Name: Canlı hücreler yapay iskele olmayan istikrarlı 3D hücresel derleme oluşturmak için değiştirme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 9 s
Description: Öğrenin, optik cımbızlar ve hidrofilik polimerler kullanarak yapay iskele olmadan 3D hücresel yapılar oluşturmayı. Bu yöntem, doku mühendisliği ve rejeneratif tıp için yeni olanaklar sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Shu Hashimoto, Aoi Yoshida ve Taeko Ohta Doshisha Üniversitesi'nde deneysel Kur ile cömert yardım için teşekkür ederiz. Bu iş için özel üniversitelerde Stratejik Araştırma Vakfı tarafından KAKENHI (15 H 02121, 15 K 05400, 25103012, 50587441) ve MEXT-Supported Program tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma aynı zamanda KNOW (önde gelen Ulusal Araştırma Merkezi) bilimsel konsorsiyum "Sağlıklı hayvan - güvenli gıda", Bilim Bakanlığı ve Yükseköğretim No 05-1/KNOW2/2015 kararı Lehçe hibe tarafından desteklenmiştir.

1. hücre hazırlanması
<ol><li>NAMRU fare meme bezi epitel hücreleri (NMuMG) D-MEM içeren %10 (v) fetal Sığır serum (FBS) ve (v) penisilin-streptomisin (P/S) 25 cm3 şişe içinde % 1 5 mL ile bakımını yapar. Kaldır Dulbecco'nın modifiye kartal Orta (D-MEM), %10 FBS ve % 1'i içeren P/S.</li>
	<li>37 ° C fosfat tamponlu tuz (PBS) (-) 3-5 mL şişe için ekleyin. PBS pH 7,1-7,3 olduğuna dikkat edin.</li>
	<li>Tüm PBS bir aspiratör kullanarak balonun kaldırın.</li>
	<li>37 ° C tripsin (%0.25, w/v) 1,5 mL şişe için ekleyin.</li>
	<li>Şişeye CO2 kuluçka 37 ° C'de yaklaşık 1-2 dakika için kuluçkaya.</li>
	<li>D-MEM %10 FBS ve % 1'i içeren 3,5 mL ekleyin P/S şişeye için. Pipet karıştırmak için.</li>
	<li>Hücre süspansiyon 15 mL santrifüj tüpü aktarmak ve oda sıcaklığında 3 dk santrifüj kapasitesi. Dönme yarıçapı ve santrifüj rotasyon hızı 16.6 cm ve 1500 devir/dakika, sırasıyla olduğunu unutmayın. Bu durum altında göreli merkezkaç kuvveti 417 x g olduğunu.</li>
	<li>5 mL taze D-MEM ekleyin (%10 FBS ve % 1 P/S) için orta aspirating sonra şişeye (cryopreservation çözüm, üreticinin yönergeleri izleyerek hücrelerle gerekirse, cryopreserve).</li>
</ol>2. Dextran (DEX) hazırlanması
<ol><li>D-MEM 10 mL karıştırılarak 80 mg/mL DEX çözeltisi hazırlamak (% 10 FBS, 1%P/S) ve DEX 0.8 gr. DEX çözüm olan bir şırınga filtre (0,22 µm) filtre uygulanabilir Not hücreleri için yeterli bir süre kültürlü sonra.</li>
	<li>DEX çözüm 200 µL ve 2.1 hazırlanan hücre süspansiyon 200 µL karıştırılarak 40 mg/mL DEX orta içeren bir hücre süspansiyon hazırlamak. Çözüm hücrelerde sayı yoğunluğu yaklaşık 2.3 × 10 Not5 hücre/mL.</li>
</ol>3. lazer ve mikroskopi hazırlık
<ol><li>(Sürekli dalga, 1,064 nm dalga boyu) üzerine lazer açın (Şekil 1bir). Bir lazer ışını yakın kızılötesi bölgesi için kırmızı bir dalga boyu ile kullanımını en etkili olduğuna dikkat edin; en az hücreleri tarafından emilir beri bu dalga boyu bölge tanı ve tedavi edici pencere10 denir.</li>
	<li>Yazılımı simgesini çift tıklatın.</li>
	<li>① Kamera, ② ışık yayan diyot (LED), ③ odak için simgeleri ayarlamak çift tıklatmak ve ④ sahne alanı. ①-④ için karşılık gelen görüntüler (Şekil 1bkadar) gösterir.</li>
</ol>4. bindirme lazer sistemi kullanarak hücre işleme
<ol><li>Yer 20 µL adım 2.2 alt kapak cam üzerinde hazırlanan örnek (0,17 mm kalınlık, boyutu = 30 mm × 40 mm) ve ile üst kapak cam kapak (0,17 mm kalınlık, boyutu = 18 mm × 18 mm), iki çubukları (0,17 mm kalınlığında tarafından sağlanan ayırmalı Boyut = 10 mm × 24 mm), Şekil 2' de gösterildiği gibi. Not Bu gözlük özel bir kaplama gerektirmez.</li>
	<li>Adım 4.1 alt objektif Lens üzerinde hazırlanan örnek yerleştirin (su daldırma ile ca. 10 μl, büyütme = 60 X, çalışma mesafesi 0,28 mm, sayısal diyafram = 1,2 =)).</li>
	<li>Üst objektif lens takmak (su daldırma ile ca. 10 μl, büyütme = 60 X, çalışma mesafesi 2 mm, sayısal diyafram = = 1.0) örnek hücrenin üstündeki.</li>
	<li>LED ışık 2 (Şekil 1b) simgesini tıklatarak açın.</li>
	<li>Panelde 3 (resim 1b) simgelerini tıklatarak örnek ve alt objektif lens arasındaki mesafeyi ayarlamak odak olana.</li>
	<li>Lazer ışınları pozisyon 1 ve pozisyon 2 (Şekil 1B) örnek yanında tıkırtı Simgeler ı, II ve III (Şekil 1b) ışınlatayım.</li>
	<li>Her lazer ışını yoğunluğunu ayarlamak için 1500 mW simgesinin IV (Şekil 1b) Bu değer girerek.</li>
	<li>Hareket simgesi 4 gösteren Yön (Şekil 1b) kadar bir hücreyi tıklatarak örnek sahne (Şekil 1b) konum 1'de mahsur kaldı.</li>
	<li>Sürükle kadar başka bir hücre konumu 2 (Şekil 1b) gösteren imleç konumu 2'de kapana kısılmış.</li>
</ol>5. 3 boyutlu (3D) hücre yapısı inşaatı
<ol><li>Böylece temas başka bir hücreyi tek bir hücrede işlemek. Bu durum için 300 korumak s; her hücre bir lazer için 300 maruz Yani, s.</li>
	<li>Şekil 1bgösterilen X-Y ekseni kaydı.</li>
	<li>Rasgele 2D hücre derleme yakalayarak ve hücreleri başka bir hücreye taşıma oluşturun.</li>
	<li>Sahne alanı yukarı ve aşağı hareket ettirerek bir 3D hücresel derleme oluşturun.</li>
	<li>Lazer kapalı sonra derleme istikrarlı kalır onaylayın.</li>
</ol>

<ol><li>Aloysious, N., Nair, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+survival+and+function+of+islet-like+clusters+differentiated+from+adipose+stem+cells+on+a+three-dimensional+natural+polymeric+scaffold%3A+an+in+vitro+study%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">Enhanced survival and function of islet-like clusters differentiated from adipose stem cells on a three-dimensional natural polymeric scaffold: an in vitro study.</a> Tissue Engineering Part A. 20 (9-10), 1508-1522 (2014).</li>
<li>Fatehullah, A., Tan, S. H., Barker, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organoids+as+an+in+vitro+model+of+human+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Organoids as an in vitro model of human development and disease.</a> Nature Cell Biology. 18 (3), 246-254 (2016).</li>
<li>Kirkham, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precision+assembly+of+complex+cellular+microenvironments+using+holographic+optical+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Precision assembly of complex cellular microenvironments using holographic optical tweezers.</a> Scientific Reports. 5, 8577(2015).</li>
<li>Liu, Y., Rayatpisheh, S., Chew, S. Y., Chan-Park, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+endothelial+cells+on+3D+cultured+smooth+muscle+cells+in+a+biomimetic+hydrogel%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Applied+Materials+%26+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Impact of endothelial cells on 3D cultured smooth muscle cells in a biomimetic hydrogel.</a> ACS Applied Materials & Interfaces. 4 (3), 1378-1387 (2012).</li>
<li>Liu, Z. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dextran-based+hydrogel+formed+by+thiol-Michael+addition+reaction+for+3D+cell+encapsulation%5BTitle%5D)+AND+%22Colloids+and+Surfaces+B%22%5BJournal%5D)">Dextran-based hydrogel formed by thiol-Michael addition reaction for 3D cell encapsulation.</a> Colloids and Surfaces B. 128, 140-148 (2015).</li>
<li>McKee, C., Perez-Cruet, M., Chavez, F., Chaudhry, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+three-dimensional+culture+system+for+long-term+expansion+of+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Simplified three-dimensional culture system for long-term expansion of embryonic stem cells.</a> World Journal of Stem Cells. 7 (7), 1064-1077 (2015).</li>
<li>Sadovska, L., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29248729">A novel 3D heterotypic spheroid model for studying extracellular vesicle-mediated tumor and immune cell communication.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. , (2017).</li>
<li>Srinivasan, P. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+Salivary+Human+Stem%2FProgenitor+Cells+Undergo+Microenvironment-Driven+Acinar-Like+Differentiation+in+Hyaluronate+Hydrogel+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Primary Salivary Human Stem/Progenitor Cells Undergo Microenvironment-Driven Acinar-Like Differentiation in Hyaluronate Hydrogel Culture.</a> Stem Cells Translational Medicine. 6 (1), 110-120 (2017).</li>
<li>Yoshida, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.mdpi.com/2073-4360/9/8/319">Manipulating living cells to construct a 3D single-cell assembly without an artificial scaffold.</a> Polymers. 9, 319(2017).</li>
<li>Anderson, R. R., Parrish, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+photothermolysis%3A+precise+microsurgery+by+selective+absorption+of+pulsed+radiation%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Selective photothermolysis: precise microsurgery by selective absorption of pulsed radiation.</a> Science. 220, 524-527 (1983).</li>
<li>Hashimoto, S., et al. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0009261416303207">Formation of Stable Cell-Cell Contact without a Solid/Gel Scaffold: Non-invasive Manipulation by Laser under Depletion Interaction with a Polymer.</a> Chemical Physics Letters. 655, 11-16 (2016).</li>
<li>Rauch, P., Jähnke, T. <a target="_blank" href="https://www.cambridge.org/core/journals/microscopy-today/article/optical-tweezers-for-quantitative-force-measurements-and-live-cell-experiments/D4853D94DFD7AE988E656F49A1DA49FB">Optical Tweezers for Quantitative Force Measurements and Live Cell Experiments.</a> Microscopy Today. 22, 26-30 (2014).</li>
<li>Ichikawa, M., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18315348">Tilt control in optical tweezers.</a> Journal of Biomedical Optics. 13, 010503(2008).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bu da çalışmanın çözünen polimerler kullanımı 3D tek hücreli derlemeler inşası için bizim son raporları9,11 beton bir uygulama gösterir. Hücre sayısı 10 ve tek lazer ışını tarafından düzenlenen bu tür derlemeleri stabil toplu çözüm oluşur. 10'dan fazla hücreler olduğunda derlemeler cam yüzeyde çökelti. Deneyler hala ilkel bir aşamasında olmakla birlikte, biz roman metodoloji hücre biyolojisi alanında ilerleme için vazgeçilmezdir yeni nesil 3D tek hücreli derlemeler inşası için güçlü bir araç olabilir beklemek ve rejeneratif tıp.
Hiçbir polimer içeren bir çözümde hücre yüzey ücret, hidrasyon itme gücü, glycocalyx itme etkisi ve membran kıvrım kaynaklanan elektrostatik itme nedeniyle birbirlerine püskürtmek. Bizim önceki çalışma cep çiftleri otelde hücreleri PEG ile tedavi edilir uzun süre kararlı olduğunu gösterdi. Daha da önemlisi, bir hücre çift bir bölgeye hücreleri temas halinde 5 dakika içinde PEG, için düzenlenen sonra PEG, olmadan başarılı taşıma hücresel iletişim istikrarlı bir şekilde korunur öneriyor. Bu iyi açısından tükenmesi etkisi11açıklanmıştır ve temelde aynı mekanizma DEX9kullanılarak oluşturulan hücresel derlemeler için geçerlidir. Geçerli sonuçlarımız doğal oluştururlar, diğer tür de istikrarlı 3D hücresel derlemeler oluşturmak için kullanılan olabilir öneririz.
Polimer konsantrasyon hücreleri, komut istemi aktarımı için önemlidir. Genel olarak, polimer örtüşme konsantrasyon çözüldüğünde viskozite çözüm büyük ölçüde artırır. Bu durum altında Optik cımbız kullanarak hücreleri manipüle etmek zordur. Bu nedenle, deneme örtüşme konsantrasyon altında yapılmalıdır. Bir DEX için çakışma konsantrasyon ca. çözümdür 50 mg/mL (kinetik viskozite ise 5.5 mm2/s). DEX konsantrasyonu 10 mg/mL 40 mg/ml yaşındayken Ref. 9'da gösterildiği gibi istikrarlı bir hücresel derleme gözlendi. Bu sonuç tükenmesi etkisi bile DEX konsantrasyon örtüşme konsantrasyonu düşük olduğunda istikrarlı hücre-hücre temas korumak için yeterince büyük olduğunu göstermektedir. DEX ek hücre canlılığı 40 mg/mL 9' a etkilemez gösterilmiştir.
3D hücresel derlemeler inşası için bir yöntem kurulması rejeneratif tıp alanında önemli bir vivo içinde taklit beri tek hücre yapılanması tarafından hücresel microenvironment kök hücre kaynaklı doku kolaylaştırabilir oluşumu. Şimdiye kadar Neuro2A hücreleri9 NMuMG hücreleri ek olarak kullanarak hücresel derlemeler oluşturmak için mevcut protokolü kullanmış. Hücresel derlemelerinin 3D: çeşitli türleri morfoloji hücreleri daha çok sayıda oluşturmak için deneysel bir metodoloji kurmak istiyoruz. Ichikawa vd tarafından geliştirilen Optik cımbız sistemi hücreleri yönünü kontrol edilebilir bu yana 13 bu amaç için geçerli olacaktır. Bu doğrultuda daha fazla denemeler umut verici olmalıdır.

İnsan doku hücrelerinin birkaç derlemelerinin oluşmaktadır ve vücudun homeostazı korumak için yardımcı olabilir iken, kendileri tarafından tek hücre hücre hücre etkileşim yoluyla da önemli rol oynarlar. Bu nedenle, tek hücreler dış sinyalleri tarafından uyarılmış ve yapışık diğer hücrelere böyle sinyallerini aktarmak nasıl aydınlatmak önemlidir. Bu amaç için birkaç yöntem tek hücre tabanlı 3 boyutlu (3D) derlemeler1,2,3,4,5,6 yapımı için kurulmuş olan ,7,8. Ancak, hücresel derlemeler oluşturmak için kullanılan malzemeler hala geliştirilebilir. Örneğin, sentetik jelleri ve polimerler Polietilen glikol (PEG) dahil olmak üzere bazı kimyasal fizikokimyasal özelliklere sahip ve hedef hücreleri (Örneğin, toksisite) etkileyebilir.
Biz son zamanlarda istikrarlı hücre-hücre iletişim9kurarak dextran (DEX) kullanarak hücreleri tek hücre tabanlı 3D derleme üretebilir bir roman sistem bildirdi. Düşündüğümüz bu teknoloji rejeneratif tıp ve hatta kanser biyoloji de dahil olmak üzere çeşitli araştırma alanlarında yararlı olabilir. Bu raporda, biz nasıl biz tek hücreleri manipüle ve 3 boyutlu (3D) hücresel derlemeler DEX yapay bir iskele de dahil olmak üzere çeşitli hidrofilik biomacromolecules huzurunda oluşturmak açıklar.

<table><tbody><tr><td>Mikroskop IX71</td><td>Olympus</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td>Dekstran(200,000; moleküler biyoloji sınıfı)</td><td>Wako</td><td>CAS.NO&nbsp; 9004-54-0</td><td></td></tr><tr><td>Lazer Yakalama Sistemi (NanoTracker 2)</td><td>JPK Instruments</td><td>S/N T-05-0200</td><td></td></tr><tr><td>Üst Objektif Lensi</td><td>Olympus</td><td>LUMPLFLN60XW</td><td></td></tr><tr><td>Alt Objektif Lensi</td><td>Olympus</td><td>UPLSAPO60XW</td><td></td></tr><tr><td>Üst Kapak Camı</td><td>MATUNAMI</td><td>C022401</td><td></td></tr><tr><td>Ara Kapak Camı (Ara Parça)</td><td>MATUNAMI-ısmarlama</td><td></td> <td>(boyut = 10mm ve kez; 10 mm, kalınlık = 0,17 mm)</td></tr><tr><td>Alt Kapak Camı</td><td>MATUNAMI</td><td>C030401</td><td></td></tr><tr><td>Kamera</td><td>Görüntüleme Kaynağı</td><td>DFK 31AF03</td><td></td></tr><tr><td>Yazılım</td><td>JPK Instruments</td><td>NanoTracker2 PFM yazılımı</td><td></td></tr><tr><td>NMuMG hücreleri&nbsp;</td><td>RIKEN BRC</td><td>RCB2868</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Wako</td><td>166-23555</td><td></td></tr><tr><td>Hücre bankacısı</td><td>Nippon Zenyaku Kogyo</td><td>ZR621</td><td></td></tr><tr><td>D-MEM</td><td>Wako Saf Kimya Sanayi, Japonya</td><td>044-29765</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Hücre Kültürü Biosci., Nichirei Biosci. Inc., Japonya</td><td>172012-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Thermo Fisher Bilimsel</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin</td><td>Wako Saf Kimya Sanayi, Japonya</td><td>161-23181</td><td></td></tr></tbody></table>

canlı hücreler yapay iskele olmayan istikrarlı 3d hücresel derleme oluşturmak için değiştirme

Manipulating Living Cells to Construct Stable 3D Cellular Assembly Without Artificial Scaffold

Rejeneratif tıp ve doku mühendisliği dirençli hastalıkların tedavisi için birkaç avantaj sunar ve çeşitli çalışmalarda 3 boyutlu (3D) hücresel derlemeler bu alanlardaki önemini göstermiştir. Yapay iskele kez 3D hücresel derlemeler oluşturmak için kullanılmaktadır. Ancak, hücresel derlemeler oluşturmak için kullanılan iskele bazen zehirlidir ve hücre özelliklerini değiştirebilir. Böylece, hücre-hücre iletişim kolaylaştırmak için bir non-toksik Yöntem kurmak faydalı olacaktır. Bu yazıda, istikrarlı hücresel derlemeler dextran ile Optik cımbız kullanarak oluşturmak için yeni bir yöntem sunar. Bu yöntemin avantajları, birkaç dakika içinde kararlı hücre hücre iletişim kurar biridir. Bu yeni yöntem inşaat 3D hücresel birleştirici bir doğal hidrofilik polimer sağlar ve yeni nesil 3D tek hücreli derlemelerde rejeneratif tıp ve doku mühendisliği alanlarında oluşturmak için yararlı olacağı tahmin edilmektedir.

Bu çalışmada kullanılan yazılım ve mikroskop Şekil 1 gösterir. Şekil 2 hücreleri içeren örnek çözümü yerleştirmek için yordamı, şematik bir gösterimidir. Şekil 3 çift Lazer Optik cımbız kullanarak bir piramit yapı oluşumu gösterir. Deneme başarılı olursa, lazer bile kapalı sonra hücresel bu derlemeler kararlı kalır.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57815/57815fig1.jpg"> Resim 1 : (a) yakalama lazer sistemi için kontrol sistemi (NanoTracker2 (11)). Sistem aşağıdaki adımları ① ③ lazer anahtarı çevirerek etkinleştirilir. (b) yakalama lazer sistemi kontrol etmek için yazılım. Kamera, LED ışık, odak ayarlamak ve sahne alanı aktif simgeler ① ②, ③ ve ④, sırasıyla tıklatarak. Mikroskobik görüntü 1 panelinde görüntülenir. LED açık/kapalı kontrol Masası'nda 2 içindir. Odağı panel 3 kontrol edilir. Lazer ışınları pozisyonları 1 ve 2 simgelerini tıklatarak ışınlanmış ben IV. Bu lazer Systemare yakalama ayrıntılarını Ref. (12) sağlanan. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57815/57815fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57815/57815fig2.jpg"> Şekil 2: slayt cam yerleştirmek için temsilcisi şematik. Örnek (dextran içeren hücre süspansiyon) 20 µL slayt üzerinde yerleştirilir ve lazer işleme için kullanılır. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57815/57815fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57815/57815fig3.jpg"> Şekil 3 : bir) epitel hücreleri (NMuMG) istenen bir şeklin bir ortamda derlemelerinin DEX (40 mg/mL) ile: bir piramit bir 3D küme örnek olarak gösterilir. b) piramit şeklindeki 3D hücresel derleme şematik bir figürü de gösterilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57815/57815fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Biz bir tek hücre tabanlı 3 boyutlu (3D) olmayan derleme bir yapay iskele oluşturmak için yeni bir yöntem göstermek.

Canlı hücreler yapay iskele olmayan istikrarlı 3D hücresel derleme oluşturmak için değiştirme

Regenerative medicine and tissue engineering offer several advantages for the treatment of intractable diseases, and several studies have demonstrated the ...

Bu yeni metodoloji bize üç boyutlu derlemeler inşa sağlar, istenilen bireysel hücrelerden uyarlanmış, nonspesifik hidrofilik polimer içeren sulu bir tampon çözeltisi, kararlı hücre-hücre teması kurarak. Bu videoda, istenilen tek hücreleri nasıl manipüle ettiğimizi ve yapay iskele olmadan 3Boyutlu hücresel derlemeler nasıl inşa ettiğimizi göstereceğiz. Burada bir örnek olarak Dextran ile bizim orta deneysel prosedür gösterecektir.Başlamak için, 25 kübik bir şişe de, 25 santimetreküp lük bir şişe de, DMEM beş mililitre ile NAMRU fare meme bezi epitel hücreleri korumak, 10% FBS ve 1% Penisilin-Streptomisin içeren, iki ila üç gün boyunca bir 25 santimetreküplük şişe. Devam etmeye hazır olduğunuzda, ek DMEM kaldırmak için bir aspiratör kullanın ve PBS üç ila beş mililitre ekleyin, bu hücreleri yıkamak için önceden ısıtılır 37 santigrat derece. Bir aspiratör kullanarak, tüm PBS'yi şişeden çıkarın.37 santigrat derecede önceden ısıtılmış trypsin 1.5 mililitre ekleyin. En az bir ila iki dakika boyunca 37 santigrat derecede bir CO2 kuluçka makinesinde kuluçkaya yat. Bundan sonra, % 10 FBS ve% 1 Penisilin-Streptomisin içeren DMEM 3.5 mililitre ekleyin.Pipet yukarı ve aşağı karıştırmak için. Hücre süspansiyonuna 15 mililitrelik bir santrifüj tüpüne aktarın ve oda sıcaklığında 3 dakika 417 kez G'de santrifüj edin. Sonra, orta aspire.%10 FBS ve %1 Penisilin-Streptomisin içeren beş milimetre taze DMEM ekleyin. Ve gerekirse, üreticinin talimatları ile belirtildiği gibi hücreleri kriyokoruma için bir kriyopreservation çözüm kullanın. İlk karışımı 10 mililitre DMEM 10% FBS ve 1% Penisilin-Streptomisin ile 0.8 Gram Dextran ile takviye, mililitre Dextran çözeltisi başına 80 miligram hazırlamak için.Bu Dextran çözeltisinin 200 mikrolitresini daha önce hazırlanmış hücre süspansiyonunun 200 mikrolitresiyle karıştırın ve mililitre Dekstran orta sıyrık başına 40 miligram içeren bir hücre süspansiyonu oluşturun. Başlamak için lazeri açın, kırmızıdan kızılötesi bölgeye doğru dalga boyuna sahip bir lazer ışınının kullanımının en etkili olduğunu unutmayın. Daha sonra yazılım simgesini çift tıklayarak yazılımı açın.Kamera simgesini çift tıklatın ve ilgili ekranın ortaya çıkar olacağını unutmayın. Ardından ışık yayan diyot, odak ayarlaması ve ekranlarını da açmak için hareketli sahne için simgelere çift tıklayın. İlk alt kapak cam slayt üzerine iki cam boşluk lar yerleştirin.Transfer 20 mikrolitre, daha önce hazırlanmış Dextran alt kapak cam slayt üzerine hücre süspansiyon takviye. Daha sonra üst kapaklı cam kaydırağı hücre süspansiyonuna kaplayan boşluklara yerleştirin. Su daldırma mikroskopisi için 10 mikrolitre distile su ile örnek hücreyi alt objektif merceğe yerleştirin.10 mikrolitre distile su kullanarak örnek hücrenin üst kısmındaki üst objektif merceği takın. Ardından, LED'i açmak için mikroskop aydınlatma penceresindeki açma-kapama düğmesini tıklatın. Hedef konumlandırma penceresindeki yön düğmelerine tıklayarak, odak noktası olana kadar örnek le alt objektif lens arasındaki mesafeyi ayarlayın.Sinyal zayıflama penceresinde her lazer ışınının yoğunluğunu 1500 miliwatt'a ayarlayın. Daha sonra, lazer ışınlarını birinci ve ikinci konumdaki lazer ışınlarını ışınlamak için iki lazer simgesini tıklatın. Örnek konumlandırma penceresindeki yön düğmelerine tıklayarak örnek aşamasını bir hücre birinci konumda sıkışıp kalana kadar hareket ettirin.Başka bir hücre ikinci konumda sıkışıp kalana kadar ikinci konumu gösteren imleci tıklatın ve sürükleyin. Başlamak için, tek bir hücreyi manipüle edin, böylece başka bir hücreyle temas halinde olur. Bu durumu 300 saniye boyunca koruyun, böylece hücre 300 saniye boyunca bir lazere maruz kalır.X-y eksenini kaydedin. Başka bir hücreyi bindirme ve rasgele bir 2B hücre derlemesi oluşturmak için ilk iki hücreye taşıyın. Sonra bir 3D hücresel montaj oluşturmak için sahne yukarı ve aşağı taşıyın.Lazer kapatıldıktan sonra bile montajın hala kararlı olduğunu doğrulayın. Bu çalışmada çözünür polimerler 3D tek hücreli montajların yapımında kullanılmaktadır. Çift ışınlı optik cımbız kullanılarak oluşturulan örnek bir yapı burada gösterilmiştir.Deneme başarılı olursa, bu hücresel derlemeler lazer kapatıldıktan sonra bile sabit kalır. Bu yeni metodoloji doğal hidrofilik polimer ile sulu bir ortamda 3D hücresel montajları inşaat içindir. Bu son derece rejeneratif tıp ve doku mühendisliği alanında güçlü araçlar dan bazıları ile yeni nesil hücresel meclisleri bu tür inşaat başlaması bekleniyor.

manipulating-living-cells-to-construct-stable-3d-cellular-assembly

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biyokimya

Biz, üç-boyutlu hücre kültürü için gözenekli polimer cips mikroimalat için iki süreç sunuyoruz. Bunlardan birincisi, solvent buhar kaynak işlemi ile birlikte sıcak kabartma. Ikincisi ise, kısa bir süre önce geliştirilen iyon izleme teknolojisi ile üretim önemli bir basitleştirme giden kombine microthermoforming süreci kullanır.

Üç boyutlu Hücre ekimi için Chip-ölçekli Yapı iskeleleri mikroimalat

Bu makalede, hücresel öz-montaj hücre kökenli doku halkaları oluşturmak için çok yönlü bir yöntem özetlemektedir. Düz kas hücreleri içine numaralı seribaşı halka şeklinde agaroz kuyuları agrega ve 7 gün içinde sağlam bir üç boyutlu (3D) dokular oluşturmak için sözleşme. Milimetre ölçekli doku halkaları mekanik test için elverişli ve doku montaj için yapı taşları olarak hizmet.

Hücresel Self-Meclis Biyomekanik Analizi ve Doku Mühendisliği, Hücre-Türetilmiş Doku Yüzüklerin Üretiyor yönelik

Burada kendi kendine montaj 3-boyutlu iskele kültür insan nöral progenitör hücrelerin kullanımını tanımlamak. Biz flow sitometri ile analiz edilecek daha sonra örneğin iskeleleri hücreleri serbest bırakmak için bir protokol mevcut. Bu protokol detaylı mekanistik çalışmalar gerçekleştirmek için diğer hücre türlerine adapte olabilir.

3 boyutlu montaj Self-Peptid Hidrojel İnsan Sinir Progenitör Hücreler Yetiştiriciliği

Karmaşık dokunun son derece organize yapılarının oluşturulması için, birden fazla materyal ve hücre tipini entegre bir kompozitte bir araya getirmek gerekir.  Bu kombinatoryal tasarım, güçlü bir fibröz matris tabanı içeren iki farklı biyolojik olarak türetilmiş materyal ve yeni damar oluşumunu arttırmak için endotel hücreleri ile organa özgü katmanlı hücre tabakalarını içerir.

Doku Mühendisliği: Katmanlı Hücre Sheets teslimi için bir Multisellüler 3D İskele İnşaatı

Bir Kartezyen biyoyazıcı, hassas, tekrarlanabilir geometrilerde çok malzemeli biriktirmeye izin verirken aynı zamanda çevresel faktörlerin kontrolüne de izin verecek şekilde tasarlanmış ve üretilmiştir. Üç boyutlu biyo-yazıcıyı kullanarak, karmaşık ve uygulanabilir yapılar basılabilir ve kolayca çoğaltılabilir.

Üç Verici Kartezyen Yazıcı Kullanımı Bioprinted Hücresel Yapıların Canlılık

Bu iletişim kuralı kendi kendine monte doku yüzük değişken boyutları kullanarak özelleştirilmiş bir 3D Baskılı Plastik kalıp imalatı için bir platform açıklar. PDMS negatifleri 3D baskılı kalıp içinde tedavi; o zaman özel içinde tedavi PDMS negatif atıldı. Hücreleri nerede doku yüzük içine toplamak elde edilen özel kuyu içine numaralı seribaşı.

Hücre tohum için özel özel Wells ve kendinden montajlı 3D baskı kalıpları kullanarak doku yüzük imalatı

Burada, kendi kendine dediferansiye insan artiküler kondrosit farklılaşma kıkırdak benzeri doku içine tanıtmak için peptid iskele montaj içinde 3D-kültür sistemleri elde etmek için bir iletişim kuralı mevcut.

Üç boyutlu peptid iskele memeli hücrelerinde kültür

Biz bir tekrarlanabilir model formasyonu elde etmek için 3D bir hücre dışı matriks ilk hücre kümesi şeklinde kontrol etmek için bir yordam mevcut. İki farklı hydrogels içeren bir küp aygıtı doku Desen oluşumu için çok yönlü görüntüleme elde etmek için istihdam edilmektedir.

İlk 3D hücre küme denetimi içinde a Hybrid jel küp aygıt için tekrarlanabilir model oluşumları

Bu protokol, üç farklı sferoid tipinin üretimi için bir yöntemi, onları büyük ölçekli yüksek içerikli tarama ve analiz için uygun hale getirecek şekilde detaylandırmaktadır. Ek olarak, küresel ve bireysel hücre seviyelerinde nasıl analiz edilebileceğini gösteren örnekler sunulmaktadır.

Yüksek İçerikli Tarama ve Analiz Uygulamaları için Büyük Ölçekli Sferoid Üretimi için Sağlam Bir Yöntem

Hücre sferoidleri, biyolojik uygulamalar alanında potansiyel bir model olarak kabul edilmiştir. Bu makale, tek tip hücre sferoidlerinin sağlam ve hızlı üretimi için etkili bir yöntem sağlayan bir 3D akustik montaj cihazı kullanarak hücre sferoidlerini ölçeklendirilebilir şekilde üretmeye yönelik protokolleri açıklamaktadır.

Hücre sferoidlerinin seri üretimi için üç boyutlu akustik montaj cihazı

Öğrenin, optik cımbızlar ve hidrofilik polimerler kullanarak yapay iskele olmadan 3D hücresel yapılar oluşturmayı. Bu yöntem, doku mühendisliği ve rejeneratif tıp için yeni olanaklar sunar.

Canlı hücreler yapay iskele olmayan istikrarlı 3D hücresel derleme oluşturmak için değiştirme

Daha fazla video keşfet