August 28th, 2008
Bu video hazırlanması 2-dGuo tedavi timus kültürler gösterilmiştir reaggregate.
Merhaba, ben Andrea White ve Graham Anderson ve Eric Jenkinson'ın Birmingham Üniversitesi'ndeki MRC Bağışıklık Düzenleme Merkezi'ndeki laboratuvarındanım. Bugün, T hücresi farklılaşması sırasında meydana gelen karmaşık hücresel etkileşimleri incelemek için kullanılabilecek yeniden agrega timik organ kültürlerinin türetilmesi için bir protokol sunuyorum. Bu prosedüre başlamadan önce, embriyonik timik loblar izole edildi ve tüm lenfositleri çıkarmak için tedavi edildi.
Bu ayrı bir videoda görülebilir. Yabancı loblar daha sonra bir stromal hücre preparatı üretmek için ayrıştırılır. Ve son olarak, hücreler yeniden agregalı bir fmik organ kültürü oluşturmak üzere toplanır.
Hadi başlayalım. Kültürde beş ila yedi gün sonra, LO, sığ hücre preparatları için ayrıştırılmaya hazır olmalıdır, 0.8 mikrometre filtreleri RPMI 1640 artı% 10 FCS içeren bir Petri kabına daldırın, Forseps kullanarak, yüzmeyi bırakmayan lif eğimlerini nazikçe itin. Lobları 1.5 mil genişliğindeki bir orph tüpüne aktarmak için evcil hayvan başına bir mil kullanın.
Eend orph tüpü başına en fazla 50 lob öneriyoruz. Lobların birim yerçekimi altında tüpün dibine çökmesine izin verin ve ortamı çıkarın. Lobları bir mil PBS ile yıkayın ve ardından lobların tekrar dibe çökmesine izin verin.
Bunu toplam üç PBS yıkaması için tekrarlayın, son PBS yıkamasını çıkarın ve çözeltiye 600 mikrolitre% 0.25'lik bir trip ekleyin. Einor tüpünü 25 dakika boyunca 37 derecelik bir inkübatöre yerleştirin. Bir perpet üzerinde bir mil mavi uç kullanarak lobları 10 saniye boyunca nazikçe tritrate edin ve 20 dakika sonra inkübatöre geri koyun, lobları tamamen ayırmak için yukarı ve aşağı pipetleyin.
Yaklaşık 30 saniye sürmelidir Tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için, 400 mikrolitre buz gibi, RPMI 1640 artı% 10 FCS ekleyin, tripsin imp peletini bin RPM'de, dört derece C'de 10 dakika santrifüjleme ile nötralize edin, takviyeyi çıkarın ve peleti bir milde yeniden süspanse edin. İstenirse RPMI 1640 artı %10 FCS. Hücreleri sayın.
Tipik olarak, bir E 15 fibrözden başlayarak, dioksazin lobu başına yaklaşık 50.000 hücre bekleriz. Şimdi agrega fmic Corgan kültürlerini bir buçuk mil genişliğindeki bir orph tüpünde oluşturmaya hazırız. Karışık, taze hazırlanmış ince stromal hücreler.
Önceden seçilmiş CD ile birlikte dört pozitif CD, sekiz pozitif fibrosit. Stromal hücrelerin fibrositlere yaklaşık bire bir oranını öneriyoruz. Kullanacağınız hücre sayısı, mevcut hücre sayısına ve yapılacak deneylere bağlı olacaktır.
Toplamda en az yüz bin hücre ve en fazla 1,5 milyon hücre öneriyoruz. V agregalarının tekrarlanabilir olacak kadar büyük olmasını, ancak merkezin pelet hücrelerini 10 dakika boyunca bin RPM'de santrifüjleme yoluyla öldürecek kadar büyük olmamasını istiyorsunuz. Dört derece C'de organ kültürü filtresini dikkatlice monte edin.
Evcil hayvan başına bir P 200 ile sahnedeki tüm SUP natin'i çıkarın. Girdap hücresi peleti bir bulamaç oluşturmak için 10 saniye boyunca peletlenir. Hacim bir ila iki mikrolitre ağız civarında olmalıdır.
Bulamacı ince çekilmiş bir evcil hayvanın içine yerleştirin ve hücrelerin süspansiyonunu evcil hayvanın ucunda tutun. Diseksiyon mikroskobumuz altında, hücre bulamacını 0.8 mikrometrelik bir filtrenin merkezine dikkatlice ağızdan alın. İdeal olarak, hücreler bir ila iki milimetre çapında bir daireye ayakta duran bir damla olarak yerleştirilmelidir.
Bulamaç yayılmaya başlarsa, kalan hücreleri biriktirmeden önce bulamaçtaki sıvının postan akmasına izin verin. Çanağı plastik bir sandviç kutusuna koyun ve kapatın. Timus organ kültürlerine gelince ve bir inkübatöre bir kutu yerleştiriyoruz, kültürleri kültürden 18 saat sonra sağlam yapılara dönüştürüyoruz.
Dört ila beş günlük kültürden sonra, hem CD dört pozitif sekiz negatif hem de CD dört negatif sekiz pozitif olgun sit alt kümeleri oluşturacaklar. 50 ile başlayarak, dioksazin ile muamele edilmiş loblar, üç ila beş reagrega kültürü hazırlamak için yeterli stromal hücre vermelidir. Bu kültürler tipik olarak, forseps kullanılarak filtrelerden bozulmadan itilebilen tutarlı hücre höyükleri olarak görünür.
F epitel hücreleri tarafından pozitif seçilimin çalışılacağı yöntemi az önce tanımladık. Bu yöntem aynı zamanda dendritik hücre aracılı negatif seçimi incelemek için de kullanılabilir. Son olarak, TCR transgenik FIBROSITLER veya MHC Sınıf bir eksik veya MHC Sınıf iki eksik stromal hücreler kullanılarak.
Bu sistem, CD dört pozitif veya CD sekiz pozitif T hücresi seçimi ile ilgili ayrı araştırmalara izin verir. Bizi izlediğiniz için teşekkürler.
Bu video, 2-dGuo ile işlem görmüş reagrege timus kültürlerinin hazırlanmasını göstermektedir. Bu kültürler, T hücre farklılaşması ve hücresel etkileşimler çalışması için gereklidir.
Reaggregate thymus cultures enable precise dissection of stromal-hematopoietic interactions critical for T-cell lineage commitment and selection. This three-dimensional in vitro system supports mechanistic de-risking at the target validation stage by allowing controlled manipulation of cellular composition and microenvironment. The approach enhances predictive confidence for immunology-focused discovery portfolios by modeling key aspects of thymic selection and self/non-self discrimination.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling controlled, quantitative studies of thymic selection mechanisms in a physiologically relevant context.