Name: Decellularize Kıkırdak Hücre Dışı Matriks Hidrojellerinin Sentezi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-07-21T14:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 34 s
Description: Keşfedin, DC-ECM hidrojellerinin sentezi için fiziksel ve kimyasal yöntemlerle hücre dışı matris hazırlama tekniğini. Bu yöntem, doku mühendisliği ve rejeneratif tıpta düşük immünojenite ile biyouyumlu iskeleler oluşturur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Zhejiang Eyaleti Tıp ve Sağlık Teknolojisi Planı (2019KY050), Zhejiang Eyaleti Geleneksel Çin Tıbbı Bilim ve Teknoloji Planı (2019ZA026), Zhejiang Eyaletindeki Temel Araştırma ve Geliştirme Planı (Hibe No.2020C03043), Zhejiang Eyaleti Geleneksel Çin Tıbbı Bilim ve Teknoloji Planı (2021ZQ021) ve Çin Zhejiang Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı (LQ22H060007).

Bu çalışma, Zhejiang Eyaleti Tongde Hastanesi Etik Komitesi tarafından onaylanmıştır.
1. DC-ECM hidrojelin hazırlanması
NOT: Bu çalışmada kıkırdak, 12 aylık Bama minyatür domuzların diz eklemlerinden, kemik dokusu toplanmasından kaçınılarak elde edilmiştir.
<ol><li>Toplanan kıkırdağı alın ve bir neşter ile 1-2 mm3 parçaya bölün ve kesin.</li>
	<li>20 g kıyılmış kıkırdağı 50 mL'lik bir santrifüj tüpüne yerleştirin ve dokuyu tamamen batırmak için 20 mL hipotonik Tris-HCl tamponu (10 mM Tris-HCl, pH 8.0) ekleyin. Santrifüj tüpünü −80 °C'lik bir dondurucuda 3 saat ve ardından 37 °C'lik bir fırında 3 saat bekletin. Dondurma ve ısıtma adımını altı kez tekrarlayın. Bu adımda, hipotonik Tris-HCl tamponunun değiştirilmesine gerek yoktur.</li>
	<li>Santrifüj tüpünü 1.000 rpm hızında bir vorteks karıştırıcı kullanarak 30 saniye çalkalayın. Yeni bir 50 mL santrifüj tüpüne paslanmaz çelik bir elek (gözenek boyutu: ~250 μm) yerleştirin.</li>
	<li>Hücrelerden arındırılmış kıkırdağı paslanmaz çelik eleğe yavaşça boşaltın, dokuyu steril PBS ile üç kez yıkayın ve kıkırdağı toplayın.</li>
	<li>10 mL tripsin çözeltisi (PBS'de% 0.25 tripsin) ekleyin ve tüpü 24 saat boyunca 37 ° C'de bir çalkalayıcıya yerleştirin. Bu süre zarfında, tripsini her 4 saatte bir değiştirin. Paslanmaz çelik elek kullanarak süspansiyonu süzün ve dokuyu koruyun. Tripsin, sindirim işlemlerinden biri sırasında gece boyunca tedavi edilebilir ve bu, nihai sindirimi etkilemeyecektir.</li>
	<li>Tripsinizli dokuyu hipertonik tampon (1.5 M NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH 7.6) ile yıkayın.</li>
	<li>10 mL nükleaz çözeltisi (10 mM Tris-HCl, pH 7.5'te 50 U/mL deoksiribonükleaz ve 1 U/mL ribonükleaz) ekleyin ve tüpü 4 saat boyunca 37 °C'de bir çalkalayıcıya yerleştirin.</li>
	<li>Nükleaz solüsyonunu çıkarın, kıkırdağı steril PBS ile üç kez yıkayın ve hipotonik Tris-HCl solüsyonu ekleyin. Santrifüj tüpünü bir çalkalayıcıya yerleştirin ve oda sıcaklığında (RT) 20 saat durulayın.</li>
	<li>Hipotonik Tris-HCl çözeltisini çıkarın, kıkırdağı steril PBS ile üç kez yıkayın ve dokuyu 24 saat daldırmak için% 1 Triton X-100 çözeltisi ekleyin.</li>
	<li>Triton X-100 çözeltisini çıkarın ve hücrelerden arındırılmış kıkırdağı 3 gün boyunca damıtılmış suyla iyice durulayın, damıtılmış suyu her 12 saatte bir değiştirin.</li>
	<li>Kıkırdağı perasetik asit çözeltisinde (%4 etanol içinde %0.1 PAA) 4 saat bekletin. Perasetik asit çözeltisini çıkarın ve kıkırdağı üç kez steril damıtılmış suyla yıkayın.</li>
	<li>Paslanmaz çelik eleği (gözenek boyutu: ~250 μm) 50 mL'lik bir santrifüj tüpüne yerleştirin. Hücreleri kesilmiş kıkırdağı paslanmaz çelik eleğe yavaşça boşaltın ve kıkırdağı toplayın. DNA, kollajen ve glikozaminoglikan (GAG) içeriğini tahmin ederek kıkırdağın hücresellikten arındırma derecesini ve matris retansiyonunu test edin.</li>
	<li>Hücreden arındırılmış kıkırdağı bir öğütme kabına koyun, sıvı nitrojen ekleyin ve hücreden arındırılmış kıkırdağı bir toz oluşturmak için öğütün. 2 g hücreden arındırılmış kıkırdak tozu alın, 80 mL 0.5 M asetik asit ve 20 mg pepsin ekleyin ve 24 saat sindirin. 10 dakika boyunca 400 x g'da santrifüjleyin; tortuyu atın ve süpernatan çözeltiyi (DC-ECM çözeltisi) toplayın.</li>
	<li>Kuyucuk başına 1 mL DC-ECM çözeltisini 6 oyuklu plakalara boşaltın. 6 oyuklu plakaları bir liyofilizatöre yerleştirin. DC-ECM çözeltisini dondurun. Dondurarak kurutucudaki sıcaklık −40 °C'ye düştüğünde, vakum pompasını açın ve vakum derecesini 22 saat boyunca 10 Pa'da tutun.</li>
	<li>Dondurularak kurutulmuş DC-ECM çözeltisini çıkarın, santrifüj tüplerine koyun ve −20 °C'de saklayın. Dondurularak kurutulmuş DC-ECM çözeltisinin minimum saklama süresi yarım yılı aşıyor.</li>
	<li>Santrifüj tüpünde 20 mg dondurularak kurutulmuş DC-ECM çözeltisini çözmek için 1 mL steril damıtılmış su ekleyin. RT'de 1.000 rpm hızında bir vorteks karıştırıcı kullanarak 1 dakika çalkalayın. DC-ECM çözeltisine 1 mg B2 vitamini (%0,1 a/h) ekleyin, 37 °C'de 60 dakika inkübe edin ve bir hidrojel (DC-ECM hidrojel) oluşturmak için 3 dakika boyunca UV ışığı (370 nm, 3,5 mW/cm2) ile ışınlayın.</li>
</ol>2. Decellularize kıkırdak tespiti
<ol><li>Decellularize kıkırdağın DNA içeriği tespiti NOT: DNEasy Kan ve Doku Kitini kullanarak DNA'yı çıkarın.<ol><li>İlk olarak, bir santrifüj tüpüne 20 mg DC-ECM kıkırdağı alın. Vorteks salınımı ile 180 μL Tampon GTL ve 20 μL Proteinaz K ekleyin ve kıkırdağı tamamen eriyene kadar 56 ° C'de 4 saat inkübe edin.</li>
		<li>RT'de 1.000 rpm hızında bir vorteks karıştırıcı kullanarak santrifüj tüpünü 15 saniye çalkalayın. Ardından, 200 μL Buffer GL ve susuz etanol ekleyin ve girdap titreşimi ile iyice karıştırın. Numuneleri 4 °C'de 6.000 x g hızında 1 dakika santrifüjleyin.</li>
		<li>Adsorpsiyon kolonuna 500 μL Tampon GW1 ekleyin ve numuneleri 4 °C'de 12.000 x g hızında 1 dakika santrifüjleyin. Adsorpsiyon kolonuna 500 μL Tampon GW2 ekleyin ve 1 dakika boyunca 4 ° C'de 20.000 x g'de santrifüjleyin. Son olarak, adsorpsiyon kolonuna 50 μL sterilize su ekleyin ve DNA çözeltisini toplamak için 4 ° C'de 6.000 x g hızında 1 dakika santrifüjleyin. Bir spektrofotometre kullanarak DNA içeriğini belirleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Decellularize kıkırdakta kollajen içeriği tespiti<ol><li>Hücresi kesilmiş kıkırdaktaki kollajen içeriğini tespit etmek için, kollajen amino asit belirteci olarak hidroksiprolin kullanın. 5 mg hücreden arındırılmış kıkırdağı 5 mL 6 M hidroklorik asit ile 100 ° C'de 20 dakika asitleştirin ve ardından 5 mL 6 M sodyum hidroksit çözeltisi ile nötralize edin.</li>
		<li>Bir spektrofotometre ile 570 nm'de numunenin absorbansını ölçerek hidroksiprolin içeriğini hesaplayın. Standart hidroksiprolin örneğini kullanarak bir konsantrasyon-absorpsiyon doğrusal regresyonu elde edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Decellularize kıkırdakta GAG içeriği tespiti NOT: DC-ECM kıkırdağındaki GAG içeriği, bir doku GAG kolorimetrik kantitatif tespit kiti kullanılarak tespit edildi. Aşağıdaki tüm reaktifler kitte mevcuttur.<ol><li>200 mg DC-ECM kıkırdak tozu alın ve girdap salınımı ile 500 μL Reaktif A ekleyin. Numuneyi 4 °C'de 16 saat inkübe edin ve ardından 14.000 x g'da 10 dakika santrifüjleyin.</li>
		<li>50 mL numune çözeltisi alın ve girdap salınımı ile 50 μL yüksek tuzlu çözelti (Reaktif B) ve 50 μL asit çözeltisi (Reaktif C) ekleyin. Numuneyi 10 dakika inkübe edin.</li>
		<li>Girdap salınımı ile 750 μL boya çözeltisi (Reaktif D) ekleyin ve numuneyi karanlık koşullarda 30 dakika inkübe edin. Numuneyi 10 dakika boyunca 14.000 x g'da santrifüjleyin ve ardından süpernatanı atın.</li>
		<li>1 μL temizleme solüsyonu (Reaktif E) ekleyin ve iyice karıştırın. Numuneyi 10 dakika boyunca 14.000 x g'da santrifüjleyin ve süpernatanı atın.</li>
		<li>Numuneye 1 μL ayrışma çözeltisi (Reaktif F) ekleyin ve iyice karıştırın. Numuneyi karanlık koşullar altında 30 dakika inkübe edin. Son olarak, 600 nm'de bir spektrofotometre kullanarak GAG içeriğini belirleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Taramalı elektron mikroskobu (SEM) ve transmisyon elektron mikroskobu (TEM) hücresinden arındırılmış kıkırdak analizi<ol><li>Decellularize kıkırdak ve normal kıkırdak dokusunu karşılaştırın. Numuneyi %2,5'lik bir glutaraldehit çözeltisine yerleştirin, gece boyunca 4 °C'de inkübe edin ve ardından PBS ile üç kez yıkayın.</li>
		<li>Numuneyi 1 saat boyunca% 1 OsO4'e sabitleyin ve ardından PBS ile üç kez yıkayın.</li>
		<li>Numuneyi %50, %70, %90 ve %100 etanolün yanı sıra her biri 15 dakika boyunca %100 asetona sırayla daldırarak kurutun. Numuneyi 15 dakika boyunca karışık bir heksametildisilazan ve etanol (1:1) çözeltisine yerleştirin, ardından 15 dakika boyunca saf heksametildisilazan'a daldırın.</li>
		<li>Numuneyi bir HCP-2 kurutucuya yerleştirin ve ardından sıvı nitrojen kullanarak kurutun. Ardından, tamamen kurutulmuş numuneyi püskürtme kaplaması kullanarak ince bir altın-paladyum tabakası ile kaplayın ve SEM kullanarak görüntüleyin. Püskürtme kaplaması 5 dakika boyunca 120 W gücünde gerçekleştirildi. Deney aşağıdaki koşullar altında gerçekleştirildi: 15 kV'luk bir çalışma voltajı ve 5 x 10−5 Pa'dan daha düşük bir vakum derecesi.</li>
		<li>TEM analizi için, numuneyi 1 saat boyunca susuz aseton ve reçine (1:1) karışımına, ardından 3 saat boyunca susuz aseton ve reçine (1:3) karışımına yerleştirin. Ardından, numuneyi gece boyunca reçineye yerleştirin.<ol><li>Numuneyi gömülü ortam dolu kapsüllere yerleştirin ve 70 °C'de 9 saat ısıtın.</li>
			<li>Gömdükten sonra, numuneyi ultra ince bir mikrotom kullanarak 70 nm ince dilimler halinde kesin ve bakır bir ağ üzerine yerleştirin.</li>
			<li>Bakır ağ üzerine 20 μL uranil asetat boyama solüsyonu pipetleyin ve RT'de 15 dakika boyayın. Ağı damıtılmış suyla iki kez nazikçe yıkayarak boyama solüsyonunu çıkarın.</li>
			<li>Daha sonra, bakır ağ üzerine 20 μL kurşun sitrat boyama solüsyonu pipetleyin ve RT'de 15 dakika boyayın. Ağı damıtılmış suyla üç kez yıkayın.</li>
			<li>Bakır ağı, filtre kağıdıyla kaplı temiz bir Petri kabına yerleştirin. Havayla kuruduktan sonra, TEM kullanarak bölümlerin fotoğrafını çekin. Prob, 500 nN'lik aşağı doğru bir kuvvetle uygulandı, 1 Hz hızında tarandı ve 40 Nm-1'lik bir elastik sabite (k-değeri) sahipti. Prob ucunun yarıçapı 8 nm olarak ölçüldü.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Vega, S. L., Kwon, M. Y., Burdick, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+hydrogels+for+cartilage+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22European+Cells+%26+Materials%22%5BJournal%5D)">Recent advances in hydrogels for cartilage tissue engineering.</a> European Cells & Materials. 33, 59-75 (2017).</li>
<li>Yang, J., Zhang, Y. S., Yue, K., Khademhosseini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-laden+hydrogels+for+osteochondral+and+cartilage+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Cell-laden hydrogels for osteochondral and cartilage tissue engineering.</a> Acta Biomaterialia. 57, 1-25 (2017).</li>
<li>Bejleri, D., Davis, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+extracellular+matrix+materials+for+cardiac+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Healthcare+Materials%22%5BJournal%5D)">Decellularized extracellular matrix materials for cardiac repair and regeneration.</a> Advanced Healthcare Materials. 8 (5), e1801217(2019).</li>
<li>Brown, M., Li, J., Moraes, C., Tabrizian, M., Li-Jessen, N. Y. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+extracellular+matrix%3A+New+promising+and+challenging+biomaterials+for+regenerative+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Decellularized extracellular matrix: New promising and challenging biomaterials for regenerative medicine.</a> Biomaterials. 289, 121786(2022).</li>
<li>Barbulescu, G. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+extracellular+matrix+scaffolds+for+cardiovascular+tissue+engineering%3A+Current+techniques+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Decellularized extracellular matrix scaffolds for cardiovascular tissue engineering: Current techniques and challenges.</a> International Journal of Molecular Sciences. 23 (21), 13040(2022).</li>
<li>Zhang, W., Du, A., Liu, S., Lv, M., Chen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+progress+in+decellularized+extracellular+matrix-derived+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Regenerative+Therapy%22%5BJournal%5D)">Research progress in decellularized extracellular matrix-derived hydrogels.</a> Regenerative Therapy. 18, 88-96 (2021).</li>
<li>Zhu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-derived+decellularized+extracellular+matrix+scaffolds+for+articular+cartilage+repair%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Artificial+Organs%22%5BJournal%5D)">Cell-derived decellularized extracellular matrix scaffolds for articular cartilage repair.</a> International Journal of Artificial Organs. 44 (4), 269-281 (2021).</li>
<li>Li, T., Javed, R., Ao, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenogeneic+decellularized+extracellular+matrix-based+biomaterials+for+peripheral+nerve+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Xenogeneic decellularized extracellular matrix-based biomaterials for peripheral nerve repair and regeneration.</a> Current Neuropharmacology. 19 (12), 2152-2163 (2021).</li>
<li>Xia, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+cartilage+as+a+prospective+scaffold+for+cartilage+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+%26+Engineering+C-Materials+for+Biological+Applications%22%5BJournal%5D)">Decellularized cartilage as a prospective scaffold for cartilage repair.</a> Materials Science & Engineering C-Materials for Biological Applications. 101, 588-595 (2019).</li>
<li>Chen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Desktop-stereolithography+3D+printing+of+a+radially+oriented+extracellular+matrix%2Fmesenchymal+stem+cell+exosome+bioink+for+osteochondral+defect+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Desktop-stereolithography 3D printing of a radially oriented extracellular matrix/mesenchymal stem cell exosome bioink for osteochondral defect regeneration.</a> Theranostics. 9 (9), 2439-2459 (2019).</li>
<li>Saldin, L. T., Cramer, M. C., Velankar, S. S., White, L. J., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+hydrogels+from+decellularized+tissues%3A+Structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix hydrogels from decellularized tissues: Structure and function.</a> Acta Biomaterialia. 49, 1-15 (2017).</li>
<li>Yuan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+delivery+in+tissue-specific+hydrogel+enabled+meniscal+repair+in+an+orthotopic+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Stem cell delivery in tissue-specific hydrogel enabled meniscal repair in an orthotopic rat model.</a> Biomaterials. 132, 59-71 (2017).</li>
<li>Zheng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intensified+stiffness+and+photodynamic+provocation+in+a+collagen-based+composite+hydrogel+drive+chondrogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Science%22%5BJournal%5D)">Intensified stiffness and photodynamic provocation in a collagen-based composite hydrogel drive chondrogenesis.</a> Advanced Science. 6 (16), 1900099(2019).</li>
<li>Young, J. L., Holle, A. W., Spatz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P.Nanoscale+and+mechanical+properties+of+the+physiological+cell-ECM+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">P.Nanoscale and mechanical properties of the physiological cell-ECM microenvironment.</a> Experimental Cell Research. 343 (1), 3-6 (2016).</li>
<li>Abdolghafoorian, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+heart+valve+decellularization+on+xenograft+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Clinical+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Effect of heart valve decellularization on xenograft rejection.</a> Experimental and Clinical Transplantation. 15 (3), 329-336 (2017).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Bu protokol, kıkırdak dokusunun doğal ECM'sini yakından taklit eden hücreden arındırılmış kıkırdak hücre dışı matriks hidrojellerinin hazırlanması için sistematik bir yaklaşım sağlar. Protokol, ECM'nin yapısını ve bileşimini korurken hücresel materyali uzaklaştırmak için fiziksel, kimyasal ve enzimatik bozulmanın bir kombinasyonunu içerir. Protokolün kritik adımları, hücreden arındırma süresinin ve yöntemlerinin ayarlanmasını ve tam hücreden arındırmanın sağlanmasını içerir.
Doku mühendisliği ...

Kıkırdak doku mühendisliği, hasarlı veya hastalıklı kıkırdak dokusunu yeniden oluşturmayı amaçlayan hızla gelişen bir alandır1. Bu alandaki en önemli zorluklardan biri, kıkırdak2 üretmekten sorumlu hücreler olan kondrositlerin büyümesini ve farklılaşmasını destekleyebilecek biyomimetik iskelelerin geliştirilmesidir. Kıkırdak dokusunun ECM'si, kondrositlerin davranışını düzenlemede kritik bir rol oynar. DC-ECM, doku mühendisliği uygulamaları için etkili bir iskeledir3.
Kıkırdak dokusundan DC-ECM üretmek için kimyasal, enzimatik ve fiziksel yöntemler dahil olmak üzere bir dizi teknik geliştirilmiştir. Bununla birlikte, bu yöntemler genellikle yeterince biyomimetik olmayan ECM hidrojellerinin üretilmesine neden olur ve bu da doku mühendisliği uygulamalarında kullanım potansiyellerini sınırlar 4,5. Bu nedenle, DC-ECM hidrojelleri üretmek için daha etkili bir yönteme ihtiyaç vardır.
Bu tekniğin geliştirilmesi önemlidir, çünkü doku yenilenmesini ve onarımını destekleyebilecek biyomimetik iskeleler oluşturmak için yeni bir yaklaşım sağlayarak doku mühendisliği alanını ilerletebilir. Ayrıca, bu teknik, diğer dokulardan ECM hidrojelleri üretmek için kolayca uyarlanabilir ve böylece potansiyel uygulamalarını genişletebilir.
Daha geniş literatürde, DC-ECM'nin doku mühendisliği uygulamaları için bir iskele olarak kullanılmasına artan bir ilgi vardır6. Çok sayıda çalışma, DC-ECM hidrojellerinin kıkırdak 7,8 dahil olmak üzere çeşitli dokularda hücre büyümesini ve farklılaşmasını teşvik etmedeki etkinliğini göstermiştir. Bu nedenle, kıkırdak dokusunun doğal ECM'sini yakından taklit eden DC-ECM hidrojellerinin üretilmesi için bir protokolün geliştirilmesi, alana önemli bir katkıdır.
Bu yazıda sunulan protokol, kıkırdak dokusunun doğal ECM'sini yakından taklit eden DC-ECM hidrojellerinin üretilmesi için yeni bir yöntem sağlayarak bu ihtiyacı karşılamaktadır. Protokol, kıkırdak dokusunun hücrelerden arındırılmasını, elde edilen ECM'nin izole edilmesini ve ECM'nin biyouyumlu bir polimerle çapraz bağlanmasıyla bir hidrojel oluşturulmasını içerir. Elde edilen hidrojel, kondrositlerin büyümesini ve farklılaşmasını desteklemede umut verici sonuçlar göstermiştir.

<table><tbody><tr><td>1 M Tris-HCl, pH 7.6</td><td>Beyotime</td><td>ST776-100 mL</td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl, pH 8.0</td><td>Beyotime</td><td>ST780-500 mL-80</td><td></td></tr> <tr><td>& derece; C Dondurucu</td><td>Eppendorf</td><td>F440340034</td><td></td></tr><tr><td>Deoksiribonükleaz</td><td>Aladdin</td><td>D128600-80KU</td><td></td></tr><tr><td>DNEasy Kan & Doku Kiti</td><td>Qiagen</td><td>No. 69506</td><td></td></tr><tr><td>GAG kolorimetrik kantitatif tespit kiti</td><td>Shanghai Haling</td><td>HL19236.2</td><td></td></tr><tr><td>HCP-2 kurutucu ve nbsp;</td><td>Hitachi</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop8000</td><td>Thermo Fisher</td> N<td>/A</td><td>Spektrofotometre</td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>Gibco</td><td>70011044</td><td></td></tr><tr><td>Ribonükleaz</td><td>Aladdin</td><td>R341325-100 mg</td><td></td></tr><tr><td>Sigma500</td><td>ZIESS</td><td>N/A</td><td>Taramalı elektron mikroskobu</td></tr><tr><td>Spectra S</td><td>Thermo Fisher</td><td>N/A</td><td>Transmisyon elektron mikroskobu</td></tr><tr><td>Paslanmaz çelik elek</td><td>SHXB-Z-1</td><td>Şangay Xinbu</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Beyotime</td><td>P0096-500 mL</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin ve nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15050065</td><td></td></tr><tr><td>Ultraviyole lamba</td><td>Omnicure 2000</td><td>N / A</td> B2 Vitamini <td></td></tr><tr><td></td><td>Gibco</td><td>R4500-5G</td><td></td></tr><tr><td>Vorteks karıştırıcı</td><td>Şangay Qiasen</td><td>78HW-1 &nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

decellularize kıkırdak hücre dışı matriks hidrojellerinin sentezi

Synthesis of Decellularized Cartilage Extracellular Matrix Hydrogels

Hücresellikten arındırılmış kıkırdak hücre dışı matriks (DC-ECM) hidrojelleri, biyouyumlulukları ve doğal doku özelliklerini taklit etme yetenekleri nedeniyle doku mühendisliği ve rejeneratif tıp için umut verici biyomalzemelerdir. Bu protokol, kıkırdak dokusunun doğal ECM'sini yakından taklit eden DC-ECM hidrojelleri üretmeyi amaçlamaktadır. Protokol, ECM'nin yapısını ve bileşimini korurken hücresel materyali uzaklaştırmak için fiziksel ve kimyasal bozulma ve enzimatik sindirimin bir kombinasyonunu içerir. DC-ECM, stabil ve biyolojik olarak aktif bir hidrojel oluşturmak için kimyasal bir ajan kullanılarak çapraz bağlanır. DC-ECM hidrojel, mükemmel biyolojik aktiviteye, uzamsal yapıya ve biyolojik indüksiyon işlevine ve ayrıca düşük immünojenisiteye sahiptir. Bu özellikler, hücre yapışmasını, çoğalmasını, farklılaşmasını ve göçünü teşvik etmede ve hücre büyümesi için üstün bir mikro ortam oluşturmada faydalıdır. Bu protokol, doku mühendisliği alanındaki araştırmacılar ve klinisyenler için değerli bir kaynak sağlar. Biyomimetik hidrojeller, kıkırdak onarımı ve rejenerasyonu için etkili doku mühendisliği stratejilerinin geliştirilmesini potansiyel olarak artırabilir.

Daha iyi bir DC-ECM kıkırdak hidrojeli hazırlamak için önceki literatürü inceledik ve gözden geçirdik ve çeşitli hücreden arındırma protokollerini hücreden arındırma oranı, immünojenisite ve mekanik işlevsellik açısından karşılaştırdık9.
Bu temelde, DC-ECM kıkırdak hidrojelini hazırladık ve radyal yönelimli ekstraktif matriks/mezenkimal kök hücre eksozom biyo-mürekkebinin osteokondral defektlerin tedavisinde etkisini araştırdık. Sonuçlar, DC-ECM kıkırdak hidrojelinin dü...

Bu makale, hücresellikten arındırılmış kıkırdak hücre dışı matriks (DC-ECM) hidrojellerinin sentezi için yeni bir yöntem sunmaktadır. DC-ECM hidrojelleri mükemmel biyouyumluluğa sahiptir ve hücre büyümesi için üstün bir mikro ortam sağlar. Bu nedenle, ideal hücre iskeleleri ve biyolojik dağıtım sistemleri olabilirler.

Decellularize Kıkırdak Hücre Dışı Matriks Hidrojellerinin Sentezi

Decellularized cartilage extracellular matrix (DC-ECM) hydrogels are promising biomaterials for tissue engineering and regenerative medicine due to their ...

Protokolümüz, kıkırdak dokusunun doğasına çok benzeyen hidrojellerde hastalık oluşturulmasını sağladığı için önemlidir. Bu tekniğin ana avantajı, mekansal yapıda belirgin biyolojik aktiviteye, düşük immünojenisiteye ve biyolojik endüstriyel fonksiyona sahip hidrojellerde hastalık üretme yeteneğidir. Başlamak için, toplanan kıkırdağı bir neşter kullanarak bir ila iki milimetre küp büyüklüğünde parçalar halinde doğrayın.50 milimetrelik bir santrifüj tüpünde, 20 mililitre hipotonik Tris-hidroklorür tamponuna 20 gram kıyılmış kıkırdak daldırın. Tüpü üç saat boyunca 80 santigrat derecede ve ardından üç saat boyunca 37 santigrat derecede fırına koyun. Santrifüj tüpünü 1000 RPM'de 30 saniye vorteksleyin.Ardından, 50 mililitrelik bir santrifüj tüpüne yerleştirilmiş plastik bir elek kullanarak hücrelerden arındırılmış kıkırdağı süzün. Kıkırdağı toplamadan önce steril PBS ile üç kez yıkayın. Toplanan kıkırdağa 10 mililitre tripsin çözeltisi ekleyin ve her dört saatte bir tripsin değiştirerek 24 saat boyunca 37 santigrat derecede bir çalkalayıcı üzerinde inkübe edin.Süspansiyonu filtreledikten sonra, tripsinizli kıkırdağı hipertonik tampon ile yıkayın. Kıkırdak korunduktan sonra, 10 mililitre nükleaz çözeltisi ekleyin ve dört saat boyunca 37 santigrat derecede bir çalkalayıcıya koyun. Steril PBS ile yıkadıktan sonra, kıkırdağa hipertonik Tris-hidroklorür çözeltisi ekleyin ve gösterildiği gibi çalkalayıcıya yerleştirin.Steril PBS ile yıkandıktan sonra, dokuyu 24 saat boyunca% 1 Triton X-100 çözeltisine batırın. Triton X-100'ü çıkardıktan sonra, hücreden arındırılmış kıkırdağı üç gün boyunca damıtılmış suyla durulayın ve suyu her 12 saatte bir değiştirin. Üç gün sonra, kıkırdağa perasetik asit çözeltisi ekleyin ve dört saat bekletin.PBS ile yıkandıktan sonra, daha önce gösterildiği gibi plastik bir elek kullanarak kıkırdağı toplayın. Sıvı nitrojen kullanarak, hücrelerden arındırılmış kıkırdak tozu hazırlayın. İki gram kıkırdak tozuna 80 mililitre 0.5 molar asetik asit ve 20 miligram pepsin ekleyin ve karışımı 37 santigrat derecede 24 saat sindirin.Sindirimden sonra, süspansiyonu 400 G'de 10 dakika santrifüjleyin ve şimdi DC-ECM çözeltisi olarak adlandırılan süpernatanı toplayın DC-ECM çözeltisini saklamak için, altı oyuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna bir mililitre çözelti ekleyin ve bir liyofilizatöre yerleştirin. Çözelti dondurularak kurutulduktan sonra bir santrifüj tüpüne aktarın. Bir hidrojel oluşturmak için, 20 miligram dondurularak kurutulmuş DC-ECM çözeltisini bir mililitre steril damıtılmış suda çözün.Girdap haline getirildikten sonra, DC-ECM çözeltisine bir miligram B2 vitamini ekleyin. İnkübasyondan sonra, üç dakika boyunca UV ışığı ile ışınlayın. 20 miligram DC-ECM kıkırdak tozuna tampon GTL ve proteinaz K ekleyin ve vorteks salınımı kullanarak iyice karıştırın.Kıkırdağın tamamen çözünmesi için, karışımı dört saat boyunca 56 santigrat derecede inkübe edin. Girdap haline getirildikten sonra, 200 mikrolitre tampon GTL ve ardından susuz etanol ekleyin. Girdaptan sonra, numuneyi dört santigrat derecede bir dakika boyunca 6000 G'de santrifüjleyin.Daha sonra DNA'yı el yazmasında açıklandığı gibi toplayın ve ölçün. Kollajeni analiz etmek için, beş miligram DC-ECM tozunu hidroklorik asit içinde 100 santigrat derecede 20 dakika asitleştirin. Daha sonra beş mililitre altı molar sodyum hidroksit çözeltisi ile nötralize edin.Hidroksiprolin standardına karşı 570 nanometrede absorbans kullanarak nötralize edilmiş numunenin hidroksiprolin içeriğini hesaplayın. Karıştırdıktan sonra 200 miligram DC-ECM tozuna 500 mikrolitre reaktif A ekleyin. Numuneyi dört santigrat derecede 16 saat inkübe edin.Santrifüjlendikten sonra, 50 mikrolitre numune çözeltisi toplayın ve 50 mikrolitre reaktif B, ardından reaktif C ekleyin.Numuneyi 10 dakika inkübe ettikten sonra, 750 mikrolitre reaktif D ekleyin ve karanlıkta 30 dakika inkübe edin. Santrifüjlemeden sonra, pelete bir mikrolitre reaktif E ekleyin ve santrifüjlemeden önce iyice karıştırın. Ardından, GAG içeriği ölçümünden önce numuneyi ayırın.Hazırlanan DC-ECM kıkırdağında DNA içeriği önemli ölçüde ortadan kaldırıldı. Bununla birlikte, doğal kıkırdak ile karşılaştırıldığında kollajen ve GAG içeriği korunmuştur. SEM ve TEM analizleri, hazırlanan DC-ECM'nin ultra yapısını ortaya koymuştur.Ters çevrilmiş tüpte hazırlanan hidrojel dibe akmadı, böylece jelleşme gösterdi. Ayrıca, sadece DC-ECM çözeltisi ile karşılaştırıldığında, B2 vitamini ilavesi, DC-ECM hidrojel oluşumu sırasında indüklenen çapraz bağlanma nedeniyle jelleşme süresini azalttı. DC-ECM hidrojel viskozitesi, çözelti viskozitesinden daha yüksekti ve artan kesme hızları, çözelti viskozitesini azalttı.Ayrıca, DC-ECM çözeltisinin ve hidrojelin yüksek depolama modülü, her ikisinin de sıvı özelliklerden ziyade jel özelliklere sahip olduğunu gösterdi. SEM analizi, DC-ECM çözeltisinin gözenek boyutunun, çapraz bağlama ve dondurarak kurutmadan sonra hidrojel formunda önemli ölçüde azaldığını göstermiştir. Protokol, ECM'nin yapısını ve konuşmasını korurken hücresel materyali uzaklaştırmak için fiziksel ve kimyasal bozulma ve enzimatik sindirimin bir kombinasyonunu içerir.

synthesis-of-decellularized-cartilage-extracellular-matrix-hydrogels

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Kondrositler tarafından kıkırdak ekstraselüler matriks biyosentezi mekanik uyaranlara uygulama etkilenebilir. Bu yöntem, 3D yapıları ve kondrosit metabolizması bağlı değişikliklerin değerlendirilmesi kapsüllü kondrositler dinamik basınç suşların uygulama tekniği anlatılmaktadır.

Kondrosit-agaroz Hidrojeller mekanik stimülasyonu

Bir bioprinter bir kurban kalıp dayalı desenli hidrojeller oluşturmak için kullanıldı. Poloksamer kalıp ikinci bir hidrojel ile dolduruldu ve daha sonra üçüncü bir hidrojel ile doldurulmuş boşluklar bırakarak elüt edilmiştir. Bu yöntem Biyopolimerlerin karmaşık mimarileri oluşturmak için hızlı sağım ve poloksamerin iyi baskı kullanır.

Desenli ve Yaratılış 3D Hücre Kültürü için iki bileşenli Hidrojeller için Thermoresponsive Ters Kalıpları Baskı

Kıkırdak onarımı, karşılanmamış bir tıbbi zorluğu temsil eder ve insan eklem kıkırdağını tasarlamak için hücre temelli yaklaşımlar umut verici bir çözümdür. Burada, insan eklem kondrositlerinin genişlemesi ve olgunlaşması için ideal bir araç olarak üç boyutlu (3D) biyomimetik hidrojelleri tanımlıyoruz.

Eklem Kondrosit Kültür ve Kıkırdak Üretimi için 3D hidrojel iskeleleri

Bu akciğer hücre dışı matristen 3 boyutlu hücre kültürü iskele oluşturmak için bir yöntemdir. Bozulmamış akciğer üç boyutlu hücrelerin büyümesini destekleyen hidrojeller olarak işlenir.

3D Hücre Kültürü için Pulmoner Ekstrasellüler Matrix Ayarlanabilir Hidrojellerinin

Bu iletişim kuralı tam decellularization insan Miyokardiyum, hücre dışı matriks bileşenlerinin koruma sırasında açıklar. Microparticles ve cytoprotective kendi kendine montaj hidrojel üretiminde hücre dışı matriks sonuçlarının daha fazla alay.

İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel Vitro ve In Vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi

Burada bir iletişim kuralı yerel böbrek hücre dışı matriks (ECM) yapısal ve biyokimyasal kompozisyonu tutulacağı bir böbrek korteks ekstraselüler matrisi elde edilen hidrojel imal etmek mevcut. İmalat süreci ve uygulamaları açıklanmıştır. Son olarak, böbrek özel cep ve doku rejenerasyonu ve Biyomühendislik desteklemek için bu hidrojel kullanarak bir bakış açısı ele alınmıştır.

Bir böbrek korteks ekstraselüler matrisi elde edilen hidrojel imalatı

Decellularized kıkırdak elde edilen iskele osteokondral doku yeniden oluşturmak için kılavuz kıkırdak onarım için bir iskele ve bir araç olarak kullanılabilir. Bu yazıda ayrıntılı decellularization işlemini açıklar ve bu iskele tüp bebek ayarları'nda kullanmak için öneriler sunar.

Decellularized matris kıkırdak elde edilen iskele imalatı

Bu iletişim kuralı bir rejeneratif iskele implant parçası olarak preklinik değerlendirme için uygun olan yara onarım için hedeflenen tüm hücre dışı matriks elyaf üretim hedeftir. Bu iplikler fibroblastlar hollow fiber membranlar üzerinde kültür tarafından üretilen ve membranlar dağılması tarafından ayıklanır.

Hücre dışı matriks liflerinin kurban Hollow Fiber membran hücre kültürü ile üretim

Mezenkimal kök hücrelerden üretilen yapay kıkırdak dokusunun implante edilmesiyle endokondral kemikleşme yoluyla kemik tedavisi, geleneksel tedavilerin dezavantajlarını aşma potansiyeline sahiptir. Hyaluronik asit hidrojelleri, in vivo kaynaşmış greftler arasında vaskülarizasyon ile entegre kemik oluşturmanın yanı sıra homojen olarak farklılaşmış kıkırdak greftlerinin ölçeklendirilmesinde etkilidir.

Mezenkimal Kök Hücreler Kullanılarak İn Vivo Endokondral Ossifikasyon Yoluyla Entegre Kemik Oluşumu

Protokol, doğal sığır pulmoner dokularına uygulanan iki farklı hücre dışı bırakma metodolojisini açıklığa kavuşturur ve bunların ilgili karakterizasyonlarının kapsamlı bir açıklamasını sağlar.

Dehücreli Akciğer Ekstraselüler Matriks Hidrojellerinin Geliştirilmesi ve Karakterizasyonu

Keşfedin, DC-ECM hidrojellerinin sentezi için fiziksel ve kimyasal yöntemlerle hücre dışı matris hazırlama tekniğini. Bu yöntem, doku mühendisliği ve rejeneratif tıpta düşük immünojenite ile biyouyumlu iskeleler oluşturur.

Decellularize Kıkırdak Hücre Dışı Matriks Hidrojellerinin Sentezi

Daha fazla video keşfet