Name: Tek Hücreli Multi-Omik Deneyler için Fare Karotis Arterlerinin Lümeninden Endotel Hücrelerinin İzolasyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-10-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 12 s
Description: Öğrenin, fare karotis arterlerinden endotel hücrelerinin izolasyonunu tek hücreli multi-omik deneyler için. Bu yöntem, aterosklerozla ilgili moleküler yolları ve potansiyel tedavileri incelemeyi mümkün kılar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri HL119798, HL095070 ve HL139757'den HJ'ye hibe edilen fonlarla desteklenmiştir. HJ ayrıca Wallace H. Coulter Seçkin Fakülte Başkanı Profesörlüğü tarafından da desteklenmektedir. Emory Entegre Genomik Çekirdeği (EIGC) tarafından sağlanan hizmetler, Emory Üniversitesi Tıp Fakültesi tarafından sübvanse edildi ve ayrıca Ulusal Sağlık Enstitüleri'nin Georgia Klinik ve Translasyonel Bilim İttifakı tarafından ödül numarası altında kısmen desteklendi. UL1TR002378. Yukarıda verilen içerik yalnızca yazarların sorumluluğundadır ve Ulusal Sağlık Enstitüleri'nin resmi görüşlerini yansıtmamaktadır.

Aşağıda açıklanan tüm hayvan prosedürleri, Emory Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır. Hiperkolesterolemik olmayan, yaş ve cinsiyete uygun C57BL / 6 fareleri, cinsiyete bağlı varyasyonu hafifletmek ve hiperkolesterolemik durumların herhangi bir komplikasyonunu dengelemek için kullanıldı.
1. Parsiyel karotis ligasyonu (PCL) cerrahisi
NOT: LCA'nın parsiyel karotis arter ligasyonu daha önce tarif edildiği ve gösterildiği gibigerçekleştirilmiştir 3.
<ol><li>Anestezik buharlaştırıcı kullanarak işlem boyunca fareyi izofluran inhalasyonu (indüksiyon için oksijende% 5 izofloran ve bakım için% 1.5) ile anestezik hale getirin. Ameliyat sırasında vücut ısısı kaybını önlemek için fare sırtüstü yatağını Deltafaze izotermal ped üzerine yerleştirin.</li>
	<li>Maruz kalma keratiti önlemek için bir oküler merhem uygulayın ve ayak parmağı sıkışma yanıtının yokluğunda anestezi derinliğini onaylayın.</li>
	<li>Ağrıyı önleyici olarak yönetmek için deri altından 0.05 mg / kg buprenorfin enjekte edin. Epilasyonlu bölgeyi betadin ve izopropanol çözeltisi ile üç kez uygulayarak ve temizleyerek dezenfekte edin. Betadinin, ameliyat alanını sterilize etmek için merkezden başlayarak ve yanlarda bitirerek son adım olduğundan emin olun.</li>
	<li>Aseptik teknikler kullanarak, boyun bölgesinde ventral orta hat insizyonu (~ 1 cm) yapın ve künt diseksiyon ile LCA dal noktasını ortaya çıkarın.</li>
	<li>Sol internal karotid, eksternal karotis ve oksipital arterleri 6-0 ipek sütür ile bağlayın; superior tiroid arteri el değmeden bırakın.</li>
	<li>Cilde yaklaşın ve insizyonu doku yapıştırıcısı ve / veya dikişlerle kapatın.</li>
	<li>Fareyi önceden ısıtılmış bir kurtarma kafesine (37 ° C'de tutulur) aktarın ve ameliyat sonrası hipotermiyi önlemek için 1 saate kadar temiz bir havluya yerleştirin. NOT: Deneyimlerimize göre, önleyici tek doz Buprenorfin (0.05 mg / kg) genellikle ameliyat sonrası ağrı yönetimi için yeterlidir. Hayvan ilk 24 saatten sonra sıkıntıdaysa tekrarlanan bir Buprenorfin dozu uygulanabilir. Doğru yapılırsa, bu prosedürle ilişkili ölüm oranı yoktur ve fareye postoperatif stres minimumdur. Fareler kendi kafeslerine geri gönderilir ve ameliyattan sonra günlük olarak izlenir.</li>
	<li>Perfüzyon kurulumunu hazırlayın.<ol><li>IV torbada 10 U/mL heparin içeren %0,9 NaCl (normal salin) kullanın. IV torbasını yerden 244-274 cm (8-9 feet) veya diseksiyon tahtasından yaklaşık 122-152 cm (4-5 feet) daha yükseğe bağlayın. Kelebek iğnesini tuzlu su hattının sonuna takın ve hava kabarcıklarını IV hattından temizleyin.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Fedakarlık sonrası karotis arterlerin izolasyonu
<ol><li>Kurumsal IACUC protokolünü takiben fareleri CO2 inhalasyonu ile feda edin.</li>
	<li>Fare derisine% 70 etanol püskürtün ve adsorban kağıt havlu içeren diseksiyon panosu üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Farenin pençelerini, yapışkan bant veya 21 G'lik bir iğne kullanarak diseksiyon panosundaki adsorban havlulara sabitleyin.</li>
	<li>Bir çift steril makas kullanarak, farenin derisini karından başlayarak ve göğüs kafesinin tepesine kadar çıkarın.</li>
	<li>Göğüs kafesinin altındaki karın duvarını künt diseksiyonla açmak için bir çift makas kullanın.</li>
	<li>Makası kullanarak, diyaframın uzunluğu boyunca dikkatlice bir kesi yapın ve sternum kaldırılana kadar toraksın her iki tarafındaki kaburgalardan devam edin. Sternumu bir çift forseps ile yavaşça kaldırın; Bundan sonra, kalbi açığa çıkarmak için göğüs kafesini çıkarın.</li>
	<li>Büyük damarları görselleştirmek için timüs ve kalp üzerindeki herhangi bir bağ dokusunu dikkatlice çıkarın.</li>
	<li>Kanın kapalı dolaşımdan çıkmasına izin vermek için vena kavayı makasla kesin.</li>
	<li>Kalbin tepesinden IV hattına bağlı 21 G kelebek iğneyi sol ventriküle yerleştirin ve oda sıcaklığında normal salin ile 2-3 dakika boyunca retrograd perfüzyona izin verin. Tuzlu su torbasını yerden 8-9 fit yükseklikte tutarak normal salinin sabit bir akış hızının korunduğundan emin olun. NOT: Akciğerler ve karaciğer soluklaşır, bu da optimal perfüzyonu gösterir. Her fare için yaklaşık 20 mL perfüzyon tamponu kullanılır.</li>
	<li>Cildi boyun bölgesinden çıkarın ve karotis arterleri açığa çıkarmak için tüm yağ, kas ve bağ dokularını çıkarın (Şekil 1A). NOT: İşlemin geri kalanı diseksiyon mikroskobu altında gerçekleştirilir.</li>
	<li>Ligasyon alanlarını bulmak için görüş alanını ayarlayın. 10 mm'lik mikro diseksiyon makaslarını kullanarak, perfüzyona izin vermek için LCA'daki ligasyon bölgesinin altında küçük bir kesi yapın.</li>
	<li>Sol ventrikül üzerinden 1 dakika daha perfüze edin ve LCA'nın iyi perfüze edildiğinden ve görünür kan izlerinden arındırıldığından emin olun.</li>
	<li>Karotis vücuda bağlıyken karotidleri çevreleyen peri-adventitial dokuları dikkatlice çıkarmak için ince uçlu forseps ve küçük yaylı makas kullanın. NOT: Bu temizleme adımı sırasında karotis arterleri sıkmamaya veya germemeye son derece dikkat edin, çünkü bu canlı olmayan hücrelerin sayısını artırabilir. Doğru yapılırsa, son hücre süspansiyonundaki hücre canlılığı genellikle% >93'tür.</li>
</ol>3. Farelerin karotidlerinden endotel hücre bakımından zenginleştirilmiş tek hücreli izolasyon
NOT: Aşağıda tarif edilen reaktifler önceden hazırlanabilir ve kullanıma kadar 4 °C'de saklanabilir: Tablo 1'de listelenen reaktiflerle birlikte 1x ve 0.1x tek çekirdekli lizis tamponları; Tablo 1'de listelenen reaktiflerle tek çekirdekli yıkama tamponu; Tablo 1'de listelenen reaktiflerle tek çekirdekli Çekirdek Tampon tarifi. Bu tamponların çalışma stokları üreticinin protokolüne uygun olarak hazırlanmalıdır. Sindirim tamponu bileşimi: %0.5 fetal sığır serumu (FBS) fosfat tamponlu salin (PBS) içinde kollajenaz Tip II 600 U/mL ve DNaz I 60 U/mL.
<ol><li>Karotidler hala bağlıyken, kan izlerini temizlemek için karotis arterlerin dışını normal salin çözeltisi ile yıkayın.</li>
	<li>29 G'lık bir iğne ile donatılmış bir insülin şırıngası kullanarak, sindirim tamponunun ~ 50 μL'sini sol karotis arterin distal ucunun lümenine enjekte edin. Sindirim tamponu karotis arteri doldurmaya başladığında, karotisin proksimal ucunu bir mikro klipsle sıkıştırın (Şekil 1B). Lümenin içine ilave 15-20 μL sindirim tamponu ekleyin ve sindirim tamponunun salınmasını önlemek için distal ucu klipsleyin.</li>
	<li>Karotis arterleri fareden dikkatlice çıkarın (Şekil 1B, C) ve bunları ılık (37 ° C'de) Hepes tamponlu salin çözeltisi içeren 35 mm'lik kaplara yerleştirin. NOT: Her iki kelepçenin de sağlam bir şekilde yerleştirildiğinden emin olun. Kelepçe gevşerse, sindirim çözeltisi lümenden sızabilir ve elde edilen hücre sayısını etkileyebilir. Bu durumda, karotisin açık ucundan 29 G'lık bir iğne ile donatılmış bir insülin şırıngası kullanarak ek enzimatik çözelti ekleyin ve kelepçeyi tekrar sabitleyin (Şekil 1D). Enzim tampon çözeltisi tekrar sızarsa, ekzotidin ekplantasyon işlemi sırasında kopması muhtemeldir. Bu durumda, karotidi atın ve numuneyi çalışmadan çıkarın. Karotisin tekrarlanan kaba kullanımı, hücre canlılığını ve tek hücreli preparatın kalitesini azaltacaktır. Sol ve sağ karotis arterleri tanımlamaya ve doğru şekilde etiketlemeye özen gösterin.</li>
	<li>Ekilen karotidleri aralıklı sallanma ile 37 ° C'de 45 dakika boyunca inkübe edin.</li>
</ol>4. Karotis arterlerin yıkanması
<ol><li>Luminal enzimatik sindirimi tamamladıktan sonra, karotis arteri kelepçelerle birlikte 35 mm'lik çanaktan çıkarın. Sindirim tamponunun sızmamasına dikkat ederek her kelepçeyi dikkatlice çıkarın.</li>
	<li>Karotis arterin bir ucunu 1.5 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpünün üstünde ince forseps ile yavaşça tutun. 100 μL sıcak sindirim tamponu (37 °C) içeren bir insülin şırıngası ile donatılmış 29 G'lık bir iğneyi diğer elinizle lümene yerleştirin (Şekil 1D).</li>
	<li>Karotisin lümenini mikrosantrifüj tüpüne hızla yıkayın. 1,5 mL tüpe 0,3 mL FBS ekleyerek enzimatik reaksiyonu engelleyin. Tüpü buzun üzerine yerleştirin. NOT: Kızarma, luminal enzimatik sindirimden gelen hücreleri içerir. FBS eklemek ve sıcaklığı düşürmek enzimatik sindirim işlemini durdurur. Preparattaki hücre sayısı yüksekse ve döküntü veya yağ dokusu içeriyorsa, istenmeyen doku kalıntılarını filtrelemek için 50 veya 70 μm hücre süzgeci kullanılması şiddetle tavsiye edilir. Tek hücreli sayımı arttırmak için, birden fazla karotidin yıkanması önerilir. Burada, en az 5.000 hücre elde etmek için, 10-12 karotit yıkandı ve bir örnek olarak toplandı.</li>
	<li>Sabit açılı rotorla donatılmış bir santrifüj kullanarak hücreleri 4 °C'de 5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj yapın ( Malzeme Tablosuna bakınız).</li>
	<li>Süpernatantı atın ve tüm hücreleri tek hücrelere ayırmak için hücre ayrışma reaktifini içeren sindirim tamponunda hücre peletini ( Malzeme Tablosuna bakınız) 37 ° C'de 5 dakika boyunca yeniden askıya alın. NOT: Preparattaki hücre sayısı düşükse, hücreleri döndürmek için santrifüj hızını 2.000-3.000 × g'a kadar artırın. Ayrıca, 0,5 mL santrifüj tüplerinin kullanılması, tüpün altındaki hücre peletinin daha iyi görselleştirilmesini kolaylaştırır.</li>
	<li>0,5 mL tüpe 0,15 mL FBS ekleyerek enzimatik reaksiyonu engelleyin.</li>
	<li>Tek hücreli süspansiyonu, adım 4.4'te olduğu gibi sabit açılı rotorla donatılmış bir santrifüj kullanarak 4 °C'de 5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj yapın.</li>
	<li>Süpernatantı atın ve hücreleri 0.2 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpünde PBS'de 100 μL buz soğuk% 1 sığır serum albümini (BSA) çözeltisinde yeniden askıya alın. NOT: 0,2 mL santrifüj tüplerinin kullanılması, tüpün altındaki tek hücreli peletin görselleştirilmesini artırır.</li>
</ol>5. Tek hücreli ve tek çekirdekli analizler
<ol><li>scRNAseq için tek hücreli hazırlığı yeniden askıya alın ve gönderin.<ol><li>Tek hücreli peleti, 0,2 mL'lik bir tüp içinde PBS'de 100 μL buz soğuk% 1 BSA ile yeniden askıya alın.</li>
		<li>Hücreleri tek hücreli kapsülleme için yeniden askıya aldıktan sonra, hemen mikroakışkanlar tabanlı tek hücreli bölümleme ve barkodlama sistemi kullanarak tek hücreli kapsülleme ve barkodlama için devam edin (bkz.</li>
		<li>Örnekleri Genomik Çekirdeğine göndermeden önce, tek hücreli preparatları sayın ve inceleyin; hücre agregalarının olmamasını sağlamak. NOT: Tek hücrelerin toplanması, BSA miktarının% 2'ye kadar arttırılmasıyla daha da aza indirilebilir.</li>
	</ol></li>
	<li>scATACseq için tek hücreli hazırlığı yeniden askıya alın ve gönderin.<ol><li>Hücre peletini buz gibi soğuk 1x PBS'de %0,04 BSA'lık 100 μL'de yeniden askıya alın ve tek hücreli süspansiyonu 4 °C'de 500 × g'de santrifüj edin.</li>
		<li>Tek hücreli süspansiyonu buz gibi soğuk 0.1x lizis tamponu ile lize edin (Tablo 1) ve buz üzerinde 5 dakika kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Lisatı bir P-20 pipetle 10 kez karıştırın ve 10 dakika daha kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Lize edilmiş hücrelere 500 μL soğutulmuş yıkama tamponu (Tablo 1) ekleyin ve pipet kullanarak 5 kez karıştırın. NOT: Hücre süspansiyonundaki kalıntıları filtrelemek ve bunları 2 mL'lik bir tüpe aktarmak için 70 μm'lik bir hücre süzgeci kullanın.</li>
		<li>Lisatı 4 °C'de 5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj edin. Süpernatantı atın ve çekirdek-peleti seyreltilmiş çekirdek tamponunda (150 μL) yeniden askıya alın (Malzeme Tablosu ve Tablo 1'e bakınız). Bir hemositometre11 kullanarak tek çekirdekli preparatları sayın ve inceleyin.</li>
		<li>Tek çekirdekli transpozisyon, çekirdek bölümleme, kütüphane hazırlama ve dizileme için tek çekirdekli örneği Genomik Çekirdek'e gönderin. NOT: İlk hücre sayısı düşükse, çekirdekler boyunca enkaz gözlemlemek yaygındır. Bu nedenle, yüksek bir hücre numarası ile başlamanız önerilir.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Kumar, S., Kang, D. W., Rezvan, A., Jo, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+atherosclerosis+development+in+C57Bl6+mice+by+overexpressing+AAV-mediated+PCSK9+and+partial+carotid+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Investigation%22%5BJournal%5D)">Accelerated atherosclerosis development in C57Bl6 mice by overexpressing AAV-mediated PCSK9 and partial carotid ligation.</a> Laboratory Investigation. 97 (8), 935-945 (2017).</li>
<li>Nam, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+carotid+ligation+is+a+model+of+acutely+induced+disturbed+flow%2C+leading+to+rapid+endothelial+dysfunction+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+Heart+and+Circulation+Physiology%22%5BJournal%5D)">Partial carotid ligation is a model of acutely induced disturbed flow, leading to rapid endothelial dysfunction and atherosclerosis.</a> American Journal of Physiology Heart and Circulation Physiology. 297 (4), 1535-1543 (2009).</li>
<li>Nam, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+of+disturbed+flow-induced+atherosclerosis+in+mouse+carotid+artery+by+partial+ligation+and+a+simple+method+of+RNA+isolation+from+carotid+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A model of disturbed flow-induced atherosclerosis in mouse carotid artery by partial ligation and a simple method of RNA isolation from carotid endothelium.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (40), e1861(2010).</li>
<li>Dunn, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow-dependent+epigenetic+DNA+methylation+regulates+endothelial+gene+expression+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Flow-dependent epigenetic DNA methylation regulates endothelial gene expression and atherosclerosis.</a> Journal of Clinical Investigation. 124 (7), 3187-3199 (2014).</li>
<li>Kumar, S., Kim, C. W., Son, D. J., Ni, C. W., Jo, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow-dependent+regulation+of+genome-wide+mRNA+and+microRNA+expression+in+endothelial+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Data%22%5BJournal%5D)">Flow-dependent regulation of genome-wide mRNA and microRNA expression in endothelial cells in vivo.</a> Scientific Data. 1 (1), 140039(2014).</li>
<li>Ni, C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovery+of+novel+mechanosensitive+genes+in+vivo+using+mouse+carotid+artery+endothelium+exposed+to+disturbed+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Discovery of novel mechanosensitive genes in vivo using mouse carotid artery endothelium exposed to disturbed flow.</a> Blood. 116 (15), 66-73 (2010).</li>
<li>Son, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+atypical+mechanosensitive+microRNA-712+derived+from+pre-ribosomal+RNA+induces+endothelial+inflammation+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">The atypical mechanosensitive microRNA-712 derived from pre-ribosomal RNA induces endothelial inflammation and atherosclerosis.</a> Nature Communications. 4, 3000(2013).</li>
<li>Andueza, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+reprogramming+by+disturbed+flow+revealed+by+single-cell+RNA+and+chromatin+accessibility+study%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Endothelial reprogramming by disturbed flow revealed by single-cell RNA and chromatin accessibility study.</a> Cell Reports. 33 (11), 108491(2020).</li>
<li>Stuart, T., Srivastava, A., Lareau, C., Satija, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multimodal+single-cell+chromatin+analysis+with+Signac%5BTitle%5D)+AND+%22bioRxiv%22%5BJournal%5D)">Multimodal single-cell chromatin analysis with Signac.</a> bioRxiv. , (2020).</li>
<li>Stuart, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+integration+of+single-cell+data%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Comprehensive integration of single-cell data.</a> Cell. 177 (7), 1888-1902 (2019).</li>
<li>Crowley, L. C., Marfell, B. J., Christensen, M. E., Waterhouse, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+cell+death+by+trypan+blue+uptake+and+light+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Measuring cell death by trypan blue uptake and light microscopy.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2016 (7), (2016).</li>
<li>Li, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+RNA-seq+reveals+cellular+heterogeneity+of+mouse+carotid+artery+under+disturbed+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+and+Discovery%22%5BJournal%5D)">Single-cell RNA-seq reveals cellular heterogeneity of mouse carotid artery under disturbed flow.</a> Cell Death and Discovery. 7 (1), 180(2021).</li>
<li>Wu, Y. E., Pan, L., Zuo, Y., Li, X., Hong, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detecting+activated+cell+populations+using+single-cell+RNA-seq%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Detecting activated cell populations using single-cell RNA-seq.</a> Neuron. 96 (2), 313-329 (2017).</li>
<li>O'Flanagan, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissociation+of+solid+tumor+tissues+with+cold+active+protease+for+single-cell+RNA-seq+minimizes+conserved+collagenase-associated+stress+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Dissociation of solid tumor tissues with cold active protease for single-cell RNA-seq minimizes conserved collagenase-associated stress responses.</a> Genome Biology. 20 (1), 210(2019).</li>
</ol>

HJ, FloKines Pharma'nın kurucusudur. Diğer yazarların beyan edecek çıkar çatışmaları yoktur.

Bu yazıda, tek hücreli preparatları fare karotis arterlerinden izole etmek için ayrıntılı bir protokol sunulmaktadır. D-flow'un endotel hücreleri üzerindeki etkisi, PCL cerrahisi doğru bir şekilde gerçekleştirilirse doğru bir şekilde incelenebilir. Dış karotid, internal karotid, oksipital arter ve superior tiroid arter gibi ortak karotidin dallarını doğru bir şekilde tanımlamak çok önemlidir. Ultrasonografi ile akış paternlerinin doğrulanması, d-flow koşullarının başarılı başlangıcını daha da doğrular. ...

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/63128">Isolation of Endothelial Cells from the Lumen of Mouse Carotid Arteries for Single-cell Multi-omics Experiments</a>. The Authors section was&#160;updated.
The Authors section was updated from:
Sandeep Kumar*1 
Aitor Andueza*1 
Juyoung Kim1 
Dong-Won Kang1 
Hanjoong Jo1,2 
1Wallace H. Coulter Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology and Emory University, 2Division of Cardiology, Georgia Institute of Technology and Emory University 
* These authors contributed equally
to:
Sandeep Kumar*1 
Aitor Andueza*1 
Nicolas Villa-Roel1 
Juyoung Kim1 
Dong-Won Kang1 
Hanjoong Jo1,2 
1Wallace H. Coulter Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology and Emory University, 2Division of Cardiology, Georgia Institute of Technology and Emory University 
* These authors contributed equally

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/63128">Isolation of Endothelial Cells from the Lumen of Mouse Carotid Arteries for Single-cell Multi-omics Experiments</a>. The Authors section was&#160;updated.

Erratum: Isolation of Endothelial Cells from the Lumen of Mouse Carotid Arteries for Single-cell Multi-omics Experiments

Bu laboratuvar daha önce d-flow indüksiyonunun hiperlipidemik farelerde hızlı ve sağlam ateroskleroz gelişimine yol açtığını göstermiştir 1,2. D-flow kaynaklı aterosklerozun yeni fare modeli, kısmi karotis ligasyonu (PCL) cerrahisi kullanılarak mümkün olmuştur 3. PCL cerrahisi, bağlı sol karotis arterde (LCA) düşük ve salınımlı kan akımı durumunu veya d-akışını indükler. Buna karşılık, kontralateral sağ karotis arter (RCA) stabil laminer akışla (s-flow) yüzleşmeye devam eder. Önceden, d-akışının endotel hücreleri üzerindeki etkisini anlamak için, karotis arterler kısmi ligasyon ameliyatından sonra diseke edildi ve endotelyal olarak zenginleştirilmiş "havuzlanmış yığın" RNA'ları veya DNA'ları sağlayan bir fenol ve guanidin izotiyosiyanat bazlı lize edici ajan (luminal RNA / DNA yıkama yöntemi)2,4 ile yıkandı. Bu havuzlanmış toplu RNA'lar veya DNA'lar daha sonra sırasıylatranskriptomik çalışmalar veya epigenomik DNA metilom çalışmaları için işlendi, sırasıyla 4,5,6. Bu çalışmalar, endotel biyolojisi ve aterosklerozdaki rolleri kapsamlı bir şekilde araştırılan çoklu akışa duyarlı genlerin ve mikroRNA'ların keşfedilmesine yardımcı oldu 4,6,7.
Bununla birlikte, endotel zenginleştirmesine rağmen, bu toplu RNA / DNA çalışmaları, d-flow kaynaklı aterosklerozda arter duvarındaki her hücre tipinin spesifik rolünü ayırt edememiştir. Bu sınırlılığın üstesinden gelmek için endotelyal zenginleştirilmiş tek hücreli (sc) izolasyon ve scRNA ve scATAC dizileme çalışmalarıyapılmıştır 8. Bunun için, C57Bl6 fareleri, s-akışına maruz kalan RCA'yı kontrol olarak kullanırken LCA'da d-akışını indüklemek için PCL ameliyatına tabi tutuldu. PCL ameliyatından iki gün veya iki hafta sonra, fareler kurban edildi ve karotidler diseke edildi ve temizlendi. Hem LCA'ların hem de RCA'ların lümenleri kollajenaz ile aşılandı ve önemli bir fraksiyon olarak ECs içeren luminal kollajenaz sindirimi ve diğer arteriyel hücreler toplandı. Tek hücreli süspansiyon (scRNAseq) veya tek çekirdekli süspansiyon (scATACseq), 10x Genomik kurulum kullanılarak her hücre veya çekirdek için benzersiz tanımlayıcılarla hazırlandı ve barkodlandı. RNA'lar cDNA kütüphanesi hazırlığına tabi tutuldu ve sıralandı.
scRNAseq ve scATACseq veri kümeleri, Cell Ranger Tek Hücreli Yazılım kullanılarak işlendi ve ayrıca Seurat ve Signac R paketleri 9,10 tarafından analiz edildi. Her hücreye ve çekirdeğe bu analizlerden bir hücre tipi atandı ve işaretleyici genlere ve benzersiz gen ekspresyon modellerine dayanarak hücre tipine kümelendi. ScRNAseq ve scATACseq'in sonuçları, bu tek hücreli preparatların ECs ile zenginleştirildiğini ve ayrıca düz kas hücreleri (SMC'ler), fibroblastlar ve bağışıklık hücreleri içerdiğini göstermiştir.
Daha ileri analizler, luminal sindirimdeki EC popülasyonunun oldukça farklı ve plastik (8 farklı EC kümesi) olduğunu ve kan akışına duyarlı olduğunu ortaya koymuştur. En önemlisi, bu sonuçlar d-flow'un ECs'leri athero korumalı bir anti-enflamatuar fenotipten, pro-enflamatuar, endotelyal-mezenkimal geçiş, endotel kök / progenitör hücre geçişi ve en şaşırtıcı şekilde, endotelyal-bağışıklık hücresi benzeri geçiş dahil olmak üzere pro-aterojenik fenotiplere yeniden programladığını göstermiştir. Ek olarak, scATACseq verileri, birkaç yeni hipotezin temelini oluşturan genom çapında yeni akışa bağlı kromatin erişilebilirlik değişikliklerini ve transkripsiyon faktörü bağlanma bölgelerini ortaya koymaktadır. Fare karotis arterlerinden tek hücreli multi-omik çalışmalar için tek endotel hücrelerinin hazırlanmasına yönelik metodoloji ve protokol aşağıda detaylandırılmıştır.

<table><tbody><tr><td><> Kimyasallar, Peptitler ve Rekombinant Proteinler</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x PBS (Hücre Kültürü Sınıfı)</td><td>Corning</td><td>21040CMX12</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL Protein LoBind Mikrosantrifüj Tüpleri</td><td>Eppendorf</td><td>022-43-108-1</td><td></td></tr><tr><td>15 mL Santrifüj Tüpü - Köpük Raf, Steril</td><td>Fablab</td><td>FL4022</td><td></td></tr><tr><td>50 mL SuperClear Santrifüj Tüpleri</td><td>Labcon</td><td>3191-335-028</td><td></td></tr><tr><td>6-0 İpek Sütür Steril</td><td>Covidien</td><td>s-1172 c2</td><td></td></tr><tr><td>70 & m Hücre Süzgeci, Beyaz, Steril, Ayrı Ayrı Paketlenmiş</td><td>Thermo Fisher Scientic</td><td>08-771-2</td><td></td></tr><tr><td>Accutase solüsyonu, steril filtreli</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6964-100ML</td><td>veya eşdeğeri</td></tr><tr><td>ATAC Tamponu (Transpozisyon Karışımının Bileşen I)</td><td>10x Genomik</td><td>2000122</td><td></td></tr><tr><td>ATAC Enzimi (Transpozisyon Karışımının Bileşen II)</td><td>10x Genomik</td><td>2000123/ 2000138</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Serumu</td><td>albümini Sigma-Aldrich</td><td>A7906-500G</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfin</td><td>Med-Vet International</td><td>RXBUPRENOR5-V</td><td></td></tr><tr><td>Krom Kontrol Cihazı ve Sonraki GEM Aksesuar Kiti</td><td>10X Genomik</td><td>1000204</td><td></td></tr><tr><td>Krom Sonraki GEM Tek Hücreli 3' Reaktif Kitleri v3.1</td><td>10X Genomik</td><td>1000121</td><td></td></tr><tr><td>Krom Sonraki GEM Tek Hücreli ATAC Reaktif Kitleri v1.1</td><td>10X Genomik</td><td>1000175</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz II</td><td>MP Biyomedikal</td><td>2100502.5</td><td></td></tr><tr><td>Digitonin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D141-100MG</td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon Forseps</td><td>Roboz Cerrahi Aletler Co</td><td>RS-5005</td><td></td></tr><tr><td>Dnase1</td><td>New England Biolabs Inc</td><td>M0303S</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj (Tezgah Üstü Model # 5425)</td><td>Eppendorf</td><td>22620444230VR</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu - Premium Select</td><td>R& D sistemleri</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>Sabit Açılı Rotor</td><td>Eppendorf</td><td>FA-45-24-11-Kit Rotor</td><td></td></tr><tr><td>HEPES tamponlu salin</td><td>Millipore Sigma</td><td>51558</td><td></td></tr><tr><td>İnsülin şırınga (3/10 mL 29 G şırınga)</td><td>BD</td><td>305932</td><td></td></tr><tr><td>İzofluran</td><td>Patterson vet</td><td>789 313 89</td><td></td></tr><tr><td>MACs Akıllı Süzgeçler (30 ve mikro; m)</td> <td>Miltenyi Biotec</td><td>130-098-458</td><td></td></tr><tr><td>MACS Akıllı Süzgeçler (100 & mikro; m)</td><td>&nbsp; Miltenyi Biotec</td><td>130-098-463</td><td></td></tr><tr><td>Normal Tuzlu Su (% 0.9 sodyum klorür)</td><td>Baxter International Inc</td><td>2B1323</td><td></td></tr><tr><td>Çekirdek Tamponu (20x)</td><td>10x Genomik</td><td>PN 2000153/2000207</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x), pH 7.4</td><td>Thermo Fisher Scientic</td><td>70011-044</td><td></td></tr><tr><td>Küçük makas</td><td>Roboz Cerrahi Aletler Co</td><td>RS-5675</td><td></td></tr><tr><td>Kilitli Forseps Uygulayan Paslanmaz Çelik Mikro Klips</td><td>Roboz Cerrahi Aletler A.Ş.</td><td>RS-5480</td><td>veya benzeri</td></tr><tr><td>Doku Tamiri II</td><td>Webster Veteinanry</td><td>07-856-7946</td><td></td></tr><tr><td>Tip II Kollajenaz</td><td>MP biyomedikaller</td><td>2100502.1</td><td></td></tr><tr><td>Deposited Data</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>scATACseq FastQ dosyaları</td><td>NCBI</td><td>www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject Katılım # PRJNA646233</td><td></td></tr><tr><td>scRNAseq FastQ dosyaları</td><td>NCBI</td><td>www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject Katılım # PRJNA646233</td><td></td></tr><tr><td>Yazılım ve Algoritmalar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cell Ranger 3.1.0</td><td>10X Genomik</td><td>https://support.10xgenomics.com/ tek hücreli gen-exp</td><td></td></tr><tr><td>Cicero</td><td>Pliner ve diğerleri, 2018</td><td>https://cole-trapnell-lab.github.io/cicero-release/</td><td></td></tr> <tr><td>Ggplot2 v3.2.1</td><td>Hadley Wickham</td><td>https://cran.r-project.org</td><td></td></tr><tr><td>Harmony</td><td>Korsunsky ve diğerleri, 2019</td><td>https://github.com/immunogenomics/harmony</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>Schneider ve diğerleri, 2012</td><td>https://imagej.nih.gov</td><td></td></tr><tr><td>Monocle 2.8.0</td><td>Qiu ve diğerleri, 2017</td><td>https://github.com/cole-trapnell-lab/ monokl salımlı</td><td></td></tr><tr><td>R sürüm 3.6.2</td><td>R Vakfı</td><td></td><td></td>https://www.r-project.org</tr><tr><td>Seurat 3.1.3</td><td>Stuart ve diğerleri, 2019</td><td>https://github.com/satijalab/seurat</td><td></td></tr><tr><td>Signac 0.2.5</td><td>Stuart ve diğerleri, 2019</td><td>https://github.com/timoast/signac</td><td></td></tr></tbody></table>

tek hücreli multi-omik deneyler için fare karotis arterlerinin lümeninden endotel hücrelerinin İzolasyonu

Isolation of Endothelial Cells from the Lumen of Mouse Carotid Arteries for Single-Cell Multi-Omics Experiments

Ateroskleroz, bozulmuş kan akışına (d-flow) maruz kalan arteriyel bölgelerin enflamatuar bir hastalığıdır. D-akımı , endoteldeki genlerin ekspresyonunu transkriptomik ve epigenomik seviyelerde düzenler ve proaterojenik yanıtlarla sonuçlanır. Son zamanlarda, fare kısmi karotis ligasyonu (PCL) modeli kullanılarak transkriptomik ve kromatin erişilebilirliği değişikliklerini tek hücreli çözünürlükte belirlemek için Transpozaz Erişilebilir Kromatin dizilimi (scATACseq) için tek hücreli RNA dizilimi (scRNAseq) ve tek hücreli Tahlil çalışmaları yapılmıştır. Endotel hücreleri (ECs), arter duvarındaki toplam hücre popülasyonlarının küçük bir kısmını temsil ettiğinden, EC ile zenginleştirilmiş tek hücreli preparatlar elde etmek için luminal bir sindirim yöntemi kullanılmıştır. Bu çalışma için fareler, sağ karotis arteri (RCA) kontrol olarak kullanırken, sol karotis arterde (LCA) d-akışını indüklemek için PCL cerrahisine tabi tutuldu. Karotis arterler PCL cerrahisinden iki gün veya iki hafta sonra diseke edildi. Her karotidin lümeni kollajenaz sindirimine tabi tutuldu ve endotelyal zenginleştirilmiş tek hücreler veya tek çekirdekler elde edildi. Bu tek hücreli ve tek çekirdekli preparatlar daha sonra 10x Genomik mikroakışkan kurulum kullanılarak barkodlandı. Barkodlanmış tek hücreler ve tek çekirdekler daha sonra RNA hazırlama, kütüphane oluşturma ve yüksek verimli bir DNA sıralayıcısında dizileme için kullanıldı. Biyoinformatik işleme sonrası, scRNAseq ve scATACseq veri kümeleri, öncelikle EC'lerden oluşan luminal sindirimden çeşitli hücre tiplerini tanımladı. Düz kas hücreleri, fibroblastlar ve bağışıklık hücreleri de mevcuttu. Bu EC-zenginleştirme yöntemi, toplam arter sindirim yöntemiyle zor olabilecek kan akışının endotel üzerindeki etkisini anlamaya yardımcı oldu. EC ile zenginleştirilmiş tek hücreli hazırlama yöntemi, kan akışının bu genler üzerindeki etkisinin çalışılmadığı EC-nakavtlarda ve transgenik farelerde tek hücreli omik çalışmalar yapmak için kullanılabilir. Önemli olarak, bu teknik, benzer mekanik çalışmalar yapmak için EC ile zenginleştirilmiş tek hücreleri insan arter eksplantlarından izole etmek için uyarlanabilir.

Parsiyel karotis ligasyon ameliyatları 44 fareye uygulandı ve parsiyel ligasyon cerrahisinden bir gün sonra ultrasonografi yapılarak LCA'da d-akımının başlangıcı doğrulandı. Başarılı kısmi ligasyon cerrahisi, kan akış hızının azalmasına neden olur ve LCA3'teki kan akışını (bozulmuş akış) tersine çevirir. Karotis arterler ligasyondan iki gün sonra veya iki hafta sonra diseke edildi. Her karotidin lümeni kollajenaz sindirimine tabi tutuldu ve endotelyal zenginleştirilmiş tek hücreli veya te...

Tek hücreli omik deneyler yapmak için stabil veya rahatsız edici akış koşullarına maruz kalan fare karotis arterlerinin lümeninden endotel hücrelerini ve çekirdeklerini izole etmek için bir yöntem sunuyoruz.

Tek Hücreli Multi-Omik Deneyler için Fare Karotis Arterlerinin Lümeninden Endotel Hücrelerinin İzolasyonu

Atherosclerosis is an inflammatory disease of the arterial regions exposed to disturbed blood flow (d-flow). D-flow regulates the expression of genes in ...

Bir kan damarında, endotel hücrelerinin sayısı çok düşüktür, bu da onları incelemeyi zorlaştırır. Protokolümüz bu sınırlamayı ortadan kaldırır ve yeni moleküler yolları ve terapötikleri incelememize izin verir. Protokolümüz, endotelyal zenginleştirilmiş örnekler elde etmemize ve akut ve kronik rahatsız edici akışın bu hücre tipini nasıl etkilediğini incelememize olanak tanır.Endotel hücrelerini daha ayrıntılı olarak inceleme yeteneği, hedef genleri ve dolayısıyla endotel hücrelerini hedef alan ateroskleroz için potansiyel terapötikleri tanımlamayı mümkün kılar. Karotis arter izolasyonu zordur ve sabır ve deneyim gerektirir. Başlamak için, hayvanı deri altından kilogram buprenorfin başına 0.05 miligram enjekte ederek hazırlayın.Epilasyonlu bölgeyi Betadine ve izopropanol çözeltisini kullanarak üç kez sterilize edin. Boyun bölgesinde yaklaşık bir santimetrelik ventral orta hat kesisi yapın. Daha sonra LCA dal noktasını künt diseksiyonla ortaya çıkarın.Sol internal karotid, eksternal karotis ve oksipital arterleri 6-0 sütürlerle bağlayarak superior tiroid artere dokunulmadan bırakılır. Kesiyeri doku yapıştırıcısı veya dikişlerle kapatın. Fareyi 37 santigrat derecede tutulan önceden ısıtılmış bir kurtarma kafesine aktarın.Ameliyat sonrası hipotermiyi önlemek için fareyi bir saate kadar temiz bir havluya yerleştirin. Kalbin tepesinden sol ventriküle bağlanan IV hattına 21 gauge iğne yerleştirin. Oda sıcaklığında normal salin kullanarak iki ila üç dakika retrograd perfüzyona izin verin.Bir IV hattı enjekte ederken veya kullanırken sabit bir basınç uygulayarak ve tuzlu su torbasını sekiz ila dokuz fit yükseklikte tutarak sabit bir akış hızını koruyun. Karotis arterleri açığa çıkarmak için cildi boyun bölgesinden tüm yağ, kas ve bağ dokuları ile çıkarın. Daha sonra karotidlerin etrafındaki periadventitial dokuları çıkarın ve karotidi vücuda bağlı bırakın.Perfüzyona izin vermek için LCA'daki ligasyon bölgesinin altında bir kesi yapın. Herhangi bir kan izini gidermek için LCA'yı sol ventrikülden bir dakika daha perfüze edin. Herhangi bir kan izini gidermek için karotis arterlerin dışını normal salin çözeltisi ile yıkayın.Sol karotis arterin distal ucunun lümenine 50 mikrolitre sindirim tamponu enjekte etmek için 29 gauge iğneli bir insülin şırıngası kullanın. Sindirim tamponu ile dolu karotis arterin proksimal ucunu sıkıştırmak için bir mikro klips kullanın. Lümenin içine 15 ila 20 mikrolitre sindirim tamponu ekleyin ve sindirim tamponunun salınmasını önlemek için distal ucu klipsleyin.Karotis arterleri fareden sıcak 37 santigrat derece HEPES Tamponlu Tuzlu Çözeltisi içeren 35 milimetrelik kaplara aktarın. Ve aralıklı sallanma ile 37 santigrat derecede 45 dakika boyunca kuluçkaya yatırın. Luminal enzimatik sindirim tamamlandıktan sonra karotis arteri kelepçelerle 35 milimetrelik çanaktan çıkarın.Kelepçeleri dikkatlice çıkarın, böylece sindirim tamponu sızmaz. Karotis arterin bir ucunu 1,5 mililitrelik mikro santrifüj tüpünün üstünde tutun. Bir insülin şırıngası ile donatılmış 29 gauge iğne yerleştirerek lümene 100 mikrolitre sıcak sindirim tamponu ekleyin.Karotis arterin lümenini mikro santrifüj tüpünde hızla yıkayın, ardından reaksiyonu durdurmak için tüpe 0.3 mikrolitre FBS ekleyin. Mikro santrifüj tüpünü buzun üzerine yerleştirin. Sabit açılı rotorlu bir santrifüj kullanarak hücreleri dört santigrat derecede beş dakika boyunca 500 G'de santrifüj yapın ve süpernatanı atın.Hücreleri, hücre ayrışma reaktifi içeren sindirim tamponunda yeniden askıya alın ve tek hücrelere ayırmak için 37 santigrat derecede beş dakika boyunca inkübe edin. 0,5 mililitrelik tüpe 0,15 mililitre FBS ekleyerek enzimatik reaksiyonu engelleyin ve santrifüjlemeyi tekrarlayın. Süper nantantı atın ve hücreleri PBS'deki 100 mikrolitre buz soğuk% 1 BSA çözeltisinde 0.2 mililitrelik bir mikro santrifüj tüpünde yeniden askıya alın.Tek hücre analizi için, peleti 0.2 mililitrelik bir tüp içinde PBS'de 100 mikrolitre buz soğuk% 1 BSA ile yeniden askıya alın. Tek çekirdek analizi için, hücre peletini buz gibi soğuk PBS'de% 0.04 BSA'lık 100 mikrolitrede yeniden askıya alın ve tek hücreli süspansiyonu beş dakika boyunca dört santigrat derecede 500G'de santrifüj edin. Tek hücreli süspansiyonu buz gibi soğuk lizis tamponu ile ayrıştırın ve buz üzerinde beş dakika boyunca inkübe edin.Lisatı bir P20 pipetle karıştırın ve 10 dakika daha kuluçkaya yatırın. Daha sonra, lizatı 0.5 mililitrelik bir tüpe aktarın. ly hücrelerini 500 mikrolitre tamponla yıkayın ve bir pipet kullanarak karıştırın.Ardından santrifüjlemeyi tekrarlayın. Süpernatanı atın ve çekirdek peletini seyreltilmiş çekirdek tamponunun 150 mikrolitresinde yeniden askıya alın. Bir hemositometre kullanarak tek çekirdek preparatlarını sayın.Tek çekirdek dizileme çalışmasını takiben, tek hücreli ve tek çekirdekler elde edildi ve parlak alan ve faz kontrast mikroskobu ile görselleştirildi. Tek hücreli süspansiyondan tek çekirdek preparatının etkinliği de gösterilmiştir. Tek hücreli RNA dizileme çalışmasından sonra, hücre başına gen dağılımı, hücre başına benzersiz moleküler tanımlayıcı, hücre başına mitokondriyal okumalar ve dizileme doygunluğu verileri gibi çeşitli parametreler elde edilmiştir.Tek hücreli ATAC sekans çalışması için, nükleozom bantlama paterni de dahil olmak üzere kesici uç boyutu dağılımı gözlenmiştir. Normalize TSS zenginleştirme skoru da gözlendi. Ek olarak, yüzde parçası zirvelerde okur.Pik bölge fragmanları, TSS zenginleştirme skoru, kara liste genomik bölgelerindeki okuma oranı ve nükleozom sinyal oranı belirlendi. Enzimatik sindirim hücreler için bir strestir, bu nedenle numuneleri buz üzerinde tutmak ve prosedürü mümkün olduğunca çabuk gerçekleştirmek çok önemlidir. Bu yöntemi farelerden endotel hücreleri elde etmek ve plakalamak için kullanabiliriz.Bu tekniği toplu Omix bazlı çalışmalar yapmak için de kullanabiliriz. Bu teknik, bozulmuş kan akışının endotel hücreleri üzerindeki etkisini in vivo olarak tek bir hücre tarzında incelemenin yolunu açtı.

isolation-endothelial-cells-from-lumen-mouse-carotid-arteries-for

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu fare karotis arter intraplak neo-vaskülarizasyon (dört hafta) ile rahatsız akış koşulları ve sonraki ateroskleroz gelişimi (iki hafta) neden olan bir kısmi karotis ligasyonu cerrahi, açıklamaktadır. Ayrıca, yüksek saflıkta endotel RNA, RNA izolasyonu, karotis intima yeni bir yöntem açıklanmaktadır.

Kısmi ligasyon Fare Karotis Arter Disturbed Akış Kaynaklı Ateroskleroz ve Karotis Endotel RNA İzolasyonu Basit Bir Yöntem Bir Model

Biz yerli, sağlam mikrovasküler endotel kalsiyum sinyalizasyon görselleştirme ve işlemek için bir hazırlık mevcut. Endotel tüpler taze iskelet kası komşu hücreleri içinde ve arasında vivo morfolojisi ve dinamik sinyalizasyon korumak besleyen fare direnç arterlerinin izole. Endotelyal tüp, diğer doku ve organların kılcal hazırlanabilir.

Fare Direnç arterlerden mikrovasküler endotel Tüpler İzolasyonu

Kalp kapakçığı endotel hücrelerini (VEC'ler) izole etme yeteneği, kapak gelişimi, bakımı ve hastalık mekanizmalarını anlamak için kritik öneme sahiptir.  Burada, VEC'lerin gelişimsel ve hastalık süreçlerine katkısını belirleyen çalışmalara izin verecek FACS kullanarak embriyonik ve yetişkin Tie2-GFP farelerinden VEC'lerin izolasyonunu açıklıyoruz.

Murin Vana Endotel Hücreleri İzolasyon

Vasküler endotel hücreleri birçok önemli kardiyovasküler hastalıkta önemli rol oynamaktadır. Bu makale, herhangi bir özel ekipman kullanmadan fare aortundan endotel hücrelerini izole etmek ve genişletmek için basit bir yöntemi açıklamaktadır. Protokolümüz, endotel hücre fizyopatolojisindeki mekanizmaları tanımlamak için etkili bir yol sağlar.

İzolasyon ve Fare aort endotel hücreleri İlköğretim Kültür

Bu protokol, fare koroner endotel hücrelerini görüntüleme veya moleküler biyolojik deneyler yapmak amacıyla izole etme yöntemimizi paylaşmak için hazırlanmıştır.

Fare Koroner Endotel Hücreleri İzolasyon

Bu protokol, hücre verimi, saflığı ve canlılığı için optimize edilmiş murin doğum sonrası retinal endotel hücrelerinin izolasyonu için bir yöntemi açıklar. Bu hücreler yeni nesil dizileme yaklaşımları için uygundur.

Yeni Nesil Dizileme için Murin Retinal Endotel Hücrelerinin İzolasyonu

Bu makalede, primer akciğer endotel hücreleri yenidoğan farelerden izole edilmiş ve kültürlenmiştir.

Primer Fare Akciğer Endotel Hücrelerinin İzolasyonu

Protokol, endotel hücrelerinin insan mezenterik arterinden izolasyonunu, kültürünü ve profillemesini tanımlar. Ek olarak, insan arterini mekansal transkriptomik için hazırlamak için bir yöntem sağlanmıştır. İzole hücreler üzerinde proteomik, transkriptomik ve fonksiyonel testler yapılabilir. Bu protokol, herhangi bir orta veya büyük boyutlu arter için yeniden kullanılabilir.

Transkriptom Düzeyinde İnsan Primer Mezenterik Arteriyel Endotel Hücrelerinin İzolasyonu ve Profillenmesi

Bu protokol, fare yağ depolarının diseksiyonu ve endotel hücre popülasyonunu serbest bırakmak ve daha sonra tanımlamak için ilgili arterlerin izolasyonu ve sindirimi için bir yöntemi detaylandırır. Aşağı akış uygulamalarında kullanılan taze izole edilmiş hücreler, vasküler hücre biyolojisinin ve vasküler disfonksiyon mekanizmalarının anlaşılmasını ilerletecektir.

Vasküler Endotel Hücrelerinin Aşağı Akış Uygulamaları için Farklı Yağ Depolarından İzolasyonu ve Tanımlanması

Bu makale, murin endotel hücrelerinin dermal lenfatik kılcal damarlardan manyetik boncuk bazlı izolasyonu için bir yöntemi açıklamaktadır. İzole edilmiş lenfatik endotel hücreleri, aşağı akış in vitro deneyler ve protein ekspresyon analizi için kullanılabilir.

Murin Dermal Lenfatik Endotel Hücre İzolasyonu

Burada, fare karotis arterlerinin tek hücreli bir süspansiyonunu hazırlamak için iki aşamalı bir hücre sindirim protokolünü açıklıyoruz.

Tek Hücreli Dizileme için Fare Karotis Arterlerinden Tek Hücreli Süspansiyonun Hazırlanması

Öğrenin, fare karotis arterlerinden endotel hücrelerinin izolasyonunu tek hücreli multi-omik deneyler için. Bu yöntem, aterosklerozla ilgili moleküler yolları ve potansiyel tedavileri incelemeyi mümkün kılar.

Tek Hücreli Multi-Omik Deneyler için Fare Karotis Arterlerinin Lümeninden Endotel Hücrelerinin İzolasyonu

Daha fazla video keşfet