Name: İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak Zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: Öğrenin fare modellerinde embriyonik, yenidoğan ve yetişkin aşamalarda Zika virüsü beyin enfeksiyonlarını in vivo olarak çalışmak için intraserebral enjeksiyon yöntemini. Bu teknik mikrosefali ve nörogelişimsel bozuklukların patolojisini anlamaya yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Dr Abdellatif Benraiss Rochester Üniversitesi rehberlik ve tartışmalar için yetişkin cerrahi ve kardiyolojik teknikleri öğrenme ile ilgili kabul etmek istiyorum. Yazarlar ayrıca Dr. James Lauderdale adlı UGA onun stereotaksik ekipman ve tartışmalar kullanımı için ilgili bu tekniği için metodoloji ve ilerlemesi için araştırma üniversite bilim adamları (yay) temel için ayarlamak kabul etmek istiyorum onların ve bizim NIH desteği (R01NS096176-02, R01NS097231-01 & F99NS105187-01 NINDS verir).

Tüm hayvan iletişim kuralları takip ile University of Southern California ve Georgia Üniversitesi hayvan bakımı yönergeleri kullanın. Ötanazi yöntemleri hamile barajlar ve yetişkinler için onaylanmış protokolleri göre gerçekleştirilir: karbon dioksit boğulma, ötenazi emin olmak için bir ikincil yöntem olarak servikal yerinden çıkması ve ardından. Yenidoğan pups-are euthanized tarafından işten çıkarma.
Dikkat: Aşağıdaki protokol patojenik virüs işleme içerir. Virüs taşıma sırasında gerekli tedbirleri alınmalıdır. Tüm iletişim kurallarını kullanmadan uygun kurumsal Komitesi önce tarafından onaylanması gerekir.
1. embriyonik intraserebral aşılama Zika virüs
<ol><li>Zamanlanmış hamile çiftleşme için öğle E0.5 çiftleşme sonra günün göz önünde bulundurun. Günün sonunda farelerin çifti ve prizler çiftleşme zamanı değişkenliği azaltmak için sabahın erken saatlerinde kontrol edin.</li>
	<li>Ameliyat öncesi cam iğne hazırlayın. İğneyi çek ve 1/3'te, boy kesme, sonra gözenek 50-70 µm. onay iğne ipuçları kalite ve kırılması için bir stereoscope altında şekilde boyutlandırılır kadar micropipette kıyma makinesi su damlalıkla kullanarak 45 ° açıyla keskinleştirmek.</li>
	<li>Virüs buzda aliquot devam et. Ameliyat öncesi, ZIKV enjeksiyon karışım hazır cam enjeksiyon iğne yükleyin. Gaz geçirmez enjeksiyon şırınga (50 µL cilt), radarı-kilit ek ve boru montaj ve mineral yağ ile boru ile birleştirilmiş şırınga doyurmak. Bir kez doymuş, iğne takmak ve çizmek ~ iğne içine 6-7 µL ZIKV (~ 1 µL olduğu 1,7 × 106 TCID50/mL).</li>
	<li>(İçin kafa içi enjeksiyon) embriyonik gün E14.5 embriyo veya ketamin hidroklorür (80-100 mg/kg) ve steril serum fizyolojik çözümde seyreltilmiş xylazine (5-10 mg/kg) (intrauterin enjeksiyon için) E10.5 embriyo ile hamile C57BL/6J veya 129S1/SvImJ fareler enjekte intraperitoneally anestezi dönemde ikna etmek için. Alternatif olarak, anneler ile izlenen isoflurane isoflurane Solunduğunda, atık gaz atma ile sağlanan uygunsa anestezi. Buprenorfin-subkutan analjezi ikna etmek için SR (0.5-1.0mg/kg) enjekte.</li>
	<li>Çimdik testi anneler ayak ucu veya kuyruk anestezi ve sonra onları sırtüstü bir hayvan tarafından onaylanan Isıtma yastığını (100 x 200 2.5 mm termal pad) üzerinde yatıyordu. Ayak çimdik forseps steril değildir ve doku cerrahisinde işlemek için kullanılır. Alternatif olarak, eldivenli elleri ayak çimdik çekilme refleks test etmek için kullanılabilir. Not: Isıtma yöntemi tercih edilen perioperatif için kurumsal senin hayvan hastalıklarıyla ilgili personel için bakın. Bir kapak bu Isıtma yastığını ve hayvan yerleştirildi.</li>
	<li>Oftalmik merhem gözler için ekleyin.</li>
	<li>Karın yüzeyine tıraş ve iyot ve alkol ile üç kez sterilize. İyot ve alkol mendil alternatif; cerrahi sitesinden dairesel bir hareketle silin.</li>
	<li>Belgili tanımlık kesme ve aletleri kirlenmesini önlemek için steril bezler ile cerrahi site çevresindeki deri asmak. Not: Örtüsü açılış hazır cerrahi site daha büyük olmamalıdır; kıl örtüsü açılış görülmelidir.</li>
	<li>Annenin cilt karnının uzak Forseps ile pinch ve alt karın medial sagittal satır 1-1.5 cm satırında steril cerrahi makasla kesilmiş. Bu deri içine keser ve böylece embriyo şimdi maruz kalan karın boşluğuna daha fazla. Not: Cerrahi makas cilt ve Periton katman deşmek için kullanılır. Steril aletlerin ve eldiven her ameliyat için kullanılır.</li>
	<li>Bir yarık ortasında küçük bir steril gazlı bez kesme ve cerrahi açılması üzerine uygulayın. Steril serum nemlendirin. Steril gazlı bez, aynı anda bir rahim boynuz üzerinde odaklanarak daha fazla 4-5 embriyo kaldırmamanız özenle üzerinde dinlenmeye yarık aracılığıyla embriyo çek.</li>
	<li>Öncesinde ve onlar kuru değil emin olmak için aşı boyunca steril serum fizyolojik ile embriyo hidrat. Hangi embriyo enjekte edilir ve konumlarını rahim boynuz içinde takip edin. Embriyolar rahim içindegeliştirirken konumu değişmez olarak bireysel embriyo böylece ayrı deney kabul edilir. (İntrauterin enjeksiyon için 1,15 adıma devam edin).</li>
	<li>Yavaşça bir spatula embriyo başının altına koyun. Embriyo baş ve kafatası dikiş görselleştirmek için bir lamba ile de aydınlatmak. Not: Aseptik teknik takip steril cerrahi eldiven ve aletleri de dahil olmak üzere. Sonra steril olmayan öğeleri (lamba) manipüle, eldiven steril aletlerin ve alanları işleme önce yeni steril eldiven ile değiştirilmesi.</li>
	<li>Pozisyon kadar embriyo başkanı doğrudan rahim duvara itti ve yerde sigara dominant el ile düzenlenen lamba (görünürlük ensenizdeki) ve ücretsiz parmak ile embriyo manipüle tarafından başından. Not: embriyo konumlandırma önemli bir bölümüdür ve en pratik ister tekniği değil. Çok fazla parmak baskı embryonic membranlar lethality için önde gelen zarar verebilir ve yeterli basınç enjeksiyon zorlaştırabilir.</li>
	<li>Bir kılavuz olarak kafatası dikiş boyunca çalışan kan damarları kullanın. ZIKV virüs enjekte (~ 1 µL, 1,7 × 106 TCID50/mL Meksika ayrı tut MEX1-44), E14.5 embriyo beyinlerinin monte şırınga ve iğne ile lateral ventrikül içine. Denetim medya sahte enjeksiyon kullanın.</li>
	<li>Hamilelik tutma geliştirmek için viral enjeksiyon yumurtalık yanındaki iki embriyo ve üst vajina (şekil 1A) yanındaki iki embriyo kaçının. Genel olarak, 6 embriyo ameliyat süresini azaltmak ve embriyo kaybını önlemek için çöp enjekte edilir.</li>
	<li>Enjekte embriyolar tekrar hamile barajlar koyun ve karın boşluğu ile doldurun ~ 0.5 mL steril serum fizyolojik. Kapatmak için önce her iki karın Periton kas dikiş ve sonra ikinci olarak dış deri tabakası ile 4.0 steril Dikiş dikiş. Kesintiye uğramış dikiş kullanmak tercih edilir; yara yırtılması olasılığı olup olmadığını fare dikişi çiğniyor.</li>
	<li>Kısmen gerekirse ısıtmalı olmayan bir alana kaçmak fare izin vermek için bir Isıtma yastığı dinlenme bir kafes içinde fareyi getirin. (1-2 h) kurtarmak yaparken anneler anesteziden izleyin. Ameliyat için kez bireysel deneyler göre çeşitli sonra embriyo geliştirmek.</li>
	<li>
İntrauterin enjeksiyon
	<ol>
<li>Bir rahim boynuz ve maruz embriyo ile 100 μL Zika virüs (100 μL DMEM askıya 106 TCID50 adet), enjekte için 1 mL şırınga ve 27 G iğne kullanın veya denetim orta, intrauterin uzaya veya plasental doku içine. Not hangi embriyo embriyonik evre gruptakiler için enjekte etmiş. Bkz: daha fazla bilgi18için daha önce yayımlanmış çalışma.</li>
		<li>Enjekte embriyolar tekrar hamile barajlar koyun ve karın boşluğu ile doldurun ~ 0.5 mL steril serum fizyolojik. Kapatmak için ilk karın Periton kas dikiş ve sonra ikinci olarak dış deri tabakası ile 4.0 steril Dikiş dikiş. Kesintiye uğramış dikiş kullanmak tercih edilir; yara yırtılması olasılığı olup olmadığını fare dikişi çiğniyor.</li>
		<li>Kısmen gerekirse ısıtmalı olmayan bir alana kaçmak fare izin vermek için bir Isıtma yastığı dinlenme bir kafes içinde fareyi getirin. (1-2 h) kurtarmak yaparken anneler anesteziden izleyin. Ameliyat için kez bireysel deneyler göre çeşitli sonra embriyo geliştirmek.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. yenidoğan intraserebral aşılama Zika virüs: P0/P1
<ol><li>Gaz geçirmez enjeksiyon şırıngaları (10 µL cilt) ve iğneler tıkalı emin olun. Temiz ve test 26'lik iğne ile üç 20 mL tek kullanımlık şırınga yükleyerek: bir serum fizyolojik ile % 70 etanol ile diğeri çözümleri temizlemek için hava ile. % 10 çamaşır suyu ile sterilize etmek için virüs enjeksiyon daha önce kullandıysanız.</li>
	<li>Virüs buz üzerinde tutun. Şırınga ölü hacim azaltmak için serum fizyolojik ile doldurarak şırınga yük ve 0,75 µL serum fizyolojik çözüm enjeksiyon malzemeden ayırmak için hava çizin.</li>
	<li>Isıtılan oksijen kurtarma odası enjekte yavrular için ayarlayın. Bir Isıtma blok kullanarak, steril bir gazlı bez ile closeable bir kap (gibi bir boş İpucu kutusunu) yerleştirin ve serum nemlendirmek. Enjeksiyonları başlatmadan önce Onceden.</li>
	<li>Pompa ve denetleyicisi ile birlikte microinjector kadar ayarla. Belirli şırınga aygıt türü kodu belirlemek (Yani, bir 10 µL şırınga, aygıt türü için bir "D"). Enjeksiyon hızı belirler.</li>
	<li>Cerrahi kurulum yanında postnatal gün 0 veya 1 pups (P0/P1) toplamak. Enjeksiyon şırınga virüs ile yükleyin. Yavru baş bağlama % 70 ile dezenfekte alkol.</li>
	<li>Belgili tanımlık pups içinde ince bir tabaka halinde gazlı bez sarın ve onları tamamen buz anestezik bir devlet elde etmek için göm. Yavrular cryoanesthetized 5 dk. belgili tanımlık pups yeterince yanıt olmadan bir kuyruk/ayak çimdik gerçekleştirerek enjeksiyon için anestezi sağlamak için vardır. Bu kabaca bir anestezik devletin 15 dk verir.</li>
	<li>Yavru fok kafa monte yerleştirin, iyot ve etanol ile baş yüzey (üç kere) sterilize ve steril mendil ile kuru silin (isopropanol veya % 70 alkol).</li>
	<li>Lambda siyah bir marker ile işaretlemek ve lambda stereotaksik enstrüman kullanarak koordinatlarda kaydedin. Göz ve lambda stereotaksik koordinatları baştan Önlem lambda mesafeden kenarına (için her iki hemisferlerin her ikisi de enjekte Eğer) göz lambda 2/5 mesafe hesaplamak.</li>
	<li>Enjeksiyon yeri için bir delik oluşturmadan önce anestezik derinlik yeniden denetleyin. Dikkatli ve yüzeysel olarak enjeksiyon iğne bir giriş oluşturmak için kafa derisi ve kafatası (kafatası içinde Yenidoğan Bebeklerin çok yumuşaktır) enjeksiyon yeri delmek için 26'lik iğne kullanın.</li>
	<li>Enjeksiyon iğne delinmiş konumda alt ve bir kez iğne sadece cilt sızmayı başardı, enjeksiyon yeri (lateral ventrikül) için bir 1 mm derinliği stereotaksik enstrüman kullanarak hesaplamak.</li>
	<li>Sonra iğneyi enjeksiyon derinlik indirilir, enjekte etmek microinjector programı: 1 µL virüs enjekte yaklaşık 1 µL 1,5 dk 10 nL/s hızında (~ 1 μl 3,4 x 105 TCID50/mL ZIKV).</li>
	<li>Enjeksiyon bitirdiğinde, bekle 30 s ve iğne geri döner vidalı (dorsally) tarafından 0,5 mm adımlarla 30 bekleyen her Artım sonra s. Not: Bu kaçağı enjekte virüs azaltır.</li>
	<li>Bir kez kaldırıldı, hızlı bir şekilde iğne ve şırınga ile daha fazla virüs yüklemek (farklı virüs veya sahte denetimleri var olmak yüklü ayrı şırınga/iğne) / Kaldır yavru fok baş bağlama Önceden ısıtılmış oksijen odasına. Yavru Fok Kurtarma ölçmek için birkaç dakikada izlemek. Belgili tanımlık pups onun çöp ile değiştirin.</li>
</ol>3. yetişkin intraserebral aşılama Zika virüs
<ol><li>Anestezi ikna etmek için steril serum fizyolojik içinde seyreltilmiş yetişkin fareler ketamin hidroklorür (80-100 mg/kg) ve xylazine (5-10 mg/kg) ile intraperitoneally enjekte. Buprenorfin-subkutan analjezi ikna etmek için SR (0.5-1.0mg/kg) enjekte. Ayak/kuyruk tutam anestezik durumuna emin olun ve daha sonra bu stereotaksik araç (ile bir Isıtma yastığı) baş ameliyat sırasında hareketsiz için bağlama için fare.</li>
	<li>Oftalmik merhem fare gözünde ameliyat sırasında kurumasını önlemek için gözler ekleyin. Kulakları başına gözler arkasında başlayan kafa derisi tıraş. Maruz kalan deri iyot ve % 70 ile sterilize alkol üç kez. İyot ve alkol mendil alternatif; cerrahi sitesinden dairesel bir hareketle silin.</li>
	<li>Cilt incising öncesinde anestezik derinlik yeniden denetleyin. Bir neşter kullanmadan, baş medial sagittal hattı boyunca 0.5 cm kesi sterilize konumda bregma açığa olun. Pamuk uçlu bir aplikatör ile çalışırken bir hareket kullanarak meninjeal dokuların kafatası yüzeyini aynı anda enjeksiyon yer uzak cilt iterek süre temizleyin.</li>
	<li>Bregma başlayarak, cerrahi matkap hizalayın ve aşağıdaki koordinatları kullanarak enjeksiyon siteleri belirlemek: AP -0,5 mm, ML: 1,5 mm kullanarak denetim ayak pedalı. +/-, ayrıntısına kadar bir delik için iğne temizlenmiş oldu, yavaş yavaş sadece kemik matkap gibi kafatası.</li>
	<li>Matkap microinjector pompa ve gaz geçirmez şırıngayı (10 µL cilt) stereotaksik değiştirin. Küçük hava kabarcığı tuzlu çözüm ve virüs arasında bırakarak, çizmek ~ 4-5 µL şunun. Aygıt türü kodu belirli şırınga birimin (yani, D 10 μL birim şırınga için) belirler. İğneyi DV için indirin:-1.5 mm beyin yüzey. 1 µL virüs enjekte 10 nL/s, yaklaşık 1 µL 1,5 dk enjekte oranında program.</li>
	<li>Enjeksiyon bitirdiğinde, bekle 30 s ve iğne 0,5 mm aralıklarla 30 bekleyen kaldırmak her dönüş sonra s. Bu geri tepme ve kaçak enjekte şunun azaltır.</li>
	<li>İnjection(s) bittiğinde, forseps cilt gevşetmek ve maruz kafatası yeniden elde etmek için kullanın. Kafa derisi birlikte 4.0 dikiş kullanarak ve fare stereotaksik araç kaldırma dikiş. Gerekirse sigara ısıtmalı bir bölgeye kaçmak ve onlar (1-2 h) kurtarmak yaparken izleyin için fareyi anesteziden izin için kısmen bir Isıtma yastığı üzerinde dinlenme bir kafes içinde fare yer.</li>
</ol>

<ol><li>Dreher, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectrum+of+Disease+and+Outcome+in+Children+with+Symptomatic+Congenital+Cytomegalovirus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Pediatr%22%5BJournal%5D)">Spectrum of Disease and Outcome in Children with Symptomatic Congenital Cytomegalovirus Infection.</a> J of Pediatr. 164 (4), 855-859 (2014).</li>
<li>Lanzieri, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+outcomes+of+children+with+symptomatic+congenital+cytomegalovirus+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Perinatol%22%5BJournal%5D)">Long-term outcomes of children with symptomatic congenital cytomegalovirus disease.</a> J of Perinatol. 37 (7), 875-880 (2017).</li>
<li>Naseer, M. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+WDR62+mutation+causes+primary+microcephaly+in+a+large+consanguineous+Saudi+family%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Saudi+Med%22%5BJournal%5D)">A novel WDR62 mutation causes primary microcephaly in a large consanguineous Saudi family.</a> Ann Saudi Med. 37 (2), 148-153 (2017).</li>
<li>Abuelo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcephaly+Syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Pediatr+Neurol%22%5BJournal%5D)">Microcephaly Syndromes.</a> Semin Pediatr Neurol. 14 (3), 118-127 (2007).</li>
<li>Nicholas, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((WDR62+is+associated+with+the+spindle+pole+and+is+mutated+in+human+microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">WDR62 is associated with the spindle pole and is mutated in human microcephaly.</a> Nat Genet. 42 (11), 1010-1014 (2010).</li>
<li>Pulvers, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+mouse+Aspm+%28abnormal+spindle-like+microcephaly+associated%29+cause+not+only+microcephaly+but+also+major+defects+in+the+germline%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mutations in mouse Aspm (abnormal spindle-like microcephaly associated) cause not only microcephaly but also major defects in the germline.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (38), 16595-16600 (2010).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+disrupts+neurovascular+development+and+results+in+postnatal+microcephaly+with+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection disrupts neurovascular development and results in postnatal microcephaly with brain damage.</a> Development. 143 (22), 4127-4136 (2016).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Disrupts+Neural+Progenitor+Development+and+Leads+to+Microcephaly+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Disrupts Neural Progenitor Development and Leads to Microcephaly in Mice.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 672(2016).</li>
<li>Miki, T., Fukui, Y., Takeuchi, Y., Itoh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+study+of+the+effects+of+prenatal+X-irradiation+on+the+development+of+cerebral+cortex+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">A quantitative study of the effects of prenatal X-irradiation on the development of cerebral cortex in rats.</a> Neurosci Res. 23, 241-247 (1995).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population-based+microcephaly+surveillance+in+the+United+States%2C+2009+to+2013%3A+An+analysis+of+potential+sources+of+variation%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res+Part+A+Clin+Mol+Teratol%22%5BJournal%5D)">Population-based microcephaly surveillance in the United States, 2009 to 2013: An analysis of potential sources of variation.</a> Birth Defects Res Part A Clin Mol Teratol. 106 (11), 972-982 (2016).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+Prevalence+of+Birth+Defects+Associated+with+Congenital+Zika+Virus%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Morb+Mortal+Wkly+Rep%22%5BJournal%5D)">Baseline Prevalence of Birth Defects Associated with Congenital Zika Virus.</a> MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 66 (8), 219-220 (2017).</li>
<li>Mlakar, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Associated+with+Microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Associated with Microcephaly.</a> N Engl J Med. 374 (10), 951-958 (2016).</li>
<li>Jaenisch, T., Rosenberger, D., Brito, C., Brady, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+of+microcephaly+after+Zika+virus+infection+in+Brazil%2C+2015+to+2016%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+World+Health+Organ%22%5BJournal%5D)">Risk of microcephaly after Zika virus infection in Brazil, 2015 to 2016.</a> Bull World Health Organ. 95 (3), 191-198 (2017).</li>
<li>Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+developmental+time+across+mammalian+species%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Translating developmental time across mammalian species.</a> Neuroscience. 105 (1), 7-17 (2001).</li>
<li>Driggers, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infection+with+Prolonged+Maternal+Viremia+and+Fetal+Brain+Abnormalities%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infection with Prolonged Maternal Viremia and Fetal Brain Abnormalities.</a> N Engl J Med. 374 (22), 2142-2151 (2016).</li>
<li>Semple, B. D., Blomgren, K., Gimlin, K., Ferriero, D. M., Noble-Haeusslein, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+development+in+rodents+and+humans%3A+Identifying+benchmarks+of+maturation+and+vulnerability+to+injury+across+species%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Brain development in rodents and humans: Identifying benchmarks of maturation and vulnerability to injury across species.</a> Prog Neurobiol. 106, 1-16 (2013).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infects+Neural+Progenitors+in+the+Adult+Mouse+Brain+and+Alters+Proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infects Neural Progenitors in the Adult Mouse Brain and Alters Proliferation.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 593-598 (2016).</li>
<li>Vermillion, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrauterine+Zika+virus+infection+of+pregnant+immunocompetent+mice+models+transplacental+transmission+and+adverse+perinatal+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Intrauterine Zika virus infection of pregnant immunocompetent mice models transplacental transmission and adverse perinatal outcomes.</a> Nat. Commun. 8, 14575(2017).</li>
<li>Goodfellow, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Induced+Mortality+and+Microcephaly+in+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Induced Mortality and Microcephaly in Chicken Embryos.</a> Stem Cells Dev. 25 (22), 1-27 (2016).</li>
<li>Dick, G. W. A., Kitchen, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+%28I%29.+Isolations+and+serological+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+R+Soc+Trop+Med+Hyg%22%5BJournal%5D)">Zika Virus (I). Isolations and serological specificity.</a> Trans R Soc Trop Med Hyg. 46 (5), 509-520 (1952).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+African+Zika+virus+MR-766+is+more+virulent+and+causes+more+severe+brain+damage+than+current+Asian+lineage+and+Dengue+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The African Zika virus MR-766 is more virulent and causes more severe brain damage than current Asian lineage and Dengue virus.</a> Development. , (2017).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Burada açıklanan ZIKV intraserebral aşı beyin gelişiminde ZIKV kaynaklı zararların soruşturma için embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin aşamalarında için bir yöntemdir. Basit olsa da, müfettişlerin çalışma kalitesi ve güvenliği ile ilgili bu emin olmak için gerçekleştirmeniz gereken bazı hususlar vardır.
DENV ZIKV için flavivirus cins yakından ilgilidir. DENV Pediatrik beyin bozukluğu insanlarda nedensel bağlanmamış. DENV2 başarılı bir şekilde bulaştırmak ve gelişmekte olan beyin embriyonik aşıla...

Microcephaly hastalarda ortalama baş boyutundan küçük ile karakterize arızalı beyin gelişimi kaynaklanan bir durumdur. Microcephaly çocuklarla gelişimsel gecikme, nöbet, Fikri Engellilik, işitme kaybı, görme sorunları ve hareket ve denge, diğerlerinin yanı sıra, hastalığın şiddetine bağlı olarak sorunları kapsayan belirtiler bir dizi Sergi ve 1,2,3neden. Doğada, genetik, bulaşıcı Ajan ve microcephaly4,5,6,7,8neden için bağlantılı çevresel faktörler ile multifaktöriyel bir durumdur, 9. 2015-2016 ZIKV patlak önce10CDC göre Amerika Birleşik Devletleri'nde microcephaly ile 10.000 doğumlular 8 çocuktan tanısı konuldu. Üzerinde Şubat 1st 2016 Dünya Sağlık Örgütü Zika virüs bir halk sağlığı acil durum uluslararası endişe microcephaly tanı anneler11, ZIKV enfeksiyonu ile ilişkili endişe verici artış nedeniyle ilan 12. CDC ZIKV olgu Amerika Birleşik Devletleri'nde son çalışmada anne ZIKV enfeksiyon sonuçlarında bir 20-fold etkilenmemiş bireyler ve enfekte ZIKV annelerin % 4'ü ABD karşılaştırıldığında microcephaly geliştirmek bir çocuk riski içinde sonuçlandı öneriyor microcephaly11çocuklu. Microcephaly ilişkili doğum kusurları ZIKV enfeksiyon Brezilya gebelikte oranı virüslü anneler, Latin Amerika'da diğer faktörler riski için katkı olabilir gösteren bebeklerde % 17'e kadar etkilediğini bildirilmiştir 13. biliyoruz ZIKV microcephaly ve Escherichia türleri içinde nöral progenitör hücre (NPC) nüfus7,8,14neden olabilir iken, gelişmekte olan ZIKV tam patogenezinde beyin zor kalır. ZIKV enfeksiyonu ile ilişkili beyin anormallikler altta yatan hastalık mekanizmaları daha ayrıntılı araştırmaya hayvan modelleri geliştirmek önemlidir.
Doğrudan ZIKV beyin gelişimi etkisini incelemek için ilk embriyonik gün 14,5 (E14.5) beyin intraserebral aşı ile ZIKV7kullanarak fare modeli geliştirdi. İlk üç aylık dönemde insan gebelik14sonu temsilcisi olarak kabul edilir gibi bu aşamada seçildi. Yavrular bu embriyonik intraserebral enjeksiyon yöntemi ile doğum sonrası gün 5 (P5) kadar yaşayabilir (~ 1.7 x 106 doku kültürü infektif doz (TCID50/mL) 1 µL). Bu doğum sonrası pups fenotipleri benzer şekilde genişlemiş ventriküller, nöronal kayıp, aksonlar rarefaction, astrogliosis ve mikroglial harekete geçirmek12,15gibi enfekte insan bebeklerde gözlenen bir dizi Sergi. Yeni doğmuş fare beyin nispeten olgunlaşmamış, benzer-e doğru orta gebelik16insan beyni gelişim aşaması ve fare beyin gelişimi ana postnatal bileşeni içerir. Daha sonra gebelik sahne enfeksiyonlar çalışmaya, postnatal enfeksiyon için bir yöntem de tanımlanır. Yenidoğan Bebeklerin ZIKV, P1 ile enfekte kadar 13 gün sonrası enjeksiyon için hayatta kalmak edebiliyoruz. Yetişkin sahne kan tarihi enfeksiyon fare içinde17 gerektiriyor ama daha önce açıklanan IRF-3, -5,-7 Çift Kişilik nakavt zorlanma interferon (IFN) düzenleyici faktörü (IRF) transkripsiyon faktörleri. Bu iletişim kuralı ZIKV intraventricularly yetişkin fare modelinde antiviral yanıt devre dışı bırakma aşmak için aşı yöntemi açıklar. Bu fare bağışıklık sistemi kaçınmanızı sağlar iken, bu rota enjeksiyon doğrudan tipik yolu enfeksiyonu taklit değil. Bu tutarsızlık adrese doğrudan, deneyci intrauterin enfeksiyon ZIKV kafa içi yol yerine gerçekleştirebilirsiniz. Önceki iş18kabul, kısaca bu embriyonik enfeksiyon Protokolü Bu teknikte anlatmıştık.
Bu teknik ile uygulanan Zika virüs suşları Meksika izole MEX1-447,19 içerir ve Afrikalı Bay-766 194720dakika içinde izole yalıtır. Zika MEX1-44 Ocak 2016 gelen virüslü bir Aedes aegypti içinde Chiapas, Meksika içinde izole sivrisinek. Biz Teksas Üniversitesi Tıp Şubesi, Galveston (UTMB) aracılığıyla izni ile bu virüs elde. Buna ek olarak, dang virüs serotip 2 (DENV2) bu tekniği kullanarak bir karşılaştırma çalışmada aşı. DENV2, zorlanma S16803 (sırası GenBank GU289914), 1974 yılında Tayland hasta bir örnekten izole edildi ve C6/36 hücrelerde pasajlı. Virüs Vero hücreleri iki kez dünya referans Merkezi tarafından ortaya çıkan virüs ve Arboviruses (WRCEVA) için fare enjeksiyonları önce pasajlı. Bu bu teknik aynı şekilde çalıştığını gösterir ZIKV ve beyin gelişimi üzerinde etkisi diğer flaviviruses farklı suşları için iyi.

<table><tbody><tr><td>Esnek Tahrik Mili Matkap Asılı Motor</td><td>Leica</td><td>39416001</td><td></td></tr><tr><td>Fare Stereotax Kopf</td><td></td><td>04557R</td><td></td></tr><tr><td>Micro4 Microsyringe Pompa Kontrol Cihazı</td><td>WPI</td><td>SYS-MICRO4</td><td></td></tr><tr><td>UMP3 UltraMicroPump</td><td>WPI</td><td>UMP3</td><td></td></tr><tr><td>Modulamp</td><td></td> Schott-Luer-lock <td></td><td></td></tr><tr><td>hortumu (19 gauge)</td> <td>Hamilton</td><td>90619</td><td></td></tr><tr><td>Erime Noktası Kılcal</td><td>Kimble</td><td>34500-99</td><td>Cam iğne</td></tr><tr><td>Fluoro-Max: Kırmızı Floresan Mikro Küreler</td><td>Thermo Scientific</td><td>R25</td><td>Seyreltme yok; Pratik enjeksiyonlar için kullanın</td></tr><tr><td>10 ve mikro; L, Model 1701 LT SYR</td><td>Hamilton</td><td>80001</td>, <td>embriyonik aşılama</td></tr><tr><td>için 10 ve mikro; L, Model 1701 RN SYR, Küçük Çıkarılabilir NDL, 26s ga, 2 inç, nokta stili 2</td><td>Yenidoğan/yetişkin için</td><td>Hamilton</td><td>80030</td></tr><tr><td>4-0 Ethilon Naylon Sütürler</td><td>Etikon-Mineral</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Yağ</td><td>VWR-mikropipet</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>çektirme</td><td>Sutter Instruments</td><td>P-1000</td><td></td></tr><tr><td>Mikropipet Öğütücü</td><td>Narishige</td><td>EG-44</td><td></td></tr><tr><td>Fastgreen FCF Boya</td><td>Sigma</td><td>F7252</td><td>%0.5 Boya</td></tr><tr><td><güçlü>Antikorlar</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flavivirüs grubu antijen antikoru</td><td>Millipore</td><td>MAB10216</td><td>ms IgG2a 1:400 enjekte eder (Şekil 2, Şekil 3)</td></tr><tr><td>Pax6</td><td>DBHB</td><td>Pax6-s</td><td>ms IgG1 1:20</td></tr></tbody></table>

İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, yenidoğan ve yetişkin

Establishing Mouse Models for Zika Virus-induced Neurological Disorders Using Intracerebral Injection Strategies: Embryonic, Neonatal, and Adult

Zika (ZIKV) bir flavivirus Kuzey, orta ve Güney Amerika'da şu anda endemik virüstür. Şimdi ZIKV microcephaly ve ek beyin anormallikler neden olabilir kuruldu. Ancak, gelişmekte olan beyin ZIKV patogenezinde temel mekanizması belirsizdir. İntraserebral cerrahi yöntemler sık nörolojik araştırma soruları normal ve anormal beyin gelişimi ve beyin fonksiyonu hakkında için kullanılır. Bu iletişim kuralı klasik cerrahi teknikler kullanır ve modeli ZIKV ilişkili insan nörolojik hastalık için fare sinir sisteminde izin yöntemleri açıklar. Doğrudan beyin aşı virüs iletim normal moda model değil iken, yöntemi müfettişler sonucu gelişen beyin ZIKV enfeksiyon sonra ilgili hedeflenen sorular sormak sağlar. Bu iletişim kuralı ZIKV, İntraventriküler aşılama embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin aşamaları açıklar. Hakim sonra bu yöntem sadece gerçekleştirmek için birkaç saat sürer bir basit ve tekrarlanabilir teknik haline gelebilir.

Bizim enjeksiyon yöntemleri embriyonik beyin ZIKV aşılama için temsil edici görüntüleri intraserebral enjeksiyonları (şekil 1A) resmeden diyagramlarında gösterilen ve intrauterin ve gösteren intraplacental enjeksiyonu (şekil 1B), yol hamile Barajı ve embriyo görüntülenebilir ve ameliyat için (embriyonik aşı Protokolü) odaklı. Şekil 2A ZIKV (MEX1-44) enfeksiyon (flavivirus grup antijen, yeşil karşı an...

Burada fare Zika virüs kaynaklı microcephaly bir model oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu iletişim kuralı embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin-sahne intraserebral aşılama Zika şunun için yöntemler içerir.

İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak Zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin

The Zika virus (ZIKV) is a flavivirus currently endemic in North, Central, and South America. It is now established that the ZIKV can cause microcephaly ...

Burada sunulan cerrahi yöntemlerin genel amacı, intrakraniyal Zika virüsü enfeksiyonunun in vivo modellerini oluşturmaktır. Bu yöntem, patoloji ve beyindeki Zika virüsü enfeksiyonunun mekanizması gibi hem erken hem de sonraki gelişim aşamasında ve yetişkin aşamasında bu alandaki kilit sorunun ele alınmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin en büyük avantajı, beynin enfeksiyon yönünün kolayca elde edilebilmesidir.Bu tekniğin etkileri, Zika virüsünün neden olduğu mikrosefali veya diğer nöro-gelişimsel bozuklukların tedavilerine veya teşhislerine kadar uzanır. Bu yöntem Zika virüsü patogenezi hakkında bilgi sağlayabilse de, dang virüsü gibi beyindeki diğer flavivirüs enfeksiyonlarını incelemek için de uygulanabilir. Ameliyattan hemen önce, Zika virüsü enjeksiyon karışımını, önce gaz geçirmez 50 mikrolitrelik enjeksiyon şırıngası Luer-lock ekini ve borusunu monte ederek hazırlanmış bir cam enjeksiyon iğnesine yükleyin.Monte edilmiş şırıngayı ve hortumu mineral yağ ile doyurun. Doyduktan sonra iğneyi takın ve iğneye yaklaşık altı ila yedi mikrolitre virüs çekin. E14.5 embriyoları olan bir barajı uyuşturduktan sonra, ayak parmağını veya kuyruğunu sıkıştırarak anestezi derinliğini test edin.Cerrahi bir anestezi düzlemi elde edildiğinde, barajın bir ısıtma yastığı üzerinde sırtüstü yattığından emin olun. Karın yüzeyini tıraş edin ve üç kez iyot ve alkolle sterilize edin. İnsizyonun ve aletlerin kontaminasyonunu önlemek için cerrahi bölgeyi çevreleyen cildi steril bezlerle örtün.Karın derisini forseps ile sıkıştırın ve kaldırın, ardından medial-sagital çizgide alt karın bölgesinde 1 ila 1 1/2 santimetrelik bir kesim yapmak için steril makas kullanın ve embriyoları açığa çıkarın. Ardından, küçük bir steril gazlı bezin ortasında bir yarık kesin ve cerrahi açıklığın üzerine yerleştirin. Açıklığı ve gazlı bezi steril tuzlu suyla nemlendirin.Ardından, aynı anda dört veya beşten fazla embriyoyu çıkarmamaya dikkat ederek gazlı bez üzerinde durmak için embriyoları yarıktan çekin. Kurumalarını önlemek için embriyoları aşılamadan önce ve aşılama boyunca steril tuzlu su ile nemlendirin. Baş ve kafatası dikişlerini görselleştirmek için enjekte edilecek embriyoyu bir lamba ile aydınlatın, ardından enjekte edilecek embriyonun başının altına nazikçe bir spatula yerleştirin ve kafa doğrudan rahim duvarına doğru itilene kadar embriyoyu manipüle edin.Baskın olmayan el ile embriyoyu yerinde tutun. Zika virüsünü veya kontrol ortamını embriyo beyninin lateral ventriküllerine enjekte etmek için şırıngayı kullanın. E11.5 aşaması intrauterin enjeksiyon için, intrauterin boşluğa Zika virüsü veya bir kontrol ortamı enjekte etmek için bir mililitrelik bir şırınga ve 27 gauge iğne kullanın.Hamileliğin kalıcılığını artırmak için, yumurtalıkların yanındaki iki embriyoyu ve üst vajinanın yanındaki iki embriyoyu enjekte etmekten kaçının. Rahim içi enjeksiyon yapılıyorsa, rahim içi boşluğa veya plasentaya enjekte edin. Embriyoları tekrar hamile barajına yerleştirin ve karın boşluğunu yaklaşık 0,5 mililitre steril tuzlu su ile doldurun.Hem abdominal periton kasını hem de dış cilt tabakasını 4-0 steril dikişlerle dikin. Anesteziden kurtulurken barajı bir ısıtma yastığı üzerinde tutun ve izleyin. Virüsü buz üzerinde çözdürün, ardından şırıngadaki ölü hacmi azaltmak için şırıngayı tuzlu su ile doldurarak doldurun.Salin solüsyonunu enjeksiyon malzemesinden ayırmak için 0.75 mikrolitreye kadar hava çekin. Isıtılmış, nemlendirilmiş bir geri kazanım odası kurmak için, 37 santigrat dereceye ayarlanmış bir ısı kutusuna steril bir gazlı bez ile kapatılabilir bir kap yerleştirin ve tuzlu su ile ıslatın. Mikroenjektör pompasını ve kontrol cihazını kurduktan sonra, enjeksiyon şırıngasını virüsle doldurun ve cerrahi kurulumun pompa kafası montajını %70 etanol ile sterilize edin.Ardından, yenidoğan yavrularını beş dakika boyunca kriyo-anestezi uyguladıktan sonra, kuyruk veya ayak parmağı tutamına yanıt vermemesi nedeniyle enjeksiyon için yeterli anestezi sağlandığından emin olun. Yavruyu baş montajına yerleştirin. Başın yüzeyini iyot ve ardından etanol ile sterilize edin ve ardından alkollü bir mendille kurulayın.Lambda'yı siyah bir kalemle işaretleyin, ardından lambda ile gözün kenarına olan mesafeyi ölçün ve stereotaksik koordinatları kullanarak lambda ile göze olan 2/5 mesafeyi hesaplayın. Ardından, enjeksiyon yerinde kafa derisini ve kafatasını dikkatlice ve yüzeysel olarak delmek için 26 gauge bir iğne kullanın ve enjeksiyon iğnesi için bir açıklık oluşturun. Şimdi enjeksiyon iğnesini delinme bölgesine indirin ve iğne cildi yeni ihlal ettikten sonra, stereotaksik aleti kullanarak lateral ventriküle enjeksiyon için bir milimetrelik bir derinlik hesaplayın.İğne enjeksiyon derinliğine indirildikten sonra, saniyede 10 nanolitre hızında bir mikrolitre virüs enjekte edin. Enjeksiyondan sonra 30 saniye bekleyin ve ardından vidayı dorsal olarak döndürerek iğneyi 0,5 milimetrelik artışlarla geri çekin, enjekte edilen virüsün sızıntısını azaltmak için her artıştan sonra 30 saniye bekleyin. Enjeksiyonu bitirdikten sonra, yavruyu önceden ısıtılmış, nemlendirilmiş odaya aktarın ve iyileşene kadar izleyin.Anestezi uygulanmış bir yetişkin farenin kafasını stereotaksik alette hareketsiz hale getirin ve farenin altına bir ısıtma yastığı yerleştirin. Cerrahi bir anestezi düzlemini garanti altına almak için bir ayak parmağı veya kuyruk çimdiklemesinden sonra, kafa derisini gözlerin arkasından kulakların başlangıcına kadar tıraş edin. Maruz kalan cildi iyot ve% 70 etanol ile sterilize edin.Bregmayı ortaya çıkarmak için sterilize edilmiş yerde başın medial-sagital çizgisi boyunca 0,5 santimetrelik bir kesi yaptıktan sonra, cildi enjeksiyon bölgelerinden uzaklaştırırken aynı anda meningeal dokuların kafatasının yüzeyini temizleyin. Cerrahi matkap ucunu bregma ile hizalayın ve ardından enjeksiyon bölgesini stereotaksik koordinatlarla tanımlayın. Kontrol ayağı pedalını kullanarak, iğne için delik açılana kadar kafatasını yavaşça delin.Matkap ucunu mikroenjektör pompası ve gaz geçirmez 10 mikrolitrelik şırınga ile değiştirin. Tuzlu su çözeltisi ile virüs arasında küçük bir hava kabarcığı bırakın ve dört ila beş mikrolitre virüs çekin. İğneyi beyin yüzeyinden beyin yüzeyinin 1,5 milimetre altına indirin ve saniyede 10 nanolitre oranında bir mikrolitre virüs enjekte edin, bir mikrolitreyi 1 1/2 dakika boyunca enjekte edin.İğneyi beyinden daha önce olduğu gibi artışlarla çıkardıktan sonra, cildi gevşetmek ve açıkta kalan kafatasını yeniden kaplamak için forseps kullanın. Kafa derisi 4-0 dikişlerle dikildikten sonra, fareyi stereotax'tan çıkarın ve iyileşene kadar bir ısıtma yastığı üzerinde izleyin. Nöro-progenitör hücreler, E18.5'te enjeksiyondan dört gün sonra kırmızı renkte görülen Pax6 ve yeşil renkte görülen flavivirüs antijenleri aracılığıyla Zika virüsü ile immüno-etiketlenir.Embriyonik beyin, gelişmekte olan neokorteksin tüm katmanları boyunca Zika virüsünün MEX1-44 suşu ile enfekte olur. E14.5'te aşılanmış doğum sonrası üçüncü gün beyin dokusundan alınan dokuyu kullanan TCID50 testi, Zika virüsünün gelişmekte olan beyinlerde verimli bir şekilde çoğalabileceğini ve büyüyebileceğini göstermektedir. Bu görüntü, P0 enjeksiyonundan sonra P13 serebral korteksinde MEX1-44 Zika virüsü enfeksiyonunu göstermektedir.Zika, kırmızı renkte görülen flavivirüs grubu antijenine karşı antikor kullanılarak tespit edilir. Bu görüntüler, yetişkinlerde enjeksiyon yeri ve lateral ventrikül enjeksiyon başarısını uygulamak için kullanılan floresan boncukları göstermektedir. Bu prosedürü denerken, enjekte edilen embriyoları takip etmeyi, uygun kontrollere sahip olmayı ve cerrahi yaraları küçük tutmayı unutmamak önemlidir.Bu prosedürü takiben, Zika virüsünün plasentayı nasıl geçtiği gibi ek soruyu cevaplamak için intraperitoneal veya arteriyel enjeksiyon gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, beyinde Zika virüsü enfeksiyonunun in vivo fare modelinin nasıl oluşturulacağını iyi anlamış olmalısınız.

establishing-mouse-models-for-zika-virus-induced-neurological

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video, serebral sıtmanın deneysel bir fare modelinin oluşturulmasını göstermektedir. Plasmodium berghei ile enfekte dişi sivrisineklerden izole edilen sporozoitler, kısıtlanmış bir farenin kuyruk damarlarına enjekte edilir, bu da kan-beyin bariyerinin bozulmasına ve beyin iltihabına yol açarak serebral sıtmaya neden olur. Bu enfekte fare modeli, serebral sıtma ile ilişkili in vivo mikrovasküler patolojiyi incelemek için değerli bir araç sunar.

Konakçı sivrisinek türevli sporozoitler kullanılarak deneysel serebral sıtmanın bir fare modelinin oluşturulması

Bu video, gelişmekte olan bir beyinde Zika virüsü enfeksiyonunun in vitro modelinin kurulmasını göstermektedir. Kök hücrelerin rozetleri, nöral progenitör hücreler (NPC'ler) ve nöronlar içeren insan serebral organoidleri Zika virüsü ile enfekte olur. Virüs NPC'leri enfekte eder ve apoptozu tetikleyerek organoid gelişimini bozar.

Serebral Organoidlerde Zika Virüsü Enfeksiyonunun İn Vitro Modelinin Geliştirilmesi

Bu video, CNS enfeksiyonu olan bir fare modelinin oluşturulmasını gösterir. Emziren bir yavruya virüs hem intrakraniyal hem de intraperitoneal olarak enjekte edilir. Virüs yayılır ve CNS'yi enfekte ederek nöronal hücre ölümüne ve iltihaplanmaya neden olur. Yavru, hastalık ilerledikçe enfeksiyon semptomları açısından değerlendirilir.

Merkezi Sinir Sistemi Enfeksiyonu Olan Bir Murin Modelinin Oluşturulması

Video, nörodejenerasyonu indüklemek için yetişkin bir farede Zika virüsü süspansiyonunun intraserebral enjeksiyonunu göstermektedir. Anestezi uygulanmış bir fare, stereotaksik bir çerçeveye sabitlenir ve enjeksiyon için açıkta kalan kafatasına bir delik açılır. Zika virüsünün bir süspansiyonu beyin dokusuna enjekte edilir. Viral enfeksiyon iltihaplanmaya neden olarak nörodejenerasyona yol açar.

Yetişkin Bir Farede Zika Virüsünün Neden Olduğu Nörodejenerasyon Modelinin Oluşturulması

Bu video, insan fetal nöral kök hücrelerini Zika virüsü ile enfekte etmek için bir prosedürü göstermektedir. Enfekte olmuş hücreler daha ileri çalışmalar için kullanılabilir.

Fetal Nöral Kök Hücrelerin Zika Virüsü Enfeksiyonu

Burada, adeno-ilişkili virüsün yenidoğan fare beynine intraventriküler enjeksiyonu ile yaygın nöronal transdüksiyon için bir teknik gösteriyoruz.  Bu yöntem, viral olarak verilen transgenlerin yaşam boyu ekspresyonunu elde etmek için hızlı ve kolay bir yol sağlar.

Kalıcı ve yaygın Nöronal İletim için Yenidoğan Fare Beyin intraserooroventriküler Viral Enjeksiyon

Bu iletişim kuralı Zika virüs enfeksiyonu gelişmekte olan insan beyninin model oluşturmak için kullanılan bir teknik anlatılmaktadır. Wildtype veya mühendislik kök hücre hatları kullanarak, araştırmacılar, çeşitli mekanizmalar veya erken beyin enfeksiyon ve Zika virüs bulaşmış embriyo elde edilen microcephaly etkileyebilir tedavi ortaya çıkarmak için bu tekniği kullanabilir.

Kök hücre kullanarak gelişmekte olan insan beyni Vitro Zika virüs enfeksiyonu modelleme serebral Organoids türetilmiş

Bu makalede insan fetal beyin sinir kök hücreleri kültür, hem de onları içine çeşitli nöronal alt türlerini ve astrocytes sinir kök hücreleri Zika virüs enfeksiyonu çalışmaya kullanımı üzerine vurgu ile ayırt etmek nasıl genişletmek için kullanılan yöntemleri ayrıntıları.

Kültürlü insan Fetal beyin sinir kök hücreleri Zika virüs enfeksiyonu Immunocytochemical analiz için

Ifnar1- / - fare modeli immunoprivileged organlarda Zika virüs (ZIKV) enfeksiyon için antijen spesifik T-hücre yanıtları değerlendirmek için bir protokol açıklanmıştır. Bu yöntem koruma hücresel mekanizmaları ve immunopathogenesis ZIKV aşı soruşturma için çok önemli ve aynı zamanda onların etkinliğini değerlendirme için değerlidir.

Virüslü Ifnar1- / - farelerin Immunoprivileged organlarında Zika virüs özgü T hücreli yanıt-e doğru değerlendirilmesi

Burada, nöropati gelişimini görüntülemek için bir immünopetik ıCR (Kanser Araştırma Enstitüsü) merkezi sinir sistemi enfeksiyonu murine modeli oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Akut viral ensefalitik bozuklukların aynı hastalık puanları ile izlenmesi, Dang virüse bağlı nöropati içinde vivo göstermek için gerçekleştirilebilir.

Dang humması virüs kaynaklı akut viral Ensefalitis-benzeri hastalık bir Murine modeli

Protokolün amacı, enfeksiyon sonrasında faredeki birden fazla organdan Zika virüsünü izole ederek ve ölçerek viral hastalıkları araştırmak için kullanılan teknikleri göstermektir.

Farede Birden Fazla Organdan Zika Virüsünün İzolasyon ve Nicelikselleştirilmesi

Öğrenin fare modellerinde embriyonik, yenidoğan ve yetişkin aşamalarda Zika virüsü beyin enfeksiyonlarını in vivo olarak çalışmak için intraserebral enjeksiyon yöntemini. Bu teknik mikrosefali ve nörogelişimsel bozuklukların patolojisini anlamaya yardımcı olur.

İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak Zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin (Video) | JoVE Journal

İntraserebral enjeksiyon stratejileri kullanarak Zika virüs kaynaklı nörolojik bozukluklar için fare modelleri oluşturma: embriyonik, Yenidoğan ve yetişkin

Daha fazla video keşfet