-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Konakçı-Patojen Etkileşimlerinin Analizi için Zebra Balığı Larvalarının Aspergillus Spor...
Konakçı-Patojen Etkileşimlerinin Analizi için Zebra Balığı Larvalarının Aspergillus Spor...
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Infection of Zebrafish Larvae with Aspergillus Spores for Analysis of Host-Pathogen Interactions

Konakçı-Patojen Etkileşimlerinin Analizi için Zebra Balığı Larvalarının Aspergillus Sporları ile Enfeksiyonu

Full Text
4,415 Views
09:42 min
May 16, 2020

DOI: 10.3791/61165-v

Savini Thrikawala1, Emily E. Rosowski1

1Department of Biological Sciences,Clemson University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Bu protokol zebra balığı larvalarında bir Aspergillus enfeksiyon modelini açıklar. Aspergillus sporları larvaların arka beyinlerine mikroenjeksiyona sokuldu ve immünosupresyona neden olmak için kimyasal tedavi kullanıldı. Enfeksiyon ilerlemesi, mantar büyümesini ve immün yanıtları ve canlı sporların koloni oluşturan birim kaplama ile numaralandırılmasını izlemek için günlük görüntüleme kurulumu ile izlenir.

Transcript

Bu protokol, bu mantara karşı doğuştan gelen bağışıklık tepkilerini araştırmak için kullanabileceğimiz bir larva zebra balığı aspergillus enfeksiyon modelini göstermektedir. Larva zebra balığı modelinin temel avantajı, çok günlük bir enfeksiyon boyunca canlı bir konakçı hayvan içindeki bağışıklık hücresi patojen etkileşimlerini ve enfeksiyon ilerlemesini görselleştirebilmemizdir. Bu modelden elde edilen bulgular, bağışıklık sistemi baskılanmış hastalarda invaziv aspergillozu tedavi etmek için yeni terapötik hedeflerin keşfi için geçerli olabilir.

Sporların larva zebra balığına mikro enjeksiyonu, tutarlı ve tekrarlanabilir sonuçlar elde edilmeden önce önemli ölçüde pratik gerektiren zor bir tekniktir. Mikroenjeksiyonları gerçekleştirmek için, bir basınç enjektörü, vakum basınç ünitesi, ayak pedalı, mikropipet tutucu, mikro manipülatör ve manyetik bir stand ve plaka ile birlikte verilen kurulumu kullanın. Hepsi bir basınçlı hava kaynağına bağlı.

Basınçlı hava valfini açın. Ve mikroenjektörü açın. Basıncı yaklaşık 25 psi'ye, desteği 60 milisaniyeye ve vakum basınç ünitesini 1 psi'ye ayarlayın.

Mikroenjeksiyon iğnesine üç ila beş mikro litre PBS veya fenol kırmızısı ile spor süspansiyonu yüklemek için bir mikro yükleyici pipet ucu kullanın. Ardından iğneyi mikromanipülatöre monte edin. Aspergillus fumigatus, insanlarda fırsatçı bir patojendir.

Yüklenen iğne ile cildin delinme riski vardır. İğne mikroenjektöre çok sıkı bir şekilde takılmalı ve araştırmacılar her zaman eldiven giymeli ve delinmeyi önlemek için iğne etrafındaki el hareketlerine çok dikkat etmelidir. Mikromanipülatörü, iğnenin ucu stereo mikroskop altında en düşük büyütmede görünecek şekilde konumlandırın.

İğneyi görüş alanında tutarak 4x büyütmeye yakınlaştırın. Ardından iğnenin ucunu kesmek için keskin forseps kullanın. Damlacığın boyutunu görselleştirmek için enjeksiyon pedalına basın.

Ve yaklaşık üç nanolitre spor süspansiyonu çıkana kadar iğneyi kırpmaya devam edin. Hazır olduğunuzda, larvaları enjeksiyon plakasına yerleştirirken yanlışlıkla iğneye çarpmamak için mikromanipülatörü ve iğneyi yoldan çekin. E3 tricaine'i enjeksiyon plakasından dökün.

Ve yaklaşık 24 anestezi uygulanmış iki günlük larvaları mümkün olduğunca az E3 ile plakaya aktarın. Ardından, larvaları baktıkları yöne göre düzenleyin, tüm larvaları bir sıra halinde sağa bakacak şekilde ve aşağıda bir sıra halinde sola bakacak şekilde yerleştirin. Mikroskop en düşük büyütme oranına ayarlandığında, mikromanipülatörü geri getirin, böylece iğne larvalara 30-60 derecelik bir açıyla yakın olur.

En yüksek büyütme oranına yakınlaştırın. İğnenin konumunu daha da ayarlamak için ince ayar düğmelerini kullanın. İğneden 30-70 sporun çıktığını doğrulamak için spor süspansiyonunu larvaların yanındaki sıvıya enjekte edin.

Daha sonra plakayı, iğne doğrudan yukarıda olacak ve ilk larvaların yanına gelecek şekilde hareket ettirin. İğneye doğru bakan larvalardan başlayarak. İğneyi otik vezikülün etrafındaki dokudan geçirin ve larvaların doğru yönünü elde etmek için plakayı gerektiği gibi hareket ettirerek arka beyin ventrikülüne

doğru delin.

İğnenin ucunun arka beyin ventrikülünün merkezinde olduğunu görsel olarak doğrulayın. Ardından sporları enjekte etmek için ayak pedalına basın ve iğneyi nazikçe geri çekin. Tüm larvaları her iki sıraya da enjekte ettikten sonra, iğneyi tekrar yoldan çekin.

Ve daha düşük bir büyütme oranına yakınlaştırın. Fenol kırmızı boya, her larvanın arka beyninde hala görünür olmalıdır. Başarısız enjeksiyonlarla larvaları atın ve kalan larvaları taze E3 ile plakadan yıkayarak bir petri kabına aktarın. Larvaları E3 ile iki kez durulayın ve anesteziden kurtulduklarından emin olun.

Enjeksiyondan hemen sonra, larvaların sekizini ayrı ayrı 1.7 mililitrelik tüplere aktarın ve ötenazi yapın. Ampisilin ve kanamisin ile 1 mL PBS hazırlayın. Larvaların bulunduğu tüplerden mümkün olduğunca fazla sıvı alın.

Sonra antibiyotikli 90 mikrolitre PBS ekleyin. Larvaları bir TissueLyser'da dakikada 1800 salınımla altı dakika boyunca homojenize edin. Ardından, 30 saniye boyunca 17.000 kez G'de döndürün.

Homojenize süspansiyonu her tüpten etiketli bir GMM plakasının ortasına pipetleyin ve tek kullanımlık L şeklinde bir yayıcı kullanarak yayın. Janta yayılmamaya dikkat edin. Plakaları iki ila üç gün boyunca 37 santigrat derecede baş aşağı inkübe edin.

Ardından, oluşan kolonilerin sayısını sayın. Kalan enjekte edilen larvaları iki adet 3,5 milimetrelik tabağa bölün. Biri ilaç tedavisi için, diğeri kontrol için.

Mümkün olduğu kadar çok sıvıyı çıkarın ve araç kumandası ile E3'ü bir tabağa ekleyin. Ve E3 ile diğerinin ilgisini çekmek. Her larvayı 96 oyuklu bir plakadaki bir kuyuya aktarmak için bir pipet kullanın.

Ve yedi gün boyunca hayatta kalmalarını izleyin. Görüntüleme gününde, 100 mikromolar PTU ile bir adet 3,5 milimetre petri kabı ve E3 trikain ile bir tane hazırlayın. Bir Z-wedge E cihazının haznelerine E3 tricaine ekleyin ve haznelerdeki ve sınırlama kanalındaki hava kabarcıklarını çıkarmak için bir P100 mikropipet kullanın.

Daha sonra odaların dışındaki tüm fazla E3 tricaine'i çıkarın. Bir larvayı pipetleyin ve E3 PTU ile tabağa aktarın. Daha sonra mümkün olduğunca az sıvı ile E3 tricaine'e aktarın.

30 saniye sonra, anestezi uygulanmış larvaları yaralama ve tuzak cihazının yükleme odasına aktarın. E3 trikaini yaralama odasından çıkarın ve larvaların kuyruğunu kısıtlama kanalına hareket ettirmek için yükleme odasına bırakın. Arka beynin ters çevrilmiş bir objektif mercekle görüntülenebilmesi için larvanın yan, sırt veya dorsolateral tarafına yerleştirildiğinden emin olun.

Larvaları konfokal bir mikroskopla görüntüledikten sonra, larvaları kısıtlama kanalından yükleme odasına itmek için E3 trikaini yara odasına bırakın. Larvaları toplayın ve E3 tricaine ile tabağa geri aktarın. Daha sonra mümkün olduğunca az sıvı ile E3 PTU ile tabağa aktarın.

PTU'da durulayın ve tekrar 48 kuyulu plakaya aktarın. Aspergillus sporları, zebra balığı larvalarının arka beynine mikroenjekte edildi, bir enfeksiyon sonucu izlendi. Yabani tip larvalarda çok az ölüm gözlendi ve larvaların %80 ila 100'ü tüm deney boyunca hayatta kaldı.

İmmün sistemi baskılanmış larvalarda sağkalımda önemli bir azalma gözlenmiştir. Enfekte yabani tip larvalardan koloni oluşturan birimler ölçüldüğünde, sporların kalıcılığı ve zaman içinde yavaş klerens gözlenmiştir. Enfeksiyondan bir, iki, üç, beş ve yedi gün sonra hayatta kalan sporların sayısı, kopyalar arasında kalıcılığı ve klerensi karşılaştırmak için enjekte edilen spor sayısına normalleştirildi.

Makrofajlar etiketlendiğinde, larvaların yaklaşık% 50'sinde mikrofaj kümelenmesi tipik olarak enfeksiyondan iki ila üç gün sonra başlayarak gözlenmiştir. Nötrofil alımı, esas olarak bir mantar çimlenmesinden sonra meydana gelen gecikti. Larvaların çoğunda mantar yükü tüm deney boyunca devam ederken.

Enfeksiyondan beş gün sonra bazılarında klerens gözlendi. Larvaların başka bir alt kümesinde, arka beyin dışındaki bölgelere mantar yayılımı gözlendi. Otik vezikülün etrafındaki alan, bu yayılımın bulunduğu bir yerdir.

Mantar çimlenmesi tipik olarak larvaların %60'ında beş gün boyunca görülmüştür. Fagosit küme alanı, makrofaj alımı ve nötrofil alımı tüm larvalarda zamanla değişmiştir. Bazıları deney boyunca eğilim gösterirken, diğerleri zamanla çözülür.

Bu prosedür, aspergillus'a karşı başarılı bir doğuştan gelen bağışıklık tepkisinde spesifik konak yollarının gereksinimini belirlemek için CRISPR gibi zebra balıklarının genetik manipülasyonu ile birleştirilebilir. Bu protokol, aspergillus'un doğuştan gelen bağışıklık hücresi etkileşimlerinin gerçek zamanlı olarak, canlı, sağlam konakçılarda görselleştirilmesine izin vermiştir.

Explore More Videos

İmmünoloji ve Enfeksiyon Sayı 159 zebra balığı Aspergillus mikroenjeksiyon hindbrain ventrikül invaziv aspergillosis immün yanıt makrofajlar nötrofiller konfokal görüntüleme transgenik

Related Videos

Hücre içi bakteriyel patojenler ile Zebra balığı Embryolarının Enfeksiyon

11:18

Hücre içi bakteriyel patojenler ile Zebra balığı Embryolarının Enfeksiyon

Related Videos

44.3K Views

Zebra balığı Larva yılında Dissemine Kandidiyazis non-invaziv Görüntüleme

10:45

Zebra balığı Larva yılında Dissemine Kandidiyazis non-invaziv Görüntüleme

Related Videos

15.1K Views

Zebra Balığı Larvalarında Mantar Enfeksiyonunu Ölçmek İçin Bir Teknik

02:24

Zebra Balığı Larvalarında Mantar Enfeksiyonunu Ölçmek İçin Bir Teknik

Related Videos

490 Views

Mantar Patojeni ile Enfekte Zebra Balığı Larvalarını Görselleştirmek için Bir zWEDGI Tekniği

02:58

Mantar Patojeni ile Enfekte Zebra Balığı Larvalarını Görselleştirmek için Bir zWEDGI Tekniği

Related Videos

415 Views

Kuruluş ve Eğitim için bir Yüksek Verimli Kur Optimizasyonu Staphylococcus epidermidis Ve Mycobacterium marinum Enfeksiyon İlaç Keşif için bir model olarak

10:19

Kuruluş ve Eğitim için bir Yüksek Verimli Kur Optimizasyonu Staphylococcus epidermidis Ve Mycobacterium marinum Enfeksiyon İlaç Keşif için bir model olarak

Related Videos

13.5K Views

Bir Zebra balığı Larva Modeli Doğuştan Bağışıklık Tepki Non-invaziv Görüntüleme Streptococcus iniae Enfeksiyon

11:16

Bir Zebra balığı Larva Modeli Doğuştan Bağışıklık Tepki Non-invaziv Görüntüleme Streptococcus iniae Enfeksiyon

Related Videos

11.1K Views

Görüntüleme Patogenez ve Cording Deşifre ve Mycobacterium abscessus Zebra balığı Embriyolar

10:38

Görüntüleme Patogenez ve Cording Deşifre ve Mycobacterium abscessus Zebra balığı Embriyolar

Related Videos

10.8K Views

İnsan İnfluenza A Virüs Enfeksiyonları Zebra balığı Modeller Kullanılarak Antiviral İlaçlar Ekran ve Host Bağışıklık Hücre Yanıtları karakterize etmek

09:07

İnsan İnfluenza A Virüs Enfeksiyonları Zebra balığı Modeller Kullanılarak Antiviral İlaçlar Ekran ve Host Bağışıklık Hücre Yanıtları karakterize etmek

Related Videos

10.4K Views

Kuruluş, larva Zebra balığı bir hayvan modeli araştırmak Trypanosoma cruzi hareketliliği In Vivo olarak

13:21

Kuruluş, larva Zebra balığı bir hayvan modeli araştırmak Trypanosoma cruzi hareketliliği In Vivo olarak

Related Videos

11.1K Views

Bir zebra balığı embriyo Model In Vivo görselleştirme ve Staphylococcus aureus Intravital analiz Biomaterial ilişkili enfeksiyon

10:04

Bir zebra balığı embriyo Model In Vivo görselleştirme ve Staphylococcus aureus Intravital analiz Biomaterial ilişkili enfeksiyon

Related Videos

7.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code