td><td>Fisher</td><td>14-959-5</td><td></td></tr><tr><td>0.45 & mu; m şırınga filtreleri</td><td>Fisher</td><td>0974061B</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Gibco</td><td>31985-070</td><td></td></tr><tr><td>ACK tamponu</td><td>Lonza</td><td>10-548E</td><td>Ev yapımı olabilir</td></tr><tr><td>Rekombinant murin IL-3</td><td>Peprotech</td><td>213-13</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant murin IL-6</td><td>Peprotech</td><td>216-16</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant murin SCF</td><td>Peprotech</td><td>250-03</td><td></td></tr><tr><td>X-tremeGENE 9</td><td>Roche</td><td>6365809001</td><td>Transfeksiyon reaktifi</td></tr><tr><td>1.5 ml santrifüj tüpleri</td><td>USA Scientific</td><td>1615-5500</td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Ekipman</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD Accuri C6</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>X-ışını ışınlayıcı</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

myeloproliferatif tümörün İletimi-transplantasyon fare modeli

Transduction-Transplantation Mouse Model of Myeloproliferative Neoplasm

Transdüksiyon-transplantasyon, farelerde insan hematolojik malignitelerini modellemenin hızlı ve etkili bir yoludur. Bu teknik, hematopoetik hücrelerde ilgilenilen genin ekspresyonu ile sonuçlanır ve genin normal ve/veya malign hematopoezdeki rolünü incelemek için kullanılabilir. Bu protokol, örnek olarak miyeloproliferatif neoplazmda (MPN) yakın zamanda tanımlanan kalretikülin (CALR) mutasyonları kullanılarak transdüksiyon transplantasyonunun nasıl yapılacağı hakkında ayrıntılı bir açıklama sağlar. Bu protokolde, 5-flurourasil (5-FU) ile tedavi edilen donör farelerden alınan tüm kemik iliği hücreleri, mutant CALR kodlayan bir retrovirüs ile transdüksiyona tabi tutulur ve ölümcül şekilde ışınlanmış sinjeneik konakçılara nakledilir. Mutant CALR eksprese eden donör hücreler yeşil floresan proteini (GFP) ile işaretlenir. Nakledilen fareler, periferik kanda yüksek trombositler, kemik iliğinde megakaryositlerin genişlemesi ve kemik iliği fibrozu dahil olmak üzere bir MPN fenotipi geliştirir. Retrovirüsün nasıl üretileceğine, viral titrenin nasıl hesaplanacağına, tüm kemik iliği hücrelerinin nasıl dönüştürüleceğine ve ışınlanmış alıcı farelere nasıl nakledileceğine dair adım adım bir açıklama sunuyoruz.

transdüksiyon Nakil tekniği hücreler, ilgilenilen geni eksprese eden alıcı farelerin hematopoietik sulandırma ile sonuçlanır. Şekil 1 MPN mutasyona uğramış kalretikulin transdüksiyon-transplantasyon fare modelinin bir özetini göstermektedir. Kısaca, CALRwt ya CALRdel52 eksprese retrovirüs bir C57B / 6 verici fare BM hücrelerini enfekte etmek için kullanılır. Transduced hücreler ilk ay sonrası nakli sırasında meydana ışınlanmış C57B / 6 alıcı fare ve donör hücre engraftme...

Bu el yazması, transdüksiyon-transplantasyon fare modelleri oluşturmak için kullanılan metodolojinin bir tanımını sağlar. Kemik iliği nakli yapılırken kaçınılması gereken teknik hataların ayrıntılı bir açıklaması yapılır. Yüksek viral titre, transfeksiyon / transdüksiyon ve ışınlamanın önemi hakkında net bir anlayış kazanılmalıdır.

Myeloproliferatif tümörün İletimi-Transplantasyon Fare Modeli

Transduction-transplantation is a quick and efficient way to model human hematologic malignancies in mice. This technique results in expression of the ...

Bu prosedürün genel amacı, transdüksiyon-transplantasyon yöntemini kullanarak hematopoetik hücrelerde ilgilenilen genin eksprese edildiği fareler üretmektir. Bu yöntem, kısa bir süre içinde ilgilenilen geninizin hematolojik bir maligniteye yol açıp açmadığı sorusuna cevap vermeye yardımcı olabilir. Potansiyel terapötiklerin test edilebileceği fare modellerinin hızlandırılmış geliştirilmesi sayesinde, bu tekniğin etkileri hematolojik malignitelerin tedavisine veya teşhisine kadar uzanmaktadır.Bu yöntem hematolojik maligniteler hakkında bilgi sağlayabilmesinin yanı sıra, normal hematopoezde ilgilenilen bir genin rolünü incelemek için de kullanılabilir. Genel olarak, bu deneyde yeni olan kişiler, çok sayıda adım gerektirdiği için zorluk yaşayabilirler. Ayrıca, yüksek titreli bir virüs üretimi, bu deneyin başarısı için kritik öneme sahiptir.Farelerle çalışmak zor olabildiği ve pratik gerektirdiği için bu prosedürün görsel gösterimi önemlidir. Bir fareyi anestezi altına aldıktan ve metin protokolüne göre anestezinin derinliğini kontrol ettikten sonra, fareyi yan tarafına doğru konumlandırın ve başparmak ile işaret parmağınızı kullanarak, göz baş kısmından hafifçe çıkacak şekilde hayvanı sabitleyin. Retro-orbital enjeksiyon yoluyla kilogram başına 150 miligram 5-flurouracil veya 5-FU enjekte etmek için, 27-gauge yarım inçlik bir iğneyi 45 derecelik bir açıyla, eğik ucu yukarı bakacak şekilde medial yönde yerleştirin ve iğne yarıya kadar girdiğinde durun.Çözeltiyi yavaşça enjekte edin ve ardından iğneyi dikkatlice çıkarın. Fareyi şişme veya kanama gibi herhangi bir yaralanma belirtisi açısından inceleyin ve farenin kendisini toparlayıp yürümeye başladığından emin olun. Beş gün sonra, hayvanı metin protokolüne uygun olarak sakrifiye ettikten sonra, kürk ıslanana kadar bolca püskürterek %70 ethanol ile sterilize edin.Diseksiyon makasıyla deride bir kesi yapın ve fasyayı bacak kaslarından ayırın. Ardından, femur kemiğini kalçadan ve tibia kemiğini ayak bileğinden keserek bacağı fareden ayırın. Bacağı L şekline getirin ve diz ekleminden keserek her bir bacak kemiğini disseksiyon makasıyla birbirinden ayırın.Ardından, kıkırdak ayrılana kadar kası bacak kemiğinin bir ucuna doğru nazikçe kazıyın. Daha sonra, %2 FBS ile desteklenmiş PBS içerisinde, hasat edilen hücre sayısını maksimize etmek için kemik beyazlaşana kadar, 27 gauge yarım inç iğneli bir şırınga kullanarak her bir bacak kemiğini 100 mikrometrelik bir naylon membran üzerinden 50 mililitrelik konik bir tüpe yıkayın. Tek hücre süspansiyonu elde etmek için hücreleri şırınga pistonuyla naylon membran üzerinden 50 mililitrelik konik tüpün içine itin.Diğer fare bacağı ile işlemi tekrarlayın. Toplanan hücreleri 4 °C'de 10 dakika boyunca 400 ×g'de santrifüj edin ve süpernatantı atın. Ardından, kemik iliğini yeniden süspansiyon haline getirmek için 5 mL amonyum klorür potasyum veya ACK ekleyin.Kırmızı kan hücrelerini liz etmek için hücre süspansiyonunu buz üzerinde 10 dakika inkübe edin. Liz işlemini durdurmak için tüpü PBS ile doldurun. Ardından, hücreleri tekrar santrifüjleyin ve süpernatantı uzaklaştırın.Hücreleri 5 mL PBS ile yeniden süspande edin ve Trypan blue dışlama yöntemiyle, bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Ardından, hücreleri mL başına 2x10⁶ olacak şekilde yeniden süspande etmek için 2x pre-stem kokteyli ekleyin. Daha sonra, altı kuyucuklu plakaların kuyucuklarına 2 mL ekleyin.Hücreleri 37 °C ve %5 karbondioksit ortamında gece boyunca inkübe edin. İnkübasyonun ardından, her kuyucuğa iki mililitre viral süpernatan ve ardından mililitre başına sekiz mikrogram polybrene ekleyin. Plakaları 30 °C'de 1500 ×g hızında 90 dakika boyunca santrifüjleyin.Ardından plakaları gece boyunca inkübatöre geri yerleştirin. Hücre süspansiyonunu konik tüplere pipetleyin ve 4 °C'de 10 dakika boyunca 400 ×g'de santrifüjleyin. Hücreleri yeniden süspandirmek için kuyuk başına 2x pre-stem kokteyli kullanın ve hücreleri orijinal kuyucuklara yeniden ekin.Metin protokolüne göre alıcı fareler transplantasyona hazırlandıktan sonra, süpernatantı konik tüplere nazikçe pipetleyerek altı kuyucuklu plakalardan transduce edilmiş donör hücreleri hasat edin. Her kuyucuğu yıkamak için 1 mL PBS kullanın ve kalan hücreleri tüplerde toplayın. Kuyucuklara 0,5 mL %0,05 tripsin ekleyin ve 37 °C'de beş dakika boyunca inkübe edin.Ardından, kuyucuklara bir mililitre D-10 ekleyin ve kalan hücreleri nazikçe pipetleyerek ayırın. Sonra, hücreleri ilgili tüplere aktarın ve 4 °C'de 400 ×g'de 10 dakika santrifüj ederek çöktürün. Hücreleri PBS ile tekrar yıkayın.Ardından, santrifüj işleminden sonra, hücreleri yeniden süspansiyon haline getirmek için beş mililitre PBS kullanın ve Trypan mavi dışlama yöntemi ve bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Farelere enjeksiyon için, 5 × 10⁵ ile 2 × 10⁶ arası hücreyi 50 ila 100 µL PBS içinde yeniden süspansiyon haline getirin. Fareyi yan tarafına gelecek şekilde konumlandırın ve göz baş kısmından hafifçe çıkıntı yapacak şekilde başparmak ve işaret parmağınızla sabitleyin.Bevel kısmı yukarı bakacak şekilde, iğneyi medial kantusun yan tarafına 45 derecelik bir açıyla yerleştirin ve enjeksiyonu gerçekleştirin. Enjeksiyondan sonra, fareyi enjeksiyon bölgesinde şişlik veya kanama gibi herhangi bir yaralanma belirtisi açısından inceleyin ve enjeksiyon sonrası ek bakım için metin protokolüne başvurun. Son olarak, metin protokolüne uygun olarak kandaki GFP ekspresyonunu analiz edin.Bu şekil, GFP yüzdesinin canlı hücre kapısından toplanan olaylardan hesaplandığı durumlarda göreli viral titrenin nasıl hesaplanacağını göstermektedir. Burada, hücre başına birden fazla viral partikül içeren bir titre gösterilmekte olup, bu örnekler hücre başına tek viral partikül içeren titreleri temsil etmektedir. İdeal olarak, viral süpernatantın 1/30 seyreltmesinde GFP-pozitif hücrelerin en az %50'si tespit edilmelidir.Bu deneyde, CALRdel52 farelerinin artmış trombositler, kemik iliğinde artmış megakaryositler ve kemik iliği fibrozisi ile seyreden bir MPN fenotipi sergilediği başarılı bir transplant alıcısı sunulmaktadır. Bu teknik uzmanlaşıldığında, uygun şekilde uygulandığı takdirde sekiz gün içinde tamamlanabilir. Bu prosedür uygulanırken, protokolün her adımının takip edilmesi önemlidir.Bu teknik geliştirildikten sonra, araştırmacıların hematopoezdeki spesifik genlerin etkilerini incelemelerinin önünü açmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, hematopoetik hücrelerde ilgilendiğiniz geni eksprese eden farelerin nasıl üretileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

transduction-transplantation-mouse-model-myeloproliferative

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kanser Araştırmaları

Bu video, allojenik hematopoietik kök hücreler ve GvHD'yi indükleyen splenik alloreaktif T lenfositleri kullanılarak letoral ışınlanmış bir alıcı farede bağırsak greftine karşı konak hastalığının (GvHD) indüksiyonunu göstermektedir. Bu protokol, hastalığın mekanizmasını anlamak ve yenilikçi terapötik seçenekler geliştirmek için ciddi bir akut intestinal GvHD modeli oluşturmaya yardımcı olur.

Allojenik Kemik İliği ve Splenik Hücre Nakli ile Fare Modellerinde Graft Versus Host Hastalığının İndüksiyonu

Tek bir T hücre reseptörü (TCR) retroviral tabanlı in vivo ekspresyon sistemi için hızlı ve esnek bir protokol sunuyoruz.  Retroviral vektörler, TCR transgenik farelere alternatif olarak in vivo olarak tek bir TCR'nin T hücresi gelişimini ve işlevini incelemek için kemik iliği progenitör hücrelerini dönüştürmek için kullanılır.

Kemik iliği projenitör hücrelerinin retroviral İletimi T-hücre reseptör Retrogenic fareler üretmek için

Burada kollarındaki kullandığımız, x-ışını nasıl inhibe mTOR etkinlik çalışmaya ve pozitron emisyon tomografi/bilgisayarlı tomografi Imaging etkileri myeloma kemik iliği engrafted tümörler bir xenograft modeli. Bu myeloma kemik iliği engrafted tümör vivo içindehedefleme terapiler Anti-miyelom etkisini fizyolojik ilgili, non-invaziv ve multimodal analizleri için sağlar.

Multipl Miyelom kemik iliği Xenografts NOG farelerde Multimodal kollarındaki ve pozitronik emisyon tomografi/Hesaplamalı tomografi görüntüleme

Hematopoetik kök hücre transplantasyonu (HKHT) genetiği hematopoetik hücrelerin kötü huylu potansiyelini değerlendirmek için nasıl kullanılacağını açıklar. HKHT çeşitli malign hematopoetik hücrelerin vivo içinde değerlendirmek için hem de Roman terapiler değerlendirmek için büyük bir kohort myelodisplastik sendrom (MDS) veya lösemi ile farelerin üreten yararlıdır.

Hematopoetik kök hücre transplantasyonu myelodisplastik sendromu kökeni değerlendirmek için kullanımı

Greft-versus-host hastalığı allojenik kemik iliği transplantasyonu sonrası önemli bir komplikasyondur. Dendritik hücreler greft-versus-host hastalığının patogenezinde kritik bir rol oynarlar. Bu makalede, dendritik hücrelerin greft-versus-host hastalığı nın gelişimindeki rolünü ve greft-versus-lösemi etkisinin araştırılması için yeni bir kemik iliği transplantasyon platformu açıklanmaktadır.

Kemik İliği Transplantasyon Platformu Greft-versus-Host Hastalığında Dendritik Hücrelerin Rolünü Araştırmak Için

Fare beyninde lusiferaz-yeşil floresan proteini (GFP) eksprese eden ikili muhabir bir vektör ile transdüke edilen insan nöral progenitör hücrelerinin intraparankimal transplantasyonunu tanımladık. Transplantasyondan sonra, lusiferaz sinyali, floresan mikroskobu kullanılarak beyin bölümlerinde tanımlanan in vivo biyolüminesans ve GFP eksprese eden aşılanmış hücreler kullanılarak tekrar tekrar ölçülür.

İntraserebral Transplantasyon ve Fare Beynindeki İnsan Nöral Progenitör Hücrelerinin İnVivo Biyolüminesans İzlenmesi

Bu protokol, çift negatif timositlerin fare timumundan izolasyonunu, ardından daha fazla fonksiyonel analiz için delta benzeri 4 eksprese eden kemik iliği stromal hücre hattı ko-kültür sisteminde (OP9-DL4) retroviral transdüksiyon ve ko-kültürü tanımlar.

T Hücreli Lösemide Onkogenleri İncelemek için Delta Benzeri 4 Eksprese Eden Stromal Hücreler Üzerinde Murin Timositlerinin Ko-Kültürü ve Transdüksiyonu

Burada, farelerde akut miyeloid lösemiyi (AML) oluşturmak ve yaymak için lösemi hücrelerinin intra-peritoneal enjeksiyonu kullanılır. Bu yeni yöntem, AML hücrelerinin seri transplantasyonunda etkilidir ve farelerde intravenöz enjeksiyon ile zorluk ve tutarsızlık yaşayabilecek kişiler için bir alternatif olarak hizmet edebilir.

Farelerde akut miyeloid lösemi üretmek için intra-peritoneal transplantasyon

Mevcut protokol, tümör hücrelerinin intervertebral boşluğa enjekte edilmesiyle tekrarlanabilir bir murin spinal kord gliomu modelinin geliştirilmesini tanımlamakta ve araştırma ve terapötik geliştirme için daha etkili ve daha az invaziv bir yaklaşım sunmaktadır.

Tümör Hücrelerinin Farelerin Omuriliğine Cerrahi Nakli

Protokol, indüksiyon kemoterapisine yanıtın dinamiklerine dayalı olarak akut lenfoblastik löseminin nüksetmesine neden olan bir fare modelini tanımlamayı amaçlamaktadır.

Akut Lenfoblastik Lösemi için İndüksiyon Kemoterapisine Nüks Löseminin Murin Modeli

Keşfedin, transdüksiyon-transplantasyon yöntemiyle farelerde hematopoietik hücrelerde gen ifadesi oluşturmayı. Bu teknik, hematolojik maligniteleri ve normal hematopoiezi incelemek için hızlı model geliştirmeyi sağlar.

Myeloproliferatif tümörün İletimi-Transplantasyon Fare Modeli

Daha fazla video keşfet