Name: Bir Makrofaj-Tümör Sferoid Ko-İnvazyon Testi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-01-24T13:50:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Keşfedin, makrofaj-tümör sferoid ko-invazyon testi ile 3D kollajen matriste kanser ve bağışıklık hücreleri etkileşimini nasıl analiz edebilirsiniz. Bu yöntem metastaz mekanizmalarını anlamak için değerli bilgiler sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<meta charset="utf8"></head><body>Makrofaj-Tümör Sferoid Etkileşimlerinin 3 Boyutlu Kollajen Matriks Kurulumunda İncelenmesi

<ol><li>Lendeckel, U., Venz, S., Wolke, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophages%3A+shapes+and+functions%5BTitle%5D)+AND+%22ChemTexts%22%5BJournal%5D)">Macrophages: shapes and functions.</a> ChemTexts. 8 (2), 12(2022).</li>
<li>Dallavalasa, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+tumor+associated+macrophages+%28TAMs%29+in+cancer+progression%2C+chemoresistance%2C+angiogenesis+and+metastasis+-+Current+status%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Med+Chem%22%5BJournal%5D)">The role of tumor associated macrophages (TAMs) in cancer progression, chemoresistance, angiogenesis and metastasis - Current status.</a> Curr Med Chem. 28 (39), 8203-8236 (2021).</li>
<li>Pan, Y., Yu, Y., Wang, X., Zhang, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-associated+macrophages+in+tumor+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Immunol%22%5BJournal%5D)">Tumor-associated macrophages in tumor immunity.</a> Front Immunol. 11, 583084(2020).</li>
<li>Boutilier, A. J., Elsawa, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+Polarization+States+in+the+Tumor+Microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Macrophage Polarization States in the Tumor Microenvironment.</a> Int J Mol Sci. 22 (13), 6995(2021).</li>
<li>Wenzel, E. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intercellular+transfer+of+cancer+cell+invasiveness+via+endosome-mediated+protease+shedding%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Intercellular transfer of cancer cell invasiveness via endosome-mediated protease shedding.</a> Nat Commun. 15 (1), 1277(2024).</li>
<li>Anfray, C., Ummarino, A., Calvo, A., Allavena, P., Torres Andon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+tumor-associated+macrophages+in+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of tumor-associated macrophages in the tumor microenvironment.</a> Methods Mol Biol. 2614, 93-108 (2023).</li>
<li>Hey, S., Wiesner, C., Barcelona, B., Linder, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((KIF16B+drives+MT1-MMP+recycling+in+macrophages+and+promotes+co-invasion+of+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Life+Sci+Alliance%22%5BJournal%5D)">KIF16B drives MT1-MMP recycling in macrophages and promotes co-invasion of cancer cells.</a> Life Sci Alliance. 6 (11), e202302158(2023).</li>
<li>Wu, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasticity+of+cancer+cell+invasion%3A+Patterns+and+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Transl+Oncol%22%5BJournal%5D)">Plasticity of cancer cell invasion: Patterns and mechanisms.</a> Transl Oncol. 14 (1), 100899(2021).</li>
<li>Shi, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+insights+and+therapeutic+intervention+of+tumor+metastasis%3A+latest+developments+and+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Signal+Transduct+Target+Ther%22%5BJournal%5D)">Mechanism insights and therapeutic intervention of tumor metastasis: latest developments and perspectives.</a> Signal Transduct Target Ther. 9 (1), 192(2024).</li>
<li>Li, G. N., Livi, L. L., Gourd, C. M., Deweerd, E. S., Hoffman-Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+and+morphological+changes+of+neuroblastoma+cells+in+response+to+three-dimensional+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Genomic and morphological changes of neuroblastoma cells in response to three-dimensional matrices.</a> Tissue Eng. 13 (5), 1035-1047 (2007).</li>
<li>Lin, Y. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+cancer+cell+invasion+and+T-cell+cytotoxicity+in+3D+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Monitoring cancer cell invasion and T-cell cytotoxicity in 3D culture.</a> J Vis Exp. 160, e61392(2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>15 &mikro;-Slayt Anjiyogenez&nbsp;</td><td>ibidi</td><td>81506</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Invitrogen</td><td>00-4555-56</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 Phalloidin&nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A12380</td><td></td></tr><tr><td>CD14 Mikro Boncuklar</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-050-201</td><td></td></tr><tr><td>CO2 İnkübatör</td><td>Bağlayıcı</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kollajen I Sıçan Kuyruğu&nbsp;</td><td>Corning</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>AppliChem</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM (1x) + GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>31966-021</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Anprotec</td><td>MS01Y71003</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Bio& Hücre</td><td>FBS'si. S 0613</td><td></td></tr><tr><td>Fiji&nbsp;</td><td>NIH</td><td>ImageJ 2 Sürümü: 2.3.0/1.53s</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehit %37 &nbsp;</td><td>252549-500ml</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td></tr><tr><td>H1299-GFP hücre hattı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>İnsan serum albümini</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5843</td><td></td></tr><tr><td>Leica TCS SP8 X</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>l-glutamin ve nbsp;</td><td>Gibco</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Lenfosit Ayırma Ortamı (LSM) 1077</td><td>PromoCell</td><td>C-44010</td><td></td></tr><tr><td>MS Sütunları</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td><td></td></tr><tr><td>esansiyel olmayan amino asitler ve nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11140050</td><td></td></tr><tr><td>Kalem Strep</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>81275-034</td><td></td></tr><tr><td>TC-Platte 96 Kuyusu, BIOFLOAT, Ar-Ge</td><td>SARSTEDT</td><td>83,39,25,400</td><td></td></tr><tr><td>VORTEKS-GEN 2&nbsp;</td><td>Bilimsel Endüstriler</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

bir makrofaj-tümör sferoid ko-İnvazyon testi

A Macrophage-Tumor Spheroid Co-Invasion Assay

Şekil 1, bir kollajen I matrisinde inkübasyonun ilgili günlerinde görüntülenen bir H1299-GFP sferoidini göstermektedir. 0. günde çekilen ilgili bir parlak alan görüntüsü, aynı zamanda sferoid ile birlikte kültürlenmiş birincil insan makrofajlarını da göstermektedir. Deneyin 3. gününde kaydedilen temsili görüntü, işlendikten sonra büyütülür. İstilacı hücrelerin sayısı, toplu istila bölgeleri ve küresel çevre dahil olmak üzere analiz edilebilecek farklı parametreler belirtilmiştir. Dahil edilen tablo, bu görüntüden elde edilen sonuçları göstermektedir. Algılanan sinyallerin sayısı görsel izlenimle eşleşir. Merkezi sferoidde herhangi bir bozulma görülmez, bu da sferoid döküntülerinden türetilen hücrelerden ziyade gerçek bireysel kanser hücresi istilasını gösterir. Farklı sferoidlerin ve koşulların sonuçları artık istatistiksel analiz yoluyla karşılaştırılabilir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67374/67374fig01.jpg"> 
Şekil 1: Temsili sonuçlar. (Üst panel) H1299-GFP sferoidi, bir kollajen I matrisinde inkübasyonun 0. gününde, 1. gününde, 2. gününde ve 3. gününde görüntülendi. (Orta sol panel) Birlikte kültürlenmiş birincil insan makrofajlarını gösteren sferoidin parlak alan görüntüsü. (Orta sağ panel) 3. günde elde edilen, işlendikten sonra büyütülen ve analiz edilebilecek farklı parametreleri gösteren temsili bir görüntü (kırmızı küresel çevre; daha iyi görselleştirme için manuel olarak izlenir). (Alt panel) Sağ orta paneldeki görüntüden elde edilen sonuçlar. Not: Kanser hücresi davranışını aydınlatmak için sadece GFP kanalı kaydedildiği için makrofajlar görünmez. Ölçek çubukları: 100 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67374/67374fig01large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Bir Makrofaj-Tümör Sferoid Ko-İnvazyon Testi

The interaction of immune and cancer cells and their respective impact on metastasis represents an important aspect of cancer research. So far, only a few ...

Metastaz sırasında nasıl etkileşime girdiklerini daha iyi anlamak için kanser ve bağışıklık hücrelerinin etkileşimini araştırmak istiyoruz. Çoğu durumda, in vivo modeller, bağışıklık sistemi bağlamında kanser hücrelerinin 3D istilası ile ilgili araştırma sorularını takip etmenin rutin yoludur veya sistemin izole edilmiş bileşenleri odaktadır. İn vivo durumun karmaşıklığını taklit eden, ancak mikroskop altında belirli çevresel özelliklerin daha doğrudan manipüle edilmesine izin veren hücresel davranışın analizine izin veren bir yöntem.Değiştirilmemiş kanser hücrelerinin, motor protein KIF16B için tükenmiş makrofajlarla birlikte yetiştirildiklerinde 3D kollajen I matrisindeki invazyonu azaltacağını gösterdik. Bu, tümör mikroçevresindeki makrofaj yüzey proteinlerinin KIF16B güdümlü geri dönüşümünün rolüne işaret etmektedir. Yöntemimizi, makrofaj kanser hücresi bağlamının arayüzünde matris bozulmasının görselleştirilmesine izin verecek şekilde geliştirmeye devam etmek ve böylece bozunma ve adeziv mekanizmaların daha iyi anlaşılmasını sağlamak istiyoruz.Başlamak için, H1299 GFP hücrelerini, 25 santimetre karelik bir hücre kültürü şişesinde 37 santigrat derecede %5 karbondioksit ile %80 birleşmeye ulaşana kadar bir kanser hücresi ortamı ile yetiştirin. Hücreleri DPBS ile bir kez yıkayın ve hücreler ayrılana kadar iki ila üç dakika boyunca bir mililitre Tripsin-EDTA ekleyin. İki mililitre kanser hücresi ortamı ekleyerek enzimatik reaksiyonu durdurun.Daha sonra, ayrılmış hücre süspansiyonunu 15 mililitrelik bir tüpte 245 G'de beş dakika santrifüjleyin. Peleti beş mililitre DPBS ile yıkamadan önce tripsin içeren süpernatant çözeltisini çıkarın. Santrifüjlemeden sonra, peleti beş mililitre kanser hücresi ortamında yeniden askıya alın.Bir Neubauer odası kullanarak hücreleri sayın. 8.000 hücreyi, 25 mikrolitre kanser hücresi ortamının son hacminde 96 oyuklu ultra düşük yapışma plakasına aktarın. Hücreleri üç gün boyunca 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksitte inkübe edin.Üç gün sonra, sferoidleri mikroskop altında homojenlik açısından kontrol edin. İnsan kan örneğini topladıktan sonra, 20 mililitre kanı bir transfüzyon torbasından 50 mililitrelik bir reaksiyon tüpüne aktarın. 50 mililitrelik yeni bir tüpe 15 mililitre lenfosit ayırma ortamı ekleyin.20 mililitre kanı karıştırmadan lenfosit ayırma ortamı içeren tüpe dikkatlice aktarın ve karışımı dört santigrat derecede 30 dakika boyunca 450 G'de santrifüjleyin. Santrifüjleme sırasında, 50 mililitrelik yeni bir tüpe 10 mililitre soğuk RPMI 1640 Medium ekleyin. Santrifüjlemeden sonra, yoğun beyaz fazı kan içeren tüpten hazırlanan RPMI içeren tüpe aktarın ve soğuk RPMI ile 50 mililitreye kadar doldurun.Süspansiyonu 450 G'de dört santigrat derecede 10 dakika santrifüjleyin ve süpernatanı atın. Peleti 10 mililitre soğuk RPM'de tekrar askıya alın ve RPMI 1640 ile 50 mililitreye kadar doldurun. Karışımı tekrar santrifüjleyin ve peleti 50 mililitre RPM'de yeniden askıya alın.Yine, numuneyi santrifüjleyin ve hücre peletini 1.5 mililitre soğuk monosit tamponunda yeniden süspanse edin. Daha sonra, hücre süspansiyonuna 250 mikrolitre anti CD14 MicroBeads ekleyin ve buz üzerinde 15 dakika inkübe edin. İnkübasyon sırasında, manyetik bir ayırıcı rafa bir filtre takarak bir ayırma sütunu hazırlayın.Dengeleme için kolona 900 mikrolitre monosit tamponu ekleyin. İnkübasyondan sonra, hücre süspansiyonunu filtrenin üzerine dökün ve yerçekimi ile bir atık tüpe akmasına izin verin. Manyetik boncuklara bağlı hücreleri içeren sütunu yıkamak için bir mililitre monosit tamponu ekleyin.Kolonun altındaki atık tüpünü, 20 mililitre RPMI içeren 50 mililitrelik yeni bir tüple değiştirin. Sütuna üç mililitre monosit tamponu ekleyin. Sütunu manyetik raftan çıkarın ve damgayı takın.Hücreleri hazırlanan 50 mililitrelik tüpe bastırın ve 30 mililitreye kadar RPMI ile doldurun. Işık mikroskobu altında bir Neubauer sayma odası kullanarak hücreleri sayın ve hücre sayısını rpmi ile mililitrede altı hücrenin kuvvetine iki kez 10 olarak ayarlayın. Altı oyuklu bir odanın her bir oyuğuna bir mililitre hücre süspansiyonu ekin ve% 5 karbondioksit ile 37 santigrat derecede iki ila dört saat inkübe edin.İnkübasyondan sonra, hücrelerin düzgün bir şekilde yapışıp yapışmadığını kontrol edin ve RPMI'yi 1,5 mililitre monomedium ile değiştirin. Monositler makrofajlara farklılaşana kadar altı güne kadar inkübasyona devam edin. Altı oyuklu bir plakada donör kan örneklerinden birincil insan makrofajları türetildikten sonra, 500 mikrolitre Accutase ekleyin ve makrofajları ayırmak için 40 dakika inkübe edin.Daha sonra 500 mikrolitre ortam ekleyin ve santrifüjleme için 15 mililitrelik bir santrifüj tüpüne aktarın. Daha sonra hücreleri bir kez iki mililitre DPBS ile yıkayın ve bir Neubauer odası ile sayın. İstenilen sayıda makrofajı 40 mikrolitre kollajen I karışımıyla seyreltin ve tüpü kısaca girdaplayın.Sferoidleri yıkamak için, 96 oyuklu bir plakanın kuyucuklarına 300 mikrolitre DPBS ekleyin. DPBS ile steroidi toplamak için kesik uçlu bir mililitre mavi pipet ucu kullanın. Steroid uca yerleştikten sonra, tümör steroidini yüzey gerilimi ile aktarmak için pipeti görüntüleme odasının altına kısa bir süre itin.Steroid ile aktarılan kalıntı DPBS'yi mümkün olduğunca çıkarın. Steroid içeren görüntüleme odasına hızlı bir şekilde 40 mikrolitre kollajen I makrofaj karışımı ekleyin. Kollajen karışımını tamamen polimerize etmek için plakayı nemli koşullar altında 37 santigrat derecede ve %5 karbondioksitte 30 dakika inkübe edin.Polimerizasyondan sonra, her bir oyuğa dikkatlice 25 mikrolitre kanser hücresi ortamı ekleyin ve üç gün boyunca inkübasyona devam edin. İstenilen zaman noktalarında bir lazer tarama mikroskobu kullanarak canlı numuneyi görüntüleyin. H1299 GFP küresel alanı, istilanın üçüncü gününde 40.307 mikrometre kare olarak ölçülürken, küresel çevre 1700.17 mikrometre olarak bulundu ve bu da zaman içinde büyümeyi gösterdi.Sferoidden kanser hücrelerinin toplu istilası gözlendi. Bireysel kanser hücresi istilası için bir gösterge olarak hizmet eden 51 izole parçacık tanımlandı. Küre, 1.10'luk bir en boy oranını ve 0.18'lik bir daireselliği korudu ve düşük deformasyon gösterdi.

a-macrophage-tumor-spheroid-co-invasion-assay

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kanser Araştırmaları

Kantitatif büyüme faktörü (TGF)-β indüklenen 3 boyutlu kolajen jel işgali dönüştürme ölçmek için bir test tarif edilir. Bu testte, meme kanseri gelişiminin farklı aşamaları temsil hücre hatlarının MCF10A serisi, yararlanır. Bu yöntem, diğer hücre hatları ile birlikte kullanılmak üzere ve diğer potansiyel aktivatörleri veya işgali inhibitörleri araştırmak için kullanılmış olabilir kabul edilebilir.

TGF-β-kaynaklı Invasion Tedbir Sfero Testi

Bu videoda, üç boyutlu bir tümör sferoidi ve T hücresi ko-kültürü oluşturmak için bir yöntem gösterilmektedir. Tümör sferoidleri içeren mikrokuyucuklara sahip bir agaroz dökümü hazırlanır, ardından T hücrelerinin eklenmesi takip edilir. İnkübasyondan sonra, bu kurulum, kontrollü bir üç boyutlu ortamda T hücrelerinin tümör sferoidleri ile etkileşiminin incelenmesine izin verir.

Tümör Sferoidlerinde Sızan T Hücrelerinin Üç Boyutlu Ko-Kültür Modeli

Bu videoda, glioblastoma ve mikroglia hücreleri bir polimer matris çözeltisi ile karıştırılır ve hücreleri gömerek bir jelin oluştuğu gözenekli bir oda ekine aktarılır. Mikroglia, glioblastoma hücrelerinin gözenekli ek yoluyla göçünü uyararak, tümör hücresinin çevre dokuya istilasını taklit eder, Hücreler daha sonra sabitlenir ve daha fazla analiz için hazırlanır.

Mikroglia Glioblastoma Ko-Kültürü Kullanılarak Matris Tabanlı Tümör İnvazyonu Modeli

Çevredeki normal dokuların invazyonu, malign tümörlerin tanımlayıcı bir özelliğidir. Burada, bir dizi ileri insan kanseri modeliyle örneklenmiş doğal bir 3D biyomatrise basit, yarı otomatik bir mikro plaka istila testi sunuyoruz.

Üç boyutlu (3D) Tümör Sfero Yayılması deneyindeki

Bu yöntem, kanser hücresinin sferoidlerden çevredeki bir 3B matrise invazyonunu değerlendirir.  Sferoidler, asılı damla kültürü yöntemi ile üretilir ve daha sonra bazal membran malzemeleri ve tip I kollajenden oluşan bir matrise gömülür.  Spheroidlerin istilası daha sonra izlenir.

Bir Kanseri Hücre Sfero Testi 3D ortamda Invasion Değerlendirmek için

Kanserin kötü huylu davranışını anlamak, tümör hücrelerinin makrofajlar gibi tümör mikro çevresinin bileşenleriyle nasıl etkileşime girdiğine dair doğru modeller oluşturmayı gerektirir. Burada, tümörle ilişkili makrofajlar ve mikroglia ile glioblastoma hücre etkileşimini incelemek için iki yöntem tanımlanmıştır ve burada glioblastoma invazyonu üzerindeki etki değerlendirilmektedir.

Coculture Tahliller Glioblastoma Invasion Makrofaj ve Mikroglia Stimülasyon Eğitim için

Tümör mikroçevre kanser büyüme ve işgali önemli bir parçasıdır. Karsinom ilerlemesini taklit etmek için biyolojik olarak alakalı bir insan matrisine ihtiyaç vardır. Bu protokol, insan leiomyoma tabanlı matris uygulayarak in vitro üç boyutlu küroid invazyonu tahlil için bir gelişme tanıtır. Protokol aynı zamanda bilgisayar tabanlı bir hücre istilası analizi sunar.

Üç boyutlu Küroid Istilası tahlil tam ınsan tümör tabanlı matris

Bu makalede, makrofajlar çekmek için tümör hücrelerinden şartlık orta yeteneğini değerlendirmek için yararlı bir in vitro tahlil temsil eder.

In vitro assay tümör çalışma-macrophage etkileşim

Bu protokolün amacı, immünofluorescence, transkripsiyon gibi farklı analiz sistemlerinde ele alınabilir bir tümör toplu benzeri ortamda, kanserle ilişkili fibroblastların (CAFs) farklılaşmasını incelemek için bir 3D in vitro modeli kurmaktır analiz ve yaşam hücresi görüntüleme.

Kanser Ilişkili fibroblastlar farklılaşma ve Invazyon In vitro etütler için daha fizyolojik bir sistem olarak bir 3D Küroid modeli

Sunulan yaklaşım aynı anda 3D spheroid tahliller ve T-hücre sitotoksisite kanser hücresi invazyonu değerlendirir. Spheroids bir iskele-free agarose multi-microwell döküm oluşturulur. Eş-kültür ve tip I kollajen matris gömme kanser hücresi invazyonu ve T-hücre aracılı sitotoksisite izlemek için izin veren aynı cihaz içinde gerçekleştirilir.

3D Kültürde Kanser Hücre İstilası ve T-Hücre Sitotoksisitesi İzleme

Burada bir küresel görüntüleme cihazının üretimi için bir protokol sunulmaktadır. Bu cihaz kanser hücre sferoidlerinin dinamik veya boyuna floresan görüntülemesini sağlar. Protokol ayrıca kanser hücre invazyonunun analizi için basit bir görüntü işleme prosedürü sunmaktadır.

3D Sferoid Modelinde Zaman Çözülen Floresan Görüntüleme ve Kanser Hücre İstilasının Analizi

Keşfedin, makrofaj-tümör sferoid ko-invazyon testi ile 3D kollajen matriste kanser ve bağışıklık hücreleri etkileşimini nasıl analiz edebilirsiniz. Bu yöntem metastaz mekanizmalarını anlamak için değerli bilgiler sunar.

Bir Makrofaj-Tümör Sferoid Ko-İnvazyon Testi

Daha fazla video keşfet