Name: Preklinik Tedaviler Nicel ve Boyuna Değerlendirme A sinjeneik Fare Modeli Yapmış Bir Renal Hücreli Karsinom (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 38 s
Description: Öğrenin, farelerde ortotopik böbrek tümörü modeli kurarak renal hücreli karsinomun büyümesini ve metastazını inceleyin. Bu yöntem, yeni tedavilerin etkinliğini değerlendirmek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Ulusal Kanser Enstitüsü (R15CA173657 AW ve TSG konusunda R01CA109446 için), (AW) Simmons Kanser Enstitüsü ve Minnestoa Üniversitesi&#39;nden hibe (TSG konusunda) 4 Böbrek Kanseri Vakfı&#39;na tırmanın tarafından desteklenmiştir. Biz immünflörosans yardım için Dr Kristin Anderson teşekkür ederim.

Aşağıdaki protokol, indükleyici ve deneysel ortotopik renal tümörler ve herhangi bir potansiyel kendiliğinden metastazlarının büyümesini izlemek için deneysel prosedür açıklanmaktadır. Aşağıdaki prosedürlerin tamamı deney hayvanlarının insancıl kullanımına ilişkin kurumsal politika ve onaylanmış prosedürlere uygun olarak yapılır. Hücre Hatları 1. Bakım <ol><li> murin renal adenokarsinoma hücre hattı bakımı olarak RENCA, Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 yılında ortam,% 10 fetal dana serumu (FCS),% 1 penisilin-streptomisin ve 1 mM ile desteklenmiş temel olmayan amino asitler, L-glutamin, her (komple RPMI anılacaktır), ve sodyum piruvat. Kültür, 37 ° C&#39;de bir inkübatör içinde hücre ve% 5 CO2. Not: kurulan herhangi bir hücre hattı olduğu gibi, uzun süreli kült sonra ortaya çıkabilecek herhangi bir fenotipik veya genetik değişiklikleri en aza indirmek için transfeksiyon ve sonradan yapılan bir implantasyon için düşük geçiş numarası olarak RENCA hücreleri, kullanılması önerilirobilyaları. <ol><li> kararlı bir şekilde yeşil floresan proteininin (GFP) ve ateşböceği lusiferaz ifade etmek Renca hücrelerini mühendisi bir transpozon sistemi kullanın. <ol><li> Bir transposaz ifade vektörüne (pPGK-SB11) ve ateş böceği lusiferaz ifadesi için bir transpozon vektör kodlayan, hem de GFP için bir füzyon geni kodlama ve zeosin direnç geni ile, bir katyonik lipozom bazlı transfeksiyon reaktifi ko-transfekte Renca hücreleri kullanılarak bir iki yönlü promotöre (pKT2 / LuBiG) 19 transkripsiyonel kontrolü altında hem. </li><li> İki gün sonra, bir sınırlayıcı seyreltme ile transfekte edilmiş hücrelerin plaka ve tam RPMI zeosin (300 ug / ml) ile desteklenmiş hücreler genişletilmesine izin verir. Akış sitometrisi ile her klon GFP ifade kontrol edin. Bu hücreler Renca-GL adlandırılır. NOT: Sınırlayıcı seyreltme klonlama tek hücreden türetilen üzere seçilen hücrelerin izin verecektir. </li></ol></li></ol></li><li> intrarenally Renca hücrelerini implant için, Renca hücrelerini i hazırlamakHank Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS) içinde 2 x 10 6 hücre / mL bir tek hücre süspansiyonu nto. <ol><li> HBSS içinde% 0.25 tripsin kullanılarak doku kültürü şişesi yapışık olarak RENCA hücreleri, kaldırın. ~ 5 dakika sonra, tripsin nötralize ve yıkama için bir santrifüj tüpüne hücreleri aktarmak için şişeye tam RPMI ekleyin. Santrifüj 25 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 300 nispi santrifüj g kuvveti (RCF xg) hücreleri. </li><li> Üstte kalan HBSS içinde tekrar süspansiyon hücreleri. Bir hemasitometre kullanarak hücreleri sayın ve / mL, 2 x 10 6 hücre elde etmek için HBSS ile ses seviyesini ayarlamak. </li><li> hücreleri üzerinde kesilme baskısı önlemek için bir 18 gauge iğne ile donatılmış bir 1 ml şırınga içine hücreleri çizin. Tümör hücrelerinin enjeksiyondan önce bir 28 gauge iğne ile 18 gauge iğne değiştirin. 0.1 mL bir enjeksiyon böbrek içine 2 x 10 5 hücre sunar. </li></ol></li></ol> 2. Cerrahi Alan Hazırlık <ol><li> Steril cerrahi hazırlayınbir ısıtma pedi üzerinden steril bir cerrahi örtü yerleştirerek bir biyo-güvenlik kabini içinde alanı. Forseps, neşter, makas, göz damlası,% 5 povidon-iyodin antiseptik ve steril gazlı bez içeren tüm malzemeleri, toplayın. Kullanmadan önce tüm enstrümanları otoklavlayın. </li><li> Bir aseptik uç tekniği kullanılarak ameliyat gerçekleştirin. bir kordon sterilizatör ile hayvanlar arasında sterilize araçlar. Steril eldiven, bir laboratuvar önlüğü ve bir yüz maskesi takın. </li></ol> 3. Hayvan hazırlanması <ol><li> kurumsal kurallarına göre (sırasıyla 87.5 mg / kg ve 12.5 mg / kg, ip), ketamin / ksilazin ile fareler anestezi. Bir ayak tutam yaparak anestezi derinliğinin tespit edilmesi. </li><li> Hayvan duyarlı olmayan göz önüne alındığında, (parmaklarla) koparma veya tıraş kürk (makası kullanılarak) ile Balb / c farelerinde enjeksiyon yeri (örneğin, sol yan) hazırlanması. </li><li> Cerrahi alana (örneğin, mahfaza kafesi) cerrahi hazırlık alan farelerin taşı ve veteriner merhem uygulamakGözleri kuruluğunu önlemek için. Bolca% 5 povidon-iyodin antiseptik ile hazırlanan kesi çubukla. </li><li> kesik, bir ameliyat öncesi analjezi gibi yapılacaktır alanına bupivakain hidroklorür (2.5 mg / ml çözelti, sc 0.1 mL) enjekte edilir. </li><li> dikkatli şekilde periton nüfuz için, steril bir bisturi makas ile hayvanın sol kanattan - (1.5 cm-1.0) tek bir kesi olun. Steril makas ile periton dermis ayırın. Hiç kan kaldırmak için steril gazlı bez ile kesi sitesini sürün. </li><li> kanadını desteklemek için baş ve sağ elini tutmak için sol elini kullanan iki eliyle fareyi tutun. </li><li> alttan fareyi palpe, sağ elinin bir parmağı ile, periton üzerinden dalak belirlemek ve; Böbrek hemen periton içinden görünür olmalıdır. Periton ve böbrek genelinde gerginliği sağlamak için hayvanın sıkı bir duruş tutun. </li><li> ikinci bir kişi tümör ce enjekte ettinizrf (Bölüm 1.2&#39;de hazırlanan). sağlam periton içinden bir 28 gauge iğne ile donatılmış bir 1 ml hava ile böbrek merkezine. Yavaş yavaş hücreler 0.1 mL (2 x 10 5) sağlar. 10, hücrelerin geri akışını azaltmak için - hücreleri enjekte edilir kez 5 için, iğneyi yerinde tutun. Hücreler enjekte kişi fare tutan kişinin parmakları yakın içine iğne getirerek olabileceğinden bu adımı sırasında son derece dikkatli ihtiyacını dikkat etmek önemlidir. </li><li> iğne çıkarın ve siyanoakrilat doku ince bir yapışkan tabakası ile kesiğin kapatılması. </li><li> Steril bir kağıt havlu ile temiz kafesine geri hayvan yerleştirin. hayvanlar ısıtıcı bir ped üzerine kurtarmak için izin verin. iyileşme döneminde sahipsiz hayvanları bırakmayın. onlar dik ve sternal kadar standart konut koşulları hayvanları iade etmeyin. laboratuvar hayvanları kullanan tüm prosedürlerde kurumsal yönergeleri izleyin. </li></ol> 4. Biyolüminesan Görüntüleme <ol><li> biyolüminesans görüntüleme tümör büyümesini izleyin. NOT: biyolüminesans görüntüleme gerçekleştirmek için Usul ayrıntıları Lim ve arkadaşlarının elde edilebilir. 20 Lusiferaz sinyal Tümör hücresi implantasyonundan sonra kadar erken 24 olarak h tespit edilebilir. Bu modelde hiçbir harici olarak görünür tümör olduğu gibi, periyodik tümör büyümesini izlemek için esastır. tasarlanmış deney bağlı olarak, ortotopik tümör büyümesi, değişen zaman uzunlukları için devam edebilirsiniz. lusiferaz ifade Renca hücrelerini kullanmanın bir yararı tümör büyümesi defalarca deney süresi boyunca düzenli aralıklarla aynı hayvanda izlenebilir ve tümör taşıyan ve tümör içermeyen organların belirli bir sorgulama bir yapılabilir olmasıdır bir bitiş noktası. <ol><li> lusiferin ip (steril PBS içinde 15 mg / ml solüsyon, 0.1 mL) enjekte edilir ve bu biyoışıldama görüntüleme sistemine fare yerleştirmeden önce, 10 dakika süreyle sirküle edilmektedir. mo yerleştirin<html> dorsal tarafı yukarı gelecek şekilde kullanmak, yukarı gelecek şekilde enjekte böbrek sahip olmak amacıyla, yan hafif devirdi. </li><li> Görüntü analiz yazılımı kullanılarak (ROI), tanımlanmış bir bölge içinde, ikinci (foton akısı) başına yayılan ışığın foton tümör yükünü ölçün. </li></ol></li><li> Bireysel organlarda tümör yükünün Kantifikasyonu. Not: kantitasyonu Öldürülen farelerin çıkarılmalarından sonra, tek tek organların tanımlanan zaman noktalarında gerçekleştirilebilir. <ol><li> Adım 4.1&#39;de olduğu gibi, lusiferin ile fareler enjekte edilir. </li><li> 10 dakika sonra, onaylanmış bir prosedür kullanılarak fareler euthanize. </li><li> Ilgi organları teşrih (örneğin böbrekler ve akciğerler aşağıda 5. bölüme bakın). 35 x 10 mm Petri kapları doku aktarın ve biyolüminesans görüntüleme sistemi içine koyun. </li><li> Görüntü analiz yazılımı kullanılarak, tanımlanmış bir ROI içinde ikinci (foton akısı) başına yayılan ışığın foton tümör yükünü ölçün. </li></ol></li></ol><html> e_title &quot;&gt; 5. Organ Hasat <ol><li> Bireysel bir deney için tanımlanan son noktada, tercih edilen kurumsal rehberlere (örneğin CO2, servikal dislokasyon, anestezi doz) &#39;e göre, tümör taşıyan farelerin euthanize. Akciğerler Hint mürekkebi enflasyonu sonra toplanacak olan Bununla birlikte, servikal dislokasyon kaçının. </li><li> Islak Organ ağırlıkları ölçülerek enjekte böbrekte primer böbrek tümör büyümesinin önemli bir tayinini gerçekleştirin. <ol><li> (G cinsinden), tümör kütlesini belirlemek için, 21 izole etmek ve tümör taşıyan böbrek ve böbrek ağırlıkları arasındaki fark, tümör kitlesini tanımlar aynı farenin, kontralateral böbrek tartın. Dikkatle onların ağırlıklarını ölçmek önce kesilmiştir böbreklerden gelen hiçbir yabancı bağ dokusu teşrih. </li></ol></li><li> Fekete en çözeltide akciğerleri Hindistan mürekkebi önce eksizyona ile akciğerlere şişirme ve derhal düzelterek akciğerlere tümör metastazı derecesini değerlendirinlass = &quot;xref&quot;&gt; 22. Akciğer yüzeyinde metastatik lezyonların Manuel hesaplama sonra yapılabilir. <ol><li> göğüs kafesi üzerinden orta karın başlayan makas kullanılarak orta hat kesi, olun ve yukarı boyun / tükürük bezleri aracılığıyla. Dikkatle akciğer dokusunun ödün vermeden, makasları ve forsepsler kullanılarak göğüs kafesi çıkarın. </li><li> Bağ doku kaldırarak trakea Açığa. </li><li> HBSS içinde% 10 Hint mürekkebi çözeltisi ile doldurulmuş bir 18 gauge iğne ile 3 ml&#39;lik bir şırınga hazırlayın. </li><li> Forseps kullanarak dikkatli trakea altındaki bir ipek sütür iplik. Bu kez şişirilmiş trakea kapalı kravat kullanılacaktır. </li><li> Dikkatle trakea aşağı iğneyi yavaşça Hindistan mürekkep çözeltisiyle akciğerleri şişirmek için şırıngayı düşürmek. Yaklaşık 1 - Hindistan mürekkep çözeltisinin 1.5 ml tam akciğerleri şişirir. </li><li> mürekkep geri akışını önlemek için bir iğneye göre dikiş ile, çok sayıda düğüm bağlayarak kapamak trakea sıkıştırın. </li><li> removE, iğne ve dikkatli bir şekilde şişirilmiş akciğerlere kaldırmak için, bağ doku kesip. </li><li> Kimyasal bir davlumbaz olarak, 5 ml Fekete çözeltisinin ihtiva eden bir 15 mL konik tüp içine akciğerlere yer (% 95 EtOH 35 mL, dH 2 O 15 mL, formaldehit 5 ml ve buzlu asidik asit 2.5 mL 100 mL&#39;lik bir cam şişe) 23. </li><li> Oda sıcaklığında 48 saat önce el ile boyası tümör nodülü sayım - Akciğerler 24 için / destain düzeltmek için izin verir. </li><li> lekenin sonra bozulmadan akciğerlere çıkarın ve dikkatli bir şekilde bir 35 x 10 mm Petri kabındaki lob sabit akciğerler incelemek. bir mikroskop altında her bir lob tümör nodüllerinin sayısı (beyaz nodüller) sayın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.3322/caac.21387/full">Cancer statistics.</a> CA Cancer J. Clin. 66, 7-30 (2016).</li>
<li>Chow, W. H., Dong, L. M., Devesa, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+and+risk+factors+for+kidney+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Urol%22%5BJournal%5D)">Epidemiology and risk factors for kidney cancer.</a> Nat. Rev. Urol. 7, 245-257 (2010).</li>
<li>Hollingsworth, J. M., Miller, D. C., Daignault, S., Hollenbeck, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rising+incidence+of+small+renal+masses%3A+a+need+to+reassess+treatment+effect%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Rising incidence of small renal masses: a need to reassess treatment effect.</a> J. Natl. Cancer Inst. 98, 1331-1334 (2006).</li>
<li>Lee-Ying, R., Lester, R., Heng, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+management+and+future+perspectives+of+metastatic+renal+cell+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Current management and future perspectives of metastatic renal cell carcinoma.</a> Int. J. Urol. 21, 847-855 (2014).</li>
<li>Rini, B. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+strategies+in+kidney+cancer%3A+therapeutic+advances+through+understanding+the+molecular+basis+of+response+and+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">New strategies in kidney cancer: therapeutic advances through understanding the molecular basis of response and resistance.</a> Clin. Cancer Res. 16, 1348-1354 (2010).</li>
<li>Acquavella, N., Fojo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Renal+cell+carcinoma%3A+trying+but+failing+to+improve+the+only+curative+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Renal cell carcinoma: trying but failing to improve the only curative therapy.</a> J. Immunother. 36, 459-461 (2013).</li>
<li>Salup, R. R., Wiltrout, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adjuvant+immunotherapy+of+established+murine+renal+cancer+by+interleukin+2-stimulated+cytotoxic+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Adjuvant immunotherapy of established murine renal cancer by interleukin 2-stimulated cytotoxic lymphocytes.</a> Cancer Res. 46, 3358-3363 (1986).</li>
<li>Ko, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+and+differential+suppression+of+myeloid-derived+suppressor+cell+subsets+by+sunitinib+is+compartmentally+constrained%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Direct and differential suppression of myeloid-derived suppressor cell subsets by sunitinib is compartmentally constrained.</a> Cancer Res. 70, 3526-3536 (2010).</li>
<li>Kusmartsev, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxidative+stress+regulates+expression+of+VEGFR1+in+myeloid+cells%3A+link+to+tumor-induced+immune+suppression+in+renal+cell+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Oxidative stress regulates expression of VEGFR1 in myeloid cells: link to tumor-induced immune suppression in renal cell carcinoma.</a> J. Immunol. 181, 346-353 (2008).</li>
<li>Rocha, F. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endostatin+gene+therapy+enhances+the+efficacy+of+IL-2+in+suppressing+metastatic+renal+cell+carcinoma+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Immunol.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Endostatin gene therapy enhances the efficacy of IL-2 in suppressing metastatic renal cell carcinoma in mice.</a> Cancer Immunol. Immunother. 59, 1357-1365 (2010).</li>
<li>Shanker, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treating+metastatic+solid+tumors+with+bortezomib+and+a+tumor+necrosis+factor-related+apoptosis-inducing+ligand+receptor+agonist+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Treating metastatic solid tumors with bortezomib and a tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand receptor agonist antibody.</a> J. Natl. Cancer Inst. 100, 649-662 (2008).</li>
<li>VanOosten, R. L., Griffith, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+tumor-specific+CD8%2B+T+Cells+after+intratumoral+Ad5-TRAIL%2FCpG+oligodeoxynucleotide+combination+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Activation of tumor-specific CD8+ T Cells after intratumoral Ad5-TRAIL/CpG oligodeoxynucleotide combination therapy.</a> Cancer Res. 67, 11980-11990 (2007).</li>
<li>Bibby, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+models+of+cancer+for+preclinical+drug+evaluation%3A+advantages+and+disadvantages%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Orthotopic models of cancer for preclinical drug evaluation: advantages and disadvantages.</a> Eur. J. Cancer. 40, 852-857 (2004).</li>
<li>Devaud, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissues+in+different+anatomical+sites+can+sculpt+and+vary+the+tumor+microenvironment+to+affect+responses+to+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissues in different anatomical sites can sculpt and vary the tumor microenvironment to affect responses to therapy.</a> Mol. Ther. 22, 18-27 (2014).</li>
<li>Devaud, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+potency+of+regulatory+T+cell-mediated+immunosuppression+in+kidney+tumors+compared+to+subcutaneous+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Oncoimmunology%22%5BJournal%5D)">Differential potency of regulatory T cell-mediated immunosuppression in kidney tumors compared to subcutaneous tumors.</a> Oncoimmunology. 3, 963395(2014).</li>
<li>Devaud, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-talk+between+tumors+can+affect+responses+to+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Oncoimmunology%22%5BJournal%5D)">Cross-talk between tumors can affect responses to therapy.</a> Oncoimmunology. 4, 975572(2015).</li>
<li>Norian, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eradication+of+metastatic+renal+cell+carcinoma+after+adenovirus-encoded+TNF-related+apoptosis-inducing+ligand+%28TRAIL%29%2FCpG+immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Eradication of metastatic renal cell carcinoma after adenovirus-encoded TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL)/CpG immunotherapy.</a> PLoS One. 7, 31085(2012).</li>
<li>Matin, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological+response+to+renal+cryoablation+in+an+in+vivo+orthotopic+renal+cell+carcinoma+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Immunological response to renal cryoablation in an in vivo orthotopic renal cell carcinoma murine model.</a> J. Urol. 183, 333-338 (2010).</li>
<li>Wilber, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+as+a+source+of+transposase+for+Sleeping+Beauty-mediated+gene+insertion+and+expression+in+somatic+cells+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">RNA as a source of transposase for Sleeping Beauty-mediated gene insertion and expression in somatic cells and tissues.</a> Mol. Ther. 13, 625-630 (2006).</li>
<li>Lim, E., Modi, K. D., Kim, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+bioluminescent+imaging+of+mammary+tumors+using+IVIS+spectrum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In vivo bioluminescent imaging of mammary tumors using IVIS spectrum.</a> J. Vis. Exp. , (2009).</li>
<li>Skrypnyk, N. I., Harris, R. C., de Caestecker, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+model+of+acute+kidney+injury+and+post+injury+fibrosis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion model of acute kidney injury and post injury fibrosis in mice.</a> J Vis Exp. , (2013).</li>
<li>Zimmerman, M., Hu, X., Liu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+metastasis+and+CTL+adoptive+transfer+immunotherapy+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Experimental metastasis and CTL adoptive transfer immunotherapy mouse.</a> J. Vis. Exp. , (2010).</li>
<li>Wexler, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accurate+identification+of+experimental+pulmonary+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Accurate identification of experimental pulmonary metastases.</a> J. Natl. Cancer Inst. 36, 641-645 (1966).</li>
<li>James, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CpG-mediated+modulation+of+MDSC+contributes+to+the+efficacy+of+Ad5-TRAIL+therapy+against+renal+cell+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Immunol.+Immunother%22%5BJournal%5D)">CpG-mediated modulation of MDSC contributes to the efficacy of Ad5-TRAIL therapy against renal cell carcinoma.</a> Cancer Immunol. Immunother. 63, 1213-1227 (2014).</li>
<li>James, B. R., Brincks, E. L., Kucaba, T. A., Boon, L., Griffith, T. S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24711083">Effective TRAIL-based immunotherapy requires both plasmacytoid and CD8a DC.</a> Cancer Immunol. Immunother. 63, 685-697 (2014).</li>
<li>James, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diet-induced+obesity+alters+dendritic+cell+function+in+the+presence+and+absence+of+tumor+growth%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Diet-induced obesity alters dendritic cell function in the presence and absence of tumor growth.</a> J. Immunol. 189, 1311-1321 (2012).</li>
<li>Brincks, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Triptolide+enhances+the+tumoricidal+activity+of+TRAIL+against+renal+cell+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+J%22%5BJournal%5D)">Triptolide enhances the tumoricidal activity of TRAIL against renal cell carcinoma.</a> FEBS J. 282, 4747-4765 (2015).</li>
<li>Anderson, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+intravascular+staining+redefines+lung+CD8+T+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: intravascular staining redefines lung CD8 T cell responses.</a> J. Immunol. 189, 2702-2706 (2012).</li>
<li>Anderson, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravascular+staining+for+discrimination+of+vascular+and+tissue+leukocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protocols%22%5BJournal%5D)">Intravascular staining for discrimination of vascular and tissue leukocytes.</a> Nat. Protocols. 9, 209-222 (2014).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Biz ortotopik RCC fare modeli için bir protokol mevcut. fare böbrek içine fare renal adenokarsinoma tümör hücrelerinin implantasyonu mRCC bir klinik açıdan ilgili bir model sağlar. Bu model gelişmiş RCC özellikleridir her ikisi de akciğerlerinde böbrek ve uzak metastaz içinde birincil tümörün sonuçlanır. Burada sunulan açıklama, bağışıklığı Balb / c farelerinde Renca hücre hattı için spesifiktir. Bu orthotopik modeli kullanarak, tedavi edici testler 17, 24,...

Böbrek hücreli karsinom (BHK), tüm dünyada bütün yetişkin habis tümörlerinin malign böbrek neoplazmaları çoğunluğu ve yaklaşık% 3, 1, 2 oluşturmaktadır. Semptomların olmaması, yanlış tanı ve RCC için yetersiz tarama araçları dolayı, hastaların yaklaşık% 30 bir metastatik adım 2&#39;ye gören hastalar için ilave bir% 20-30 ile, teşhis sırasında metastatik RCC (mRCC&#39;li) ile sunacaktır. Bu vakalar her yıl ~ 13.500 ölüm 1, 3 sonuçlanır. Daha önce tespit ve primer RCC tedavisi geliştirilmiş olsa da, RCC ile ilişkili ölüm oranı metastatik hastalık mortalite 3 büyük ölçüde sorumlu olduğunu düşündüren artmaya devam ediyor. RCC için Terapi geliştirme keşif ve hedef tedavilerin ve immunoterapilerin uygulanması ile son on yıl içinde ilerlemiştir. Ne yazık ki, progresyonsuz survivEl ve gelişmiş vakaların genel sağkalım hala hastalara 4, 5, 6 çoğunluğu için de altı 2 yıldır. Bu istatistikler daha da tanımlama içine araştırma ve RCC için etkili tedavilerin geliştirilmesine duyulan ihtiyacı garanti. yeterince mRCC için terapötik girişimlerin ilerletmek için, hastalığın translasyon-alakalı klinik öncesi modellerde ilk gereklidir. Bir açıdan tutarlı modelinin geliştirilmesi birkaç önemli soru ele almalıdır ilerlemiş RCC insan durumunu özetlemek için: 1) modeli anatomik alakalı mı; 2) İnsan patolojiye benzer tümör ilerleme mu; 3) metastazları primer tümörden kaynaklanan musunuz; ve 4) primer ve metastatik tümör ilerlemesi zamanla izlenebilir mi? tedavi türüne bağlı olarak, fare RCC tümör hücre çizgileri, insan RCC tümör hücre çizgileri ve insan RCC hasta türetilmiş xenog araştırılmaktadırsallar imünokompetan veya bağışıklık yetersizliği olan farelerde kullanılabilmektedir. Bir intakt ve işlevsel immün sistemi olan bir ana bilgisayar, Balb / c farelerinin 7 kendiliğinden bir böbrek adenokarsinomundan türetilen de tarif edilen Renca hücre hattının kullanılmasını gerektiren, immünoterapi bir yönü değerlendiren bu çalışmalar için gereklidir. Çalışmaların çoğu, deneysel akciğer &quot;metastaz&quot; 8, 9, 10, 11, 12 elde etmek için (iv), Balb / c farelerine intravenöz olarak kolay bir tedbir, yerel tümör oluşturur veya olarak RENCA hücreleri, deri altından (sc) enjekte. İnsan BHK model sc-implante Renca tümör kullanılması damar 13 doğru olmayan innervasyon içeren sınırlamalar bir sayıda vardır, mikro-14, 15, ve organ yetersizliği / tümör hücre Haberleşme farklılıklarasyon 13, 16. Buna ek olarak, pek çok sc tümörler (özellikle Renca), ortak bir klinik özellikler 17 olan bir olayın çalışma inhibe uzak organlarda metastaz. mRCC&#39;li incelemek için, Renca hücreleri RCC hastalarında metastaz akciğerleri birincil konumda tümör yükünü kurmak için iv olarak enjekte edilebilir. Metastatik tümörler başlatılması iv enjeksiyon yöntemi, bununla birlikte, bir araştırma izin vermez nasıl, ne zaman, ya da hücre uzak bir alanda birincil organ (örneğin, böbrek) göç neden. Aynı hayvanda belirgin hem de primer ve metastatik hastalığı olan bir model, özellikle metastaz, tipik olarak, bu hastalarda ölüm nedeni olduğu göz önüne alındığında, ilerlemiş hastalığın ilerlemesini ve çalışma tedavisi için çok önemlidir. Bizim laboratuvar yukarıda özetlenen tüm özellikleri barındıran mRCC bir fare modeli geliştirmiştir. pr kurmakimary, ortotopik tümörleri olarak RENCA hücreleri, saydam periton içinden hayvanın böbrek doğrudan implante edilir. sol böğürde küçük bir yarık (bir dönüm noktası olarak) dalak ve sol böbrek olarak gösterebilir. Bir küçük ölçekli bir iğne kullanarak, Renca tümör hücreleri ortotopik implantasyon için periton içinden böbrek içine doğrudan enjekte edilir. Böbrek kapsülü 18 altına olarak RENCA hücreleri, implante diğer yöntemlerle karşılaştırıldığında, implantasyon bu yöntem, dikilmesi gerektirmez, oldukça invazif olmayan, düşük ağrı sınıfına ait ise, ve zaman etkili olduğu kadar, yüksek bir verim sağlar uygulanan. Akciğerlerde enjekte böbrekte çoğaltılabilir bir primer tümör yükü (~% 99 alım oranı) yanı sıra, metastatik tümör yükü bu iyi karakterize edilmiş bir model ile sonuçlanır. Bu modelin önemli avantajları immünoterapi araştırmalar için izin, genetik olarak özdeş doğasını içerir; onun spontane metastaz, bir çalışmadvanced hastalığı; ve orthotopik implantasyon, hastalığın ilerlemesi ve tedavisi ile ilgili anatomik etkisini modellemek için. RCC hedeflemeye yönelik Tedaviler büyük ölçüde klinik öncesi gelişimi sırasında bu modelin kullanımı yararlanacak.

<table><tbody><tr><td>Yapay gözyaşı oftalmik merhem</td><td>Akorn</td><td>NDC 17478-162-35</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond Doku Yapıştırıcısı</td><td>3M</td><td>CBGBIW011019</td><td></td></tr><tr><td>Betadine Çözeltisi (Povidon-iyot, %5)</td><td>Purdue Products, L.P.</td><td>NDC 67618-155-32</td><td></td></tr><tr><td>% 0.25 Marcaine (bupivavain HCl enjeksiyonu)</td> <td>Hospira</td><td>0409-1587-50&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Isıtma yastığı</td><td>Güneş Işını</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Şırıngaları</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>Gazlı Bez</td><td>Girişimi</td><td>908291</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin</td><td>Phoenix İlaç</td><td>NDC 57319-609-02</td><td></td></tr><tr><td>Ksilazin ve nbsp;</td><td>Akorn</td><td>NDC 59399-111</td><td></td></tr><tr><td>Çile' s Dengeli Tuzlar</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H2387</td><td></td></tr><tr><td>IVIS</td><td>Kaliper</td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-Luciferin, Potasyum Tuzu AltınBio</td><td></td><td>LUCK-1G</td><td></td></tr><tr><td>Hindistan Mürekkebi</td><td>Chartpak Inc</td><td>44201</td><td></td></tr><tr><td>Makas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forseps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Uyuyan Güzel (SB) transpozon sistemi</td><td>Nöromikler</td><td></td><td></td>SBT0200</tr><tr><td>Renca</td><td>ATCC</td><td>CRL-2947</td><td></td></tr></tbody></table>

preklinik tedaviler nicel ve boyuna değerlendirme a sinjeneik fare modeli yapmış bir renal hücreli karsinom

A Syngeneic Mouse Model of Metastatic Renal Cell Carcinoma for Quantitative and Longitudinal Assessment of Preclinical Therapies

Böbrek hücreli karsinom (RCC) ABD&#39;de her yıl&gt; 60.000 kişiyi etkiler ve ~ RCC hastalarının% 30&#39;u tanı anda birden metastazları vardır. Metastatik RCC (mRCC&#39;li) sadece 18 aylık bir medyan hayatta kalma süresi ile tedavi edilemez. Immün bazlı girişimler (örneğin, interferon (IFN) ve interlökin (IL) -2) mRCC&#39;li hastaların bir kısmını dayanıklı yanıtları ve multikinaz inhibitörleri (örneğin, sunitinib veya sorafenib) indükleme veya anti-VEGF reseptör monoklonal antikorlar (mAb) olan büyük ölçüde tamamlandı olarak remisyonlar nadirdir, palyatif. mRCC&#39;li hastalar için mevcut tedavilerin bu tür eksiklikleri yeni tedavi protokollerinin geliştirilmesi için dayanak oluşturmaktadır. mRCC için yeni tedavilerin Ön klinik testlerde, bir temel bileşeni uygun bir hayvan modelidir. İnsan durum özetlemek Faydalı özellikleri, herhangi bir tedavi-kaynaklı bağışıklık effecto araştırmak için bir primer böbrek tümörü, böbrek tümörü metastaz ve bozulmamış bir bağışıklık sistemi,R yanıtları ve tümör kaynaklı bağışıklık faktör oluşumu. Bu rapor, bu özelliklerin hepsi var ortotopik mRCC&#39;li fare modeli tarif etmektedir. Tümör böbrek (birincil site) büyüme ve akciğer (metastatik bölge) değerlendirilmesi ve ardından fare böbrek adenokarsinoma hücre hattı Renca kullanarak intrarenal implantasyon yöntemi açıklar.

<html> Renca hücrelerinin Başarılı implantasyon farelerin akciğerlerine böbrek ve metastazı tümör gelişiminde sonuçlanacaktır. Tümör taşıyan ve karşı böbreklerin eksizyonu sonra ıslak doku ağırlığı (g) daha fazla ağırlık olarak (Şekil 1) göre tümör yükünü göstermek için ölçüldü. Renca tümörler sitokeratin 8 ve 18 boyama (Şekil 2) ile imünohistokimya ile tespit edilebilir. uzunlamasına çalışmaları için, bir lusiferaz sentezleyen Renca hücre hattı implante ...

İmünokompetan farelerde böbrek hücreli karsinom ortotopik bir model uygulanması Araştırmacı aynı hayvanda bir primer böbrek tümörü, akciğer metastazların varlığı ile tanımlanan bir klinik açıdan ilgili bir sistem elde edilir. Bu sistem, klinik öncesi, in vivo olarak tedaviler çeşitli test etmek için de kullanılabilir.

Preklinik Tedaviler Nicel ve Boyuna Değerlendirme A sinjeneik Fare Modeli Yapmış Bir Renal Hücreli Karsinom

Renal cell carcinoma (RCC) affects &#62; 60,000 people in the United States annually, and ~ 30% of RCC patients have multiple metastases at the time of ...

Bu prosedürün genel amacı, tümör büyümesi ve metastazının yanı sıra anti-tümör tedavilerinin etkinliğini incelemek için tümör hücrelerinin intrarenal implantasyonu yoluyla farelerde ortotopik renal tümörler oluşturmaktır. Bu yöntem, böbrek kanserinin preklinik bir modelinde yeni bir tedavinin ne kadar etkili olduğu gibi ürolojik onkoloji alanındaki temel soruları yanıtlamak için kullanılabilir. Bu tekniğin temel avantajı, intrarenal tümör implantasyonunun, klinik renal hücreli karsinom patogenezini taklit eden ve akciğer metastazı yapan primer bir renal tümör oluşturmasıdır.Renca tümör hücrelerini hazırlamak için, önce PBS ile duruladıktan sonra hücre kültürünü %0,25 Trypsin ve HBSS ile ayırın. Beş dakika sonra reaksiyonu Complete RPMI Medium ile nötralize edin. Hücreleri santrifüj için konik bir tüpe aktarın ve peleti taze HBSS içinde yeniden süspande edin.Sayımdan sonra, hacmi HBSS içinde 2 × 10⁶ hücre/mL konsantrasyona ayarlayın ve hücreleri 18 gauge iğne uçlu 1 mL'lik bir şırıngaya çekin. Ardından, ısıtma pedinin üzerine steril bir cerrahi örtü yerleştirin ve ayak parmağı sıkıştırma yöntemiyle sedasyon seviyesinin uygun olduğunu doğrulayın. Farenin sol yan bölgesindeki tüyleri temizleyin ve gözlere veteriner pomadı uygulayın.Ardından, implantasyon bölgesini %5'lik povidon iyot antiseptik ile silin ve peritona nüfuz etmemeye dikkat ederek, sol yan bölgeye steril bir skalpelle bir ila bir buçuk santimetrelik tek bir insizyon yapın. Makas kullanarak dermisi peritondan ayırın ve kanı temizlemek için insizyon bölgesini steril pamuklu gazlı bezle tamponlayın. Daha sonra, periton aracılığıyla dalığı konumlandırmak için başı sol elle kavrayın ve yan bölgeyi sağ elle destekleyin.Sağ elin bir parmağını kullanarak farenin altından palpasyon yapın. Böbrek görünür hale gelmelidir. Periton ve böbrek boyunca gerginlik sağlamak için hayvanı sıkıca tutarken, bir asistana 0,1 mililitre Renca hücresini sağlam periton aracılığıyla böbreğin merkezine yavaşça enjekte ettirin.Hücre geri akışını azaltmak için iğneyi beş ila 10 saniye boyunca yerinde tutun. Ardından, insizyonu ince bir kat siyanoakrilat doku yapıştırıcısı ile kapatın. Deney bitiş noktasında, makas kullanarak orta abdomenden başlayıp göğüs kafesi, boyun ve tükürük bezleri boyunca uzanan bir orta hat insizyonu yapın.Makas ve pens kullanarak, akciğer dokusuna zarar vermeden kaburgaları dikkatlice çıkarın ve trakeayı açığa çıkarmak için bağ dokusunu temizleyin. 18 gauge iğne takılmış üç mililitrelik bir şırıngayı %10 India Ink ve PBS ile doldurun. Ardından, trakeanın altına bir ipek sütur geçirmek için pens kullanın ve ardından gevşek bir düğüm atın.Ardından, iğneyi dikkatlice trakeaya yerleştirin ve akciğerleri bir ila bir buçuk mililitre Hindistan mürekkebi çözeltisi ile yavaşça şişirin. Mürekkebin geri akışını önlemek için düğümü trakeanın etrafında sıkıca çekin, ardından iğneyi çıkarın ve şişmiş akciğerleri çıkarmak için bağ dokusunu dikkatlice kesin. Akciğerleri, oda sıcaklığında bir kimyasal çeker ocak içerisinde, beş mililitre Fekete çözeltisi içeren 15 mililitrelik konik bir tüpte sabitleyin.24 ila 48 saat sonra, boyası giderilmiş sağlam akciğerleri çıkarın ve 35 by 10 milimetrelik bir petri kabı içerisinde lobları dikkatlice birbirinden ayırın. Ardından, bir diseksiyon mikroskobu altında beyaz tümör nodüllerinin sayısını belirleyin. Başarılı bir fare intrarenal Renca hücre implantasyonu, böbrekte tümör gelişimine ve akciğerlere metastaza yol açar; tümör taşıyan hayvanlar, tümör implantlanmış böbreklerin artan ağırlığı ile ölçülen güçlü bir tümör yükü sergiler.Gözlemlendiği üzere, Renca tümörleri Sitokeratin sekiz ve 18 için immünohistokimyasal boyama ile tanımlanabilir. Lusiferaz eksprese eden bir Renca hücre hattının implantasyonu, biyolüminesans görüntüleme yoluyla böbrekteki tümör yükünün ve akciğere sıçrayan metastazların takip edilmesine olanak tanır; bu durum daha sonra india link akciğer şişirme yöntemiyle doğrulanmıştır. Uzmanlaşıldığında, bu teknik uygun şekilde uygulandığı takdirde fare başına beş dakikadan daha kısa sürede tamamlanabilir.Bu prosedürü uygularken, doğru bir intrarenal tümör implantasyonu sağlamak için böbreğin periton aracılığıyla net bir şekilde tanımlanması gerektiğini hatırlamak önemlidir. Bu prosedürü takiben, yeni bir ilacın intrarenal tümörlerin büyümesini veya metastazını ne ölçüde etkilediği gibi ek sorulara yanıt vermek için preklinik ilaç testi gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, farelerde ortotopik böbrek tümörleri oluşturmak için intrarenal tümör hücresi implantasyonunun nasıl gerçekleştirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Canlı hayvanlarla ve cerrahi aletlerle çalışmanın tehlikeli olabileceğini; bu prosedür uygulanırken kurumsal hayvan kullanım kılavuzlarına uyulması, steril bir cerrahi alan ve aletlerin korunması gibi önlemlerin her zaman alınması gerektiğini unutmayın.

a-syngeneic-mouse-model-metastatic-renal-cell-carcinoma-for

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kanser Araştırmaları

Bu videoda, renal hücreli karsinomun ortotopik bir fare modelini geliştiriyoruz. Bu model, enjekte edilen böbrekte tekrarlanabilir primer tümörler ve akciğerde metastatik tümörler ile sonuçlanır ve hastalığın ilerlemesinin ve tedavisinin değerlendirilmesine olanak tanır.

Renal Hücreli Karsinom Modelinin Oluşturulması: Kanser Hücrelerinin İntrarenal İmplantasyonu ile Ortotopik RCC Murin Modeli Geliştirme Protokolü

Insan prostat kanser ortotopik bir model akciğer tümör hücreleri ve farklı metastaz oluşumu dolaşan tümör boyutu ölçümü sağlar. Hücreler birincil organı kaçmak gerekir gibi, kan dolaşımına girerek, ve bir ikincil site içine implant, bu modeli etkin insanlarda senaryo tartışıldı.

İnsan Prostat Kanser metastaz Ortotopik fare modeli

Spontan metastatik renal hücre karsinomu (RCC), hastalığın ilerlemesine modelleri klinik olarak anlamlı bir ortamda tedavi değerlendirmek için de kullanılabilir. Bu protokol, kadavradan böbrek tümör hücre implantasyonu, uygun nefrektomi için farklı prosedürler gösterir ve nihayet metastatik yükü ve lokalizasyon görsel ve biyolüminesens puanlama için bir otopsi rehber özetliyor.

Farelerde spontan metastatik renal hücreli karsinom (MRCC) modelleme ardından nefrektomi

Karaciğer metastazlarının klinik öncesi bir sıçangil modeli, hemispleen enjeksiyon tekniği ile gerçekleştirilir.

Karaciğer metastazları Klinik öncesi fare modeli

Kanserin metastaz kansere bağlı ölümlerin önemli bir nedenidir. Biz solid organ tümörlerinin metastaz mekanizmaları çalışmak için bir "hasta" gibi ortotopik singenik fare modeli sistemi kurulması için hayatta kalma cerrahi yönteminin derinlemesine bir açıklama sağlar.

Bir &quot;Hasta gibi&quot; Ortotopik singenik Fare Modeli Hepatoselüler karsinomu metastazı

Bu protokol, dişi C57BL / 6J fareler, tümör büyümesi izlenmesinde sıçangil ortotopik mesane tümörlerinin üretimini tarif eder.

Bir Fare Ortotopik Mesane Tümör Modeli ve Tümör Tespit Sistemi

Metastatik berrak hücreli renal hücreli karsinom kapsamlı bir klinik öncesi araştırma için kapsamlı bir hayvan modeli olmayan bir hastalıktır. Bu protokol hastalık için iki yeni hayvan modelini göstermektedir: ortonik olarak implante edilmiş fare modeli ve tavuk koryoallantoik membran modeli, her ikisi de klinik olgulara benzeyen akciğer metastazı göstermektedir.

Fare Böbreği ve Tavuk Koryoallantoik Membranda Kurulan Metastatik Berrak Hücreli Renal Hücreli Karsinom Modelinin Karşılaştırılması

Açıklanan yaklaşım, akciğerlerdeki metastaz sayısı ve boyutunun ölçülmesine ek olarak meme kanseri metastazı oluşumunun ve büyümesinin gerçek zamanlı olarak izlenmesine olanak sağlamak için deneysel kuyruk ven metastazı tahlillerini in vivo canlı hayvan görüntülemeile birleştirir.

Kuyruk Ven Metastaz Tahlilleri ve Gerçek Zamanlı Vivo Görüntüleme Kombine Kullanımı Meme Kanseri Metastatik Kolonizasyon ve Yük Akciğerlerde Quantify için

Bu, kanser metastazının baskılayıcılarını veya sürücülerini taramak için etkili bir yöntemdir. Bir ifade kütüphanesi ile transdüklenen hücreler, metastatik koloniler oluşturmak için tavuk chorioallantoic membran vaskülatürüne enjekte edilir. İnvazivliği azalmış veya artmış koloniler, fenotiplerini doğrulamak için ekscised, genişletilmiş, reenjected ve son olarak, yüksek verim sıralaması kullanılarak analiz edilir.

Hızlı ve Nicel Intravital Chick Chorioallantoic Membran Modeli Kullanılarak Metastatik Regülatörlerin Keşfi

Bu makalede, melanom metastazının yeni aday aracılarını ve etki mekanizmalarını test etmek için kullanılan tekniklerin bir iş akışı açıklanmaktadır.

Melanom Metastazının Yeni Arabulucularının Belirlenmesi için Sağlam Bir Keşif Platformu

Akciğer kanseri için yeni tedaviler geliştirmenin en büyük zorluğu, bölgesel hastalık metastatik hastalığa ilerlerken tümör mikro çevresinin modellenmesini içerir. Burada, zaman içinde hastalığın in vivo olarak izlenmesine izin veren ortotopik bir sinjeneik akciğer kanseri modeli oluşturmanın basit bir yöntemini açıklıyoruz.

Akciğer Kanserinin Sinjeneik Ortotopik Fare Modelini Oluşturmak için Minimal İnvaziv Bir Yöntem

Öğrenin, farelerde ortotopik böbrek tümörü modeli kurarak renal hücreli karsinomun büyümesini ve metastazını inceleyin. Bu yöntem, yeni tedavilerin etkinliğini değerlendirmek için kullanılır.

Preklinik Tedaviler Nicel ve Boyuna Değerlendirme A sinjeneik Fare Modeli Yapmış Bir Renal Hücreli Karsinom

Daha fazla video keşfet