Name: Baş ve Boyun Skuamöz Hücre Karsinomu içinde perinöral invazyon İçin Bir Model (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 59 s
Description: Öğrenin baş ve boyun skuamöz hücre karsinomunda perinöral invazyonu değerlendirmek için fare dorsal kök gangliyon diseksiyonu yöntemini. Bu teknik yüksek başarı oranı ve tekrarlanabilirlik sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, R21 hibesi, "Baş ve Boyun Kanserinde Perinöral İnvazyon Mekanizmaları" ve NCI T32 eğitim hibesi, "Baş ve Boyun Onkolojisinde Doktora Sonrası Araştırma Eğitimi (2T32CA060397-21)" aracılığıyla NIH'den sağlanan finansmanla tamamen desteklenmiştir. Richard Steiman, MD, PhD ve laboratuvar personeline teşekkür ederiz.

1. Kültür Orta hazırlanması ve Yemekleri (10 dk) <ol><li> 100 uL, 96 oyuklu V-tabanlı plaka oyuklarına,% 10 fetal sığır serumu (FBS) içeren Dulbecco Modifiye Eagle ortamı (DMEM) ilave edin. </li><li> 20 ° C dondurucu yarı katı matris yaklaşık 100 uL önceden bölünüp-vial kaldırma ve buz üzerine yerleştirin. NOT: Yarı katı matris sonraki adımlar için gerekli olan buz, sıvı duruma ulaşması için yaklaşık 30 dakika sürer, çünkü bu önceden dorsal kök ganglion (DRG) hasat yapın. her zaman buz üzerinde yan katı matris tutmak için başarısızlık bir düşük kaliteli matris damlacık neden olur. </li><li> Etiket cam alt kalıcı mürekkep ile kültürler plakalar, plaka alt yüzeyinde dört bir köşesinden her benzersiz tanımlayıcılar oluşturma. plaka yüzeyini soğutmak için buz üzerinde plakaları sağ tarafını yukarı yerleştirin. NOT: Her fare verimleri 32-40 DRG, so-soğuk ön pi gerekli değildir 40&#39;a 1&#39;den etiketlemeksoğutulmuş ipuçları potansiyel matris damlacıklarının yerleştirerek matris tutarlılık farklılıkları tanıtan gidişatını üzerinde sıcak olacak gibi ipuçları pet. </li></ol> Fare DRG 2. Diseksiyon (45 dk) <ol><li> Böyle bir CO2 odası ve bir torakotomi aracılığıyla belirli laboratuar protokoller uyarınca bir atimik çıplak fare öldürülür. </li><li> Diseksiyon alanı ve mikroskop ayarlayın. 15- veya 50-ml konik borular polistiren kapları steril, temiz ve düz alt kullanın. Not: Buna ek olarak, bunlar tek ve ucuz olarak, kesme yüzeyi olarak kullanım için uygun olan ve iğne veya iğne kullanılarak omurga tespiti için verir. Sadece sterilize aletler ve iğneler kullanın. </li><li> Doğal vizyon altında, düz ya da eğri ince bir makasla ile fare başkanı kuyruk kökünden omurga boyunca uzunlamasına bir kesi yapmak. </li><li> SACR altında enine bölünmeden aynı makas kullanınal omurga. tüm yol makas kullanarak kafa tabanına kadar omurganın her iki tarafını teşrih. Bu noktada, servikal vertebra makas ile mümkün olduğunca cranially kadarıyla transeksiyon olduğundan emin olun. </li><li> düşük güçte çalışma mikroskop altında omurganın servikal ucunu gözlemleyin. beyaz omurilik paraspinal kaslar ve yumuşak doku değişken miktarlarda çevrili bir kemikli halka ortasında açıktır. </li><li> mikroskobik yaylı makas ile 3 vertebra gövdeleri - ilk 2 dorsal veya üstün yönü bölün. makas yay eylemini kullanarak, vertebral gövde diseksiyon orta hatta meydana sağlamak için kesilen bu ilk kemikli açın. sakral omurganın doğru küçük artışlarla devam edin ve sonra omurların ventral ya da alt yönü üzerinde aynı kesim tamamlayarak omurga bisect. NOT: Daha düşük TİG verimi neden olacaktır kemikli omurganın orta hat diseksiyonu sağlamak için başarısızlık. </li><li> at this noktası, omurga iki yarıya ayrılmıştır. yerinde ve steril bir plaka üzerinde aşağı bakacak omurilik ile, bir kenara bir hemi-omurga yerleştirin. NOT: yerinde omurilik bırakmak DRG omuriliğe derin olarak, kurumasını DRG&#39;ler önleyecektir. </li><li> polistiren diseksiyon platform üzerinde iki adet 18-gauge iğne ile diğer hemi-omurganın her iki ucunu sabitleyin. Servikal sonunda başlayarak yavaşça yaklaşık 4 vertebra seviyelerinden omurilik geri soyma, (omurga dar olduğu için açıktır, DRG birbirine yakın olan ve kaburga ekleme vardır). </li><li> DRG bağlayan duyu sinirleri (genellikle iki) dikkat edin. sinirler DRG için eklemek alanda, nazikçe mikroskobik forseps ile çevreleyen fasya kavramak. Incelemek ve DRG boşaltmak için mikroskopik yaylı makas ile bu fasya ve diğer sinir dokusunu kırpın. Nazik geri çekme kemik omurga içindeki konumunun dışına DRG getirecektir. NOT: ArtanBu aşamada mikroskop gücü faydalıdır. önemli ölçüde neurites büyümesini sınırlayacaktır DRG için ezilme yaralanması. Bu asla doğrudan DRG tutarak kaçınılmalıdır değil, çevredeki fasya tutarak edilir. </li><li> Periferik sinir DRG serbest bırakmak için mikroskopik yaylı makas ile (DRG genellikle diseksiyon görünümüne derin göreceli bir çevresel sinir, vardır) kesin. NOT: sinir uçları ve DRG yüzden bu noktada DRG mümkün olduğunca yakın bu kesim yaparak, gerginlik sırasında başlayan idealdir olduğu tespit etmek kolay değildir. Bu uzak şube kesilir sonra, proksimal dallar da kesilmiş. </li><li> mikroskobik yaylı makas ile herhangi bir sokak sinir lifleri veya fasiyal ekleri DRG Trim. Yeterli izole edildikten sonra, 96-gözlü V-dipli levhanın içinde oda sıcaklık ortamına DRG yerleştirin. NOT: levha beyaz DRG kolay alt mm görselleştirme yapar altında karanlık bir arka plan yerleştirilmesi. Sadece EAC bir DRG yerh iyi; Bu şekilde, daha kolay daha sonraki adımlarda açıklanabilir. </li><li> bir hemi-omurga ve daha sonra diğer aşağı Bu işlemi tüm yol tekrarlayın. 40 - 32 toplam 20 DRG&#39;ler, - Her iki taraf 16 verir. Not: Bu daha az DRG&#39;ler varsa, omurga diseksiyon sefalad ve / veya kaudal gerçekleştirilebilir gerekmektedir. DRG bir kaudal ilerledikçe giderek daha az iyi tanımlanmış olur. </li></ol> Yarı Katı Matris Damlacıkların 3. Hazırlama (&lt;plaka başına 1 dakika) <ol><li> buz bir bardak iyi alt plakasını çıkarın ve ameliyat mikroskobu altında bir buz bloğu üzerine yerleştirin. Emin matris kısım her zaman buz üzerinde kalır emin olun. </li><li> de camın kenarından damlacık kendisi en az büyük bir mesafe bırakarak, bir 2-uL ya da 10-uL Mikropipet cam-alt plaka dört köşesinin her birinde matrisin 1.5 uL damlacık yerleştirin. <ol><li> doğrudan üzerine pipet ucu yerleştirin45 derecelik bir açıyla cam. Yavaşça matrisi pipetlemeyin. matris plaka üzerinde devreye girer sonra yavaş yavaş cam alt uzaklaşın. NOT: matris ve cam arasındaki yüzey gerilimi mükemmel bir hemisfer her zaman oluşturmanız gerekir. </li><li> matris damlacık içine istenmeyen hava enjeksiyon matrisi damlacık çok daha büyük çapı yapar ve kaldırmak zor, çünkü ucu, boş hemen önce pipetleme durdurun. NOT: pipetleme el stabilize etmek için bir ikinci el kullanarak daha doğru yerleştirilmesini kolaylaştırır. </li></ol></li></ol> Yarı sert Matrix damlacıklar halinde DRG 4. Yerleştirme (&lt;plaka başına 2 dk) <ol><li> kısaca oda sıcaklığında (~ 1 dk) matris damlacıkları ile plaka bırakın. Bu biraz DRG kesin yerleştirilmesi için daha kolay hale matris sertleştiği. </li><li> Scoop (kavramak değil) DRG yavaşça sol elinde kapalı mikroskobik forseps ile. Yine, küçük karşı koyu bir arka plan, beyazDRG görüntülenmesini kolaylaştırır. sağ elinde bir 21-gauge iğne ucuna DRG aktarın. Bu transfer forseps üzerinde kalan medyayı bırakacaktır. </li><li> Yavaşça 21 gauge iğne (Şekil 1) kullanılarak matris damlacığının ortasına DRG yerleştirin. Çoğu zaman, DRG kolayca matrise yayınlayacak ve iğne ile merkezi olarak yerleştirilmiş olabilir. <ol><li> DRG iğne sopa varsa, iğne kapalı ve matris damlacık içine DRG itmek için mikroskobik forseps kullanabilir. Bir laboratuvar ile mikroskobik forseps Wick uzak aşırı medya silin. NOT: matrise medyayı Tanıtımı tahlil çapı, hacmi ve tutarlılık değiştirecektir. renk veya renkli yazı ile bir buz bloğu bu hassas sürecin görselleştirme kolaylaştırır arka plan kontrast sağlar. </li></ol></li><li> Plaka dört DRG&#39;ler sahip sonra, DRG matris damlacık merkezinde olduğundan emin olmak için son bir kontrol yapın. ayarlamalar yapın21-guage iğne ile gerektiği gibi. </li><li> 37 ° C inkübatör tamamlanmış plaka aktarın. Bu yarı katı matris kuvvetlendirmek ve konumda DRG çözecektir. </li><li> DRG&#39;ler tümü için bu işlemi tekrarlayın. Negatif kontrol olarak bir DRG olmadan boş matriks damlacıkları yerleştirin. </li><li> Tüm levhalar tamamlayan ve en az 3 dakika süreyle 37 ° C inkübatör maruz bırakılmasından sonra, her cam alt plakaya% 10 FBS ortamı ile DMEM 4 ml. hafif bir açıyla plaka koyun ve yavaş yavaş yavaş yavaş matris DRG birimleri ile temas şekilde, orta ekleyin. NOT: orta, çok hızlı ya da güçlü bir şekilde matrisi ve / veya DRG eklenirse yerinden olabilir. </li><li> - 72 saat sonraki 48 ve 37 ° C inkübatör tahlilleri saklayın. NOT: testlerin periyodik muayene matrisi kenarı (Şekil 2) doğru neurites çevresel akıbet gösterecektir. neurites matrise yol dörtte üçü daha büyük olduğunda, onuhücreler plaka uygundur. </li></ol> Baş ve Boyun Kanserleri Hücrelerinin 5. Hazırlık Not: baş ve boyun yassı hücreli karsinom hücreleri dışındaki hücre hatları, bu deney tasarımında kullanılabilir. <ol><li> 37 ° C kuluçka makinesi içinde tercih edilen şişeler veya kültür tabaklarında,% 10 FBS DMEM skuamöz hücreli karsinoma hücre çizgileri koruyun. tüm orta kültürü şişesi veya çanak deney, emme hücreleri hazırlamak ve PBS ile iki kez yıkayın. % 10 FBS DMEM, ardından 5 dakika için% 0.025 tripsin, uygun bir miktarda eklenerek hücrelerin süspansiyonu. 6 ml kültür tabaklarında içine hücre ve ortam karışımı pipetle 4 mi. NOT: 6-ml kültür plakası fazlasıyla hücreler de sağlar, hatta en az% 50 konfluent. </li><li> boyama ve DRG deneyi üzerinde kaplama 24 saat önce farklı koşullara HNSCC hücre hatları Açığa. Yeniden doz hücre tutarlı environme korumak için kaplama bir kez durumnt. Not: Hücre kültür tabaklarına 1 antikorları, büyüme faktörleri, sitokinler, ya da diğer moleküllerin ekleyin - Fare diseksiyon ve matrise DRG yerleştirilmesinden 2 gün. </li><li> (- 3 gün matris içine DRG hasat ve implantasyon sonrası 2) hücreleri kaplama önce floresan hücre lekeleri 1 saat ekleyin. NOT: hücre zarından serbestçe geçmesine burada kullanılan özel lekeler; Bununla birlikte, hücre içi tiol grupları ile reaksiyona sokularak, leke hücre içinde kalır ve yavru hücrelere de geçirilir. boyama büyük deneylerde görüntülenmesini kolaylaştırır. Bu deneylerin zaman aralığı 3 gün, - floresans 2 mevcut olduğu için, bu, geçici lekeler Bu tahliller için idealdir. Aynı zamanda, pek çok farklı renk kullanımına izin verir ve floresan protein transfekte hücre çizgileri oluşturmak için ihtiyacı ortadan kaldırmaktadır. <ol><li> serumsuz DMEM 2 mL 2 uL 10 mM stok, hücre lekeleri karıştırılarak boya çözeltisi 10 um hazırlanmasıHer hücre durumu için. hücrelere eklenmeden önce 37 ° C&#39;ye kadar, bu ısıtın. </li><li> plaka üzerinde yapışık HNSCC hücreleri bırakarak, 6 mL plaka içinde kültür ortamı çıkarın. 10 uM hücresi leke / serumsuz DMEM mL fosfat tamponlu tuz (PBS) 2 ml ilave edilir ve 2 çıkarın her bir plakaya ilave </li><li> 40 dakika için 37 ° C inkübatör hücre leke ile 6 ml kültür plakası döner. </li><li> 40 dakika sonra, ortam aspire. 2 mL PBS ekleyin ve sonra aspire. Her bir plaka için% 0.025 tripsin 1 ml ilave edilir ve 37 ° C inkübatör değiştirin. </li><li> 3 sonra% 10 FBS ile DMEM 2 mL ekleyin - 5 dakika ve 15 ml konik tüp askıya hücreleri aktarın. hücreleri Spin ve% 10 FBS DMEM 1 mL bunları yeniden askıya alınmıştır. </li><li> Bir hemasitometre veya otomatik hücre sayacı ile hücre sayımı ve ml başına 300.000 hücre nihai hücre konsantrasyonu oluşturmak için,% 10 FBS bulunan DMEM ekleyin. </li></ol></li></ol> 6. Kaplama Başkanı ve Neck Kanser Hücreleri <ol><li> inkübatör matris-DRG deneyleri ile cam alt plakaları sökün. Not: - 3 gün, nevritlerin genellikle 2 sonra ortaya çıkan matris, kenarına bir şekilde en az% 75 olduğu zaman yine, uygun bulunmaktadır. Bu en iyi, en azından bir 10X objektif kullanılarak görülüyor. </li><li> Cam alt plaka içinde ortamı aspire. Tamamen iyi matris-DRG üniteleri çıkarmadan camın içinde orta aspire. </li><li> 200 mcL pipet kullanarak 300.000 hücre / mL ortamı 200 uL hazırlayın. Her matris-DRG tahlil üzerinde hücrelerin iki damla yerleştirin. bir plaka üzerinde her hücre durumunun dört tekrarlar oluşturarak her matris damlacık için bu adımı gerçekleştirin. Not: matris Şekillerde yanm-küresel hücrelerin deneyi (Şekil 3a, Şekil 3b) çevresi boyunca halka yerleşmeye izin verir. pürüzsüz tetikleyici ile bir pipet bulma üniforma yerleştirme çok daha kolay düşer hale getirir. </li><li> Benzer hücre sayıları ve di onaylamak4X mikroskopta çeşitli hücre koşullarının PAZARLAMA. </li><li> Yaklaşık 60 dakika boyunca 37 ° C inkübatör içine cam alt tabak yerleştirin. Not: hücreler ve ortam (~ 150 mL) arasında sadece küçük bir hacim olsa da kuluçka süresi birkaç saat geçtikten kadar deneyler kuru değildir. </li><li> 60 dakika sonra, yumuşak cam alt plakanın yan duvar boyunca,% 10 FBS DMEM 4 ml. Not: bir süre içinde, hücreler, kısmen levha alt ve hücrelerin rahatsız etmez ortam ilave yöntemine uygun. Farklı hücre tipleri cam alt plakaya bağlı başlaması fazla veya daha az bir zaman alır olun. </li><li> Bir önceki konsantrasyon seviyesini korumak için şu anda herhangi bir eksojen ilaçlar veya büyüme faktörleri değiştirin. </li><li> onlar mikroskopik olarak incelenir dışında, 37 ° C inkübatör deneyleri dönün. mikroskopik görüntüleme ile bu tayinin sonuçları ölçmek. Kısaca, ile perinöral invazyon ipliklerini saymakdört çeyrek daireye 4X mikroskobik görüntü kullanılarak. NOT: 4X objektif ve floresan yetenekleri ile bir mikroskop fotoğrafı-belgeleyen deneyleri için yeterlidir. tahlillerin boyutu perinöral invazyon bireysel alanlarda yakalamak için yeterince detaylı bir 4X objektif, alanında güzel uyuyor. Perinöral invazyon 24 saat içinde belirgin hale gelir, ancak 48 saat ötesinde, tahlillerin bütünlüğü tümör hücreleri matris çevresi boyunca bölmek ve işgal gibi zayıflatmak başlar. 48 saat ötesinde, aynı zamanda aydınlık mikroskopi kullanılarak görselleştirme gizler DRG gelen fibroblast önemli efflux vardır. Bu nedenle, bu pencerede sırasında en az iki kez fotoğraf belge 4X mikroskobu ile sonuçları tavsiye edilir (örneğin, tümör hücreleri kaplama sonra 24 ve 48 saatte). Bu 3 boyutlu analizler, ve tamamen görüntü tüm tahlil zor olduğunu dikkatli olun. Çoğu perinöral invazyon plakanın alt t bir düzlemde gerçekleşiro hücreler hafifçe plakanın alt yukarıdaki matriks içinde gömülürler. Bu düzlem, yatay yakın olduğu için, tümör hücreleri ile neurites büyük çoğunluğu 4X tek bir düzey görüntü yakalanır. </li></ol>

<ol><li>Jemal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%2C+2006%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics, 2006.</a> CA Cancer J Clin. 56 (2), 106-130 (2006).</li>
<li>Hinerman, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postoperative+irradiation+for+squamous+cell+carcinoma+of+the+oral+cavity%3A+35-year+experience%5BTitle%5D)+AND+%22Head+Neck%22%5BJournal%5D)">Postoperative irradiation for squamous cell carcinoma of the oral cavity: 35-year experience.</a> Head Neck. 26 (11), 984-994 (2004).</li>
<li>Rahima, B., Shingaki, S., Nagata, M., Saito, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prognostic+significance+of+perineural+invasion+in+oral+and+oropharyngeal+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Surg+Oral+Med+Oral+Pathol+Oral+Radiol+Endod%22%5BJournal%5D)">Prognostic significance of perineural invasion in oral and oropharyngeal carcinoma.</a> Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 97 (4), 423-431 (2004).</li>
<li>Woolgar, J. A., Scott, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prediction+of+cervical+lymph+node+metastasis+in+squamous+cell+carcinoma+of+the+tongue%2Ffloor+of+mouth%5BTitle%5D)+AND+%22Head+Neck%22%5BJournal%5D)">Prediction of cervical lymph node metastasis in squamous cell carcinoma of the tongue/floor of mouth.</a> Head Neck. 17 (6), 463-472 (1995).</li>
<li>Tai, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+for+T1-2+oral+squamous+cell+carcinoma+with+or+without+perineural+invasion%3A+neck+dissection+and+postoperative+adjuvant+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg+Oncol%22%5BJournal%5D)">Treatment for T1-2 oral squamous cell carcinoma with or without perineural invasion: neck dissection and postoperative adjuvant therapy.</a> Ann Surg Oncol. 19 (6), 1995-2002 (2012).</li>
<li>George, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nosocomial+sinusitis+in+patients+in+the+medical+intensive+care+unit%3A+a+prospective+epidemiological+study%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Nosocomial sinusitis in patients in the medical intensive care unit: a prospective epidemiological study.</a> Clin Infect Dis. 27 (3), 463-470 (1998).</li>
<li>Fagan, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perineural+invasion+in+squamous+cell+carcinoma+of+the+head+and+neck%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Otolaryngol+Head+Neck+Surg%22%5BJournal%5D)">Perineural invasion in squamous cell carcinoma of the head and neck.</a> Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 124 (6), 637-640 (1998).</li>
<li>Soo, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prognostic+implications+of+perineural+spread+in+squamous+carcinomas+of+the+head+and+neck%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Prognostic implications of perineural spread in squamous carcinomas of the head and neck.</a> Laryngoscope. 96 (10), 1145-1148 (1986).</li>
<li>Parsons, J. T., Mendenhall, W. M., Stringer, S. P., Cassisi, N. J., Million, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+analysis+of+factors+influencing+the+outcome+of+postoperative+irradiation+for+squamous+cell+carcinoma+of+the+oral+cavity%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Radiat+Oncol+Biol+Phys%22%5BJournal%5D)">An analysis of factors influencing the outcome of postoperative irradiation for squamous cell carcinoma of the oral cavity.</a> Int J Radiat Oncol Biol Phys. 39 (1), 137-148 (1997).</li>
<li>Liao, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+adjuvant+radiation+therapy+improve+outcomes+in+pT1-3N0+oral+cavity+cancer+with+tumor-free+margins+and+perineural+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Radiat+Oncol+Biol+Phys%22%5BJournal%5D)">Does adjuvant radiation therapy improve outcomes in pT1-3N0 oral cavity cancer with tumor-free margins and perineural invasion.</a> Int J Radiat Oncol Biol Phys. 71 (2), 371-376 (2008).</li>
<li>Fan, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+results+of+postoperative+radiotherapy+on+squamous+cell+carcinoma+of+the+oral+cavity%3A+coexistence+of+multiple+minor+risk+factors+results+in+higher+recurrence+rates%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Radiat+Oncol+Biol+Phys%22%5BJournal%5D)">Treatment results of postoperative radiotherapy on squamous cell carcinoma of the oral cavity: coexistence of multiple minor risk factors results in higher recurrence rates.</a> Int J Radiat Oncol Biol Phys. 77 (4), 1024-1029 (2010).</li>
<li>Dai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+survival+in+perineural+invasion+of+pancreatic+cancer%3A+an+in+vitro+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Pathol%22%5BJournal%5D)">Enhanced survival in perineural invasion of pancreatic cancer: an in vitro approach.</a> Hum Pathol. 38 (2), 299-307 (2007).</li>
<li>Ceyhan, G. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+invasion+in+pancreatic+cancer%3A+a+mutual+tropism+between+neurons+and+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Neural invasion in pancreatic cancer: a mutual tropism between neurons and cancer cells.</a> Biochem Biophys Res Commun. 374 (3), 442-447 (2008).</li>
<li>Gil, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paracrine+regulation+of+pancreatic+cancer+cell+invasion+by+peripheral+nerves%5BTitle%5D)+AND+%22J+Natl+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Paracrine regulation of pancreatic cancer cell invasion by peripheral nerves.</a> J Natl Cancer Inst. 102 (2), 107-118 (2010).</li>
<li>He, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GFRalpha1+released+by+nerves+enhances+cancer+cell+perineural+invasion+through+GDNF-RET+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">GFRalpha1 released by nerves enhances cancer cell perineural invasion through GDNF-RET signaling.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (19), 2008-2017 (2014).</li>
<li>He, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chemokine+%28CCL2-CCR2%29+signaling+axis+mediates+perineural+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">The chemokine (CCL2-CCR2) signaling axis mediates perineural invasion.</a> Mol Cancer Res. 13 (2), 380-390 (2015).</li>
<li>Bakst, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiation+impairs+perineural+invasion+by+modulating+the+nerve+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Radiation impairs perineural invasion by modulating the nerve microenvironment.</a> PLoS One. 7 (6), 39925(2012).</li>
<li>Ayala, G. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+dorsal+root+ganglia+and+human+prostate+cell+line+interaction%3A+redefining+perineural+invasion+in+prostate+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Prostate%22%5BJournal%5D)">In vitro dorsal root ganglia and human prostate cell line interaction: redefining perineural invasion in prostate cancer.</a> Prostate. 49 (3), 213-223 (2001).</li>
<li>Na'ara, S., Gil, Z., Amit, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vitro+Modeling+of+Cancerous+Neural+Invasion%3A+The+Dorsal+Root+Ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion.</a> J Vis Exp. (110), (2016).</li>
</ol>

Yazarların birbiriyle rekabet eden hiçbir mali çıkarı yoktur.

Protokol çerçevesinde kritik adımlar Bu protokol kapsamında en önemli adımlar hassas diseksiyon ve dorsal kök gangliyon çıkarma vardır. İki hemi-dikenler içine omurga ve orta hat-boyuna bölünme uygun transseksiyon DRG çok sayıda elde etmek önemlidir. Bireysel TİG&#39;lerin diseksiyonu sırasında, ganglion doğrudan ele asla, daha ziyade çevredeki fasya mikroskobik forseps ile kavranabilir olmalıdır. Bunu yapmak için başarısızlık olasılığı neurit için başarısızlık önemli nedeni...

Baş ve boyun skuamöz hücreli karsinom (HNSCC), ulusal olarak yılda 10.000 ölüm ve dünya çapında yılda 300.000 ölümle ABD'de en sık görülen altıncı kanserdir1. HNSCC için genel prognoz, son birkaç on yıl boyunca% 50'de değişmeden kalmıştır. Perinöral invazyon (PNI), HNSCC'li hastalarda kötü prognoza işaret eden en belirgin patolojik özelliklerden biridir. Ne yazık ki, PNI HNSCC'de sık görülen bir durumdur ve HNSCC hastalarının %40'ında bulunabilir2,3. 
PNI, kötü huylu hücrelerin sinirler boyunca komşu dokulara kadar takip ettiği ve daha yüksek yerel ve uzak yayılma oranlarına izin verdiği süreçtir. Buna göre, PNI pozitif HNSCC tümörleri, PNI4-8 olmayan HNSCC hastalarına kıyasla daha yüksek lokorejyonel nüks ve uzak metastaz oranlarına sahiptir, bu da daha düşük genel sağkalım ile sonuçlanır.
PNI'li hastaların tedavisi tipik olarak cerrahi, radyasyon ve kemoterapi kullanılarak maksimize edilse de, bu hastaların genel sağkalım oranları PNI9-11 olmayan hastalara kıyasla hala %40'a kadar azalmaktadır. Bu nedenle, HNSCC için mevcut tedavi modalitelerinin PNI ile ilişkili olumsuz prognozu iyileştirmede etkisiz olduğu açıktır. HNSCC'de PNI'ye karşı hedefe yönelik tedavi geliştirme yaklaşımı, bu süreci düzenleyen faktörlerin yeterince anlaşılmaması nedeniyle engellenmiştir. Bu, kısmen, HNSCC'de PNI çalışması için tutarlı bir in vitro modelin olmamasının bir sonucudur. 
Son yıllarda, birkaç grup ağırlıklı olarak pankreas ve prostat kanserlerinde PNI'yi incelemek için in vitro bir model kullanmaktadır12-19. Bu model, farelerden veya sıçanlardan izole edilen dorsal kök gangliyonlarından üretilen nöritleri, büyük sinir istilası için bir vekil olarak kullanır. Dorsal kök gangliyonları, Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkom hücreleri tarafından salgılanan çözünmüş bir bazal membran protein karışımı olan faktör tükenmiş yarı katı bir matris içinde sabitlenir. Bu matris, nöritlerin büyümesine ve bu nöritler boyunca tek kanser hücrelerinin izlenmesine izin verir. Burada açıklanan, bu modelin HNSCC'de PNI'nin incelenmesi için uyarlanmasıdır.

<table><tbody><tr><td>DMEM / F-12 50/50 L-glutamin ve 15 mM HEPES ile karıştırın</td><td>Corning Cellgro</td><td>10-090-CV</td><td>Manassas, VA</td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu</td><td>Atlanta biyolojikleri</td><td>S11150</td><td>Çiçekli Dal, GA</td></tr>% <tr><td>0.25 Tripsin-EDTA (1x)</td> <td>Life Technologies Corporation</td><td>25200056</td><td>Grand Island, NY</td></tr><tr><td>Fosfat tamponlu Tuzlu Su 1x</td><td>Corning</td><td>21-040-CM</td><td>Manassas, VA</td></tr><tr><td>Matrigel hESC-Qualif Mouse</td><td>Corning Incorporated</td><td>354277</td><td>Bedford, MA</td></tr><tr><td>Gama Işınlanmış 35 mm cam alt kültür kapları</td><td>MatTek Corporation</td><td>P35G-1.5-14-C</td><td>Ashland, MA</td></tr><tr><td>SteREO Discovery.V8 Çalışma Mikroskobu</td><td>Carl Zeiss Mikrogörüntüleme</td><td>495015-0021-000&nbsp;</td><td>Thornwood, NY</td></tr><tr><td>Schott ACE I ışık kaynağı</td><td>Schott</td><td>A20500</td><td>Almanya</td></tr><tr><td>CellTracker&nbsp;</td><td>Life Technologies Corporation</td><td>C2925</td><td>Carlsbad, CA</td></tr><tr><td>BD PrecisionGlide İğne 18 G ve 21 G</td><td>BD</td><td>305195</td><td>Franklin Lakes, NJ</td></tr><tr><td>Premium Mikrodiseksiyon Cımbız</td><td>Harvard Aparatı</td><td>60-3851</td><td>Holliston, MA</td></tr><tr><td>Premium İnce Çalışma Standardı Makas</td><td>Harvard Aparatı</td><td>52-2789</td><td>Holliston, MA</td></tr><tr><td>Premium Yaylı Makas</td><td>Harvard Aparat</td><td>60-3923</td><td>Holliston, MA</td></tr><tr><td>Pansuman Forseps</td><td>Harvard Aparatı</td><td>72-8949</td><td>Holliston, MA</td></tr><tr><td>Atimik çıplak fareler (002019)</td><td>Jackson Laboratuvarı</td><td>002019</td><td>Bar Harbor, ME</td></tr></tbody></table>

baş ve boyun skuamöz hücre karsinomu içinde perinöral invazyon İçin bir model

A Model for Perineural Invasion in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma

Perineural invazyon (PNI), baş-boyun skuamöz hücreli karsinomlarının (HNSCC) yaklaşık %40'ında bulunur. Cerrahi, radyasyon ve kemoterapi ile multimodal tedaviye rağmen, lokorejyonel nüksler ve uzak metastazlar daha yüksek oranlarda görülür ve PNI'siz HNSCC'ye kıyasla genel sağkalım %40 azalır. HNSCC PNI'de yer alan yolların in vitro çalışmaları, tutarlı, tekrarlanabilir bir testin olmaması nedeniyle tarihsel olarak zor olmuştur. Burada anlatılan dorsal kök ganglion (DRG) testinin HNSCC'de PNI incelemesi için uyarlanmasıdır. Bu modelde DRG, kurban edilmiş çıplak bir farenin omurgasından toplanır ve yarı katı bir matris içine yerleştirilir. Sonraki günlerde, nöritler üretilir ve DRG'nin hücre gövdelerinden radyal bir düzende büyür. HNSCC hücre hatları daha sonra matrisin etrafına periferik olarak yerleştirilir ve tercihen nöritler boyunca DRG'ye doğru istila eder. Bu yöntem, çok yüksek test başarı oranları ve tekrarlanabilirlik ile çoklu tedavi koşullarının hızlı bir şekilde değerlendirilmesine olanak tanır.

DRG diseksiyonu ve matris damlacık içinde yerleştirildikten sonra, testin görünüş DRG mükemmel yuvarlak olmadığı Şekil 1. Not benzer olmalıdır, ancak matris damlacık içinde ortalanır. Bu, Şekil 2&#39;de kısmen gösterilen 360 derece nöritlerin büyümesinin, sağlar. DRG belirli kısımları ise genellikle efferent ve afferent sinir dalları girdi ve sırasıyla DRG çıkıldı nerede karşılık, diğerlerinden daha hızlı ve daha fazla sayıda neurites göndermek unutmayın...

Perinöral invazyon (PNI), baş ve boyun skuamöz hücreli karsinomunun (HNSCC) yaygın bir özelliğidir ve daha düşük sağkalım oranları sağlar. Mekanizmaları tam olarak anlaşılamamıştır. Yarı katı bir matris ile sınırlı murin dorsal kök gangliyonlarından üretilen nöritler kullanılarak, HNSCC hücre hatlarının PNI'sinde yer alan yollar araştırılabilir.

Baş ve Boyun Skuamöz Hücre Karsinomu içinde perinöral invazyon İçin Bir Model

Perineural invasion (PNI) is found in approximately 40% of head and neck squamous cell carcinomas (HNSCC). Despite multimodal treatment with surgery, ...

Bu deneysel protokolün genel amacı, baş ve boyun skuamöz kanserinde perinöral invazyonu etkileyen çok sayıda tedavi koşulunu hızlı bir şekilde değerlendirmek, çok yüksek test başarı oranları ve tekrarlanabilirliği sağlamaktır. Bu yöntem, baş ve boyun onkolojisi alanında, baş ve boyun kanseri hücresi perinöral invazyonunu etkileyen faktörlerin neler olduğu gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, çok sayıda testin nispeten kısa bir süre içinde bir fareden hızlı ve tekrarlanabilir bir şekilde gerçekleştirilebilmesidir.Dorsal kök ganglionu veya DRG diseksiyon prosedürüne başlamadan önce, V-tabanlı 96 oyuklu bir plakanın en az 40 oyuğuna taze oda sıcaklığında orta ekleyin. Ardından, kuyruğun kökünden farenin başına kadar omurga boyunca uzunlamasına bir kesi yapmak için bir çift ince makas kullanın. Ve sakral omurganın altındaki dokuyu enine bölün, omurganın her iki tarafını da kafatası tabanına kadar inceleyin.Numuneyi mikroskop altına aktarın ve omurganın servikal ucunu düşük güçte gözlemleyin. Beyaz omurilik, değişken miktarlarda perispinal kaslar ve yumuşak doku ile çevrili kemikli bir halkanın ortasında belirgindir. Mikroskobik yaylı makas kullanarak, ilk iki ila üç omur gövdesinin sırtını veya üst yönünü ayırın.Ardından, omur gövdesi diseksiyonunun orta hatta gerçekleşmesini sağlamak için bu ilk kemikli kesimi açmak için makasın yay hareketini kullanın. Sakral omurgaya doğru küçük artışlarla devam edin, omurgayı vertebral cisimlerin ventral veya alt yönünde aynı kesiklerle ikiye bölün. Bir hemispine bir kenara koyarak, omurganın diğer yarısını omurilik yerinde olacak şekilde steril bir plaka üzerine yüzü aşağı bakacak şekilde aktarın.Ve hemispinin her iki ucunu polistiren diseksiyon platformuna sabitlemek için iki adet 18 gauge iğne kullanın. Daha sonra, daha dar, servikal uçtan başlayarak, omuriliği yaklaşık dört vertebral seviyeden nazikçe soyun. Duyusal sinirlerin DRG'ye girdiği bölgede, çevredeki fasyayı mikroskobik forsepslerle nazikçe kavrayın ve DRG'yi serbest bırakmak için bu fasyayı ve diğer sinir dokusunu kesmek için mikroskobik yaylı makas kullanın.Artırılmış büyütme altında, dokuyu serbest bırakmak için periferik siniri DRG'ye mümkün olduğunca yakın kesmek için yaylı makası kullanın ve proksimal dalları kesin. Ardından, herhangi bir başıboş sinir lifinin veya fasiyal ataşmanların DRG'sini kesin ve izole edilen dokuyu 96 oyuklu V-alt plakanın bir kuyucuğuna yerleştirin. Yarı katı matris damlacıklarını hazırlamak için, bir cam kuyu tabanlı plakayı buzdan çalışma mikroskobu altında bir buz bloğuna aktarın.En fazla 10 mikrolitrelik bir pipetin ucunu 45 derecelik bir açıyla doğrudan camın üzerine yerleştirin ve 1,5 mikrolitrelik bir matris damlacığını camın üzerine dikkatlice dağıtın. Matris plakaya geçerken pipet ucunu yavaşça camdan uzaklaştırın. Plakanın dört köşesinin her birine bir damla matris bırakın ve plakayı yaklaşık bir dakika boyunca oda sıcaklığındaki bir yüzeye aktarın.Matris hafifçe sertleştiğinde, plakayı buz bloğuna geri koyun ve DRG'yi sol elinizle nazikçe almak için kapalı mikroskobik forseps kullanın. Sağ elinizi kullanarak, sinir dokusunu dikkatlice 21 gauge iğnenin ucuna aktarın ve DRG'yi matris damlacığının ortasına nazikçe yerleştirmek için iğneyi kullanın. DRG, iğne ile merkezi konumlandırma için matrisin içine kolayca salınmalıdır.Dört damlacığın her birine bir DRG parçası yerleştirdikten sonra, plakayı üç dakika boyunca 37 derecelik bir inkübatöre yerleştirin. DRG'nin tamamı gömüldüğünde, plakaları teker teker hafif bir açıyla tutun ve plakalara yavaşça %10 FBS ile takviye edilmiş dört mililitre DMEM ekleyin, böylece ortam matris DRG üniteleriyle yalnızca kademeli olarak temas eder. Plakaları 48 ila 72 saat daha inkübatöre geri koyun.Nöritler matrisin kenarına kadar olan yolun en az% 75'ine ulaştığında, matris DRG birimlerini çıkarmadan ortamı kuyulardan aspire edin. Daha sonra, düzgün bir tetikleyiciye sahip 200 mikrolitrelik bir pipet kullanarak, her bir matris DRG testinin üzerine mililitre ortam başına üç kez 10 ila beşinci hücreye iki damla yerleştirin. Ve plakaları inkübatöre geri koyun.Bir saat sonra, cam tabanlı plakanın yan duvarı boyunca% 10 FBS ile dört mililitre DMEM ekleyin ve plakaları bir sonraki mikroskobik değerlendirmeye kadar inkübatöre geri koyun. Matris damlacıkları içinde diseksiyon ve yerleştirilmelerinden sonra, testin görünümü burada gösterilen matris gömülü DRG'ye benzemelidir. DRG'nin mükemmel bir şekilde yuvarlak olmadığını, ancak matris damlacığı içinde ortalandığını ve nöritlerin 360 derece büyümesine izin verdiğini unutmayın.Kaplamadan hemen sonra, baş ve boyun skuamöz kanser hücreleri, matrisin etrafında çevresel bir halka oluşturur ve sonraki iki ila üç gün boyunca nöritler boyunca genişler. Tek başına matris içeren boş kontrol damlacıkları üzerine kaplanmış hücreler, matrislerin etrafında aktif olarak bölünür, ancak tepeye girmez veya uzanmaz. Kanser hücrelerinin perinöral istilasının niceliğini belirlemek için, tahlillerin görüntüleri bir dikey ve bir yatay çizgi ile dört çeyreğe bölünür.Daha sonra, her kadranda gözlenen her perinöral invazyon uzantısı için bir dizi nokta puanlanır ve farklı kanser hücre hatları arasındaki nöritler boyunca kanser hücresi büyümelerinin karşılaştırılmasına olanak tanır. Bir kez ustalaştıktan sonra, dorsal kök gangliyon izolasyon tekniği, uygun şekilde uygulanırsa iki saatten daha kısa sürede tamamlanabilir. Bu prosedürü denerken, dorsal kök gangliyonlarının aşırı kullanımını en aza indirmek önemlidir, çünkü ezilme yaralanması test başarısızlığının en yaygın nedenidir.Bu prosedürü takiben, perinöral invazyon mekanizmaları incelenebilir ve potansiyel olarak bu tip yumuşak doku invazyonuna karşı hedefe yönelik tedavilerin geliştirilmesine yol açabilir. Bu videoyu izledikten sonra, dorsal kök gangliyonlarını bir fareden nasıl ayıracağınızı iyi anlamalı ve perinöral invazyonu incelemek için bir tahlil oluşturmalısınız.

a-model-for-perineural-invasion-head-neck-squamous-cell

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kanser Araştırmaları

Etiketli hücreleri çok foton mikroskobu ile dil içinde ağız kanseri ve tümör invazyonu niceliksel olarak izlenmesi bir fare modeli üreten yer alan tekniklerin kapsamlı bir bakış sunulmaktadır. Bu sistem, anti-invaziv bileşiklerin moleküler değerlendirme ve ilaç etkinliği için faydalı bir platform olarak hizmet verebilir.

Oral Skuamöz Hücre Karsinomu Ortotopik Fare Modeli Tümör Hücre Invasion Multi-foton Görüntüleme

Bu videoda, perinöral invazyonu incelemek için civciv koryoallantoik membran veya CAM üzerinde dorsal kök gangliyonları ve kanser hücrelerini birlikte kültürleme yöntemini açıklıyoruz.

Civciv Korioallantoik Membran veya CAM Tümör Modeli: Tümör Hücrelerinin Perinöral İnvazyonunu Simüle Etmek İçin Bir In Ovo Yöntemi

Bu videoda, fare dorsal kök ganglionu ve nörotropik kanser hücrelerini birlikte kültürleyerek in vitro perinöral kanser hücresi istila modeli geliştirme prosedürünü gösteriyoruz. Model, kanser tahlilleri yapmak, hızlı ve tekrarlanabilir sonuçlar üretmek için kullanılabilir.

Murin Dorsal Kök Gangliyonları ve Kanser Hücrelerinin Üç Boyutlu Ko-kültür Modelinin Oluşturulması: Perinöral Kanser Hücre İstilasını İncelemek İçin Bir İn Vitro Model

Bu videoda, pankreas kanseri hücrelerini siyatik sinire enjekte ederek perinöral invazyon için in vivo bir fare modeli geliştiriyoruz. Bu model, invazyonun derecesini ölçmeye ve kanser hücreleri ile sinirler arasındaki etkileşimleri incelemeye yardımcı olur.

Murin Perineural İnvazyon Modeli: Fare Siyatik Sinirinde Perinöral İnvazyonu Simüle Etmek için İn Vivo Model Oluşturma

Bu videoda, kanser hücrelerini siyatik sinire enjekte ederek perinöral invazyonun bir murin modeli oluşturma prosedürünü açıklıyoruz. Model, anti-kanser ilaçlarının daha sonraki değerlendirmesi için sinir istilasının büyüklüğünün anlaşılmasına yardımcı olabilir.

Perinöral İnvazyon veya PNI'nin Murin Siyatik Sinir Modeli: Kanser Hücrelerinin İstilasını Anlamak için Siyatik Sinirin Ekstraksiyonu ve İşlenmesi

Çevredeki normal dokuların invazyonu, malign tümörlerin tanımlayıcı bir özelliğidir. Burada, bir dizi ileri insan kanseri modeliyle örneklenmiş doğal bir 3D biyomatrise basit, yarı otomatik bir mikro plaka istila testi sunuyoruz.

Üç boyutlu (3D) Tümör Sfero Yayılması deneyindeki

Bu video makale, pankreatik duktal adenokarsinomda dorsal kök gangliyonları (DRG)/kanser hücresi modelinin kullanımını göstermektedir.

Sırt kök ganglion Modeli: Kanserli Sinir Invasion Vitro Modelleme

Biz bir vivo içinde fare modeli perineural işgalinin siyatik sinir syngeneic pankreas kanseri hücreleri enjekte edilerek tanımlamak. Model ölçüde sinir işgalinin miktar için sağlar ve araştırma perineural işgalinin hücresel ve moleküler mekanizmaları destekler.

Vivo fare siyatik sinir modeli Perineural işgali

Terapi değerlendirilmesi amaçlayan deneysel tedavi rejimleri hücre hatları, baş ve boyun Skuamöz hücreli karsinom için geçerli standart test etmemizi sağlayan bir küresel tabanlı, üç boyutlu vitro modeli evrimi tarif duyarlılık ve direnci Primer hücre insan örnekler üzerinden üzerinde içinde belgili tanımlık gelecek.

Baş ve boyun Skuamöz hücreli karsinom için bir küresel tabanlı 3D hücre kültür modelinde test terapi

Burada bir orthotopic fare modeli baş ve boyun Skuamöz Hücre Karsinomu geliştirmek için tekrarlanabilir bir yöntem mevcut. Tümör nekroz, zavallı farklılaşma, nodal metastaz ve bağışıklık infiltrasyon gibi hastalığın klinik histopatolojik özellikler göstermektedir. Tümörü taşıyan fareler disfaji, çene deplasman ve kilo kaybı gibi klinik belirtiler geliştirmek.

Skuamöz Hücre Karsinomu Hücre Tümörü bağışıklık profil oluşturma için fareler ve tedaviye yanıt değerlendirme intramucosal aşı

Perinevral invazyonu baş ve boyun skuanöz hücre karsinomları ve diğer tümörlerde agresif bir fenotiptir. Piliç chorioallantoik membran modeli anjiyogenez, kanser istilası ve metastif eğitimi için kullanılmıştır. Burada bu modelin perineval invazyonu in vivo olarak değerlendirmek için nasıl kullanılabilirler olduğunu gösteriyoruz.

Kafa ve boyun kanseri Perinevral Invazyonu değerlendirmek için Chick Chorioallantoik membran In vivo model

Öğrenin baş ve boyun skuamöz hücre karsinomunda perinöral invazyonu değerlendirmek için fare dorsal kök gangliyon diseksiyonu yöntemini. Bu teknik yüksek başarı oranı ve tekrarlanabilirlik sağlar.

Baş ve Boyun Skuamöz Hücre Karsinomu içinde perinöral invazyon İçin Bir Model

Daha fazla video keşfet