Summary
孤立的高品质,完整的RNA是一个必不可少的步骤在许多实验室的协议。在这里,我们从整个斑马鱼的胚胎,随后应用在各种实验程序,包括基因表达芯片分析cDNA合成RNA的提取证明。
Abstract
许多重要和复杂的实验室的程序,要求输入的高品质,完整的RNA。降级样品或杂质的存在可能导致灾难性的结果在下游的实验应用。因此,最重要的,使用坚实的技术与众多的保障措施和质量控制检查,以确保卓越的样本。在此,我们详细的协议隔离使用市售的化学变性和随后的清理,以去除DNA和使用商业RNA提取试剂盒杂质的痕迹,从整个斑马鱼胚胎的总RNA。作为RNA相对不稳定和轻松容易由核糖核酸酶裂解,大多数协议检测基因表达的cDNA的产品,是直接从RNA为模板合成。我们详细的程序转换成更稳定的cDNA使用市售的套件产品的RNA。纵观这些程序有多项质量控制检查,以确保样品不退化或受到污染的的。这些协议的最终产品是基因,是适合的芯片分析,RT - PCR或长期储存。
Protocol
第1部分:用Trizol试剂提取总RNA
当工作与RNA是非常重要的工作的环境中,无RNase的。简单的预防措施,如只使用RNA的程序保留移液器和喷涂工作区开始的程序之前,用去污剂试剂(例如,核糖核酸酶客队)是非常有益的。
- 在1.5 ml离心管要达到一个足够量的RNA池50个斑马鱼的胚胎,并删除尽可能多的水,用移液器。
- 立即加入TRIzol试剂1 250μL到离心管中含有胚胎。 TRIzol试剂含有苯酚,只应根据通风柜使用。
- 裂解及均质颗粒杵(约20杆)的胚胎,直到该组织是充分打乱。
- 当细胞有足够的匀浆,加750μLTRIzol试剂等于1毫升的总量。
- 要允许完整的核蛋白复合物的解离,孵化匀浆样品在室温下5分钟。在这个阶段,样本可闪光灯液氮冷冻和储存于-80 ° C或协议可以继续。
- 要继续加0.2毫升氯仿和15秒,混合岩管。
- 孵育样品在室温下2分钟,然后离心15分钟,在12000 XG 4 ° C。
- 混合物分离成一个较低的红色的酚 - 氯仿相,相间,一种无色的上层水相。上层水相包含的RNA。顶层应包括TRIZOL(约0.6毫升)的初始体积约60%。转移到一个新的离心管,用1毫升吸管小心,不转让任何相间层顶部的水层。
- 沉淀的RNA添加0.5毫升异丙醇。
- 允许样品在室温下坐10分钟,然后离心10分钟样品在12000 XG在4 ° C。 RNA的试管底部形成凝胶颗粒。
- 互不干扰沉淀,去除上清液,用吸管和1毫升75%乙醇洗涤沉淀。混合5分钟的样品轻轻翻转,并在7500 XG离心机在4 ° C。
- 离心后,取出吸管乙醇和样品干倒10分钟时,。
- 加入100μL无RNase水重悬沉淀和孵化的样品在55℃下10分钟。建议经常手指孵化过程中,以帮助RNA的补液的旋涡。或者,您可以使用NanoDrop ND - 1000分光光度计检查样品的质量和数量,或直接继续下一步。
第2部分:RNA清理使用Qiagen公司的RNeasy试剂盒
2 Qiagen公司的RNeasy试剂盒是在消除从其他方法中分离出的RNA样品中的污染物和杂质非常有用。对于此过程中,β-巯基乙醇,乙醇,无核酸酶水需要除了在该套件中包含的组件。在此过程中一个可选的DNA酶处理建议。
- 第一次使用的试剂盒后,缓冲区RPE细胞将需要4卷100%的乙醇加入1体积缓冲区的RPE的准备。
- 在一天的过程中,缓冲器的RLT将需要准备新鲜。计算总额将需要缓冲区的RLT。每个样品350μL的体积需要。要准备的缓冲区的RLT,添加10μLβ-巯基乙醇,每1毫升的缓冲。这项工作应根据通风柜。
- 每个样本缓冲区的RLT 350μL和250μL100%的乙醇添加。拌匀移液器向上和向下几次。
- 转移的样本,应约700μL的RNeasy列是在8000 XG 1分钟,在室温下放置在2毫升收集管和离心机,。
- 离心后,弃流,并添加700μL缓冲液RW1的RNeasy旋转列。
- 离心1分钟,在室温下在8000 XG样本,然后丢弃流过。
- DNA酶治疗Qiagen公司无RNase的DNA酶试剂盒:DNA酶处理是可选的,但强烈建议提供最高质量的样品。
- 当你第一次收到的DNA酶处理工具包,你将需要准备,加入550μL无核酸酶水的DNA酶的DNA酶我原液。轻轻混匀反相和不旋涡。分装成单次使用小瓶含10μL原液。您可以储存在-20 ° C至9个月股市的解决方案。解冻分装在4 ° C的6个星期,如果需要,可以存储,但不重新冷冻解冻后的等份。
- 为了准备DNA酶我孵化混合,加入70μL缓冲RDD的10μLDNA酶I S滴答每个样品的解决方案。轻轻颠倒离心管混合简要收集残留的液体形式,管的两侧。直接添加80μLDNA酶我孵化组合的RNeasy旋转列。孵育30分钟,在室温下的DNA酶处理。
- 继DNA酶处理,添加350μL缓冲液RW1离心柱和离心1分钟,在室温下在8000 XG。
- 离心后丢弃的流量通过,并添加500μL缓冲的RPE自旋列。孵育样品在室温下5分钟。
- 离心1分钟,在室温下在8000 XG的样品和丢弃的流量通过。
- 离心后加入500μl75%乙醇的离心柱。
- 在8000 XG重复离心,但在室温下2分钟。
- 离心后丢弃的流量,并允许该列干5分钟。
- 立即在室温下离心8000 XG删除任何乙醇的痕迹,左5分钟。
- 离心后是完全转移到一个新的1.5 ml收集管中的自旋列,并添加10μL无核酸酶水。孵育1分钟,然后离心1分钟,在室温下以10,000 XG。的RNA,将在流通过。
- 添加另一种无核酸酶水10μL的离心柱和在室温下孵育1分钟。离心样品在室温下1分钟XG 10,000。
- 离心后取出并丢弃离心柱。 RNA将流通过。
- 检查RNA的数量和质量,按照制造商的说明使用一个NanoDrop ND - 1000分光光度计。
- 此外,运行变性凝胶或使用安捷伦2100生物分析仪检查RNA的完整性。
- 样品应保存于-80℃直至可以进行cDNA合成。
第3部分:使用Invitrogen公司标的第一链系统的cDNA合成
RNA是轻松容易导致退化的核糖核酸酶裂解。因此,许多基因表达的协议,已经发展到使用一个更加稳定,已经直接从RNA合成cDNA产物。在这里,我们详细的合成第一链的cDNA用Invitrogen公司标第一链合成系统3。每个cDNA合成反应,最多可容纳5微克的RNA。
- 在开始的程序组合,并短暂离心每个组件。
- 准备RNA /引物混合在无菌的0.5 ml离心管如表1所列。
- 孵育65℃,5分钟的样品。
- 10分钟,立即转移样品冰浆。
- 当样品冷却准备一个与表2中所述的组件的主结构。卷列出每1反应。总数的反应,相应调整卷。
- 冷却后,加上9日在第5步准备每个RNA /引物混合物的预混液。轻轻混匀后短暂离心收集。每个样品总量应为19μL。
- 在42 ° C孵育2分钟,在热循环样品。
- 标二RT 1μL(50个单位)添加到每个管,混合,并孵育42 ° C为60分钟,在热循环。
- 终止反应,在70 ° C下15分钟,然后寒意样品到4 ° C。步骤8和9可以编程为一个热循环。
- 后的样品已达到4℃,反应转移到冰浴。
- 在冰上,每管加1μl的RNase H的和20分钟在37 ° C。总体积21μL。核糖核酸酶H添加到您的样品会降低RNA为模板,并留下唯一的单链cDNA产物。
第4部分:基因的分离和降水
- 1.5 ml的锁相硅胶管将用于在隔离的cDNA产品。离心2分钟,在12000 XG准备1.5毫升锁相硅胶管。凝胶都应该在试管底部。
- 锁相凝胶管中加入81.5μL酚(三饱和,缓冲pH值8.0),81.5 24:1的氯仿异戊醇液,样品(21微升)。轻轻颠倒混合数次。
- 在12000 XG离心样品在室温下5分钟。
- cDNA的,应在上层水相。转移到一个干净的1.5 ml离心管上部阶段。总体积约20μL。
- 添加1X量的3 M NaOAc,pH值5.2,轻轻混匀。例如,如果上层水相的体积等于20μL,您将需要添加2μL3 M NaOAc,pH值5.2。
- 新增7μL5 mg / ml的糖原,轻轻混匀。
- 加入1倍体积的异丙醇,轻轻混匀。一般来说,这是约30μL异丙醇。
- 允许样品在室温temperatur孵育离心12000 XG E为10分钟,然后在室温下20分钟。
- 一个小的cDNA颗粒的试管底部形成。用移液器小心取出上清液。
- 加入500微升70%的乙醇混合反演。
- 离心5分钟,在12000 XG样品。
- 离心后去除上清,用移液器重复的70%乙醇洗涤,离心(步骤10和11)。
- 离心后除去上清液用移液器。如果有液体管双方的剩余,它可以收集简要纺纱管。删除任何多余的液体,使沉淀在室温下干燥5分钟。
- 加入20μL无核酸酶水,补充水分颗粒。 5分钟补液颗粒的样品放置在55 ° C。
- 然后检查以下制造商的说明使用一个NanoDrop ND - 1000分光光度计的cDNA产品的数量和质量。可以储存在-20 ° C的cDNA
代表性的成果
RNA的清理后,约15微克的高品质总RNA可以预期从50个斑马鱼的胚胎。为了评估总RNA质量,分光光度仪,凝胶电泳,和Agilent 2100生物分析仪可以使用。一个NanoDrop ND - 1000分光光度计可用于评估在260 nm处的吸光度在280 nm(图1)相比的吸光度。 260 / 280的比例可以揭示污染物的存在,并给予可能的退化的证据。一个260 / 280比例的1.9-2.0认为是可接受的。此外,强烈建议RNA变性凝胶运行评估RNA的完整性。 RNA链将单独对它们的大小的基础上,用较小的股进一步下跌的凝胶迁移。会出现一个非退化的样本作为涂抹两强带。涂片是一个人口大小不同的mRNA链的结果,对应28S和18S rRNA的条带。 28S乐队应该是18S条带(图2)激烈的两倍左右。另外,总RNA的完整性,可以使用Agilent 2100生物分析仪进行评估。两个明显的峰值,代表28S和18S rRNA预期(图3)。 28S峰值应大于18S根据峰面积峰值,分别约为2:1。两个明显的峰值,不会退化样品观察。参展降解的RNA样品,不应该通过随后的实验步骤进行。
分光光度分析可用于评估的cDNA产品质量(图4)。 260 / 280应该是1.8左右。输入5μg总RNA的cDNA反应经常在我们的实验室中产生的cDNA产品的1-2微克。
图1。 RNA的清理后的RNA样品NanoDrop的光谱 。,RNA的数量和质量进行评估使用NanoDrop ND - 1000分光光度计。高质量的总RNA中,约15微克, 是常规260 / 280左右1.9-2.0的比例从50斑马鱼的胚胎产生。
图2的RNA变性凝胶要评估的总RNA的分离完整性,RNA变性凝胶可以跑。预计涂抹与相应的28S和18S rRNA的两个明亮的条带。 28S乐队应该是18S乐队激烈的大约两倍。
图3。样本的RNA样品的跟踪,从生物分析仪。评估的总RNA的完整性,可能还可以在Agilent 2100生物分析仪分析。两个尖锐的峰,对应的28S和18S rRNA,应该是可见的的。 28S峰值应大于18S根据峰面积峰值,分别约为2:1。
图4。一个NanoDrop频谱的cDNA样本。光度法分析与NanoDrop ND - 1000可用于评估的cDNA产品的数量和质量。 260 / 280的比例应在1.8左右。输入5微克总RNA的cDNA反应,经常产生1-2微克的cDNA在我们的实验室。
表1。元件RNA /引物混合物添加在合成cDNA的第2步。
组件 | 卷 |
总RNA(5微克) | 10μL |
10毫米dNTP混合液 | 1μL |
以oligo(dT)12-18(0.5μg/μL的) | 1μL |
DEPC处理过的水 | ñμL |
总成交量 | 10μL |
表2。cDNA合成的第5步反应混合物。卷列出的每个反应。每个组件数量增加总数的反应。
组件 | 卷 |
10X RT缓冲 | 2μL |
25 mM的氯化镁 | 4μL |
0.1 mM的数码地面电视 | 2μL |
RNAseOUT | 1μL |
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Discussion
RNA分子的脆弱性是最重要的考虑因素,应成为本议定书记住。应始终使用无菌设备,无RNase在实验室无RNase区。储备的只适用于RNA的程序实验室的一部分,它是有帮助的。核糖核酸酶去除产品,如核糖核酸酶,远离此区域应经常喷洒。 RNA样本应始终带手套处理,并放在冰上,防止退化。
该协议利用市售的试剂和试剂盒。另外,还有许多额外的试剂和RNA分离试剂盒,市场上可用于总RNA隔离。此协议中包含的试剂和试剂盒的运作良好,并经常在我们的实验室产生高质量的RNA。
作为替代方案,进行双链cDNA的合成,而不是在本议定书中表现出的第一链合成。双链cDNA的是有时想要的,因为它提供了更高的稳定性。此外,有些协议需要双链cDNA的产品作为输入。但是,如果样品要保持在下游应用的房子,第一链合成就足够了,是更为经济。
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Glycogen (5 mg/ml) | Ambion | 9510 | |
NanoDrop ND-100 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | ND-1000 | |
Pellet Pestles with Microfuge Tube | VWR international | KT749520-0090 | |
Phase Lock Gel Light, 1.5 ml | Eppendorf | 2302800 | |
Phenol, Tris-saturated | Roche Group | 3117944001 | |
RNAse Away | VWR international | 17810-491 | |
RNAse-Free DNase Set | Qiagen | 79254 | |
RNEasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
SuperScript® First-Strand Synthesis System for RT-PCR | Invitrogen | 11904-018 | |
TRIzol | Invitrogen | 15596-026 |
References
- TRIzol Reagent Manual. , (2007).
- RNEasy Mini Handbook. , 4th ed, (2006).
- SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR. , Version E. (2003).