-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Tüm Mount Nöromüsküler Kavşakların İmmünofluoresan ve Morfometrik Analizleri için Tek İskelet Kas...
Tüm Mount Nöromüsküler Kavşakların İmmünofluoresan ve Morfometrik Analizleri için Tek İskelet Kas...
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Dissection of Single Skeletal Muscle Fibers for Immunofluorescent and Morphometric Analyses of Whole-Mount Neuromuscular Junctions

Tüm Mount Nöromüsküler Kavşakların İmmünofluoresan ve Morfometrik Analizleri için Tek İskelet Kas Liflerinin Diseksiyonu

Full Text
10,076 Views
08:41 min
August 14, 2021

DOI: 10.3791/62620-v

Carmen Bolatto*1, Silvia Olivera-Bravo*2, Sofía Cerri1,2

1Developmental Biology Laboratory, Histology and Embryology Department, Faculty of Medicine,Universidad de la República, 2Cell and Molecular Neurobiology Laboratory, Clemente Estable Biology Research Institute (IIBCE),Ministerio de Educación y Cultura

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for dissecting single skeletal muscle fibers to analyze whole-mount neuromuscular junctions using immunofluorescence and morphometric techniques. The method aims to enable accurate quantitative measurements of synaptic components. High-quality images of neuromuscular junctions from both slow and fast muscle fibers are obtained for detailed morphometric analysis.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Muscle Physiology
  • Immunofluorescence Imaging

Background

  • Neuromuscular junctions are critical for muscle function and can be affected by various conditions.
  • Understanding their architecture helps evaluate pathological or developmental changes.
  • High-quality imaging is essential for accurate morphometric analysis

Purpose of Study

  • Develop a standardized method for obtaining and analyzing whole-mount neuromuscular junctions.
  • Document differences in neuromuscular junctions in transgenic versus non-transgenic animals.
  • Facilitate recognition of synaptic components using advanced imaging techniques.

Methods Used

  • The protocol involves dissection of EDL and soleus muscles from rats.
  • Procedures employ specific surgical instruments for safe muscle isolation.
  • Fixation of muscles is performed followed by immunostaining to visualize neuromuscular junction components.
  • Images are subsequently analyzed using confocal microscopy for quantification of synaptic features.

Main Results

  • The method successfully yields high-quality images for identifying pre- and post-synaptic components.
  • Transgenic neuromuscular junctions showed compact structures with reduced areas compared to non-transgenic counterparts.
  • Evidence of partial denervation and differences in marker detection were significant findings.

Conclusions

  • This protocol allows for high-quality preparations crucial for studying neuromuscular junction integrity and function.
  • The results contribute to understanding synaptic architecture changes in disease models.
  • Methodological advancements enhance the ability to investigate neuromuscular junctions in diverse conditions.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this dissection method?
The method is straightforward and reproducible, allowing for high-quality images of neuromuscular junctions for detailed analysis.
How is the muscle dissection performed?
Dissection includes initial skin incisions, muscle separation through various cuts, and careful isolation of muscle fibers to maintain structural integrity.
What types of data are obtained from this analysis?
Data includes imaging and morphometric measurements of synaptic components for comparing normal and altered neuromuscular junction structures.
How can this protocol be adapted for other muscle types?
While designed for EDL and soleus muscles, the protocol can be adjusted for other skeletal muscles by modifying dissection techniques accordingly.
What are the key limitations of this method?
Careful handling is necessary to prevent damage to the neuromuscular junction components, and specific skills are required for effective dissection.

Nöromüsküler kavşak bileşenlerini doğru bir şekilde tespit edebilme yeteneği, patolojik veya gelişimsel süreçler nedeniyle mimarisindeki değişikliklerin değerlendirilmesinde çok önemlidir. Burada, nicel ölçümler yapmak için kullanılabilecek tam montajlı nöromüsküler kavşakların yüksek kaliteli görüntülerini elde etmek için basit bir yöntemin tam bir açıklamasını sunuyoruz.

Tüm monte nöromüsküler kavşakların immünoflüoresan ve morfometrik analizleri için tek iskelet kas liflerinin diseksiyonu. Bu video, EDL ve soleus kaslarını tekrarlanabilir bir yaklaşımla etkili ve güvenli bir şekilde parçalamak için bir protokol gösterecektir. Bu video ayrıca, doğru bir morfometrik analize izin vermek için sinaptik bileşenleri 3D bütünlükle tanımak amacıyla tam monte nöromüsküler kavşakların nasıl elde edeceğini öğretecektir.

Kasları parçalamak için bu cerrahi aletlere ihtiyaç vardır. İşlemi başlatmak için, hayvanı karın yukarı bakacak şekilde yerleştirin. Ayak uçları arasında arka uzuvlara doğru cerrahi bir bıçak kullanarak ilk kesiyi yapın.

Sağ diz açığa olana kadar yukarı doğru çekerek cildi soyun. EDL'yi bulmak için ayak tendonlarını annular ligamente kadar takip edin. Bu bağ iki tendonu çevreler.

İki tendon arasındaki Uniband makası ile bağı kesin. Her ikisini de kaldırarak ve hangisinin tosların yukarı doğru hareket ettiğini görerek EDL tendonu tanımlayın. Tendonu makasla kesin.

Tendonu biyolojik cımbızla tutarken, EDL kasını diğer arka uzuv kaslarından yavaşça ayırmaya başlayın. Kasın hasara yol açmadan ayrılması, EDL tendonunun bölünen bölümünden kası tutup kaldırırken, aralarında bir yol açmak için yanal kasların geri kalanında çeşitli kesikler yapılarak yapılabilir. Kası tamamen izole etmek için, Uniband makası kullanarak sıçan dizine takılan tendonu kesin.

Parçalanmış kası fiksatif çözeltiye daldırın ve dört santigrat derecede 24 saat bekletin. Genel olarak, uzun bir kas olması yararlıdır. Bunu yapmak için, sabitleme için kası takmak için karton ve zımba kullanın.

Soleus kasını izole etmek için hayvanı çevirin. Deriden, cerrahi bir bıçak kullanarak kalkal tendonu kesin. Biyolojik cımbız ve Uniband makas yardımıyla gastrocnemius kasını kemiklerden ayırarak kas kapağı oluşturur.

Soleus kas kapağının iç tarafında olacaktır. Kırmızı ve düz olduğu için tanımlanabilir. Bir çift biyolojik cımbızla, yukarıdaki gastrocnemius'un üzerinde bulunan soleus tendona ulaşın ve kaldırın.

Uniband makasıyla tendonu kesin. Zayıf bağlanma noktalarının bir kısmını keserken tüm kası kaldırın. Son olarak, soleus kasını tamamen serbest etmek için, kalkaneal tendonu oluşturan soleus vesicle'ı kesin.

EDL kası ile yapılan sabitleme adımını tekrarlayın. Bu yöntemi kullanmak için, zımbaları kaslara değil tendonlara sabitlemek önemlidir. 24 saatlik fiksasyon süresi geçtikten sonra, kas liflerini izole etmeye başlamadan önce kasları DPBS çözeltisinde durulayın.

Lifleri izole etmek için, tendonlardan birini bir çift biyolojik cımbızla hafifçe tutun. Daha sonra diğer biyolojik cımbız çifti ile, kas liflerini ayırmak için tendonu yavaşça sıkıştırmaya başlar. Lifleri izole etmek için yavaşça karşı kas tendonuna doğru yukarı doğru çekin.

Birden fazla, küçük, yalıtılmış demet elde edene kadar bu eylemi birkaç kez tekrarlamak gerekecektir. Küçük izole demetler halinde ayrıldıktan sonra, önceden işlenmiş silanize bir kaydıraktan dikkatlice yerleştirin. Tüm lifleri üst üste binmeyecek şekilde düzenli tutmak gerekir.

Bu noktada lifler 24 saat boyunca hava kurutulur. 24 saat sonra, immünostainasyona başlayın. Su geçirmez bir bariyer oluşturmak için, önceden tedavi edilmiş slayttaki izole kas liflerini çevrelemek için bir PAP kalemi kullanın.

Bu, burada açıklanan protokolün ardından elde edilebilen yüksek çözünürlüklü bir konfokal görüntü örneğidir. Sol üstte, post-sinaptik öğe gösterilir ve sağ üstte, sinaptik öncesi öğe gösterilirken, alt görüntüler morfometrik analiz için kullanılacak parametreleri göstermek için şematize edilmiş sinaptik bileşenleri gösterir. İkinci slayt, sinaptik öncesi ve sonrası sinyallerin API'nin çekirdek lekesiyle birleştirilmesini gösterir.

Transgenik hayvanların ve transgenik olmayan hayvanların nöromüsküler kavşakları arasındaki farklılıklar açıkça görülebilir. Nöromüsküler kavşakların morfometrik analizi, transgenik hayvanlarda sinaptik sonrası sinyalin kanıtlarını gösterir ve esas olarak nöromüsküler kavşak toplam alanının azalması nedeniyle daha kompakt görünmektedir. Burada gösterildiği gibi, transgenik hayvanın nöromüsküler kavşak pre-sinaptik alanı azalır.

Tespit edilen en küçük, örneğin B görüntüsünde gösterildiği gibi fosforilasyon önleyici nörofilament sinyali ile bulunandı. Son görüntü, tam monte nöromüsküler kavşakların durumuyla ilgili sonuçları göstermektedir. Kapsama indeksi kullanılarak transgenik nöromüsküler kavşakların kısmen denervatlı olduğu tespit edilmiştir.

Ayrıca, fosforilasyonlu nörofilamentin kapsamının ve nexus'unun fosforilasyonlu olmayan bir nörofilament tespit edildiğinde elde edilenden daha düşük olduğunu belirleyebilir. Önerilen protokol, yavaş ve hızlı kas liflerinden yüksek kaliteli nöromüsküler kavşak preparatları elde etmeyi sağlar. Sinaptik öncesi ve sonrası nöromüsküler kavşak bileşenleri belirli problar veya antikorlar tarafından tanımlandı ve daha sonra konfokal veya süper çözünürlüklü konfokal mikroskopi ile görüntülenerek mikrometrik ölçekte morfometrik analize olanak sağladı.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 174 nöromüsküler kavşak iskelet kas lifi alaylı lif soleus ekstansör digitorum longus diseksiyon immünofluoresans tüm montaj morfometrik analiz

Related Videos

Aktif Bölgeleri Diseksiyon ve Görüntüleme Drosophila Nöromüsküler Junction

06:05

Aktif Bölgeleri Diseksiyon ve Görüntüleme Drosophila Nöromüsküler Junction

Related Videos

16K Views

Sıralı Nöromusküler Kavşağı'nda Tek Schwann Hücreleri belirginleştiren Photo-beyazlatma

11:12

Sıralı Nöromusküler Kavşağı'nda Tek Schwann Hücreleri belirginleştiren Photo-beyazlatma

Related Videos

11K Views

Kombine Konfokal ve Süper Çözünürlüklü Mikroskopi ile Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Karakterizasyonu

04:07

Kombine Konfokal ve Süper Çözünürlüklü Mikroskopi ile Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Karakterizasyonu

Related Videos

389 Views

Tüm Montajlı Nöromüsküler Kavşak Analizi için Enine Abdominis Kasının Diseksiyonu

06:12

Tüm Montajlı Nöromüsküler Kavşak Analizi için Enine Abdominis Kasının Diseksiyonu

Related Videos

12.3K Views

Nöromusküler Kavşak: Ölçme Synapse Boyut, Konfokal Floresan Mikroskobu kullanılarak sinaptik Protein Yoğunluk Parçalanma ve Değişiklikler

12:18

Nöromusküler Kavşak: Ölçme Synapse Boyut, Konfokal Floresan Mikroskobu kullanılarak sinaptik Protein Yoğunluk Parçalanma ve Değişiklikler

Related Videos

22.6K Views

Kaldırılması Drosophila Kas Dokusu

06:41

Kaldırılması Drosophila Kas Dokusu

Related Videos

9.6K Views

Minimal invaziv kas (MIME) katıştırma - donör-Hücre-aracılı Myogenesis kolaylaştırmak için yeni bir deneysel teknik

09:17

Minimal invaziv kas (MIME) katıştırma - donör-Hücre-aracılı Myogenesis kolaylaştırmak için yeni bir deneysel teknik

Related Videos

8.1K Views

Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Kombine Konfokal ve Süper Redüksiyonlu Mikroskopi ile Karakterizasyonu

11:03

Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Kombine Konfokal ve Süper Redüksiyonlu Mikroskopi ile Karakterizasyonu

Related Videos

4.4K Views

Sıçan Medial Gastroknemius Kasında Nöromüsküler Kavşağın Morfolojik Özelliklerinin Görselleştirilmesi

08:42

Sıçan Medial Gastroknemius Kasında Nöromüsküler Kavşağın Morfolojik Özelliklerinin Görselleştirilmesi

Related Videos

5.7K Views

Mikrotübül Ağını Görselleştirmek için Drosophila Larva Nöromüsküler Kavşak ve Kas Hücrelerini Kullanma

08:04

Mikrotübül Ağını Görselleştirmek için Drosophila Larva Nöromüsküler Kavşak ve Kas Hücrelerini Kullanma

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code