Name: ESLP için Juvenil Domuz Modelinde Sol Akciğer Ortotopik Transplantasyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-14T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 55 s
Description: Öğrenin genç domuz modelinde sol akciğer ortotopik transplantasyonunu ve cerrahi teknikleri. Bu yöntem ESLP araştırmalarında ve yapay organ testlerinde değerli bir araçtır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu araştırma Üniversite Hastanesi Vakfı adına finanse edilmektedir.

Tüm prosedürler, Kanada Hayvan Bakımı Konseyi'nin yönergelerine ve laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımına ilişkin kılavuza uygun olarak gerçekleştirildi. Protokoller, Alberta Üniversitesi'nin kurumsal hayvan bakım komitesi tarafından onaylandı. Bu protokol 35-50 kg arasındaki dişi yavru Yorkshire domuzlarında uygulanmıştır. Domuzlar patojen içermeyen, gıda sınıfı örneklerdir. Edmonton, AB, Kanada'daki (https://srtc.ualberta.ca) Domuz Araştırma ve Teknoloji Merkezi'nden satın alınırlar. ESLP prosedürlerine dahil olan tüm bireyler uygun biyogüvenlik eğitimi almıştır.
1. Ameliyat öncesi hazırlıklar ve anestezi
NOT: Domuzlar ameliyattan önce gece boyunca en fazla 12 saat aç bırakılır.
<ol><li>Ameliyathanede alıcı domuz için prezervatif olarak intramüsküler ketamin (20 mg / kg) ve atropin (0.05 mg / kg) enjeksiyonları uygulayın.</li>
	<li>Normotermiyi korumak için domuzu ısıtılmış bir ameliyat masasına sırtüstü yatırın ve maske indüksiyonuna devam edin.</li>
	<li>Oksijen akış hızını hayvan ağırlığına ve anestezik sisteme göre titre edin. NOT: Oksijen akışı 20-40 mL/kg olmalıdır.</li>
	<li>İzofluranı %4-5 oranında uygulayın ve 1-2 dakika sonra %3'e düşürün.</li>
	<li>Anestezi derinliğini değerlendirin, domuzun zararlı bir uyarana yanıt olarak geri çekilme refleksi olmadığından emin olun. Her 5 dakikada bir tekrarlayın. NOT: Bir ağrı yanıtı varsa, uygun anestezi derinliğine ulaşılana kadar izofluran uygulama yüzdesini arttırın. Ketamin ve hidromorfon ile idame analjezisi hakkında daha fazla ayrıntı için bu bölümün 10. adımına bakın. Felçli uygulanmaz. Bu, bir geri çekilme refleksinin değerlendirilmesine izin verir. Burun tutam, zararlı bir uyaran olarak kullanılır.</li>
	<li>Doğru anestezi derinliği onaylandıktan sonra domuzu entübe edin. 40-50 kg'lık domuzlar için özel bir 10 inç, düz bıçaklı laringoskop ve 9 veya 10 boyutunda endotrakeal tüpler kullanın.</li>
	<li>Dile (tercih edilen) veya kulağa bir nabız oksimetresi probu yerleştirin ve %90'ın üzerinde bir oksijen satürasyonunu hedefleyin. NOT: Sıcaklık bir burun sondası ile izlenir. Normotermiyi korumak için bir ısıtma yastığı kullanılır.</li>
	<li>Anesteziyi sürdürmek için oksijen akışını (20-40 mL/kg) ve inhalan gaz oranını (%1-%3) ayarlayın.</li>
	<li>Ventilatör ayarlarını 12-30 nefes/dk solunum hızında, 6-10 mL/kg TV'de, 5 cm H2O PEEP'te ve 20 cm H2O Tepe Basıncında tutun. NOT: Anestezi ve ventilasyon için kapalı bir sistem oluşturmak için standart bir YBÜ tipi pozitif basınçlı ventilatör kullanılır. Hayati değerler 15 dakikalık aralıklarla sürekli olarak izlenir ve kaydedilir. ABG'ler, hayvanın stabilitesine bağlı olarak her 15-60 dakikada bir çekilir. TV'ler 10 mL/kg'a kadar hedeflense de 6-8 mL/kg'a ulaşılır. Şekil 1 , laboratuvarda uygulanan nakil protokolü için negatif basınçlı ventilasyon (NPV)-ESLP'ye şematik bir genel bakış sağlar.</li>
	<li>Povidon iyot kullanarak insizyon bölgesini tıraş edin, yıkayın ve aseptik olarak hazırlayın. NOT: Ketamin / Atropin ile sedasyonun ardından, analjezik rejim, 3 mg / kg Ketamin IV q 1 saat (hasta parametrelerine bağlı olarak 1-3 mg / kg aralığında) ve Hidromorfon 0.05 mg / kg IM q 2 saat periferik olarak yerleştirilmiş bir IV hattı yoluyla uygulanmasını içerir. Dozlar arasındaki daha uzun süre, yüksek kalp atış hızı ve anormal solunum paternleri / karın kası hareketi gibi çığır açan ağrı tepkisine neden olur.</li>
</ol>2. Santral venöz ve arteriyel hatların yerleştirilmesi
<ol><li>Sıvı ve heparin uygulaması için merkezi bir hat yerleştirin. NOT: Toplam IV sıvı uygulaması 1 mL / kg / s olarak hesaplanır ve bir MAP >60 mmHg'yi korumak için sıvı bolusları PRN uygulanır. Merkezi hat ayrıca steroidler, antibiyotikler, vazopresörler ve inotropları uygulamak için kullanılır. Çizgi konumlandırma için Şekil 2A'ya bakın.<ol><li>Cildi bir povidon iyot hazırlama solüsyonu kullanarak hazırlayın ve tamamen kurumasını bekleyin. Elektrokoter kullanarak trakea üzerinde ortalanmış 5-8 cm'lik bir orta hat kesisi yapın ve sternal çentikten kraniyal olarak uzanın.</li>
		<li>Cildi ve deri altı yağını koter kullanarak bölün.</li>
		<li>Orta hat düzlemini kayış kasları arasında bölün ve ardından trakeanın lateralindeki sol veya sağ karotis intravasküler demetini tanımlamak için bağ dokusu katmanlarını bölün.</li>
		<li>Damar halkaları olarak ipek bağlar (boyut 2-0) kullanarak juguler venin proksimal ve distal kontrolünü elde edin.</li>
		<li>Kraniyal çevreleyen bağı bağlayın ve kan akışını kontrol etmek için proksimal bağ üzerinde yukarı doğru geri çekin.</li>
		<li>İki portlu, 7 Fr merkezi çizgiyi (damarın çevresinin ~1/3'ü) yerleştirmek için Metzenbaum makası (Malzeme Tablosuna bakınız) kullanarak damarda küçük bir kesi yapın.</li>
		<li>Eşzamanlı olarak, proksimal damar halkasındaki gerilimi serbest bırakın, damarı kanül edin ve ardından kanülü damarda 10 cm derinlikte sabitlemek için bağlayın.</li>
		<li>Hattı heparinle yıkayın,% 0.9 normal salin içeren bir IV hattına bağlayın ve domuz dehidrasyondan intravasküler olarak tükenmişse sıvı uygulayın. NOT: Heparin, kullanılmayan tüm bağlantı noktalarını kilitler.</li>
		<li>500 mg metilprednizon ve 1 g sefazolin IV uygulayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Doğru kan basıncı yönetimi için 7 Fr arteriyel çizgi kullanarak ortak karotis arteri kanüle etmek için aynı teknikleri izleyin.</li>
</ol>3. Sol akciğer alımı
<ol><li>Domuzu sağ lateral dekübit pozisyonunda konumlandırın.</li>
	<li>Sol anterolateral torakotomi yapın (Şekil 2).<ol><li>Cildi bir povidon iyot hazırlama solüsyonu kullanarak hazırlayın ve tamamen kurumasını bekleyin. Aşağıdaki işaretleri kullanarak torakotomi insizyonunu (20 cm) işaretleyin: sol kürek kemiğinin ucunu tanımlamak için palpasyon kullanın; Aynı şekilde, sternumdan daha düşük olan ksifoid süreci palpasyonla tanımlayın. İkisini Şekil 2B'de gösterildiği gibi bağlayın.</li>
		<li>İnsizyon hattına ve insizyonun üstünde ve altında iki kaburga boşluğuna toplam 10 mL% 0.25 bupivakain enjekte edin.</li>
		<li>Cildi, deri altı katmanlarını ve kas katmanlarını incelemek için elektrokoter kullanın. Latissimus dorsi bölünmelidir. İnsizyonun hemen altındaki kaburgayı tanımlayın ve interkostal nörovasküler demetten kaçınırken interkostal kasları ortaya çıkarmak için kaburganın üstüne koterize edin.</li>
		<li>Kaburganın hemen üzerindeki interkostal kasları delmek için bir sivrisinek hemostatı kullanın ve ardından bir parmak kullanarak yapışıklıklar için göğsün içinde hissedin. Torakotomiyi uzatmak için kaburganın üst kenarı boyunca koterize ederken bir Yankauer emme veya parmak kullanarak akciğeri itin ( Malzeme Tablosuna bakın).<ol><li>Torakotomiyi sternumdan 1 inç uzağa kadar öne doğru uzatın. Torakotomiyi posteriordan paraspinal kaslara uzatın.</li>
		</ol></li>
		<li>Torakotomiyi geniş (10 cm) açmak için bir Cooley sternal ekartör takın (Malzeme Tablosuna bakın) (Şekil 2C). Sol hemi-azygot veni ortaya çıkarmak için akciğeri geri çekin (Şekil 2D).</li>
		<li>Metzenbaum makası ve ince bir Lauer kullanarak sol hemiazigos damarını çevresel olarak inceleyin. Kabı ipek bağlarla çevreleyin ve ardından bağlayın ve geçirin (Şekil 2E). Daha fazla kontrol için proksimal güdük üzerinde ipek bir kravat tutun. NOT: Lauer, doku diseksiyonu için kullanılan dik açılı bir kelepçe veya çölyak kelepçesidir.</li>
		<li>Sol pulmoner arteri (PA) ve sol pulmoner venleri (PV) diseke edin. Kontrol için damarları ipek bağlarla çevreleyin (Şekil 2F). NOT: Üstün PV'ler çok küçüktür ve bireysel anatomiye bağlı olarak dal noktalarında veya ortak gövdelerinde sütür bağlanır. Sol ana gövde bronş PA ve LA'ya (sol atriyum) derindir, bu nedenle bazen arter ve venler klemplenip kesilene kadar kolayca diseke edilemez (Şekil 2G).</li>
		<li>PA'yı klemplemeden 5 dakika önce 5000 ünite heparin IV uygulayın. NOT: Heparin 5000 ünite IV, PA'nın kelepçesini açmadan 5 dakika önce de uygulanır. Bundan sonraki her saat için 1000 ünite IV heparin uygulanır.</li>
		<li>PA (DeBakey çapraz kelepçe), sol inferior pulmoner ven (Satinsky kelepçesi) ve sol bronşları (Spoon Potts kelepçesi) ayrı ayrı kelepçeleyin (bkz. Sol bronş klemplendikten sonra tidal hacimleri 5 mL / kg'a düşürün.</li>
		<li>PA, sol inferior pulmoner ven ve sol bronştan transekt. Dikmek için en az 0,5 cm doku manşeti bırakın. Sol inferior pulmoner bağı bölün ve sol akciğeri çıkarın. NOT: Sol akciğer kontrol histolojisi için atılabilir veya saklanabilir.</li>
	</ol></li>
</ol>4. ESLP'nin sonlandırılması, sol akciğerin bölünmesi ve elektrolit solüsyonu ile yıkama
<ol><li>Ventilasyon tüpünü maksimum inspirasyonda kelepçeleyin, perfüzyon ve ventilasyonu sonlandırın ve akciğerleri ESLP cihazından ayırın.</li>
	<li>Ödem oluşum miktarını belirlemek için akciğerleri tartın. NOT: Ödem, fazla sıvı birikmesine bağlı doku şişmesidir.</li>
	<li>Aksesuar lobun doku biyopsisini alın, üç eşit parçaya bölün ve aşağıdakilerin her birine bir parça yerleştirin: optimum kesme sıcaklığı (OCT) jeli, formalin ve sıvı nitrojen içinde dondurun. NOT: Bu adım genellikle yazarın laboratuvarında izlenir. Numuneler daha sonra gelecekteki analizler için saklanır: OCT ve snap-dondurulmuş numuneler -80 °C'lik bir dondurucuda tutulur ve formalinle saklanan numuneler uygun şekilde kapatılmış bir kaba yerleştirilir ve 4 °C'lik buzdolaplarında saklanır. Spesifik ESLP protokolü ve doku analizinin ayrıntıları başka bir yerde yayınlanmaktadır16.</li>
	<li>Sol donör akciğeri sağ akciğerden ayırın. Alıcı LA'ya dikmek için 1 cm donör PA, 1 cm donör bronş ve yeterli donör LA manşeti (çevresel olarak ~ 0.5 cm) bırakın (Şekil 2H). Daha sonraki anastomozları kolaylaştırmak için sol inferior PV'yi ve sol superior PV'leri donör LA duvarı ile süreklilik içinde bırakın.</li>
	<li>Sol akciğeri tartın.</li>
	<li>Bir IV hattına bağlı bir damla emici kullanarak donör sol PA'yı kanüle edin ve 500 mL hücre dışı, düşük potasyumlu, dekstran bazlı elektrolit koruma solüsyonunu akciğer damar sistemi boyunca antegrad olarak yıkayın. Yıkama sırasında PA'daki kanülü ipek bir bağ ile sabitleyin ve yıkama tamamlandığında bırakın. NOT: Bahsedilen adımlar, bu çalışma için kullanılan belirli ESLP cihazıyla ilgilidir ve diğer cihazlara doğrudan uygulanamayabilir.</li>
</ol>5. Sol akciğer nakli
<ol><li>Donör akciğerini alt lobdan başlayarak alıcının göğsüne yerleştirin. Akciğeri yerine oturtmaya zorlamayın. NOT: Sternal ekartör üzerinde tork uygulanarak donör akciğeri barındırmak için alt göğüs kafesinin yukarı doğru kaldırılması gerekebilir. İdeal olarak, alıcı, bir boyut eşleşmesini kolaylaştırmak için donörden birkaç kilogram daha büyüktür.</li>
	<li>Bronşiyal anastomozu önce bir TF iğnesinde 4-0 prolen kullanarak gerçekleştirin (Şekil 2I). NOT: Çalışan, uçtan uca bir anastomoz iyi çalışır. Gereksiz dokunun neden olduğu bükülmeyi önlemek için dikişten önce iki anastomoz ucundaki fazla uzunluğu kesin.</li>
	<li>Koşan, uçtan uca bir anastomoz kullanarak BV-1 iğnelerinde 6-0 prolene ile LA anastomozunu ikinci kez gerçekleştirin. Yine, bükülmeyi önlemek için fazla dokuyu kesin. NOT: LA gevrektir ve küçük BV-1 iğnesinden yararlanır. Yeterli doku satın almak ve donör IPV ve SPV'nin alıcı IPV/LA açıklığına dikilmesinden kaynaklanan uyumsuz boyutu düzeltmek için donör üzerinde yatay ısırıklar gerekebilir.</li>
	<li>Sol üst akciğer lobu venöz drenajına izin vermek için donör SPV'leri inferior PV ve LA anastomozuna dahil edin (Şekil 2J). NOT: Dal superior pulmoner venlerin (SPV'ler) çapı 0,5 cm'den azdır. Ortak SPV gövdesinin uzunluğu değişkendir ve rutin olarak mevcut değildir, bu da verici ve alıcı SPV'ler arasında doğrudan anastomozu zayıf bir seçenek haline getirir.</li>
	<li>PA anastomozunu BV-1 iğnelerinde 6-0 prolene ile uçtan uca bir anastomoz kullanarak tamamlayın. Yine, bükülmeyi önlemek için fazla dokuyu kesin.</li>
	<li>Bronşiyal kelepçeyi çıkarın ve TV'leri hedef 10 mL/kg'a yükseltin.</li>
	<li>Heparinizasyonu onaylayın, bir potasyum kayması uygulayın (40 mg furosemid, 10 ünite insülin, 100 mL% 25 dekstroz çözeltisi), PA kelepçesini kısmen açın, havayı alın ve PA sütürünü bağlayın. PA cl'yi tamamen serbest bırakınamp 10 dakika sonra.</li>
	<li>Bu arada, LA'nın havasını alın, dikişleri bağlayın ve LA kelepçesini çıkarın.</li>
	<li>Santral hattan reperfüzyon kan gazı ve sol orta lobdan reperfüzyon doku biyopsisi alın. NOT: Doku biyopsisi almak için, orta lob tepesinin 0 cm'lik bir kısmını çevrelemek için 1 numara ipek bir kravat kullanın, dokuyu tuzağa düşürmek için bağlayın ve ardından izole edilen kısmı Metzenbaum makasıyla kesin. Biyopsiyi üç eşit parçaya bölün ve daha önce tarif edildiği gibi yönetin.</li>
	<li>Bronşiyal anastomozu değerlendirmek ve sekresyonları aspire etmek için sol ve sağ akciğer bronkoskopisi yapın. Bir adaptör bağlantısı kullanarak endotrakeal tüpe bir bronkoskop yerleştirin.<ol><li>Kapsamı emmeye bağlayın. Bronkoskopu sol bronşun içine ilerletin. Bronşiyal anastomozu inceleyin (Şekil 2N). Kapsamı bronşiyollerden aşağı doğru ilerletin ve herhangi bir sıvıyı emdirin. Sağ tarafta tekrarlayın. NOT: Oksijen doygunluğunun %90'ın altına düşmesine izin vermeyin. Doygunluklar bu seviyenin altına düşerse, dürbünü çıkarın ve domuzun iyileşmesi için birkaç dakika kesintisiz havalandırmaya izin verin.</li>
	</ol></li>
	<li>20 Fr dövülebilir bir göğüs tüpü yerleştirin (Şekil 2L), torakotomiyi üç kat halinde kapatın (Şekil 2M) ve arteriyel kan gazları (ABG'ler) stabil olur olmaz domuzu yüzüstü yatırın (Şekil 2O).</li>
	<li>Domuzu yüzüstü pozisyonda 4 saatten fazla izleyin. Her 30 dakikada bir ABG analizi yapın. Reperfüzyondan sonra her saat başı 1000 ünite heparin uygulayın.<ol><li>İnflamatuar belirteçlerin santrifüj ve enzime bağlı immünosorbent testi (ELISA) analizi için her saat 10 mL kan örneği alın16. NOT: Santrifüj parametreleri daha sonra detaylandırılmıştır.</li>
	</ol></li>
</ol>6. İzole Sol Akciğer Değerlendirmesi
<ol><li>Domuzu sırtüstü yatırın ve povidon iyot hazırlama solüsyonu kullanarak sternumu yeniden hazırlayın. Son izole sol akciğer değerlendirmesi için orta hat sternotomi yapın (Şekil 2P).</li>
	<li>Metzenbaum makasını kullanarak sol plevrayı açın ve daha önce tarif edildiği gibi sol alt lobdan doku biyopsisi alın (adım 5.9'a NOT).</li>
	<li>Aksesuar lob plevrasını açın ve Metzenbaum makası kullanarak ortak damarı inceleyin. NOT: Bu daha sonra sıkıştırılacaktır.</li>
	<li>21 G'lik bir iğne kullanarak LA anastomozundan bir kan örneği alın. İğneyi sol pulmoner venlere doğru ve ortak sol atriyum veya aksesuar lob gövdesinden uzağa yönlendirin.</li>
	<li>Sağ hiler kelepçeler için yer açmak için sağ plevrayı açın (bkz. Sağ inferior pulmoner ligamenti hiluma kadar diseke edin. Bir kelepçenin hilumun etrafına üstün, alt ve ön olarak yerleştirilebildiğinden emin olun. NOT: Bu, hilusun tıkanmasını ve tüm oksijenasyonun sol akciğere bağlı olmasını sağlar. Sağ akciğer şu anda havalanmayacaktır, bu da ventilatör solunumlarında şişirme/söndürme eksikliği ile belirgin olmalıdır. Bunu başarmak için sağ alt lob göğüsten kaldırılabilir.</li>
	<li>Herhangi bir aksesuar lob drenajını LA'ya tıkamak için bir DeBakey aort çapraz klemp (Malzeme Tablosuna bakın) kullanarak aksesuar lob damarını kelepçeleyin (Şekil 2Q).</li>
	<li>Sağ hilyumu klempleyin ve sol akciğere doğru yönlendirilmiş 21 G'lik bir iğne ile sol PV anastomozundan aşağıdaki seri kan örneklerini alın: klemplemeden 0 dk, 1 dk, 2 dk, 5 dk ve 10 dk sonra. NOT: Kısmi oksijen basıncındaki (PaO2) herhangi bir eğilimi izlemek için beş numune alınır (Şekil 2R). PaO2 , uygun sol akciğer fonksiyonunu temsil etmek için nispeten stabil kalmalıdır. Beş numune ayrıca, herhangi bir numunenin pıhtılaşması ile ilgili bir sorun olması veya ABG analizi ile ilgili bir sorun ortaya çıkması durumunda bir kalite değerlendirmesinin sigortasını sağlar.</li>
	<li>Anastomozları kesin ve sol akciğeri çıkarın. Anestezi altında kan kaybı yoluyla ötenaziyi hızlandırmak için IVC'yi transekt edin. NOT: Alıcı domuz için toplam anestezi süresi 8 saattir.</li>
	<li>Ödem oluşumunu değerlendirmek için donör akciğerini tartın ve genel görünüm açısından inceleyin. PA, bronş ve LA manşetini donör akciğerde ve alıcı mediastende pıhtı veya başka bir patoloji belirtileri açısından inceleyin.</li>
	<li>Son gaz analizlerini yapın, perfüzat örneklerini santrifüjleyin ve doku biyopsilerini daha önce açıklandığı gibi saklayın (adım 4.3'e NOT). NOT: Santrifüj ayarları şunlardır: 112 x g, 9 hızlanma, 9 yavaşlama, 4 °C ve 15 dakika süre.</li>
</ol>

<ol><li>Chambers, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+international+thoracic+organ+transplant+registry+of+the+international+society+for+heart+and+lung+transplantation%3A+Thirty-fifth+adult+lung+and+heart-lung+transplant+report-2018%3B+focus+theme%3A+Multiorgan+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+The+Official+Publication+of+the+International+Society+for+Heart+Transplantation%22%5BJournal%5D)">The international thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; focus theme: Multiorgan transplantation.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (10), 1169-1183 (2018).</li>
<li>Valapour, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OPTN%2FSRTR+2017+annual+data+report%3A+Lung%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%3A+Official+Journal+of+the+American+Society+of+Transplantation+and+the+American+Society+of+Transplant+Surgeons%22%5BJournal%5D)">OPTN/SRTR 2017 annual data report: Lung.</a> American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 19, Suppl 2 404-484 (2019).</li>
<li>Klein, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+donation+and+utilization+in+the+united+states%2C+1999-2008%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%3A+Official+Journal+of+the+American+Society+of+Transplantation+and+the+American+Society+of+Transplant+Surgeons%22%5BJournal%5D)">Organ donation and utilization in the united states, 1999-2008.</a> American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 10 (4), Pt 2 973-986 (2010).</li>
<li>Kotecha, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continued+successful+evolution+of+extended+criteria+donor+lungs+for+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Annals+of+Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Continued successful evolution of extended criteria donor lungs for transplantation.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 104 (5), 1702-1709 (2017).</li>
<li>Singh, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+of+refusals+for+donor+quality%2C+organ+utilization%2C+and+survival+after+lung+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Heart+and+Lung+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Sequence of refusals for donor quality, organ utilization, and survival after lung transplantation.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 35-42 (2019).</li>
<li>Cypel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normothermic+ex+vivo+lung+perfusion+in+clinical+lung+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation.</a> The New England Journal of Medicine. 364 (15), 1431-1440 (2011).</li>
<li>Wallinder, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+results+in+transplantation+of+initially+rejected+donor+lungs+after+ex+vivo+lung+perfusion%3A+A+case-control+study%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Cardio-Thoracic+Surgery%3A+Official+Journal+of+the+European+Association+for+Cardio-Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Early results in transplantation of initially rejected donor lungs after ex vivo lung perfusion: A case-control study.</a> European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 45 (1), 40-44 (2014).</li>
<li>Sage, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+transplantation+from+initially+rejected+donors+after+ex+vivo+lung+reconditioning%3A+The+french+experience%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Cardio-Thoracic+Surgery%3A+Official+Journal+of+the+European+Association+for+Cardio-Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Lung transplantation from initially rejected donors after ex vivo lung reconditioning: The french experience.</a> European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 46 (5), 794-799 (2014).</li>
<li>Valenza, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracorporeal+lung+perfusion+and+ventilation+to+improve+donor+lung+function+and+increase+the+number+of+organs+available+for+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation+Proceedings%22%5BJournal%5D)">Extracorporeal lung perfusion and ventilation to improve donor lung function and increase the number of organs available for transplantation.</a> Transplantation Proceedings. 44 (7), 1826-1829 (2012).</li>
<li>Fildes, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+outcome+of+patients+transplanted+with+marginal+donor+lungs+via+ex+vivo+lung+perfusion+compared+to+standard+lung+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Clinical outcome of patients transplanted with marginal donor lungs via ex vivo lung perfusion compared to standard lung transplantation.</a> Transplantation. 99 (5), 1078-1083 (2015).</li>
<li>Cypel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experience+with+the+first+50+ex+vivo+lung+perfusions+in+clinical+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Thoracic+and+Cardiovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 144 (5), 1200-1206 (2012).</li>
<li>Clark, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+porcine+model+of+reperfusion+injury+after+lung+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A new porcine model of reperfusion injury after lung transplantation.</a> Laboratory Animals. 33, 135-142 (1999).</li>
<li>Karimi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technical+pearls+for+swine+lung+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Technical pearls for swine lung transplantation.</a> Journal of Surgical Research. 171, 107-111 (2011).</li>
<li>Kruger, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porcine+pulmonary+auto-transplantation+for+ex+vivo+therapy+as+a+model+for+new+treatment+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Interactive+CardioVascular+and+Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Porcine pulmonary auto-transplantation for ex vivo therapy as a model for new treatment strategies.</a> Interactive CardioVascular and Thoracic Surgery. 23, 358-366 (2016).</li>
<li>Mariscal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pig+lung+transplant+survival+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Pig lung transplant survival model.</a> Nature Protocols. 13, 1814-1828 (2018).</li>
<li>Aboelnazar, N. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Negative+pressure+ventilation+decreases+inflammation+and+lung+edema+during+normothermic+ex+vivo+lung+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+The+Official+Publication+of+the+International+Society+for+Heart+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Negative pressure ventilation decreases inflammation and lung edema during normothermic ex vivo lung perfusion.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (4), 520-530 (2018).</li>
</ol>

DHF, Ex situ organ perfüzyon teknolojisi ve yöntemleri konusunda patentlere sahiptir. DHF ve JN, Tevosol, Inc.'in kurucuları ve ana hissedarlarıdır.

Bu protokolde birkaç kritik cerrahi adım yer almaktadır ve başarılı transplantasyon ve akciğer değerlendirmesi sağlamak için sorun giderme gereklidir. Juvenil domuz akciğerleri, yetişkin insan akciğerlerine kıyasla inanılmaz derecede hassastır, bu nedenle ameliyat eden cerrah domuz akciğerlerini tutarken dikkatli olmalıdır. Bu, özellikle 12 saatlik bir ESLP çalışmasından sonra geçerlidir, çünkü organ sıvı hacmini almış olacak ve aşırı manipülasyondan kaynaklanan yaralanmalara duyarlı olacaktır. Herhangi bir aşırı baskı, ...

Akciğer nakli, son dönem akciğer hastalığı için önde gelen uzun vadeli tedavidir. Dünya çapında yılda 4.600'den fazla akciğer nakli gerçekleştirilmektedir1. Bununla birlikte, akciğer nakli şu anda önemli sınırlamalara sahiptir. Birincisi, organ ihtiyacı mevcut bağışçıları gölgede bırakmaya devam ediyor. 2012'den bu yana akciğer nakli oranlarının her yıl artmasına rağmen, nakil için daha fazla adayın listelenmesi, donör sayısındaki artış ve kurtarılan organların daha iyi kullanılmasının birleşik etkileri nedeniyle, nakil bekleme listesi mortalitesi önemli ölçüde azalmamıştır2. Organ kalitesi endişeleri, bildirilen organ kullanım oranlarının %20-30 kadar düşük olmasıyla bir başka önemli sınırlamayı temsil etmektedir3,4,5. Son olarak, akciğer transplantasyonunun postoperatif sonuçlarındaki eğilimler tatmin edici olmaktan uzaktır ve uzun vadeli greft ve hasta sonuçları hala diğer solid organ transplantasyonlarının gerisinde kalmaktadır2.
Gelişmekte olan bir teknoloji olan ex situ akciğer perfüzyonu (ESLP), bu sınırlamaları hafifletme potansiyeline sahiptir. ESLP, marjinal donör akciğerlerini değerlendirmek ve yenilemek için bir yöntem olarak giderek daha fazla uygulanmaktadır ve genişletilmiş kriterli donör (ECD) akciğerlerinin transplantasyonunu takiben kabul edilebilir kısa ve uzun vadeli sonuçlar göstermiştir6,7,8,9,10. Sonuç olarak, ESLP bazı merkezlerde kullanım oranlarını %15-%20 oranında artırmıştır6,7,8,9,10,11.
Uygun ESLP araştırması, in vitro bulguların in vivo olarak doğrulanmasını gerektirir; bununla birlikte, ESLP12,13,14,15 için domuz akciğer nakli modelleri hakkında sınırlı literatür bulunmaktadır. Ayrıca, mevcut literatür, hemodinamik olarak oldukça kararsız olabilen akciğer nakli için Yorkshire domuzlarının anestezik yönetimi ile ilgili yetersiz ayrıntılar sunmaktadır12,13,14,15. Kolayca tekrarlanabilir bir model oluşturmak, mevcut ESLP stratejilerinin in vivo olarak doğrulanmasına ve akciğer iskemi-reperfüzyon hasarını azaltmak için çeşitli müdahalelerin klinik öncesi değerlendirmesine izin verecektir. Bu çalışmanın amacı, ESLP ile birlikte kullanılmak üzere ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun domuz modelini tanımlamaktır. Protokol, anestezi ve cerrahi tekniklerin açıklamalarını, özel bir cerrahi kontrol listesini ve sorun giderme deneyimi ve protokol değişiklikleriyle ilgili ayrıntıları içerir. Bu çalışmada sol akciğer domuz nakli modelinin sınırlamaları ve yararları da tartışılmıştır. Bu makale, 35-50 kg'lık Yorkshire domuzlarında domuz akciğerlerinin geri alınma sürecini özetlemediği gibi, ESLP'nin kurulmasını ve sonlandırılmasını da kapsamamaktadır. Bu protokol sadece alıcı nakli operasyonunu ele alır.

<table><tbody><tr><td>ABL 800 FLEX Kan Gazı Analiz</td><td>Cihazı Radyometre</td><td>989-963</td><td></td></tr><tr><td>Yetişkin-Pediatrik Elektrostatik Filtre HME - Küçük</td><td>Covidien</td><td>352/5877</td><td></td></tr><tr><td>Allison Akciğer Ekartör</td><td>Boncuklanma</td><td>341679</td><td></td></tr><tr><td>Arteriyel Filtre</td><td>SORIN GROUP</td><td>01706/03</td><td></td></tr><tr><td>Backhaus Havlu Kelepçesi</td><td>Boncuklanma</td><td>454300</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serumu Albümin</td><td>MP biyomedikaller</td><td>218057791</td><td></td></tr><tr><td>Biomedicus Pompa</td><td>Maquet</td><td>BPX-80</td><td></td></tr><tr><td>Bronkoskop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kablo Bağları &ndash; Beyaz 12"</td><td>HUASU Uluslararası</td><td>HS4830001</td><td></td></tr><tr><td>Kalsiyum Klorür</td><td>Fisher Scientific</td><td>C69-500G</td><td></td></tr><tr><td>Cooley Sternal Ekartör</td><td>Boncuklanma</td><td>341162</td><td></td></tr><tr><td>CUSHING Gutschdressing Forseps</td><td>Boncuklanma</td><td>466200</td><td></td></tr><tr><td>Debakey-Metzenbaum Diseksiyon</td><td>Boncuklanma 342202</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Makas</td><td>Boncuklanma</td><td>342202</td><td></td></tr><tr><td>DeBakey Periferik Vasküler Kelepçe</td><td>Boncuklanma</td><td>353535</td><td></td></tr><tr><td>Debakey Düz Vasküler Doku Forseps</td><td>Boncuklanma</td><td>351808</td><td></td></tr><tr><td>D-glikoz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5767-500G</td><td></td></tr><tr><td>Damla enayi</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Endotrakeal Tüp 9.0mm CUFD</td><td>Mallinckrodt</td><td>9590E</td><td></td></tr><tr><td>Akış Dönüştürücü</td><td>BIO-PROBE</td><td>TX 40</td><td></td></tr><tr><td>İnfüzyon Pompası</td><td>Baxter</td><td>AS50</td><td></td></tr><tr><td>Inspire 7 M İçi Boş Fiber Membran Oksijenatör</td><td>SORIN GROUP</td><td>K190690</td><td></td></tr><tr><td>Önleme Boru Konektörü 3/8" x 1/2"</td> <td>Medtronic</td><td>6013</td><td></td></tr><tr><td>Önleme Borusu 1/4" x 1/16" x 8'Medtronic</td><td></td> <td>3108</td><td></td></tr><tr><td>Önleme Borusu 3/8" x 3/32" x 6'Medtronic</td><td></td> <td>3506</td><td></td></tr><tr><td>Laringoskop</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>10 inç bıçakla özel yapım</td></tr><tr><td>Metzenbaum Diseksiyon Makası</td><td>Boncuklanma</td><td>460420</td><td></td></tr><tr><td>Tıbbi Karbondioksit Tankı</td><td>Praxair</td><td>5823115</td><td></td></tr><tr><td>Tıbbi Oksijen Tankı</td><td>Praxair</td><td>2014408</td><td></td></tr><tr><td>Tıbbi Azot Tankı</td><td>Praxair</td><td>NI MK</td><td></td></tr><tr><td>Sivrisinek Kelepçesi</td><td>Boncuklanma</td><td>181816</td><td></td></tr><tr><td>Harken Kulak Kepçesi Kelepçesi</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Organ Odası</td><td>Tevosol</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PlasmaLyte A</td><td>Baxter</td><td>TB2544</td><td></td></tr><tr><td>Poole Emme Borusu</td><td>Boncuklanma</td><td>162212</td><td></td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat</td><td>Fischer Scientific</td><td>P285-500G</td><td></td></tr><tr><td>PERFADEX Plus</td><td>XVIVO</td><td>19811</td><td></td></tr><tr><td>Satinsky Kelepçe</td><td>Boncuklanma</td><td>354002</td><td></td></tr><tr><td>Ölçeği</td><td>TANITA</td><td>KD4063611</td><td></td></tr><tr><td>Silikon Destek Membranı</td><td>Tevosol</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Bikarbonat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>792519-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Klorür %0.9</td> <td>Baxter</td><td>JB1324</td><td></td></tr><tr><td>Sorin XTRA Hücre Koruyucu</td><td>SORIN GROUP</td><td>75221</td><td></td></tr><tr><td>Sternal Testere</td><td>Stryker</td><td>6207</td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi Elektrokoter Cihazı</td><td>Kls Martin</td><td>ME411</td><td></td></tr><tr><td>TruWave Basınç Dönüştürücü</td><td>Edwards</td><td>VSYPX272</td><td></td></tr><tr><td>İki Lümenli Santral Venöz Kateter 7fr X2</td><td>Arrowg+ard</td><td>CS-12702-E</td><td></td></tr><tr><td>Vorse Boru Kelepçesi</td><td>Boncuklanma</td><td>351377</td><td></td></tr><tr><td>Willauer-Deaver Ekartör</td><td>Boncuklanma</td><td>341720</td><td></td></tr><tr><td>Yankauer Emme Borusu</td><td>Boncuklanma</td><td>162300</td><td></td></tr><tr><td>0 ETHIBOND Yeşil 1X36" Endo Döngü 0</td><td>ETHICON</td><td>D8573</td><td></td></tr><tr><td>0 PDS II CP-1 2x27"</td><td>ETHICON</td><td>Z467H</td><td></td></tr><tr><td>1 VICRYL MO-4 1x18"</td><td>ETHICON</td><td>J702D</td><td></td></tr><tr><td>2-0 İPEK Siyah 12" x 18" Teller</td><td>ETHICON</td><td>SA77G</td><td></td></tr><tr><td>4-0 PROLENE Mavi TF 1x24"</td><td>ETHICON</td><td>8204H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 PROLENE Mavi BV 2x30"</td><td>ETHICON</td><td>M8776</td><td></td></tr><tr><td>21 Ayar İğnesi</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

eslp için juvenil domuz modelinde sol akciğer ortotopik transplantasyonu

Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP

Akciğer nakli, dünya çapında yılda 4.600'den fazla akciğer nakli ile son dönem akciğer hastalığı için altın standart tedavidir. Bununla birlikte, akciğer nakli, mevcut donör organların yetersizliği ile sınırlıdır. Bu nedenle, yüksek bekleme listesi ölüm oranı vardır. Ex situ akciğer perfüzyonu (ESLP) bazı merkezlerde donör akciğer kullanım oranlarını %15-20 oranında artırmıştır. ESLP, marjinal donör akciğerlerini değerlendirmek ve yenilemek için bir yöntem olarak uygulanmıştır ve genişletilmiş kriterli donör (ECD) akciğerlerinin transplantasyonunu takiben kabul edilebilir kısa ve uzun vadeli sonuçlar göstermiştir. Devam eden in vitro araştırma bulgularını doğrulamak için büyük hayvan (in vivo) transplantasyon modelleri gereklidir. İnsanlar ve domuzlar arasındaki anatomik ve fizyolojik farklılıklar önemli teknik ve anestezik zorluklar doğurmaktadır. Kolayca tekrarlanabilir bir nakil modeli, mevcut ESLP stratejilerinin in vivo olarak doğrulanmasına ve donör akciğer fonksiyonunu iyileştirmek için tasarlanmış çeşitli müdahalelerin klinik öncesi değerlendirmesine izin verecektir. Bu protokol, ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun bir domuz modelini tanımlar. Bu, anestezik ve cerrahi teknikleri, özelleştirilmiş bir cerrahi kontrol listesini, sorun gidermeyi, modifikasyonları ve yaklaşımın yararlarını ve sınırlamalarını içerir.

Tüm sonuçlar, 12 saatlik NPV-ESLP16'yı takiben 4 saatlik reperfüzyon bağlamındadır. Akciğer eksplantı sırasında, tahmin edilmesi gereken birkaç klinik sonuç vardır (Şekil 3). Tipik olarak, başarılı bir sol akciğer eksplantasyonunu takiben domuz hemodinamik olarak stabil kalacaktır, ancak cerrahiye vazodilatör yanıt nedeniyle düşük dozda fenilefrin infüzyonu (doz aralığı: 2-10 mg / s) gerektirebilir. Kalp hızı yaklaşık 100-120 bpm'yi hedeflemelidir, solunum hızı (RR) S...

Bu protokol, ESLP araştırmalarında kullanılmak üzere tasarlanmış ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun bir juvenil domuz modelini açıklamaktadır. Anestezi ve cerrahi tekniklerin yanı sıra kritik adımlar ve sorun gidermeye odaklanılır.

ESLP için Juvenil Domuz Modelinde Sol Akciğer Ortotopik Transplantasyonu

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. ...

Bu protokol, büyük hayvan modelleri için en basit akciğer nakli protokollerinden biridir ve cerrahi yönetim açısından en fazla ayrıntıyı sağlar. Bu tekniğin ana avantajları, ameliyatı tanımlamak, nakil sonrası izole sol akciğer fonksiyonunu değerlendirmek ve ameliyat sırasında domuzu stabilize etmektir. Yöntem, ex-situ akciğer profüzyon araştırmalarında, ex-situ bulguları bir in vivo reperfüzyon transplantasyon modeli ile doğrulamak için faydalıdır.Akciğer transplantasyonunun in vivo reperfüzyon modeli, ex-situ akciğer profüzyon bulgularını test etmek için faydalıdır ve ayrıca biyo-mühendislik veya mekanik akciğerler gibi yapay organ testlerinde de kullanılabilir. Sol anterior lateral torakotomi için domuzu sağ lateral dekübit pozisyonunda konumlandırarak başlayın. Daha sonra ksifoid süreçte, palpasyonla sternumdan daha düşük olan sol kürek kemiğinin ucunu tanımlayın ve 20 santimetre uzunluğundaki torakotomi insizyon bölgesini işaretlemek için tanımlanan iki noktayı birleştirin.Anesteziyi indükledikten sonra, ciltte bir kesi yapmak için bir neşter kullanın ve ardından hayvanın deri altı katmanlarını ve kas katmanlarını incelemek için elektrokoter kullanın. Latissimus dorsi bölünmel

left-lung-orthotopic-transplantation-juvenile-porcine-model-for

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Obliteratif bronşiolit akciğer transplantasyonu uzun süreli yaşam için anahtar engel ve sağlam bir preklinik model eksikliği obliteratif bronşiolit immünopatogenezi inceleyerek engellemektedir. Diğer solid organ nakli aksine, vaskülarize fare akciğer transplantasyonu vardır ancak son zamanlarda geliştirilmiştir. Burada fare ortotopik tek-akciğer transplantasyonu sonrası bağımsız geliştirilen obliteratif bronşiolit modeli gösterilmektedir.

Ortotopik Akciğer Transplantasyonu bir Mürin Modelinde Obliteratif Bronşiolit Gelişimi

Deneysel hayvan araştırmaları, klinik transplantasyon uygulamalarının gelişiminde çok önemli bir rol oynamaktadır. Domuz ortotopik karaciğer nakli modeli (OLTx), insan koşullarına çok benzer ve klinik odaklı araştırmalarda sıklıkla kullanılır. Aşağıdaki protokol, aktif bir porto-kaval-juguler şant kullanan güvenilir bir domuz OLTx modeli için tüm bilgileri içerir.

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

Ex-Vivo Akciğer Perfüzyon (EVLP) insanlarda akciğer transplantasyonu daha kolay kullanılabilir donör havuzu organları değerlendirmek ve genişletmek için yeteneği sağlayarak haline izin verdi. Burada, bir sıçan EVLP programı ve gelecekteki genişleme için bir tekrarlanabilir model izin ayrıntılandırmaları gelişimini açıklar.

İzole Yöntemi<em&gt; Ex vivo</emBir Rat Modelinde&gt; Akciğer Perfüzyon: Sıçan EVLP Programı Geliştirme Öğrenilmiş Dersler

Burada, yeni kardiyokoruyucu stratejileri araştırmak için sıkı bir şekilde kurulan ve kullanılan ortootopik kalp transplantasyonunun klinik öncesi büyük hayvan (porcine) modelini tarif ediyoruz.

Ortootopik kalp transplantasyonunun klinik öncesi porcine modeli

Bu yazıda, ısmarlama platformda tedarik, bağlanma ve yönetim dahil olmak üzere negatif basınçlı ventilasyon ex situ akciğer perfüzyonunun domuz eti modeli açıklanmaktadır. Anestezik ve cerrahi tekniklerin yanı sıra sorun giderme konularına odaklanılır.

Norannemik Negatif Basınçlı Ventilasyon Ex Situ Akciğer Perfüzyonu: Akciğer Fonksiyonlarının ve Metabolizmasının Değerlendirilmesi

Bu protokolde, engraftman sırasında veno-venöz bypass kullanılmadan donör organların 20 saat boyunca statik soğuk depolanmasından sonra domuz ortopik karaciğer transplantasyonu modeli tanımlanmıştır. Bu yaklaşım, anhepatik fazın en aza indirilmesi ve sofistike hacim ve vazopresör yönetimi ile basitleştirilmiş bir cerrahi teknik kullanmaktadır.

Veno-Venöz Bypass Olmadan Domuz Karaciğeri Transplantasyonu Genişletilmiş Kriterli Donör Modeli Olarak

Burada, bir sıçan EVLP modeli oluşturmak için gerekli adımları açıklıyoruz ve perfüze akciğerlerle ilişkili inflamatuar profili gösteriyoruz. Amaç, sıçan EVLP modeli hakkındaki bilgi ve deneyimleri yaymak ve bu devrim niteliğindeki teknikle ilişkili biyolojik tepkilerin bütünsel olarak anlaşılmasını sağlamaktır.

Akciğer naklinde translasyonel içgörüler için ex vivo akciğer perfüzyon sıçan modelinin oluşturulması

Bu protokol, sıçanlarda ortotopik sol akciğer nakli için operasyonel zorluğu azaltmaya ve sağkalım oranlarını iyileştirmeye odaklanan gelişmiş bir tekniği tanımlar.

Sıçanlarda Ortotopik Sol Akciğer Nakli

Bu çalışma, Bama minyatür domuzlarında biatriyal tekniği kullanarak klinik öncesi ortotopik bir kalp nakli modeli önermektedir. Model, nakil immünolojisi, ilaç değerlendirmesi ve cerrahi teknik optimizasyonu için uygulanabilir ve klinik kalp nakli uygulamaları için destek sağlar.

Bama Minyatür Domuzlarında Biatriyal Teknik Kullanılarak Ortotopik Kalp Transplantasyonunun Klinik Öncesi Modeli

Bu makale, sol ventriküler yardım cihazının (LVAD) bir domuz yavrusuna implante edilmesi için bir protokol sunmaktadır. Bu model, çocuklarda LVAD implantasyonunu incelemenin ve LVAD tedavisinde ventriküler ters remodelasyonun mekanizmasını ortaya koymanın güçlü bir yolunu temsil etmektedir.

Genç Landrace Domuzlarında Sol Ventriküler Yardımcı Cihazın (LVAD) İmplantasyonu: Pediatrik Kalp Yetmezliğinin LVAD İmplantasyon Modeli

Öğrenin genç domuz modelinde sol akciğer ortotopik transplantasyonunu ve cerrahi teknikleri. Bu yöntem ESLP araştırmalarında ve yapay organ testlerinde değerli bir araçtır.

ESLP için Juvenil Domuz Modelinde Sol Akciğer Ortotopik Transplantasyonu

Daha fazla video keşfet