Name: Post-Natal Mouse Serebellar Granül Nöron Progenitör Hücreler ve Nöronlar İzolasyon ve Kültür (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-16T00:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 4 s
Description: Öğrenin, postnatal farelerden serebellar granül nöron progenitör hücrelerini ve nöronlarını izole etme ve kültürleme yöntemini. Papain ile doku parçalama ve percoll gradyanı santrifüjasyonu kullanılarak glial hücrelerden ayrılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Barbara Carletti ve Anna Marie Kenney, paha biçilmez öneriler için teşekkür ederim. DK07328: HYL Eğitim Bursu &quot;Biyokimya ve Moleküler Biyoloji Hormonlar&quot; tarafından desteklenmektedir. NIH hibe 5R01 NS16951 (CAM) tarafından desteklenir.

Bölüm 1: (video gösterilmemiştir) (diseksiyon 1-2 gün önce) ayarlama <ol><li> Kültür ÇÖZÜMLER VE MEDYA HAZIRLAMA: <ul><li> 4X CMF-PBS-EDTA (kalsiyum ve magnezyum Percoll dilüsyonları için serbest fosfat tamponlu tuzlu-EDTA): litre başına 32 g NaCl, 1,2 g KCl, 8 g glukoz, 2 g NaH 2 PO 4, 1 g KH 2 PO eklemek 4, 8 ml% 2 NaHCO 3 hisse senedi, deiyonize / distile su 10 ml 1M EDTA (pH 8.0). 1 litre ve pH 7.4 &#39;e ses seviyesini ayarlayın. Sterilize Filtresi. </li><li> HBSS-GLİKOZ: kalsiyum ve magnezyum ücretsiz Hank Dengesi Tuz Çözeltisi (HBSS) ve steril filtre ekle glikoz (6 gram / litre). 500 ml, 4 ° C ile bir ay kadar saklanabilir. </li><li> Kültür MEDYA: serum orta (SFM) ve% 10 FBS orta. 48 ml Neurobasal A-Orta 500 ul 100X GlutaMAX I, 500 ul 100X Penisilin-Streptomisin (son 100 Birimleri penisilin ve 100 mg streptomisin), 6.25 ul 2 M KCl (250 nihai mcM) ekleyin. Split 2 alikotları 9 ml ve 40 ml. % 10 FBS ortamı hazırlamak için, 9 ml kısım ısı ile inaktive edilmiş FBS 1ml ekleyin. SFM hazırlamak için, 800, 40 ml kısım serum B-27 takviyesi ul ekleyin. Sterilize Filtre ve 2 hafta en fazla 4 ° C&#39;de saklamak. En iyi sonuç için her bir deney için taze medya. </li></ul></li><li> Percoll dilüsyonları HAZIRLAMA: <ul><li> Percoll bir sıvı olarak verilir ve kullanmadan önce asitlendirilmiş olmalıdır. PH 7.4 ulaşana kadar stok hazırlamak için 1-2 saatlik bir süre içinde Percoll bir çözüm için çok az 1N HCl biraz ekleyin. Çok hızlı HCl ekleme agrega Percoll neden olacaktır. 1N HCl yaklaşık 6.5ml Percoll her litre için ihtiyaç vardır. Sterilize Filtre ve 4 saklamak ° C </li><li> % 35 ve% 60 (hacim: hacim) Percoll seyreltme Percoll degrade adım olacaktır. Percoll stokunun 35 ya da 60 ml içeren 100 ml Percoll dilüsyonları hazırlayın, 4X CMF-PBS-EDTA ve damıtılmış 25 ml / H2O son hacim deiyonize. % 60 çözüm mavi toluidin birkaç damla ekleyin; arayüzü ve hücrelerin görselleştirmek yardımcı olacaktır. Sterilize Filtre ve 4 saklamak ° C </li><li> Yetersiz tamponlama işlem sırasında artan hücre ölümüne sebep olarak 4X CMF-PBS-EDTA, 3 aydan daha eski olmamalıdır. </li></ul></li><li> Lamelleri HAZIRLIĞI: Cam lamelleri (Carolina Biyolojik Supply Company en iyi), hafif ajitasyon oda sıcaklığında bir gece boyunca% 10 HCI ile yıkanır deonized / distile su ile iyice durulanması ve% 70 etanol içinde saklanan. Kullanmadan önce, tek lamelleri alev etanol buharlaşır kadar açık bir alev (Bunsen beki) üzerinde kısaca forseps ile tutarak sterilize. 12 mm cam lamelleri, 6-kuyu kültür plakaları 4-kuyu kültür plakaları ve 25 mm lamelleri yerleştirilebilir. </li><li> SUBSTRAT İLE KAPLAMA Kültür GEMİLER: mikroskop altında kolayca görünüm için cam slaytlar üzerine monte edilebilir beri immünofloresan boyama ya da ilaç tedavileri cam lamelleri için daha uygun. Çok sayıda hücre, protein veya RNA örnekleri toplamak için gerekli zaman, hücreler plastik kültür diseksiyonu önce dishes.The gece kültür olabilir, kültür için cam lamelleri ya da plastik tabaklar poli-D-lisin (500 mg / ml ile kaplı olmalıdır; ul / 6 kuyucuğu için 800 veya 350 ul / iyi 4-iyi plakaları için). 5 mg / ml stok solüsyonu poli-D-lizin -20 ° C, daha sonra, steril deonized / distile su ve kullanmadan önce steril süzülmüş hakkı seyreltilmiş saklanır. Kültür damarları 37 inkübe ° C gecede (veya en az 2 saat önce kaplama için) ve kaplama öncesi, steril deonized / distile su hakkı ile iki kez yıkanır. </li><li> PREPLATING YEMEKLER HAZIRLIĞI: Bu yemekler düşük substrat konsantrasyonu daha kolay yapışır glial kirleticiler, kaldırmak için izole serebellar hücre kültürü önce ön kaplama için kullanılan olacak. Poli-D-lisin (bu kültür için kullanılan konsantrasyonu 1 / 5 100 mg / ml) çanak başına 4 ml Coat iki adet 60-mm plastik kültür yemekleri. 37 ° ° C&#39;de gece boyunca (ya da en az 2 saat önce diseksiyon için). Sağ diseksiyon önce, poli-D-lizin çözüm kaldırmak için iki kez steril su ile bulaşıkları yıkamak ve kaputun kurumasını bekleyin. </li><li> Diseksiyon araçları sterilize otoklav veya diseksiyon gün, 20 dakika boyunca% 70 etanol araçları bırakın. Gerekli araçlar: Permaset makas, microdissecting makas, dört Dumont # 5 diseksiyon forseps. </li></ol> Bölüm 2: Diseksiyon için hazırlık (diseksiyon gün) - (video kanıtlanmış) Belirtilmediği sürece, aşağıdaki tüm prosedürler, doku kültürü kaputu yapılmaktadır. <ol><li> % 70 etanol ile diseksiyon alanının aşağı silin. 37 ° C su banyosu ya da% 5 CO 2 37 ° C inkübatör medya ısıtın. </li><li> Yeni bir Papain Ayrılma Sistemi Seti (Worthington) başlatırken, albümin ovomucoid inhibitörü çözüm hazırlayın. 32 mlEBSS (Earle Dengeli Tuz Çözeltisi; kiti), albümin ovomucoid inhibitörü karışımı ve diğer bileşenler hazırlarken çözünmesi için izin. Ilk kullanım için sulandırın, sonra 2-8 geriye kalan çözüm saklamak ° C ve her kiti tarafından izin verilen beş izolasyonların tamamlanana kadar kullanabilirsiniz. </li><li> Ayrılma Kit (Her flakon postnatal günde 5 fareler cerebella 4-15 disosiasyon için yeterli) bir papain flakon EBSS 5 ml ekleyin. Papain flakon yerleştirin% 5 CO 2 37 ° C inkübatör veya 37 ° C papain tamamen çözülmüş ve çözüm net görünür kadar 5 ila 10 dakika boyunca su banyosu. Diseksiyon sırasında, oda sıcaklığında çözüm koruyun. </li><li> Ayrılma Kiti bir DNaz flakon EBSS 500 ul ekleyin. DNaz kesme denatürasyon duyarlı olduğundan flakon dokunarak yavaşça karıştırın. Papain (son konsantrasyon 20 adet / ml papain ve% 0.005 DNaz) içeren Flakon 250 ul bu çözüm ekleyin. 5.1 veya 6.1 adımda kullanmak için kalan DNaz flakon kaydedin. </li></ol> Bölüm 3: Diseksiyon ve zarları Kaldırma <ol><li> C57BL/6J fareler granül hücre kültürü için en uygun yaş, postnatal günde 4-6, EGL peaks1, 10, granül hücre atalarıdır sayısı. Yavrular bir seferde birini inceleyin ve serebellar diseksiyon daha aşina hale yavru başına en fazla 6 dakika diseksiyonu süresini azaltmak için çalışacağız. Hız özü. Percoll degrade adım atlanır ise, sekiz doğum sonrası gün-5 fare yavrular, 6-iyi bir kültür plakasına (ya da altı adet 25 mm lamelleri) veya altı 4 kuyu kültür levhalar (ya da yirmi dört 12 için yeterli hücre verim alınabilir aa lamelleri). Yaklaşık verimi yavru ve kaplama yoğunlukları başına 4 5x106 hücre 1 arasında ve 5X105 cells/cm2 uzanabilir. % 15-20 hücreleri Percoll step4 sırasında kaybolan olduğundan, daha çok hayvanların aynı istenen hücre yoğunluğu elde etmek için ihtiyaç vardır. </li><li> Pipet 15 ml steril bir Falcon 15 ml konik plastik tüp içine 60 mm plastik doku kültürü çanak ve 10 ml içine HBSS glikoz. Buz koyun. </li><li> Kaput dışında,% 70 etanol ile yavru başkanı silin. Yavru başını kesmek için Permaset makas kullanın. (Video Decapitation gösterildiği gibi değildir.) </li><li> Açıkça kafatasının arkasına bakın, böylece kaput, Dumont forseps ile kafa tutun. Foramen magnum microdissecting makas ekleme ve gözleri doğru düz kesim beyin erişin. Uzakta cilt soyma, forseps kullanma ve kafatası beyin açığa çıkarmak için yukarı kaldırın. Dumont forseps kullanarak, beyincik ve çevresindeki orta beyin çimdik ve çanak HBSS-glukoz ile transfer. (Serebellum serebellum hala çevreleyen doku bağlıysa işlemek ve meninksler kaldırmak için daha kolay olur). </li><li> Diseksiyon mikroskobu altında, beyinciğin kapalı meninksler kabuğu hafifçe ve aynı zamanda plaka beyincik aşağı demirlemek diğer forseps kullanarak güzel bir Dumont # 5 forseps ile loblar arasında. Beyincik yüzeyinde kan damarlarının göreceksiniz. Bu kan damarları meninksler tanımlamak için iyi bir yoldur. Meninksler beyincik keçeleşmiş beyaz bir görünüm alır kadar çıkarın. Geri kalanı orta beyin, beyincik ayırın. Ventral tarafa çevirin ve ventral beyincik ve bitişik orta beyin arasındaki kırmızımsı bir şerit gibi görünüyor koroid pleksus kaldırmak. Kısa sürede disseke olarak buz üzerinde 15 ml konik tüp HBSS-glukoz soğuk her beyincik yerleştirin. 3 beyinlerini parçalayıp sonra taze HBSS-glukoz diseksiyon çözüm değiştirin. </li></ol> Bölüm 4: Hücre süspansiyon <ol><li> Bir kez tüm diseksiyonları bittiğinde, tüpten HBSS-glukoz kaldırmak ve adım 2.4 &#39;te yapılan papain çözümü ile değiştirin. Küçük parçalar halinde doku kesme kiti tavsiye rağmen, biz bu yaşta cerebella kesmek veya kıyma için gerekli olmadığını bulabilirsiniz. Doku + papain solüsyonu (15 ml konik tüp) yerleştirin 37 ° C su banyosu veya% 5 CO 2 37, 15 ila 20 dakika ° C inkübatör . 4-8 cerebella, 37 az 15 dakika ° C yeterlidir; cerebella daha büyük bir sayı için 20 ila 30 dakika daha iyidir. Tüp yavaşça her 3 ila 4 dakika ajitasyon. </li><li> FBS ile kaplanmış, steril bir P1000 aerosol pipet ucu ile karışım Karışım. Herhangi bir hava kabarcığı oluşumunu engellemek için bu adımı yavaşça yapın. Yangın parlatılmış cam pipetler kullanılır, ama biz serum kaplı steril P1000 aerosol ipuçları gibi iyi çalışır. FBS ile pipet kat için pipet FBS yukarı ve aşağı sadece kullanmadan önce iki kez. Pipet kadar yaklaşık 10 ve aşağı hareketler doku ayırmak yeterli. Çözüm bulutlu olacak. Süspansiyon, herhangi bir undissociated doku büyük parça tüpün dibine yerleşmek böylece 30-60 saniye boyunca oturmak için izin verin. </li><li> Askıya hücreleri (b undissociated doku parçaları dikkatli kaldırmak için Kaldırserum kaplı pipet ile taze 15 ml konik tüp içine ottom). 5 dakika boyunca oda sıcaklığında yaklaşık 200xg santrifüjleyin. Yeniden süspansiyon ortamı hazırlayın. Bunu yapmak için, 2.7 ml EBSS 300 ul steril bir tüp içinde sulandırılmış albümin ovomucoid inhibitörü çözüm ile karıştırın. Adım 2.4 &#39;ten 150 ul DNaz çözüm ekleyin. </li><li> Santrifüj sonra, süpernatant atmak ve hemen seyreltilmiş DNaz / serum kaplı P1000 aerosol pipet ile 4,3 adım olarak hazırlanan albumin inhibitörü çözüm hücre pelletini tekrar süspansiyon haline getirin. </li><li> Aşağıdaki gibi süreksiz bir yoğunluk gradiyenti hazırlayın. 5 ml, 15 ml konik tüp albümin ovomucoid inhibitörü çözüm ekleyin. Üst tabaka dikkatlice hücre süspansiyonu. 6 dakika oda sıcaklığında yaklaşık 70xg santrifüjleyin. Tüpün dibinde kontrol grubuyla hücreleri pelet, membran parçaları arayüzü kalır. </li><li> Granül hücreleri zenginleştirilmiş kültürleri elde etmek isterseniz, Percoll degrade ayrılık adım (serebellar granül hücrelerinin saf kültürler verir) bypass ve Bölüm 6&#39;ya geçin. Daha fazla Percoll degrade ayrılması ile glia ve büyük internöronlar granül hücreleri izole etmek isterseniz, Bölüm 5 geçin. Percoll degrade adım hücre verimi azaltacaktır. Bizim ellerde, veriminde azalma yaklaşık% 20-35. Ancak, yaklaşık% 90 95-99% granül nöronlar ve progenitör hücrelerin zenginleştirilmesi bir artış vardır. </li></ol> Bölüm 5: Percoll Gradient Ayırma <ol><li> Süpernatantı atın ve hemen adım 2.4 &#39;ten 50 ul DNaz HBSS-glukoz 2 ml pelet tekrar süspansiyon haline getirin. Yerçekimi ile bir naylon örgü (gözenek büyüklüğü 70 mikron) rağmen hücre süspansiyonu Filtresi. Bu adım, büyük olmayan nöronal hücrelerin kaldırmak ve daha iyi bir tek hücre süspansiyonu sağlar. </li><li> Iki adet yangın parlatılmış cam Pasteur pipetler hazırlayın. Bunu yapmak için, hafifçe alev kenarına düzeltilir ve pipet deliği kadar bir cam pipet ucu orijinal boyutunun% 40-50. Açılış çok küçük yapmamaya özen gösterin. </li><li> Percoll degrade hazırlayın. Yeri 10 ml, 50 ml steril konik tüp% 35 Percoll çözüm. % 60 Percoll (10 ml) bağlı steril bir spinal iğne ile 10 ml steril bir şırınga içine yüklenir. % 35 çözüm altında spinal iğne ile tüpün alt kısmında% 60 çözüm ekleyerek yavaşça tabaka% 60 Percoll çözüm. Keskin bir arayüz iki katman arasında tutmaya özen gösterin. Arayüzü bozmadan nazikçe tüpün kenarı boyunca ekleyerek, yangın cilalanmış bir pipet kullanarak degrade üst hücreleri ekleyin. </li><li> 1800xg santrifüj ve santrifüj tüp dikkatlice yerleştirin. İstediğiniz hızlı ulaşmak için yaklaşık 2 dakika sürer, böylece hız bir adım yukarı her 20 saniyede (yaklaşık 18, 70, 200, 440, 850, 1100, 1800xg hız artışlarla aşağıdaki gibidir) Rampa. 1800xg ulaşıldığında 10 dakika için Sayacı başlat. Bittiğinde, yavaş yavaş bir adım, her 20 saniyede bir hız azalır. </li><li> Degrade üst arayüzü (büyük glia, Purkinje hücreleri ve internöronlar içeren) çıkarın ve atın. </li><li> Dikkatlice bir yangın cilalı pipet ve 50 ml konik tüp transfer hücrelerin% 35 ve% 60 Percoll arasında arayüz çıkarın. HBSS-glukoz ve tersini birkaç kez karıştırın 3 cilt halinde süspanse edin. 1100xg az 5 dakika santrifüjleyin. </li><li> Süpernatantı ve DNaz ul 50 ile% 10 FBS orta 4 ml ekleyin. Nazikçe, tek bir hücre süspansiyonu oluşturmak için yangın cilalanmış bir pipet kullanarak pelletini tekrar. 6.2 adıma geçin. </li></ol> Bölüm 6: Ön kaplama ve Kaplama <ol><li> Süpernatantı atın ve hemen adım 2.4 &#39;ten 50 ul DNaz ile 4 ml% 10 FBS orta pelet tekrar süspansiyon haline getirin. Yerçekimi ile bir naylon örgü (gözenek büyüklüğü 70 mikron) rağmen hücre süspansiyonu Filtresi. Bu adım, büyük olmayan nöronal hücrelerin kaldırmak ve daha iyi bir tek hücre süspansiyonu sağlar. </li><li> Plaka toplanan hücrelerin% 5 CO 2 37 ° C inkübatör poli-D-lizin kaplı ön kaplama çanak 20 dakika. Taze bir çanak tekrarlayın. Astroglia ve ağır hücreleri yerleşmek ve yemeklere uygun ve küçük granül nöronlarda ve nöron progenitör hücrelerin kayan bırakın. Inkübasyondan sonra, gevşek yapıştırılır granül nöronlarda ve nöron progenitör hücrelerin kolayca yerinden çıkar ve plaka hafif dokunarak ile gevşetti. </li><li> 5 dakika için, 200xg 15 ml konik bir tüp ve santrifüj granül nöronlarda ve nöron progenitör hücreleri toplayın. 1 ml serum orta pelletini tekrar ve 10 ul hemasitometre kullanarak bir kısım saymak. </li><li> Istenilen hücre yoğunluğu ulaşmak için serum serbest orta ekleyin. Orta yoğunluklu levha hücreleri sayıları Kaba kurallar: 6-iyi tabak, 3,5 ila 4 milyon hücre; 4-kuyucuğu, 650.000 hücreleri için. 6-kuyu kültür plakaları, plaka 1.5 ml / iyi ve 4 için iyi plates, plaka 0.5 ml / iyi. Hücreler% 5 CO 2 37 ° C inkübatör tutulur. Sonradan yapılan değişiklikleri her iki ila üç gün ile 24 saat sonra tamamen orta değiştirin. </li></ol>

<ol><li>Altman, J., Bayer, S. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAltman%2C+J+%22Development+of+the+cerebellar+system%3A+in+relation+to+its+evolution%2C+structure%2C+and+functions%22">Development of the cerebellar system: in relation to its evolution, structure, and functions</a>. , CRC Press. Boca Raton. (1997).</li>
<li>Hatten, M. E., Heintz, N. Annual Review of Neuroscience. 18, 385-285 (1995).</li>
<li>Hatten, M. E., Gao, W. -Q., Morrison, M. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHatten%2C+ME+%22in+Culturing+Nerve+Cells%22">in Culturing Nerve Cells</a>. Banker, G., Goslin, K. , MIT Press. Cambridge, Mass. 419-419 (1998).</li>
<li>Hatten, M. E. The Journal of Cell Biology. 100 (2), 384-384 (1985).</li>
<li>Carletti, B., Rossi, F. Neuroscientist. 14 (1), 91-91 (2008).</li>
<li>Knoepfler, P. S., Kenney, A. M. Cell Cycle. 5 (1), 47-47 (2006).</li>
<li>Manzini, M. C., Joseph, D. J., MacDermott, A. B. Molecular and Cellular Neuroscience. 35 (2), 328-328 (2007).</li>
<li>Manzini, M. C., Ward, M. S., Zhang, Q. Journal of Neuroscience. 26 (22), 6040-6040 (2006).</li>
<li>Baptista, C. A., Hatten, M. E., Blazeski, R. Neuron. 12 (2), 243-243 (1994).</li>
<li>Palay, S. L., Chan-Palay, V. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPalay%2C+SL+%22Cerebellar+Cortex%3A+Cytology+and+Organization%22">Cerebellar Cortex: Cytology and Organization</a>. , Springer. Berlin, Heidelberg, New York. (1974).</li>
<li>Messer, A. Brain Research. 130 (1), 1-1 (1977).</li>
<li>Ruiz I Altaba, A. Development. 126, 3205-3205 (1999).</li>
<li>Wallace, V. A. Current Biology. 9 (8), 445-445 (1999).</li>
<li>Wechsler-Reya, R. J., Scott, M. P. Neuron. 22 (1), 103-103 (1999).</li>
<li>Solecki, D. J., Liu, X. L., Tomoda, T. Neuron. 31 (4), 557-557 (2001).</li>
<li>Powell, S. K., Williams, C. C., Nomizu, M. Journal of Neuroscience Research. 54 (2), 233-233 (1998).</li>
<li>Lander, A. D., Fujii, D. K., Reichardt, L. F. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (7), 2183-2183 (1985).</li>
<li>Kenney, A. M., Rowitch, D. H. Molecular and Cellular Biology. 20 (23), 9055-9055 (2000).</li>
<li>Kenney, A. M., Cole, M. D., Rowitch, D. H. Development. 130 (1), 15-15 (2003).</li>
<li>Pons, S., Trejo, J. L., Martinez-Morales, J. R. Development. 128, 1481-1481 (2001).</li>
</ol>

Bu protokol, geçmiş 3,7,11 tarif edilmiştir prosedürlerin değişiklikler dayanmaktadır . Aşağıda anlatıldığı gibi Unutulmaması gereken birkaç önemli nokta vardır. Granül nöronlar ve progenitör hücrelerin kaplama 2 saat içinde yapışır. Sağlıklı hücreler, faz kontrast mikroskop 4 altında yuvarlak bir morfoloji var . Kaplama sonraki 24 saat içinde, sağlıklı hücreler lamelleri veya plastik kuyu etrafında eşit yayılacak ve süreçler oluşturacaktır. Ilk orta değişim süresi, 24 saat sonra, birkaç ölü yüzen hücreler var ...

<table><tbody><tr><td>70&amp;mu;m gözenekli hücre süzgeci</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Spinal İğne</td><td>BD Biosciences</td><td>405182</td><td>20G x 3-1/2 inç</td></tr><tr><td>Poly-D-Lysine molekül ağırlığı &amp;gt;300,000</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1024</td><td>Her yeni Poly-D-Lysine partisi test edilmelidir.</td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-1644</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin (100X)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4333</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Invitrogen</td><td>14175-103</td><td>Kalsiyum ve magnezyum içermemelidir.</td></tr><tr><td>Neurobasal A-Besiyeri</td><td>Invitrogen</td><td>10888-022</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax I takviyesi</td><td>Invitrogen</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>B-27 Serumsuz Takviye (50x)</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>12 mm dairesel lameller</td><td>Carolina Biological</td><td>63-3029</td><td>Bunlar Almanya'da Deckgluder tarafından üretilmiştir.</td></tr><tr><td>25 mm dairesel lameller</td><td>Carolina Biological</td><td>63-3037</td><td>Bunlar Almanya'da Deckgluder tarafından üretilmiştir.</td></tr><tr><td>Papain Disosyasyon Sistemi</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LK 003150</td><td>Kit beş izolasyon için uygundur.</td></tr><tr><td>Permaset makas</td><td>Roboz Surgical Instruments Co.</td><td>RS6782</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 (Dumostar)</td><td>Roboz Surgical Instruments Co.</td><td>RS4978</td><td></td></tr><tr><td>4 kuyucuklu kültür kabı</td><td>Nalge Nunc international</td><td>176740</td><td></td></tr><tr><td>6 kuyucuklu kültür kabı</td><td>Nalge Nunc international</td><td>140685</td><td></td></tr></tbody></table>

post-natal mouse serebellar granül nöron progenitör hücreler ve nöronlar İzolasyon ve kültür

Isolation and Culture of Post-Natal Mouse Cerebellar Granule Neuron Progenitor Cells and Neurons 

Serebellar kortekste nöronal özellikleri ve gelişimi 1,2 okuyor için eşsiz fırsatlar sunan bir iyi tanımlanmış bir yapıdır . Serebellar nöronal türleri (granül hücreleri, Purkinje hücreleri ve inhibitör), granül nöronlar tarafından bugüne kadar en çok sayıda ve en bol memeli beyindeki nöronların türüdür. Kemirgenler, serebellar granül nöronlar serebellar korteks, dış granül tabakası (EGL) en dış tabakası progenitör hücrelerden doğum sonrası ilk iki hafta boyunca oluşturulur. Burada sunulan protokol zenginleştirmek için kültür teknikleri ve granül nöronlar ve post-natal fare beyincik progenitör hücrelerin açıklamaktadır. Biz granül nöronlar 5,6 progenitör hücrelerin prolifere farklılaşma çalışma için kullanılabilir artan saflık 3,4 kültürleri elde etmek için prosedürler anlatacağız. Bir kez progenitör hücrelerin kültürleri de sinaptogenez, glutamat reseptör fonksiyonu 7, diğer saflaştırılmış serebellar hücreleri 8,9 veya hücre ölümünü 7 ile etkileşim gibi olayların deneysel manipülasyon ve karakterizasyonu granül nöronların homojen bir nüfus sağlamak, ayrım.

Burada izole etmek için bir yöntem ve postnatal fare kültür serebellar granül nöron progenitör hücreleri ve serebellar granül nöronlar sunuyoruz.

Post-Natal Mouse Serebellar Granül Nöron Progenitör Hücreler ve Nöronlar İzolasyon ve Kültür

Serebellar korteks, nöronal özelliklerin ve gelişiminin incelenmesi için benzersiz fırsatlar sunan, iyi tanımlanmış bir yapıdır1,2. ...'nın arasında

Bu prosedür, P4 ile P5 aşamasındaki farelerden serebellumun çıkarılmasıyla başlar. Yeni doğmuş farelerin meningesleri ve koroid pleksusu, her bir serebellumdan tek tek uzaklaştırılır ve ardından bunlar 15 mililitrelik konik bir tüpte toplanır. Serebellumlar papain ile disosiye edilir ve nazik tritasyonla tek hücre süspansiyonuna getirilir.Bu süspansiyon, 70 mikron gözenek boyutuna sahip bir naylon ağ filtreden yerçekimi yardımıyla süzülür. Süzülen sıvı, süreksiz bir perca gradyanının üzerine nazikçe eklenir ve granül hücreleri glia hücrelerinden, nöronlar ve Perkin geni nöronlarından ayırmak için santrifüjlenir. Gradyanın ara yüzeyindeki hücreler toplanır ve polidizine kaplı plaklara hazırlanır.Glial hücreleri daha fazla uzaklaştırmak için, granül hücreler toplanır, sayılır ve istenilen yoğunluklarda polilizin kaplı cam lamellerine veya plastik kültür plaklarına ekilir. Merhaba, ben Columbia Üniversitesi Patoloji Bölümü'nden Dr. Lloyd Green'in laboratuvarından Hey Young Lee. Bugün size postnatal farelerden serebellar granül nöronların izole edilmesi ve kültüre edilmesi prosedürünü göstereceğiz.Laboratuvarımızda granül nöro progenitor proliferasyonu ve diferansiyasyonunu incelemek için bu prosedürü kullanıyoruz. Öyleyse başlayalım. Bu prosedür, serebellar granül hücrelerini dissosiye etmek için diseksiyon alanında %70 ethanol kullanımıyla başlar; dissosiyasyon için Papin dissosiyasyon sistemini kullanıyoruz.Yeni bir kite başlarken, albumin OVO equate MOID inhibitör çözeltisini hazırlayın. Bunun için, kit içerisinde sağlanan 32 mililitre Earl dengeli tuz çözeltisini veya EBSS'yi alın ve albumin OVO moid karışımına ekleyin. İçeriklerin çözünmesi için diğer bileşenleri hazırlarken bunu kenara ayırın.Ardından, disosiyasyon kitindeki bir papain tüpüne beş mililitre EBSS ekleyin. Her bir tüp, P5 farelerden alınan dört ila 15 serebellumu disosiye etmek için yeterlidir. Daha sonra papain tüpünü, papain tamamen çözülene ve solüsyon berrak görünene kadar, %5 CO₂ 37 °C inkübatörde beş ila 10 dakika bekletin.Diseksiyon sırasında çözeltiyi oda sıcaklığında tutun. Ardından, kit içindeki 1D NAS flakonuna 500 µL EBSS ekleyin. Flakona hafifçe vurarak nazikçe karıştırın.DNAS makaslama denatürasyonuna duyarlı olduğundan, mil başına 20 ünite ve %0,005 DNA nihai konsantrasyonu elde etmek için pepane flakonuna bu çözeltiden 250 µL ekleyin; kalan DNA dosyasını sonraki adımlarda kullanmak üzere saklayın. Gereçler ve reaktifler hazır olduğunda, bu prosedür için cerebellumların diseksiyonuna ve meningeslerin çıkarılmasına geçin. Doğum sonrası dördüncü ve altıncı günler arasındaki C 57 black six fareler kullanılır.Bu yaş aralığı, dış granüler tabaka veya EGL granül hücre öncüllerinin sayısının maksimum düzeyde olması nedeniyle granül hücre kültürü için idealdir. Başlamak için, 60 milimetrelik plastik bir doku kültürü kabına 15 mililitre HBSS glikoz ve steril bir 15 mililitrelik konik tüpe 10 mililitre ekleyin. Tüpü buza yerleştirin, yavru fare kafasını %70 etanol ile silin. Kafayı çıkarmak için cerrahi makas kullanın.Başı çekerle içeri aktarın ve kafatasının arkası net bir şekilde görünecek şekilde pensetle tutun. Beyne erişmek için mikro diseksiyon makasını foramen magnum'a yerleştirin ve ardından doğrudan gözlere doğru kesin. İnce dumont penset kullanın.Beşinci adım, deriyi soymak ve beyni açığa çıkarmak için kafatasını kaldırmak üzere pens kullanılmasıdır. Ardından cerebellum ve çevresindeki midbrain koparılmalıdır. Bunu HBSS glukoz içeren kaba aktarın.Serebellum hala çevredeki dokuya bağlıyken, serebellumu manipüle etmenin ve meningesleri çıkarmanın daha kolay olduğunu unutmayın. Ardından, dokuyu bir diseksiyon mikroskobunun altına yerleştirin. Sonrasında, serebellumu plakaya sabitlemek için bir set pens kullanın.Serebellumu ve loblar arasını nazikçe soyarak meningesleri uzaklaştırmak için beş numara ince dumont pens kullanın. Serebellum yüzeyinde kan damarlarını fark edeceksiniz.Bu kan damarları, meningesleri belirlemek için uygun bir yoldur. Cerebellum keçeleşmiş beyaz bir görünüm alana kadar meningesleri çıkarmaya devam edin. Ardından cerebellumu orta beynin geri kalanından ayırın.Hayvanı ventral tarafı üzerine çevirin ve ventral cerebellum ile bitişik orta beyin arasında kırmızımsı bir şerit gibi görünen koroid pleksusu çıkarın. Cerebellum diseke edilir edilmez, buz üzerindeki 15 mililitrelik konik tüp içindeki soğuk HBSS glukoz çözeltisine yerleştirin. Üç beyni diseke ettikten sonra, diseksiyon çözeltisini taze HBSS glukoz ile değiştirin.Serebellar diseksiyona daha fazla aşina oldukça, diseksiyon süresini yavru başına altı dakikayı geçmeyecek şekilde azaltmaya çalışın. Diseksiyonlar tamamlandığında, hücre süspansiyonu aşamasına geçin. Serebellar diseksiyonlardan hücre süspansiyonu oluşturma adımına gidin.İlk olarak, tüpteki glukozlu HBSS'yi uzaklaştırın ve yerine papain çözeltisi ekleyin. Kit dokunun küçük parçalara ayrılmasını önerse de, bu yaşta bunun gerekli olmadığını gördük. Dokuyu ve papain çözeltisini %5CO 2 37 derece inkübatörde 15 ila 20 dakika bekletin.Dört ila sekiz serebellum için 15 dakika inkübe edin. Daha fazla sayıda örnek için inkübasyon süresini yarım saate kadar uzatın. Tüpü her üç ila dört dakikada bir nazikçe çalkalayın.İnkübasyon tamamlandığında, tation adımına başlayın ve steril bir P 1000 aerosol pipet ucunu, FBS ile iki kez yukarı ve aşağı pipetleme yaparak kaplayın. Şimdi karışımı tetikleme hızına getirin. Herhangi bir hava kabarcığı oluşumunu önlemek için nazikçe pipetlediğinizden emin olun.Dokuyu ayrıştırmak için pipetle yaklaşık 10 kez yukarı aşağı hareket yapmak yeterlidir. Çözelti bulanıklaşmalıdır. Ayrışmamış büyük doku parçalarının tüpün dibine çökmesi için süspansiyonun 30 ila 60 saniye bekletilmesine izin verin.Tritürasyon için ateşle cilalanmış cam pipetler kullanılabilse de, serum kaplı steril P 1000 uçlarının da aynı derecede etkili olduğunu gördük. Ardından, serum kaplı bir pipet ucu kullanarak süspansiyon halindeki hücreleri taze bir 15 ml konik tüpe aktarın; bu aşamada dipte kalan ilişkisiz doku parçalarını almamaya dikkat edin. Daha sonra hücre süspansiyonunu yaklaşık 200 G'de beş dakika boyunca santrifüjleyin.Santrifüj sırasında, oda sıcaklığında resüsponsiyon süspansiyon ortamını hazırlayın. Bunun için, steril bir tüpe 2,7 mililitre EBSS ekleyin. Ardından, yeniden konstitüe edilmiş albumin OVO MOID inhibitör çözeltisinden 300 mikrolitre ekleyin.Son olarak, 150 µL DNA çözeltisi ekleyin. Santrifüj işlemi tamamlandığında, süpernatantı uzaklaştırın ve hücre peletini hemen seyreltilmiş DNA albumin inhibitör çözeltisi içinde yeniden süspande edin. Peleti yeniden süspande etmek için yine serum kaplı bir pipet ucu kullanın.Şimdi süreksiz bir yoğunluk gradyanı hazırlayın. Bunun için, 15 mililitrelik konik bir tüpe beş mililitre albümin oval MOID inhibitör çözeltisi ekleyin. Hücre süspansiyonunu, hücreleri tüpün kenarından nazikçe ekleyerek çözeltinin üzerine katmanlar halinde yerleştirin, ardından yaklaşık 70 G'de altı dakika boyunca santrifüj edin.Oda sıcaklığında, ayrışmış hücreler tüpün dibinde çökecek, membran fragmanları ise ara yüzeyde kalacaktır. Granül hücreleri açısından zenginleştirilmiş kültürler elde etmek istiyorsanız, daha fazla saflaştırmaya gerek yoktur. SUP süpernatantı atın ve peleti derhal 50 µL DNAs içeren 4 mL %10 FBS ortamı içerisinde yeniden süspande edin.Bu süspansiyonu, 70 mikron gözenek boyutuna sahip bir naylon süzgeçten yer çekimi yardımıyla süzün. Bu adım, büyük nöron dışı hücreleri uzaklaştırır ve daha iyi bir tek hücre süspansiyonu sağlar. Ardından, sonraki Percoll gradyan ayırma adımını atlayın ve hücre ekim adımına geçin.Veya granül hücrelerini glia ve büyük internöronlardan daha fazla saflaştırmak isterseniz, percoll gradyan adımına geçiniz. Süpernatantı atınız ve pelletlemi hemen iki mililitre glukozlu HBSS içinde 50 microliters DNase ile resüspandeyiniz.Süspansiyonu tekrar bir naylon süzgeçten filtreleyin. Percoll gradyan ayırımına başlamadan önce, ateşle uçları düzeltilmiş iki adet Pasture pipeti hazırlayın. Pipetin ucunu, kenarlar pürüzsüzleşene ve pipet ağzı orijinal boyutunun yaklaşık yarısına inene kadar nazikçe alevle ısıtın. Açıklığı çok küçük yapmamaya dikkat edin.Şimdi per call gradyanını hazırlayın. 50 ml'lik steril konik tüpe 10 ml %35'lik per call çözeltisi koyun. Ardından, steril spinal iğne takılı 10 ml'lik steril bir şırıngaya 10 ml %60'lık per call doldurun.Şırınga ucunu tüpün dibine değdirerek, %60'lık çözeltiyi %35'lik çözeltinin altına yavaşça katmanlar halinde ekleyin. İki katman arasında net bir ara yüz oluşmasına dikkat edin. Ardından, hücreleri gradyanın üst kısmına ekleyin.Ateşle parlatılmış bir pipet kullanarak, ara yüzü bozmadan hücreleri tüpün kenarından boyunca nazikçe ekleyin. Hücreleri tabakalama işleminin ardından tüpü dikkatlice santrifüje yerleştirin. Santrifüjleme işlemini yaklaşık 18 G hızında başlatın. Hızı her 20 saniyede bir kademe artırarak 1800 G hızına ulaşmanın yaklaşık iki dakika sürmesini sağlayın. 1800 G'de 10 dakika geçtikten sonra, hızı her 20 saniyede bir kademe azaltarak kademeli olarak düşürün.Santrifüj işlemi tamamlandığında, gradyanın üst arayüzünü kaldırın ve atın. Bu arayüz büyük ggl bikini hücrelerini ve inter nöronları içerir. Ardından, arayüzdeki hücreleri dikkatlice almak için ateşle cilalanmış bir pipet kullanın.Hücreleri 50 ml'lik bir tüpe aktarın. Hacim 15 ml'den fazla ise, hücreleri iki adet 50 ml'lik tüpe bölün, üç hacim HB S'S glikoz içinde yeniden süspande edin ve birkaç kez ters çevirerek karıştırın. Ardından 1100 G'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Şimdi süpernatanı uzaklaştırın ve 10% FBS ile 50 µL D ns reus içeren dört ml besiyeri ekleyin.Tek hücre süspansiyonu oluşturmak için peleti alevle cilalanmış bir pipet kullanarak nazikçe süspande edin. Hücreler yeniden süspande edildikten sonra prepl işlemine geçin. Hücreler, poli-D-lizini kaplı bir kap üzerinde 20 dakika boyunca prelate edilir.37 °C ve %5 CO2 içeren bir inkübatörde. İnkübasyon sırasında, astroglia ve daha ağır hücreler çökecek ve kaplara yapışacak; küçük granül nöronlar ve nöron öncül hücreleri ise yüzer durumda kalacak veya gevşekçe yapışacaktır. 20 dakika sonra, gevşekçe yapışmış granül hücrelerini yerinden ayırmak için kaba hafifçe vurun.Ardından hücre süspansiyonunu taze polilisin kaplı bir plakaya aktarın ve inkübasyonu tekrarlayın. Daha sonra, granül nöronları ve nöron progenitör hücrelerini 15 ml'lik konik bir tüpe toplayın ve 200 G'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Ardından peleti 1 ml C içermeyen ortamda yeniden süspanse edin ve bir hemositometre kullanarak sayım yapın.Son olarak, orta yoğunlukta ekim yapmak için istenen hücre yoğunluğuna ulaşmak amacıyla serumsuz besiyeri ekleyin. Altı kuyruklu plakalar için. Dört kuyruklu plakalar için yaklaşık 3,5 ila 4 milyon hücre kullanın.650, 000 hücre kullanın. Hücreleri %5CO2 içeren 37 °C'lik bir inkübatörde tutun. İlk ekimden 24 saat sonra besiyerini tamamen değiştirin, ardından sonraki her iki ila üç günde bir değişime devam edin.İşte sağlıklı granül nöron ve progenitör hücre kültürlerine ait bazı görüntüler. Ekimden 24 saat sonra ve ekimden altı gün sonra. Bu hücreler kültürde iki haftaya kadar tutulabilir.Ekme işleminden sonraki 24 saat içinde, sağlıklı hücrelerin lamellerin veya plastik kuyucuğun etrafına eşit şekilde yayılacağı ve uzantılar oluşturacağı unutulmamalıdır. Hücrelerin kümeleşmesi ve hücre uzantıları üzerinde varisitelerin oluşması, hücrelerin sağlıksız olduğunu veya poli-lisin substratının toksik olduğunu gösterir. Diyagramda görüldüğü üzere, granüler nöron öncül hücreleri ekimle birlikte farklılaşmaya başlar ve belirteçleri eksprese eder.Diferansiyasyonlarının temsili. Granül nöron progenitörlerinin proliferasyonunun, medyuma sonic hedgehog ekleyerek önemli ölçüde uzatılabileceğini belirtiniz. Nörit çıkışını teşvik etmek için polilizinle birlikte bir substrat olarak laminin de eklenebilir.Granül hücre kültürünün bu özellikleri, ya granül nöronların biyolojisinin ya da progenitör hücrelerin nöronlara farklılaşmasının düzenlenmesinin incelenmesi için bir sistem sunar. Size MAO serebellar granül nöro progenitörlerinin ve nöronlarının nasıl izole edileceğini ve kültüre edileceğini göstermiş olduk. Bu prosedür uygulanırken, yaklaşık verimin 4-5 × 10⁵ olduğunu hatırlamak önemlidir.Yavru başına altı hücre elde edilir ve ekim yoğunlukları santimetrekare başına beş hücrenin beş katı arasında değişebilir. Bu nedenle, Percoll gradyan adımı atlanırsa, beş günlük sekiz post-natal fare yavrusu altı adet dört kuyuklu kültür plakası için yeterli hücre sağlayabilir. Benim deneyimlerime göre, Percoll gradyan adımının kullanılması hücre verimini yaklaşık %22-30 oranında azaltacaktır. Bununla birlikte, kültürlerdeki granül nöronların yüzdesi %90-95'ten %99'a yükselir. Percoll gradyan ayırma adımı olmadan elde edilen zenginleştirilmiş granül hücreler, granül nöron progenitör proliferasyonu ve diferansiyasyonunun düzenlenmesini incelemek için kullanılmıştır. Ancak, kültürlerin in vitro ortamda birkaç günden fazla kullanılması gerekiyorsa, granül nöronların prolifere olan nöronal olmayan hücreler tarafından kontamine edilmesini azaltmak için Percoll gradyan adımının dahil edilmesi önerilir.Ayrıca, per kol gradientini hazırlamak için kullanılan çözeltilerin taze olduğundan emin olun; çünkü yetersiz tamponlama daha fazla hücre ölümüne yol açar. Hepsi bu kadar. İzlediğiniz için teşekkürler ve deneylerinizde başarılar dileriz.

isolation-culture-post-natal-mouse-cerebellar-granule-neuron

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu video, birincil fare serebellar granül nöronlarını izole etme ve kültürleme tekniğini göstermektedir. Hücreler, çoğalan glial hücreleri ortadan kaldırmak ve saf bir serebellar granül nöron kültürü üretmek için bir antimetabolit ile muamele edilir.

Fare Primer Serebellar Granül Nöronlarının İzolasyonu ve Kültürü

Bu video, bir fare yavrusunun beyinciğinden serebellar nöral progenitör hücrelerin izolasyonunu ve yetiştirilmesini göstermektedir. Serebellar granül nöron progenitörleri, astrositleri etkili bir şekilde uzaklaştırarak diferansiyel adezyon yoluyla izole edilir ve saflaştırılır. Bu kültürlenmiş progenitörler daha sonra serebellar granül nöronlarına farklılaşır.

Murin serebellar granüler nöron progenitörlerinin izole edilmesi ve kültürlenmesi

Bu video, doğum sonrası fare beyinciğinden kök hücreleri izole etmek ve bunları nöral hücrelere ayırmak için bir yöntemi göstermektedir. İzole edilmiş hücre süspansiyonundan elde edilen kök hücreler, antikor kaplı manyetik boncuklar kullanılarak saflaştırılır ve nöroküreler oluşturmak üzere kültürlenir. Nörosferler daha sonra nöral hücreler oluşturmak için bir farklılaşma ortamında tutulur.

Doğum Sonrası Fare Beyinciğinden Kök Hücrelerin İzolasyonu ve Nöral Hücrelere Farklılaşması

Bu video, fare primer serebellar granül nöronlarında bir nöronal yaralanma modelinin oluşturulmasını göstermektedir. Uyarıcı bir nörotransmitter reseptör agonisti olan NMDA ve bir ko-agonist olan glisin kullanarak nöronal hasarın indüklenmesinde yer alan adımları ana hatlarıyla belirtir. NMDA ve glisin, spesifik nöronal reseptörlere bağlanarak aşırı uyarılmasına neden olur ve nöronal hücre hasarına ve ölümüne yol açan büyük bir hücre içi kalsiyum akışına neden olur.

Fare Primer Serebellar Granül Nöronlarında Nöronal Hasarın Modellenmesi

Burada subventricular bölgesi ve bireysel yetişkin farelerin kıvrımlarının gelen yapışkan tek katman veya neurospheres ya gibi, sinir öncü hücre kültürlerinin eş zamanlı üretimi için ayrıntılı bir protokol açıklar.

Bir Fare, İki Kültür: İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kültür Bireysel Farelerde iki Nörojenik Bölgeler&#39;den Kök Hücre

Nestin-salgılayan progenitorlar gelişen beyincikte nöronal progenitörlerinin yeni tespit edilen bir gruptur. Floresan-aktive edilmiş hücre sıralama ile kombinasyon halinde burada sunulan mikrodiseksiyon tekniği kullanarak, bu hücre popülasyonu, diğer beyincik bölgelerinin herhangi bir bulaşma ile saflaştırılabilir ve daha ileri araştırmalar için kültürlenebilir.

Mikrodisseksiyon tarafından Gelişmekte Serebellumunda farklı olarak hücre popülasyonlarının İzolasyonu

Bu çalışma, WT yenidoğan farelerinden nöronların izole edilmesi için bir teknik sunmaktadır. Yenidoğan faresinden omuriliğin dikkatli bir şekilde parçalanmasını ve bunu takiben nöronların omurilik dokusundan mekanik ve enzimatik bölünme yoluyla ayrılmasını gerektirir.

Yenidoğan Faresinden İzole Edilen Spinal Kord Nöronları İzolasyonu ve Kültürü

Bu iletişim kuralı yalıtma ve birincil fare serebral granül neurons (CGNs) 6-7 gün eski pups, CGNs kaybı için verimli iletim ve kazanç işlevi çalışmalar, kültür ve nöronal excitotoxicity NMDA kaynaklı modelleme için basit bir yöntem açıklar, düşük potasyum indüklenen hücre ölümü, DNA hasarı ve oksidatif stres aynı kültür modelini kullanarak.

Modelleme nöronal ölüm ve fare birincil serebellar granül nöronlar dejenerasyon

Biz yalıtmak ve nöral progenitör hücreler embriyonik ve postnatal beyin dokusundan Kromatin immunoprecipitation (ChIP) Histon 3 lizin 79 dimethylation (H3K79me2) - içinde yer alan bir Histon işareti için kültür için etkili ve tekrarlanabilir bir yöntem mevcut Histon 3 küresel etki alanı.

Yalıtım ve sinirsel ataları Kromatin-Immunoprecipitation Histon 3 lizin 79 Dimethylation Mark tarafından takip tarımı

In vitro deneylerin vivo koşullarını mümkün olduğunca yeterli şekilde yansıtmak için yapılması kolay bir iş değildir. Birincil hücre kültürlerinin kullanımı bütün bir organizmada hücre biyolojisini anlamaya yönelik önemli bir adımdır. Sağlanan protokol nasıl başarılı bir şekilde büyümek ve kültür embriyonik fare serebellar nöronlar özetliyor.

Embriyonik Fare Beyincisinden İzole Edilen Nöronların Birincil Kültürü

Burada gösterilen, postnatal fare beyincik beyaz madde kök hücreleri arındırmak, kültür ve ayırt etmek için etkili ve uygun maliyetli bir yöntemdir.

Postnatal Fare Serebellum prominin-1+ Kök Hücrelerin Safifikasyon

Öğrenin, postnatal farelerden serebellar granül nöron progenitör hücrelerini ve nöronlarını izole etme ve kültürleme yöntemini. Papain ile doku parçalama ve percoll gradyanı santrifüjasyonu kullanılarak glial hücrelerden ayrılır.

Post-Natal Mouse Serebellar Granül Nöron Progenitör Hücreler ve Nöronlar İzolasyon ve Kültür

Daha fazla video keşfet