Name: Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Öğrenin kavernöz sinir stimülasyonu ve intrakavernöz basınç ölçümü için sıçan modelinde basitleştirilmiş cerrahi teknik. Bu yöntem erektil disfonksiyon patofizyolojisini anlamaya ve yeni tedavileri test etmeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar hiçbir katkıda bulunanlar var.

Hayvanlar, Güney Danimarka Üniversitesi hayvan bakım tesisi kurumsal yönergelere göre yer. Tüm hayvan deneyleri Ulusal Sağlık Enstitüleri Kılavuzu bakım ve laboratuvar hayvanlarının kullanımı için uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Bu akut, Sigara survival cerrahi bir işlemdir.
1. hazırlanması boru, elektrot ve cerrahi işlem için aygıtlar
<ol><li>Mikrocerrahi cihazlar kullanın: Cerrahi makas, açılı mikro makas, doku forseps, Dumont #7 çifti ve #5 eğri mikro forseps, mikro iğne bağı ve traktör. Not: Bu akut bir yordam olarak, aletleri sterilize gerek yoktur. Kullanın sonra temiz ve ipuçları % 70 etanol ile silin.</li>
	<li>Tüp % 70 etanol içinde ıslatın ve sonra steril %0,9 ile flush NaCl ile 100 U/mL heparin kullanmadan önce. Hava kabarcıkları içine belgili tanımlık sistem tanıtımı önlemek için dolu boru bırakın.</li>
	<li>Polietilen (PE)-50 boru bir kateter ICP ölçüm için yapmak için bir 20-30 cm uzunluk parça kesti. Tüp basıncı nemlendirme azaltmak olabildiğince kısa olduğundan emin olun.</li>
	<li>İğne ortada tatili kadar bir steril 24 G iğne yan-yan viraj. Parça eğimi PE boru penis crus içine eklenmek distal ucuna bağlayın. Diğer yarısı bağlantı için basınç detektörler hub'ına ekleyin. Sistem heparinized serum (100 U/mL) doldurun.</li>
	<li>İki kutuplu Teflon kaplı elektrot yapmak için eşit uzunlukta kesilmiş iki 125 µm gümüş teller. Masanın kenarına teller takın ve onları birlikte iş parçacığı için bir parça bant kullanın. Daha sonra elektrot bir siyah plaka ekleyin.</li>
	<li>Teflon içine küçük bir kesi yapmak ve Teflon kaplama elektrot uçları kapalı 4-5 mm uzunluğunda şerit için #5 mikro forseps kullanın. İpuçları bile uzunluğu ulaşmak ve uçları künt kenarında bir neşter bıçak bükme tarafından kanca oluşturmak için bir neşter ile kesti.</li>
	<li>Biraz yukarı doğru işaret kanca ile siyah plaka kenarına uzanan ucuyla elektrot teyp. 10 s ve şal bir tutkal kabarcık elektrot kanca 1-2 mm çapında için plastik tabakta silikon yapıştırıcı karışımı.</li>
	<li>Yaklaşık 5 dakika kullanım (şekil 1) önce kurumasını bekleyin. Şerit Stimülatörü bağlantı için izin vermek için Teflon diğer ucunda, daha uzun bir bölümünden. Not: Distal ucunda kanca yeniden yapıyor ile elektrot birçok kez yeniden kullanılabilir.</li>
</ol>2. hayvan hazırlanması
<ol><li>Hayvan anesthetizing sonra karın, boyun ve perine alt yarısının tıraş. Hayvan povidone-iyot tarafından üç kez takip % 70 alkol ile fırçalayın. Fareyi bir sırtüstü pozisyonda bir ısıtmalı cerrahi pedi yerleştirin. Veteriner göz merhem uygulamak ve % 2.5 isoflurane ve 0, 8 L/dak oksijen taşıyıcı olarak ile burun konisi için anestezi geçmek. Not: İsoflurane ve anestezi kabul edilebilir bir düzeyde sağlamak için oksijen düzeyini ayarlayın.</li>
</ol>3. presurgical hazırlık
<ol><li>Çalışma bir mikroskop altında tüm cerrahi işlem gerçekleştirmek: 3,15 X 20 X arasında değişen bir büyütme yeterlidir. Kullanım eldiven ve ameliyat boyunca temiz bir ortam sağlamak. Fareyi bir örtüsü yerleştirin.</li>
</ol>4. Ischiocavernosus kas diseksiyon ICP ölçümü için
<ol><li>Bir neşter, düz makas kullanın ve Dumont #7 kavisli 1 cm dikey yapmak için mikro forseps cilt kesi 5 mm lateral penis tabanı düzeyinde başlayan ve aşağıya doğru (şekil 2A) uzanan orta hat için. Bir pamuklu çubukla kullanın ve fasya lateral skrotum (şekil 2B) için dikkatlice ayırın. Fasya anatomi sonra makaralara eklemek ve bir pamuk-uçlu-kural yumrunun (şekil 2C) bulmak için takas ile muayene et.</li>
	<li>İschiocavernosus kas görüntülenir kadar bu noktada yağ dokusu medial teşrih (şekil 3A). Dumont #7 eğri mikro forseps bir çift kullanın ve boyuna kas ayrı. Tunica albuginea parlak beyaz yapı (şekil 3B) olarak görünür. Mikro forseps ve mikro makas kullanarak, yeterince onun ders (şekil 3 c) görmek için tunica albuginea ortaya çıkarmak.</li>
	<li>Sistem ayarlarını kalibrasyon sonra tüp penis crus (şekil 4) paralel gidiyor emin perine üzerinde deri yoluyla yerleştirin. Çizginin yerinde bırakmak ve belgili tanımlık kesme serum fizyolojik ile nemli tutmak.</li>
</ol>5. CN diseksiyon uyarılması için
<ol><li>2 cm daha düşük, karın Ensizyon, ilk olarak, bir neşter ve bir çift düz makas ve mikro forseps kullanarak deri yoluyla olun. Linea boyunca fasya ile eşleşen bir giriş oluşturmak alba ve temel kas doku mesane ve prostat duyurmak.</li>
	<li>Çok iyi bir pozlama elde etmek için kullanın. Prostat açık görsel olarak büyük pelvik sinir düğümü (MPG) elde etmek için yağ dokusundan ayırmak için pamuk-uç temizleme bezi kullanın ve CN, prostat (şekil 5) dorsolateral yönü üzerinde çalışan.</li>
	<li>Sonra görselleştirme MPG ve CN, dikkatli bir şekilde sinir 2-5 mm için MPG distal açılı mikro makasla (şekil 6a) örten fasya deşmek. #5 mikro forseps kullanımı ile her iki tarafta bir sinir ve bir 4-mm uzun bölümü (şekil 6b) ücretsiz için altında doku Yayılı ve sinir (şekil 6 c) altında 9-0 dikiş kaydırın.</li>
	<li>Sinir sinir (şekil 7b) çevresinde İki kutuplu elektrot kanca yerleşimini kolaylaştırmak için dikiş (şekil 7a) yardımıyla hafifçe yükseltmek. Sinir için 5 s. kuru iğne ve Tutkal kanca ve sinir (Şekil 7 c, d) çevresi için geçerli bir asistan karışım iki bileşenli silikon yapıştırıcı bir insülin ucu ile izin. Biraz kuru tutkal izin vermek yaklaşık 1 dakika için elektrot çekerek sinir yukarıda tut.</li>
	<li>Dışında herhangi bir çekmek veya elektrot büküm önlemek için sağ tarafta Traktör Traktör kaldırın. Maruz kalan organların serum içinde belgili tanımlık kesme üzerinde batırılmış tuzlu ve yatıyordu gazlı bez ile ıslak.</li>
</ol>6. kavernöz vücut Cannulation ICP ölçümü için
<ol><li>Ekartör kullanarak tunica albuginea görselleştirme geri. Crus tahrif edecek gibi traktör ischiocavernosus kas değil eklemek emin olun.</li>
	<li>İğne takın ve tunica albuginea tanıtımı önce boru heparinized serum fizyolojik ile yıkayın. Gergin, bir elinde Dumont #7 eğri mikro forseps kullanarak tunica albuginea (non-baskın), tunica albuginea ve üstteki kas geri kalanı ekleme noktasına distal basılı tutmak. İğneyi diğer baskın elinde düz mikro Forseps ile sık ve onu tanıtmak kavernöz vücut (şekil 8) ders ile paralel.</li>
	<li>5-8 mm iğne kavernöz vücudun içine itin. Tüp Temizleme ve crus üzerinde yolun (Şekil 9) test etmek için tuşuna basın. Hiçbir sızıntı olduğundan emin olun. Hatta yanlışlıkla çekerek önlemek için bant ile tabloya boru vidaları sıkıştırın. Ekartör kaldırın.</li>
</ol>7. CN uyarılması
<ol><li>Kayıt programı (örneğin, Spike 2) ile çalışan, sürekli olarak her iki intracavernous ve ortalama arter basıncı kaydetmek.</li>
	<li>Bir uyarıcı (örneğin, SD9 çim aletleri, bkz: Malzemeler tablo) CN uyarılması için aşağıdaki parametreleri ayarlayın: 1,5 mA, frekans 16 Hz, 3 V gerilim ve darbe genişliği 1 dk stimülasyon en az 5 Bayan uygulamak 50 s, geçerli Elektrodlar arasında bekletin. Not: İlk elektrodlar genellikle azalmış yanıtın (şekil 10) yol.</li>
</ol>

<ol><li>Eckhard, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEckhard%2C+C+%22Untersuchungen+%C3%BCber+die+Erektion+des+Hundes+In%3A+Beitr%C3%A4ge+zur+Anatomie+und+Physiologie%22">Untersuchungen über die Erektion des Hundes In: Beiträge zur Anatomie und Physiologie</a>. , Vol. Band III Giessen: Ferber 123-166 (1863).</li>
<li>Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W., Mostwin, J. L., Walsh, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+as+a+model+for+the+study+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The rat as a model for the study of penile erection.</a> J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).</li>
<li>Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+characterization+of+a+bio-assay+of+erectile+function+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model.</a> J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).</li>
<li>Martinez-Pineiro, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+model+for+the+study+of+penile+erection%3A+pharmacologic+and+electrical-stimulation+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Rat model for the study of penile erection: pharmacologic and electrical-stimulation parameters.</a> Eur Urol. 25 (1), 62-70 (1994).</li>
<li>Hayashi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+FK1706+on+erectile+function+following+bilateral+cavernous+nerve+crush+injury+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The effect of FK1706 on erectile function following bilateral cavernous nerve crush injury in a rat model.</a> J Urol. 176 (2), 824-829 (2006).</li>
<li>Burnett, A. L., Becker, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunophilin+ligands+promote+penile+neurogenesis+and+erection+recovery+after+cavernous+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Immunophilin ligands promote penile neurogenesis and erection recovery after cavernous nerve injury.</a> J Urol. 171 (1), 495-500 (2004).</li>
<li>Yamashita, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+injury-related+erectile+dysfunction+following+nerve-sparing+radical+prostatectomy%3A+a+novel+experimental+dissection+model%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Urol%22%5BJournal%5D)">Nerve injury-related erectile dysfunction following nerve-sparing radical prostatectomy: a novel experimental dissection model.</a> Int J Urol. 16 (11), 905-911 (2009).</li>
<li>Burnett, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GGF2+is+neuroprotective+in+a+rat+model+of+cavernous+nerve+injury-induced+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">GGF2 is neuroprotective in a rat model of cavernous nerve injury-induced erectile dysfunction.</a> J Sex Med. 12 (4), 897-905 (2015).</li>
<li>Lin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoparticle+Improved+Stem+Cell+Therapy+for+Erectile+Dysfunction+in+a+Rat+Model+of+Cavernous+Nerve+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Nanoparticle Improved Stem Cell Therapy for Erectile Dysfunction in a Rat Model of Cavernous Nerve Injury.</a> J Urol. 195 (3), 788-795 (2016).</li>
<li>Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K., Choudhary, R., Bodakhe, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Animal models of erectile dysfunction.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).</li>
<li>Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+as+an+animal+model+for+male+erectile+function+evaluation+in+sexual+medicine+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research.</a> J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).</li>
<li>Cellek, S., Bivalacqua, T. J., Burnett, A. L., Chitaley, K., Lin, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+pitfalls+in+some+of+the+experimental+studies+in+erectile+function+and+dysfunction%3A+a+consensus+article%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Common pitfalls in some of the experimental studies in erectile function and dysfunction: a consensus article.</a> J Sex Med. 9 (11), 2770-2784 (2012).</li>
<li>Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigative+models+in+erectile+dysfunction%3A+a+state-of-the-art+review+of+current+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models.</a> J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).</li>
<li>Mullerad, M., Donohue, J. F., Li, P. S., Scardino, P. T., Mulhall, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+sequelae+of+cavernous+nerve+injury+in+the+rat%3A+is+there+model+dependency%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Functional sequelae of cavernous nerve injury in the rat: is there model dependency.</a> J Sex Med. 3 (1), 77-83 (2006).</li>
<li>Albersen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injections+of+adipose+tissue-derived+stem+cells+and+stem+cell+lysate+improve+recovery+of+erectile+function+in+a+rat+model+of+cavernous+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Injections of adipose tissue-derived stem cells and stem cell lysate improve recovery of erectile function in a rat model of cavernous nerve injury.</a> J Sex Med. 7 (10), 3331-3340 (2010).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Penis crus cannulation ICP kayıt için basitleştirilmiş bir cerrahi teknik ve yalıtım CN elektrostimülasyon için açıklamak için bu çalışmanın asıl hedefi oldu. Biz ameliyat basitleştirmek ve CN stimülasyon ile tekrarlanabilir kayıtları ICP artış sağlamak kavernöz vücut diseksiyon değişiklikler tanıttı. 1 cm dikey cilt kesi ile aşikar kural yumrunun kılavuz kullanarak penis tabanına yanal ischiocavernosus kas ve tunica albuginea iyi bir pozlama elde. Bu yordamı daha hızlıdır (küçük 15 dk) edebiyat ve nedenleri minimal doku...

Vivo çalışmada deneysel hayvanlarda erektil fonksiyonunun 1863 Eckhard1öncü deneysel çalışmaları ile başladı. Elektrostimülasyon pelvik sinir köpeklerde artan ICP ikna etmek için kullanıldı. 20 yy benzer deneysel protokoller kediler ve tavşan, köpek, maymun gibi büyük hayvanlar kullanılmaya başlanmıştır. Bir sıçan erektil işlev değerlendirmek ilk Quinlan ve ark. 19892tarafından geliştirilmiştir. Yöntem beri modifiye edilmiş ve birkaç diğer gruplar34tarafından güncelleştirildi. Bugün, en yaygın kullanılan hayvan modeli patoloji erektil disfonksiyon eğitim ve gelişmekte olan tedavi seçenekleri değerlendirmek için faredir. Sistemik kan basıncı ICP bir artış ikna etmek için Şah damarı, ölçmek ICP penis crus cannulation ve CN uyarılması bir satırını kullanarak kayıt yordamı ana adımları içerir. Çeşitli araştırmacılar model iyileştirdiyseniz rağmen onun tekrarlanabilirlik bir sorun olmaya devam etmektedir ve değişken sonuçları farklı Laboratuvarları tarafından bildirilmiştir. Çeşitli tuzaklar, devam.
Önceki Makaleler5,6,7,8,9,10 penis kavernöz vücut cannulation için degloving ile tam penis pozlama kullanımını açıklar. Bu manipülasyon olarak en iyi bir yaklaşım değildir ve yıkıcı diseksiyon erektil işlev için gerekli olan yapılar için yaralanma neden olur. CN diseksiyon de açıklanan10,11oldu, ama sinir stimülasyonu deneysel sonuçları etkileyebilecek Multipl faktörler nedeniyle en uygun değil. CN stimülasyon tekniği çevreleyen doku sinir sinir konumlandırılmış, bipolar kanca elektrodu, çekerek ve her stimülasyon önce sinir kurutma tarafından kaldırma içerir. Bu sinir hasarı ve elektrik geçerli sızıntı, azalmış yanıt veya ICP alternatif yolları örneğin, Pelvik Taban kasları, mesane uyarılması yoluyla yanlış artış elde edilen ve gastrointestinal değişik derecelerde açabilir yolu12. Tüm bu faktörlerin tekrarlanabilirlik sınırlayın.
Bizim çalışma sırasında derinlik ve anestezi türünü ICP üzerinde büyük bir etkiye sahip görülmektedir. Anestezikler kullanılan sodyum Fentobarbital, ketamin/xylazine veya ketamin/midazolam enjeksiyon veya isoflurane/oksijen zehirlenmesi olabilir.
Burada biz basitleştirilmiş bir cerrahi yöntem tanımlamak ve veri deneysel protokol standardizasyon destek sağlamak.

<table><tbody><tr><td>Adson forseps</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>11006-12</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #7 forseps</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>11271-30</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 forseps</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>11273-20</td><td></td></tr><tr><td>ToughCut Mayonez makas</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>14110-15</td><td></td></tr><tr><td>Minyatür Vannas Yaylı makas</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>Ultra İnce Hemostat</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>13020-12</td><td></td></tr><tr><td>Crile Hemostat</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>13004-14</td><td></td></tr><tr><td>Kwik-Sil Yapıştırıcı</td><td>Dünyası Hassas Aletler</td><td>KWIK-SIL</td><td></td></tr><tr><td>Teflon kaplı gümüş tel 0.125 mm</td><td>Dünya Hassas Aletler</td><td>AGT0510</td><td></td></tr><tr><td>Elastik tel ekartörler</td><td>Özel yapım</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Neşter bıçağı</td><td>Güzel Bilim Aracı</td><td>10023-00</td><td></td></tr><tr><td>PE-50 boru</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0753</td><td></td></tr><tr><td>23 G İğne</td><td>Kruuse</td><td>121272</td><td></td></tr><tr><td>SD-9 Kare Nabız Stimülatörü</td><td>Somatco</td><td>1077/183</td><td></td></tr><tr><td>Kan basıncı dönüştürücü ve kablo</td><td>World Precision Instruments</td><td>BLPR2</td><td></td></tr><tr><td>Raucotupf Pamuk Uçlu Aplikatörler</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>11966</td><td></td></tr><tr><td>Pro-ophta Oküler Çubuklar</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>16515</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0,9 % 100 mL</td><td>Yerel eczane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Yerel eczane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 mL Şırınga</td><td>Odense Üniversite Hastanesi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Veteriner göz merhemi - Viscotears</td><td>Yerel eczane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>gümüş teller&nbsp;</td><td>Science Products GmbH, Heidelberg, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silikon Yapıştırıcı&nbsp;</td><td>Kwik-Sil, Dünya Hassas Aletleri, Sarasota, FL, ABD</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan intracavernous basınç

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

Kavernöz sinir (CN) uyarılması ve intracavernous basınç (ICP) ölçümü kullanılan kapsamlı bir şekilde test etmek ve değerlendirmek için erektil disfonksiyon terapiler. Ancak, kullanılan yöntemleri laboratuvarlar arasında değişir ve tuzaklar hareketsiz var olmak. Bu çalışmanın amacı bir güvenilir ve tekrarlanabilir model sağlayacak bir cerrahi teknik açıklamak için oldu. İschiocavernosus kas, kural yumrunun tarihinde ekleme noktasında teşhir ederek penis crus en az diseksiyon ve yapıları erektil işlev ilgili yaralanma ile cannulated. Kaldırma ve kurutma, gerek kalmadan CN tekrarlanan uyarılması elektrot-sinir kompleksi yalıtmak için bir 125 µm manik depresif gümüş elektrot ve Biyouyumlu silikon yapıştırıcı kullanarak sağlanır. Bu yöntem germe ve sinir kurutma azaltarak neuropraxia engeller ve elektrik kaçağı inkâr ve alternatif yollar uyarılması önleme sinirin tam izolasyon sağlar.

Kullanılması önerilen stimülasyon ayarları bu protokolle inhalasyon anestezi isoflurane %2.0 oksijen ile altında 0, 8 L/dak, üretmek sonuçları Şekil 11 ve şekil12', gösterildiği gibi olmadığı bir yerde birden fazla arka arkaya Elektrodlar arasında 75-80 mm Hg. şekil 13 gösterir aynı kararlı yanıt 20 dk stimülasyon yanıtı ile üzerinde istikrarlı 73-77 mm Hg. Test hattı ICP ölçüm için tüp kızarma v...

Bu çalışmada bir basitleştirilmiş cerrahi müdahale ve kavernöz sinir stimülasyonu sinir-elektrot yalıtım ile gerçekleştirmek için teknik açıklar karmaşık silikon yapıştırıcı ve intracavernous basınç ölçüm kullanarak.

Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

Bu yöntemin genel amacı, intrakavernöz basınç kaydı için penil crus kanülasyonunun basitleştirilmiş bir cerrahi tekniğini ve elektrostimülasyon için kavernöz sinirin diseksiyonu ve izolasyonunu tanımlamaktır. Bu deneysel protokol, erektil disfonksiyonun patofizyolojisini incelemek ve yeni tedavileri test etmek için kullanılabilir. Bu tekniğin temel avantajı, tekrarlanabilir, hızlı ve güvenilir olmasıdır.Bu öğreticide açıklanan büyük tuzakları ele almış ve ortadan kaldırmıştır. Bu yöntem erektil disfonksiyon hakkında bilgi sağlayabilse de, biyouyumlu silikon yapıştırıcı ile sinir elektrot kompleksi izolasyonu, herhangi bir periferik sinirin elektrostimülasyonuna uygulanabilir ve diğer organların fizyolojik testlerine izin verir. Bu işleme başlamak için, hayvanı uyuşturduktan sonra, karnının ve perinesinin alt yarısını tıraş edin.Hayvanı alternatif olarak üç kez% 70 alkol ve povidon iyot ile ovalayın. Bundan sonra, fareyi sırtüstü pozisyonda ısıtılmış bir cerrahi ped üzerine yerleştirin. Gözlere merhem sürün ve% 2.5 izofluran içeren bir burun konisi ile fareyi uyuşturun.Ardından, tüm cerrahi prosedürü bir örtü üzerinde ameliyat mikroskobu altında gerçekleştirin. Daha sonra, penis tabanı seviyesinden başlayarak aşağıya doğru uzanan, orta hattın beş mililitre yanalında bir santimetrelik bir cilt kesisi yapın. Skrotumun lateral fasyasını dikkatlice ayırmak için bir Q ucu kullanın.Fasyayı inceledikten sonra, cilt kenarlarını ve testisi geri çekmek için bir çift ekartör kullanın ve pamuk uçlu bir çubukla palpasyon kullanarak iskiyal tüberoziteyi bulun. İschiocavernosus kası görünene kadar yağ dokusunu medial olarak diseksiyon. Kası uzunlamasına ayırmak ve tunika albuginea'yı ortaya çıkarmak için bir çift forseps kullanın.Tunika albuginea parlak beyaz bir yapı olarak görünecektir. Sistem ayarlarının kalibrasyonundan sonra, boruyu perine derisinden geçirin ve penil crus'a paralel çalıştığından emin olun. Ardından, çizgiyi yerinde bırakın ve kesiği tuzlu su ile nemli tutun.Bu prosedürde, deriden iki santimetre daha düşük orta hatta abdominal bir kesi yapın. Mesane ve prostatı ortaya çıkarmak için linea alba boyunca fasya boyunca eşleşen bir kesi oluşturun. İyi bir pozlama elde etmek için ekartörleri kullanın.Ardından, prostatı yağ dokusundan ayırmak için pamuk uçlu çubuklar kullanın. Ekartörleri ayarlayın ve prostatın dorsal lateral yönü üzerinde çalışan MPG ve CN'nin net bir şekilde görüntülenmesini elde edene kadar diseksiyonu tamamlayın. MPG ve CN'yi bulduktan sonra, MPG'nin iki ila beş milimetre distalindeki sinirin üzerindeki fasyayı dikkatlice kesin.Daha sonra, dokuyu sinirin her iki tarafına ve altına dört milimetre uzunluğunda bir kısmı serbest bırakmak için yayın ve ardından sinirin altına bir dikiş kaydırın. Bipolar elektrotun kancalarının sinirin etrafına yerleştirilmesini kolaylaştırmak için dikiş yardımıyla siniri hafifçe yükseltin. Bir asistanın iki bileşenli silikon yapıştırıcıyı bir insülin iğnesinin ucuyla beş saniye boyunca karıştırmasına izin verin.Siniri kurutun ve yapıştırıcıyı kancaların ve sinirin etrafındaki alana uygulayın. Yapıştırıcının kurumasını sağlamak için elektrodu yaklaşık bir dakika boyunca hafifçe çekerek siniri yüksekte tutun. Daha sonra, elektrotun herhangi bir şekilde çekilmesini veya bükülmesini önlemek için sağ taraftaki ekartörler dışında ekartörleri çıkarın.Daha sonra, açıkta kalan organları tuzlu su ile ıslatın ve insizyon üzerine tuzlu suya batırılmış gazlı bez koyun. Bu prosedürde, ekartörler kullanarak tunika albuginea'nın görselleştirmesini geri yükleyin. Ekartörleri ischiocavernosus kasına takmadığınızdan emin olun, çünkü bu, crus'u bozacaktır.Daha sonra, iğneyi PE50 tüpüne takın ve tubica albuginea'ya sokmadan önce tüpü heparinize salin ile yıkayın. Tunika albuginea'yı gergin tutun ve baskın elinizle üstteki kası yerleştirme noktasına kadar distalde tutun. Ardından, iğneyi baskın olmayan elinizde tutun ve kavernöz gövdeye sokun.Kavernöz cisimlere sızıntı olmadan doğru yerleşimi doğrulamak için hattı yıkayın. Basınç kaydı için iğnenin kavernöz gövdeye sokulması kritik bir adım oluşturur. İğneyi krusun içine yerleştirirken, krusun gerilmesi ve iğnenin rotasına paralel olarak yerleştirilmesi önemlidir.Boruyu yıkayın ve hattı test etmek için kruvazöre bastırın. Sızıntı olmadığından emin olun. Bundan sonra, hattın yanlışlıkla çekilmesini önlemek için boruyu masaya bantla sabitleyin.Ardından, ekartörleri çıkarın. Parametreleri bir stimülatör üzerinde ayarlayın ve stimülasyonlar arasında en az bir dakika dinlenme ile 50 saniye boyunca stimülasyon uygulayın. Bu şekil, 50 milimetre cıvanın uyarılması ile azalmış bir ilk tepkiyi gösterir, bunu 66 milimetre cıvanın ikinci ve üçüncü uyarımı izler.Daha sonra, sonraki ölçümler normal seviyede 73 milimetre cıvada kaydedildi. Ve burada, 75 ila 78 milimetre cıva arasında 10 arka arkaya stimülasyon ile bu protokolü kullanan sonuçların kararlılığı gösterilmiştir. Bu şekil, intrakavernöz basınç üzerindeki etkili anestezi dozlarını göstermektedir.İlk iki ve son üç stimülasyonda% 2'lik stabil yanıta kıyasla artan izofluran üzerinde azalmış ve daha dalgalı yanıt gözlendi. Üstteki mavi iz, sabit ana arter basıncını gösterir. Bu şekil anestezi tipinin intrakavernöz basınç üzerine etkisini göstermektedir.İzofluran anestezisi altında gerçekleştirilen ilk stimülasyonlar, 80 milimetre cıvalık bir basınç artışı gösterdi. Fentanil midazolam uygulandıktan sonra, 110 milimetre cıvaya yanıtta bir artış oldu. Bu şekil, burun konisi yoluyla oksijen uygulamasının etkisini göstermektedir.Burun konisi yoluyla oksijen uygulamasının kesilmesi, kavernöz sinir stimülasyonu ile kavernöz basınç artışında önemli bir azalmaya neden oldu. Ana arter basıncı üzerinde herhangi bir etki kaydedilmedi. Bir kez ustalaştıktan ve uygun şekilde gerçekleştirilirse, bu prosedür 30 dakika içinde tamamlanabilir.Stimülasyonları gerçekleştirirken, anestezi ve oksijenasyonun hem tip hem de seviyesinin intrakavernöz basınç üzerinde büyük bir etkisi olduğunu unutmamak önemlidir. Bu prosedürü takiben, erektil disfonksiyonun patofizyolojisi ve yeni tedavilerin tanıtılması ile ilgili soruları yanıtlamak için farklı ajanlar test edilebilir. Bu videoyu izledikten sonra, minimal invaziv diseksiyon ve kavernöz parçaların kanülasyonunu takiben sinir elektrokompleksinin sızdırmazlık yapıştırıcısı ile izolasyonu ve intrakavernöz basıncın kaydedilmesi dahil olmak üzere kanül sinir stimülasyonunun nasıl gerçekleştirileceğini tam olarak anlamış olmalısınız.

cavernous-nerve-stimulation-recording-intracavernous-pressure

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Kaynak: Sanchez, C. A., et al. Sıçanlarda kronik implantasyon için periferik sinir stimülasyon elektrotlarının hazırlanması. J. Vis. Uzm. (2020).Bu video, uyanık bir sıçanda vagus sinir stimülasyonunu göstermektedir. İmplante edilmiş bir kronik periferik sinir manşet elektroduna sahip ve bir kol presleme görevinde eğitilmiş bir sıçan, implante edilmiş bir kafa başlığı aracılığıyla bir uyaran üretecine bağlanır. Vagus siniri, her başarılı kol basışından hemen sonra uyarılır ve bu da motor...

Sıçanlarda Kronik İmplante Edilmiş Periferik Sinir Manşet Elektrotları ile Vagus Sinir Stimülasyonu

Bu video, ulnar sinire elektriksel uyarılar uygulayarak, optimal sinyal için elektrotları ayarlayarak ve sinir işlevselliğini değerlendirmek için stimülasyonu artırarak sıçanlarda bileşik kas aksiyon potansiyelini (CMAP) kaydetme prosedürünü göstermektedir. Bu yöntem nörolojik hastalıklarda periferik sinir fonksiyonlarının in vivo olarak araştırılmasını sağlar.

Bir Sıçanda Bileşik Kas Aksiyon Potansiyelinin İn vivo Ölçümü

Bu video, kavernöz cisimdeki kan basıncı değişikliklerini incelemek için anestezi uygulanmış bir sıçanda kavernöz sinirin izolasyonunu ve stimülasyonunu göstermektedir.

İntrakavernöz basıncı ölçmek için sıçanlarda kavernöz sinir stimülasyonu yapılması

Aksonal uyarılabilirlik teknikleri patofizyolojisi ve geri dönüşü olmayan dejeneratif olayları öncesinde biyofiziksel değişiklikleri incelemek için güçlü bir araç sağlar. Bu el yazması imzalat sıçan ulnar sinir üzerinde bu tekniklerin kullanımı gösterilmiştir.

Vivo Aksonal uyarılabilirlik test ile sıçan Ulnar sinirin Elektrofizyolojik ölçüm

İntrakavernozal basınç kayıt (ICP) deneysel hayvan erektil işlev değerlendirmek için önemli bir yöntemdir. Burada, detaylı bir protokol ICP kayıt yordamı için crura penis catheterizing ve elektrikle sıçanlarda kavernöz sinirleri uyarıcı gösterdiği.

İntrakavernozal basınç kayıt Rodents erektil işlev değerlendirmek için

Biz aynı anda hem electrocorticography hem de yerel alan potansiyelleri fareler serbestçe hareket nosiseptif lazer uyaranlara yanıt kaydeder bir teknik geliştirmiştir. Bu teknik araştırma nosiseptif bilgi beyinde işleme kolaylaştırır electrocortical sinyalleri mezoskopik ve makroskopik düzeyde, doğrudan bir ilişki kurmak yardımcı olur.

Kortikal yerel alan potansiyelleri ve Electrocorticograms fareler serbestçe hareket nosiseptif lazer uyaranlara yanıt olarak eşzamanlı kayıt

Küçük kemirgenlerde kullanılmak üzere kronik implante edilebilir periferik sinir manşet elektrotları oluşturmak için mevcut yaklaşımlar genellikle özel ekipman ve / veya yüksek eğitimli personel gerektirir. Bu protokolde kronik olarak implante edilebilen manşet elektrotlar imal etmek için basit, düşük maliyetli bir yaklaşım göstermekte ve sıçanlarda vagus sinir stimülasyonu (VNS) için etkinliğini gösteriyoruz.

Sıçanlarda Kronik İmplantasyon için Periferik Sinir Stimülasyon Elektrotlarının Hazırlanması

Bu protokol, eşzamanlı trans-spinal doğru akım stimülasyonu ile sıçan lomber motoneurons in vivo hücre içi kayıt açıklar. Bu yöntem, omuriliğin anodal veya kahodal polarizasyonuöncesinde, sırasında ve sonrasında motononların ritmik ateşlemesini kaydetmemizi sağlar.

Trans-Spinal Doğrudan Akım Stimülasyonu Sırasında Tip-Tanımlanmış Sıçan Spinal Motoneurons In Vivo Hücre İçi Kayıt

Mevcut protokol, sıçanlarda abdominal vagus sinirine bir elektrot dizisi implante etmek için cerrahi tekniği ve implante edilen cihazı kullanarak kronik elektrofizyoloji testi ve stimülasyon yöntemlerini açıklamaktadır.

Uyanık Sıçanlarda Abdominal Vagus Sinir Stimülasyonu ve Kayıt Çalışmaları için İmplantasyon Cerrahisi

Kafatası içindeki basınç kaydetmek için yeni bir yöntem tarif edilmiştir. Minimal invaziv yöntem doğru önemli bir beyin travması neden olmadan anestezi sıçanlarda kafa içi basınç (ICP) ölçmek için bir fiber-optik basıncı algılama sistemi kullanır. Tekniği deneysel model, geniş bir aralık içinde kullanılabilir.

Bir Fiber optik Basıç kullanarak Sıçanlarda Epidural İntrakraniyal Basınç Ölçümü

Öğrenin kavernöz sinir stimülasyonu ve intrakavernöz basınç ölçümü için sıçan modelinde basitleştirilmiş cerrahi teknik. Bu yöntem erektil disfonksiyon patofizyolojisini anlamaya ve yeni tedavileri test etmeye yardımcı olur.

Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç

Daha fazla video keşfet