15 Aralık 2017
Bu el yazması mikrobiyal yetiştirme ortamının terzi tasarımı için genel bir yaklaşımı açıklar. Bu güvenilirlik ve sıvı ortam işleme hızı artırmak için laboratuvar robot tarafından desteklenen yeterli ekimi verimi için deneysel tasarım ve microbioreactor teknoloji Kriging tabanlı birleştiren yinelemeli bir iş akışı tarafından etkin hazırlık.
Yeterli yetiştirme verimi için Kringing tabanlı deneysel tasarım ve mikrobiyoreaktör teknolojisini birleştiren bu yinelemeli iş akışının genel amacı, mikrobiyal yetiştirme ortamının özel olarak tasarlanmış tasarımı için genel bir yaklaşım tanımlamaktır. Bu yöntem, mikrobiyal biyoproses geliştirme alanında, yetiştirme ortamının optimizasyonu, biyoproses koşulları ve ayrıca suş fenotiplemesi gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu yöntem için ilk olarak, küçük metabolit üretimi için optimize edilmiş yetiştirme ortamının heterolog protein üretimi için de en uygun olup olmadığını kendimize sorduğumuzda aklımıza geldi.
Bu tekniğin temel avantajı, deney ve modellemenin akıllı kombinasyonu ile genel geliştirme sürelerini hızlandırmasıdır. Bu prosedürü göstermek, laboratuvarımdan bir doktora öğrencisi olan Roman Jansen olacak. Bu prosedüre, metin protokolünde ayrıntılı olarak açıklandığı gibi çalışma anlayışı ve yöntemlerin tanımı ile başlayın.
Plakaları yüzde 70 etanol ile silerek ve ardından laminer bir akış başlığında kurutarak bir çalışma masasında stok çözeltisi depolaması için derin kuyu plakalarını sterilize edin. Tohum kültürüne, litre başına 25 miligram kanamisin içeren 50 mililitre BHI besiyerini, çalışan hücre bankasından bir alikot ile aşılayarak başlatın. Gerekli tüm laboratuvar malzemelerini robotik çalışma masasına yerleştirin ve stok çözeltilerini ilgili laboratuvar gereçlerine dökün.
Ardından, tohum kültürünün başlaması için son adım olan aşılama aşamasına zamanında ulaşılması için medya hazırlığı için robotik iş akışını başlatın. Optik yoğunluğu 600 nanometre veya OD-600'de ölçerek büyümeyi izlemek için tohum kültürünü yaklaşık iki saat sonra örnekleyin. Her saat büyümeyi izlemeye devam edin.
Yaklaşık beş saat sonra, kültür üç ila dört arasında bir OD-600'e ulaşır ve ana kültürleri aşılamak için kullanılır. Tohum kültürünü sıvı işleyici çalışma masasına yerleştirin ve ortam hazırlama protokolüne devam edin. Aşılamadan sonra yetiştirme mikrotitre plakalarını kapatın.
Ardından, mühürlü yetiştirme MTP'yi Biolector cihazına yerleştirin. Ardından, önceden tanımlanmış yetiştirme protokolünü başlatın. Gerekirse kalan stok çözeltilerini biyogüvenlik yönetmeliklerine göre atın.
Ardından, kültürü robotik çalışma masasından tohumlayın. Sıvı işleyici dekontaminasyon protokolünü başlatmadan önce yeniden kullanılabilir laboratuvar gereçlerini temizleyin. 17 saatlik bir çalışma süresinden sonra ana kültürü durdurun ve verileri metin protokolünde açıklandığı gibi işleyin.
GFP titresini ölçmek için, önce hücre süspansiyonlarını tüm yetiştirme kuyularından önceden hazırlanmış reaksiyon tüplerine aktarın. Ardından, hücresiz süpernatanı elde etmek için bir tezgah üstü santrifüj kullanarak hücre süspansiyonlarını maksimum hızda 10 dakika santrifüjleyin. Daha sonra, her hücreli serbest süpernatanın 200 mikrolitresini şeffaf bir tabana sahip siyah bir 96 oyuklu M-T-P'ye aktarın.
Uygun bir mikroplaka okuyucu kullanarak uyarma için 488 nanometrede ve emisyon dalga boyu için 520 nanometrede GFP'ye özgü floresansı okuyun. GFP floresansını ölçtükten sonra, mikroplaka, Bradford veya BCA testi gibi standart protokollerle hücresiz süpernatantların protein içeriğinin belirlenmesi için doğrudan kullanılabilir. Son olarak, metin protokolünde açıklandığı gibi veri analizine devam edin.
Gösterilen prosedür bir tur deney oluşturur, sonuçlar GFP sinyalinde beklenen maksimum iyileşme ile daha sonraki turlar tasarlamak için kullanılır. Veri değişkenliğini analiz etmek ve deneysel aykırı değerleri tespit etmek için her tura referans deneyler yerleştirilir. Bu kontur grafiği, optimizasyon prosedürüne genel bir bakış sunar.
Üçüncü yineleme yoluyla toplanan veri setinin analizi, optimal bir konsantrasyon aralığı belirleyerek magnezyumun pozitif etkisinin bir sınırlamasını ortaya çıkardı. Bu nedenle, dördüncü yinelemede sadece kalsiyum için konsantrasyon aralığının daha da genişletilmesine karar verildi. Prosedür, GFP sinyalinin doygunluğu bulunana kadar beşinci ve altıncı yinelemede iki kez tekrarlandı.
Bu doygunluk, hücre için mevcut olmayan uygulanan kalsiyum konsantrasyonları için kalsiyum tuzunun çökeltilmesi ile açıklanır. Yedinci yineleme, sınırları daha ayrıntılı olarak keşfetmek için kullanıldı. Doymuş GFP sinyali için ortam bileşenlerinin optimal konsantrasyon aralıkları, istatistiksel bir Z-testi ile güvenilir bir şekilde tanımlanabilir.
Tanımlanan platoyu Kringing kiti araç kutusu kullanılarak belirlendiği ve görselleştirildiği şekilde gösterir. Kringing kiti araç kutusu ücretsiz olarak mevcuttur ve özelliklerinin nasıl kullanılacağını açıklayan ayrıntılı bir eğitimle birlikte gelir. Sunulan protokolün jenerik doğası, diğer mikrobiyal ekspresyon konakçılarının incelenmesi veya hedef proteinin glikozilasyon paterni veya disülfid bağları gibi diğer özelliklerinin optimizasyonu gibi çeşitli uyarlamalara izin verir.
Bir embrion sisteminin entegrasyonu, zamandan büyük tasarruf sağlayan deneysel verimi artırır Tamamen kontrol edilebilir ve etkili biyoreaktörleri amniar sistemlerle değiştirirken, sonuçların ölçeklenebilirliği dikkate alınmalıdır. Matematiksel modelleme ve deneylerin tasarımı, çalışılan hedefe göre ölçüm verilerinin bilgi içeriğini en üst düzeye çıkarmaya yardımcı olur.
Bu çalışma, yinelemeli bir iş akışı kullanarak mikrobiyal kültür ortamlarının kişiye özel tasarımı için genel bir yaklaşımı tanımlamaktadır. Bu yöntem, kültürleme verimliliğini ve güvenilirliğini artırmak için Kriging tabanlı deney tasarımı ile mikrobiyoreaktör teknolojisini birleştirmektedir.
Bu protokol, suş geliştirme ve biyoproses verimliliğinde kritik bir adım olan heterolog protein üretimi için mikrobiyal kültür ortamlarının optimizasyonu şeklindeki biyofarmasötik zorluğu ele almaktadır. Kriging tabanlı deney tasarımı ile mikrobiyoreaktör teknolojisini ve robotik sıvı taşıma sistemlerini entegre eden bu yöntem, ortam optimizasyon döngülerini hızlandırır ve ortam formülasyonundaki öngörülebilirlik güvenini artırır. Genel ve uyarlanabilir olan bu iş akışı, rekombinant protein verimini ve proses dayanıklılığını artıran optimal besin koşullarının hızlı ve veri odaklı bir şekilde tanımlanmasını sağlayarak erken keşif kararlarını destekler.
Bu yöntem, medya optimizasyonunun protein ekspresyon seviyelerini ve sonraki süreçlerin uygulanabilirliğini doğrudan etkilediği, suş mühendisliğinden öncü madde tanımlamaya kadar uzanan keşif sürekliliğine uygundur.