Summary
이 수술 기법은 마우스 눈의 subretinal 공간으로 유전자 치료 벡터와 줄기 세포의 주입을 보여줍니다.
Abstract
시력의 손실이 미국에서 약 3,400,000명에 영향을 미치는 향후 몇 년간 증가 할 것으로 예상된다. 최근 1 유전자 치료와 줄기 세포 transplantations는 망막 퇴행성 질환으로 인한 실명을 치료에 키 치료 도구가되었습니다. 이러한 홍채 색소 상피 세포 이식 등 연령 관련 황반 변성에 대한 autologous 이식의 여러 형태 (AMD)는 놀라운 결과를 생성하고, 인간의 임상 실험은 유전자와 줄기 세포 요법의 다른 형태에 시작했습니다.이 이는 RPE65 유전자 교환을 포함 Leber의 선천성 amaurosis과 Stargardt의 질병에 인간 배아 줄기 (ES) 세포를 사용하여 RPE 세포 이식 환자에서 치료. 3-4 이제 유전자 치료 벡터 및 망막 질환으로 환자를 치료에 사용할 수 줄기 세포가, 그걸 확인하는 것이 중요합니다 동물 모델에서 이러한 잠재적 인 치료 전에 적용인간의 연구에서 그들을 들죠. 마우스가 눈에 유전자 치료 벡터와 줄기 세포 이식의 치료 효능을 테스트하기위한 중요한 과학적 모델이되었습니다.이 동영상을 문서에 5-8, 우리는의 subretinal 공간으로 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포를 주입 할 수있는 기술을 제시 마우스 눈 주변 조직의 손상을 최소화하면서.
Protocol
1. Subretinal 사출을위한 장치 조립
- 구입 또는 유리 모세관에서 100 μm의 직경 바늘을합니다. 이것은 셔터 P-97 pipet을 끌어 당기는 또는 이와 유사한 장비를 사용하여 수동으로 수행 할 수 있습니다. 가 원하는 직경 (100 μm)에 도달 할 때까지 모세관 튜브의 끝을 가열하여 가져온 것입니다. 작은 직경 바늘은 유전자 치료 벡터에 사용 할 수 있지만,이 셀 또는 눈에 손상없이 세포 분사에 대한 권장 직경입니다. 강철 바늘에 비해 유리 모세관 바늘이 망막 파손의 원인이없이 주입 유체 및 subretinal 공간에 액세스 시각화를 위해 허용하는 아주 좋은하지만, 무딘 팁을 가지고 있습니다. 멸균 용기에 70 %의 에탄올 및 저장을 사용하여 필요한 경우이 당겨 바늘을 청소하십시오. 장소에 바늘을 가질 테이프 15cm 무균 조직 배양 접시에 주입 바늘이 적용하고 무균 환경에서 유지하는 방법 중 하나입니다. 이 시점에서, compl프로 시저가 개최됩니다 외과 객실 내에서 설정을 어서!. 그것은이 절차는 장벽 시설 내에서 수행됩니다 특히,이 무균 상태로 유지 될 수 있도록 항상 수술 방에 모든 장비를 유지하기 쉬운 것입니다.
- 주입 바늘에 실리콘을 기음과 바늘의 내부 벽을 따라 코팅을 떠나 실리콘를 꺼냅니다. 실리콘 코팅 달리 내부 유리 모세관 벽에 충실 것 바늘 구멍을 통해 세포 및 바이러스의 통로를 극대화 할 수 있습니다.
- (튜브에서 바늘을 제거) 직접 바늘 후 시점에서 luer 잠금을 설정 25 ¾ 게이지 혈액 컬렉션을 절단하여 멸균 플라스틱 튜브의 약 8cm 길이를 얻습니다.
- 멸균 식염수에 1 ML 하위 Q 26 5/8-gauge 슬립 - 팁 주사기를 작성하고 주사기에서 바늘을 제거합니다.
- 플라스틱 튜브의 절단 끝으로 주입 바늘을 부착하고 다른에서 luer 잠금에 주사기를 첨부끝.
- 튜브 및 모세 혈관 주사 바늘에 죽은 공간, 제대로 된 누설없이 연결되어 있는지 확인 할 수있는 주사 바늘을 통해 꺼내기 식염수를 채우기 위해 멸균 생리를 대기음. 다음으로, 주입 바늘의 끝으로, 공기의 작은, 약 1 μl 금액을 대기음. 이것은 분사 유체에서 염분을 분리하고 수술시 주입 유체의 끝을 나타내는 시각적 큐를 제공합니다. 분사 장치는 수술 중 70 % 에탄올로 닦여 깨끗한 표면에 보관해야합니다. 또한 수술 중에 사용되는 모든 장비는 이미 사용을위한 무균 준비가 보관해야 주입 바늘의 예외, 이전과 70 %의 에탄올과 이후 모두 청소해야합니다. 이러한 바늘은 수술 후에 폐기하고 있지만, 다시 사용됩니다.되어야한다
- 마지막으로, 원하는 패키지 유전자 치료 바이러스 성 벡터 또는 줄기 세포를 포함하는 사출 솔루션을 기음. 이것은하여 수행 할 수 있습니다다음 멸균 세포 배양 접시의 표면에 솔루션을 pipetting, 살균 pipet 팁에 주입 솔루션을 차지. 이 솔루션은 이제 쉽게 주사기를 사용하여 주입 바늘로 흡입 할 수 있습니다. 필요한 금액은 마우스의 나이에 따라 달라집니다. 우리의 목적을 위해 우리는 분사 유체의 0.5-0.8 μl를 주입 될 수 후 산후 5 일 마우스를 사용합니다. 작은 금액, μl 0.5 이하, 젊은 쥐와 같은 1 μl와 같은 큰 금액에 대해 사용할 수는 성인 마우스에 사용할 수 있습니다. 세포의 바이러스 titer이나 번호가 주입되는 바이러스 / 세포와 원하는 대상 조직에 따라 결정되어야합니다, 작은 볼륨에서와 같이 너무 많은 바이러스 입자 나 세포는 망막 세포에 대한 독성을 초래할 수 있습니다. 동영상에서는, 시각화의 목적으로, 우리는 1.5 μl, 눈에 삽입하는 데 필요한보다 염료의 큰 금액을 사용했습니다.
2. Subretinal 공간에 접근하기
- 무균 수술 방에,마우스의 나이에 따라 달라질 수 있습니다 로컬 승인 동물 처리 프로토콜에 따라 마우스를 안정화 또는 마취. 성인 마우스에 대한 일반적인 마취 isoflurane 가스 0.1 ml/10g 바디 케타민의 무게 (100 MG / ML)와 멸균 생리에 xylazine (20 MG / ML)의 내부 - 복막 분사의 사용이 포함되어 있습니다. perinatal 마우스의 경우 일반적인 마취 기술은 isoflurane 가스 나 cryoanesthesia (저체온증)의 사용을 포함합니다. 모든 마취 기술은 사용하기 전에 해당 지역의 IACUC위원회의 승인을 받아야합니다. 유사한 기술은 P0 또는 성인 마우스에 같은 어린애 마우스에 적용 할 수 있지만 우리는 일반적으로 (P) 후 산후 5 일 마우스를 사용합니다. 마우스가 다리와 더 이상 pinches을 발끝에 응답하지를 이동 중지 될 때까지 수술이 시작 수 없습니다. perinatal 마우스의 경우, 그들은 혈액의 흐름들이 완전히 마취하에 것을 알면, 다른 키를 느려지부터 색이 현저하게 가볍고 될 것입니다.
- perinatal 쥐에 Vannas 바로 가위를 사용하여 m폐쇄 뚜껑 균열 (fissure)을 따라 피해는 대략 1.5 mm 절개. 눈이 자연스럽게 미래에 열립니다 들여 쓰기에서 컷을주의하십시오. 이 뚜껑은 치유와 마우스의 개발 기간 동안 제대로 열립니다 보장합니다. 우리는이 사람들이 절차를 수행하는 동안 눈을 펑 쳐링의 위험을 줄일 수 있기 때문에 Vannas 가위를 선호하지만, 수술 블레이드는이 목적을 위해 사용할 수 있습니다. 동영상에서 가위는 눈꺼풀 여백을 따라 직접 주사 및 절개에 사용되었습니다. 이 기술을 학습 할 때, 포셉은 절단하기 전에 눈꺼풀을 들고 눈을 손상의 위험을 줄이기 위해 사용되어야합니다.
- 눈을 proptose하고 약간은 분사에 대한 proptosed 개최 할 수있는 눈 아래 눈꺼풀을 꼬집어보고 곡선의 드레스 집게로 눈꺼풀를 분열. 2 단계에서 만든 뚜껑 절개가 너무 큰 경우 눈 뚜껑 아래에서 실수로 주입 절차를 수행하는 동안 적절한 노출을 방지 할 수 있습니다. 박사와 함께 눈 주위에 약간의 압력을 가해 성인 마우스의 경우,포셉을 essing은 분사에 대한 proptosed 눈을 수용 할 수 있습니다.
- 작은 scleral에서 절개 또는 15도 미세 블레이드로 표면을 긁는하여 전 세계의 적도에 후부하십시오. 이 절개은 주입 바늘의 끝을 통과 할 수 밖에 대형 있지만, 그 이상은 아니 커야합니다. 선호 경우, 해당 침술 바늘 같은 작은 날카로운 바늘 대신 미세 블레이드의 subretinal 공간에이 절개를 만들기 위해 사용할 수 있습니다. 어둡게 색소 동물에서 어두운 갈색 색소 조직 (맥락막 - 망막 안료 상피) 절개의 시점에서 볼 수있게됩니다. 가벼운 색소 나 흰둥이 쥐에서 수술 마킹 펜은 절개 사이트를 나타내는 잉크 자리를 떠날 미세 블레이드의 끝에 적용 할 수 있습니다. 절개 사이트에서 깨끗한 (유리) 유체 refluxes 경우, 블레이드는 너무 깊은 위치와 유리 캐비티 및 치료 바이러스 나 세포가 분사 동안 intravitreal 공간을 입력 할 수 있습니다를 입력했습니다. visualizati에 대한목적에, 우리는 동영상의이 시점에 절개를 만들었습니다. 그것은이 경우 subretinal 주입을 완료 볼 수 있습니다, 그러나 주입 유체의 존재로 인한 망막 초연은 완전히이 마우스에 치료를하지 않을 수 있습니다. 따라서주의를 주입하기 전에 만 바깥 쪽 눈의 표면이 아니라 망막을 통해 잘라로 이동합니다.
- 조심스럽게 절개 사이트로 주입 바늘을 삽입하고 subretinal 공간을 입력 바깥 쪽 눈 벽에가 나란히 진출. 눈에서 바깥 쪽 벽에 너무 가까이거나 너무 깊이 발전하는 것은 잘못된 위치에 주사를 안내합니다. 바늘이 올바른 위치에 있는지 이해하는 가장 좋은 방법은 기술을 연습하는 것입니다. 가볍게 색소 나 흰둥이 쥐에서 연습하면 subretinal 공간으로 정밀하고 정확한 주사를 만들기 위해 도움이 될 수 있습니다. 바늘과 주입 유체이 눈에서 볼 수 있기 때문입니다.
- 주사기 플런저에 빛 압력을 적용하고있을원하는 유체의 진 분사. 바늘이 제대로 subretinal 공간에 배치되어있는 경우, 중간 backpressure는 느낌이 될 것입니다. 바늘이 유리 내에있는 경우, 분사 동안 훨씬 적은 backpressure 잠재적으로 어떤 액체 환류가있을 것입니다. 중요한 backpressure가있는 경우, 천천히 바늘을 제거하기 전에 적어도 추가 15 초 동안 자리에 바늘을 누르고 있습니다. 이 높은 안구 압력이 절개 사이트으로 다시 주입 바이러스 나 세포를 refluxing 대신 평준화 할 수 있습니다. 공기와 염분의 일부는 주입 절차를 수행하는 동안 필요한 압력을 증가로 인해 subretinal 공간에 주입 할 수 있습니다. 주의는 눈에서 주입 된 바이러스 나 세포를 제거 할 수 있기 때문에 공기 나 호수가 이상 - 주입하지 않도록해야합니다. 이 subretinal 공간에 주입 너무 유체의 존재에서 영구 망막 분리를 일으킬 수도 있습니다. 시각화를 위해, 초과 염료 및 공기 INT 주입 된동영상에서 subretinal 공간을 O. 그것은 명확하게 기포가 subretinal 공간에 남아 유리에 사라지지 않는 방법도 너무 많이 주입 된 경우 염료의 일부가 subretinal 공간이 다시 밖으로 내보냈되는 방법을 볼 수 있지만 할 수 있습니다. 이것은이 주사는 눈의 정확한 위치 내의 모든 있다고 강조하는 데 사용 된, 그래서 하나는 바늘이 절개 사이트를 입력하는 방법을 시각화 할 수 있습니다. subretinal 공간으로 모든 주사는 주입 유체의 존재로 인해 일시적으로 망막 분리의 원인이됩니다. 분사 절차가 제대로 완료되면,이 임시 망막 분리는 더 실험에 사용할 수있는 24 시간과 쥐 이내에 치유됩니다. 눈 수술로 인해 약 1 주일 동안 부드러운 남아있을 수 있습니다, 두 번째 분사가 시간이 기간 동안 피해야한다 그래서.
- 신생아 생쥐를 들어, 부드럽게 다시 뚜껑 뒤에와 궤도로 눈을 밀어 곡선 드레싱 포셉을 사용합니다. 그것은 유용 할 수 있습니다바이러스가 subretinal 공간 내에서 해결하고 부드럽게 궤도에 다시 눈을 밀어 때이 절개 사이트의 밖으로 내보냈 될 수 없습니다 수 있도록 잠깐만 기다리세요. 수술 후, 0.5 % bupivacaine 한 방울 (marcaine)은 주입 위치에 배치 할 수있는 25 게이지 바늘로 멸균 생리에서 0.25 %로 희석. 마우스 subretinal 수술 후 고통의 명백한 징후를 표시하지 않고 오랫동안 연기 화제 진통제로 bupivacaine의 사용은 이전 3 년 동안 충분한했습니다. 이러한 감염 등, 붓기, 또는 마우스의 통상적 인 일일 활동 감소, 마우스는 항상 고민의 흔적을 찾기 위해 수술 후 모니터링해야합니다. 이러한가 발생하면 수의사에게 통지해야하고 buprenorphine (0.05 밀리그램 / kg)와 같은 더 통증 약물은 intraperitoneal 주사로 제공 할 수 있습니다.
- 로컬 승인 동물 처리 프로토콜에 따라 마취에서 마우스를 시작해보십시오. 마우스는 난방이 안된다에 보관해야합니다가 마취에서 깨어으로 광고가 정상적인 체온을 유지합니다. 수술 절차는 마취를 받아야하는 마우스에 대한 시간을 계산하지가 완료 될 때까지 5 분 정도 소요됩니다. 따라서, 가열 패드는 실제 절차를 수행하는 동안 필요하지 않습니다,하지만 절차는 오랜 기간 걸릴 수로 하나가 기술을 학습하는 동안 필요할 수 있습니다. 자체에 이동하기 시작했다 때까지 마우스는 깨끗한 새장에 다시 배치하지 않아야합니다. neonates를 들어, 부드러운 냄새가 pinches 완전히 마취에서 회복하기 위해 그들에게 도움이 될 것입니다, 그들은 엄마와 함께 다시 배치되기 전에 자신의 핑크 색상과 움직임을 회복해야합니다. 이전 목록으로 쥐들이 스트레스의 징후가 시간이 지남에 따라 모니터해야합니다.
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Representative Results
마우스 눈의 그림을 intravitreal와 subretinal 모두 주입 수술 절차 (화살촉, 그림 1)의 위치를 표시하는 화살표로, 참조 표시 주요 구조로 표시됩니다. 예를 lacZ lentiviral 벡터 (그림 2)와 같은 유전자 치료 벡터는 이러한 위치를 사용하여 주입 할 수 있습니다. 또한, 이러한 마우스 배아의 줄기 세포 (그림 3)과 같은 줄기 세포는 또한 마우스 눈이 사이트에 이식 할 수 있습니다.
사이토 메갈로 바이러스 (CMV) 발기인 (1x10 8 TU / ML, Lentigen 공사, 그림 2A)에 의해 구동 lacZ의 리포터 유전자를 갖고 lentiviral 벡터의 1 μl은 C57BL/6J 마우스의 subretinal 공간으로 주입되었다. 눈이 무딘 절개로 세 6 주에 enucleated 1 MG / ML X-여자 솔루션 (5mM K 3 철 (CN) 6, 2 MM MgCl 2, 0.02 % NP 40, 0에 몰두했다.37 번 박 1 % 나트륨 deoxycholate) ° C. 눈은 30 분, 마이크로톰에 sectioned 2 % formaldehyde/0.2 %의 글 루타 알데히드에서 수정되었습니다. LacZ의 리포터 유전자 발현 (그림 2B) photoreceptor 세포의 약 10 % X-갤런 제품 (파란색)로 감지되었습니다. lacZ 표현과 그대로 주변 조직의 세포 존재는 마우스의 눈을 성공적으로 subretinal 주사를 나타냅니다.
C57BL/6J 마우스 배아 줄기 (ES) 세포는 녹색 형광 단백질 (eGFP, 웰컴 트러스트 Sanger 연구소)으로 분류되었다. 이러한 세포는 다음 1 μl 당 주입 약 1x10 5 세포를 가지고 수집 및 인산 버퍼 멸균 일시 중지 생리 및 사후 산후 하루의 subretinal 공간 (P) 5 C57BL/6J 마우스에 이식되었다. 눈 (조직 - 테크) 자당 기울기에서 수정 및 10월 퍼가기 매체에 냉동, 무딘 절개로 세 2 주에 enucleated했다. 눈이 sectioned과 마주했다 형광 현미경 (Zeiss)에서 ualized. GFP-라벨 ES 세포의 존재는 주입 마우스 눈 (그림 3A)의 subretinal 공간에서 찾을 수 있습니다. 또한, C57BL/6J-Tyr C-2j / J (C2J) 마우스 배아 줄기 (ES) 세포가 노란색 형광 단백질 (YFP)와 electroporated와 체외에서 망막 색소 상피 (RPE) 세포로 차별화했다. 차별화 한 달 후, YFP - 라벨 RPE 같은 C2J ES 세포는 인산 버퍼 멸균 일시 중지 생리와 P5 C57BL/6J 마우스의 subretinal 공간에 주입했다. 세 15 주가, 마우스는 망막에서 YFP의 존재 (Spectralis 스캔 레이저 공 촛점 검안경, 하이델베르크 공학, 그림 3B)에 대한 실시간 영상 autofluorescence를 사용하여 시각화했다.
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1 그림. 마우스 눈의 개략적. 만화 그림이 표시 intravitreal와 subretinal 모두 주입 절차 (화살촉)의 사이트로 마우스 눈의 구조를 묘사.
그림 2. 유전자 치료 바이러스 성 벡터의 Subretinal 주입. 사이토 메갈로 바이러스 (CMV) 발기인에 의해 구동 lacZ의 리포터 유전자를 보여주는 A. Lentivirus 벡터지도. 이후 산후 일 5 번 subretinal 주입 후 여섯 일주일 정도 C57BL/6J 마우스의 망막에있는 lacZ의 리포터 유전자의 B. 식. RGC, 망막 신경절 세포, INL, 내부 핵 계층, IS, photoreceptor 내부 세그먼트 (화살표), ONL, 외부 핵 층 (photoreceptors) (화살촉), OS, photoreceptor 외부 세그먼트.
그림 3. 마우스 배아 줄기 (ES) 세포의 Subretinal 주입. A. 이후 산후 일 5 번 녹색 형광 단백질 (GFP)이라는 ES 세포의 subretinal 주입 후 두 주간 오래된 C57BL/6J 마우스. GFP 양성 세포는 형광 현미경 (Zeiss)를 사용하여 주입 눈의 subretinal 공간 내에서 볼 수 있습니다. 녹색, ES 세포 (화살표) GFP-라벨, RGL, 망막 신경절 층, INL, 내부 핵 계층, ONL, 외부 핵 층 (photoreceptors), IS / OS, 내부 및 외부 photoreceptor 세그먼트, RPE, 망막 안료 상피. 노란색 형광 단백질의 존재 (YFP)라는 망막 내 RPE 같은 C2J 마우스 ES 세포에 대한 autofluorescence 라이브 영상을 (Spectralis 스캐닝 레이저 공 촛점 검안경, 하이델베르크 공학)를 사용하여 표시 B. 15 일주일 정도 C57BL/6J 마우스 망막.RPE 같은 YFP-ES 세포의 Subretinal 분사 후 산후 일 5시에 수행되었다.
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Discussion
이 비디오 기술은 성공적으로 subretinal 주입 수술 절차를 완료하고, 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포가 효율적으로 안과 질환을 치료하는 데 필요한 위치에 배치됩니다 있도록에 대한 지침을 제공합니다. 이것을 세포의 주변에 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포 유래 조직을두고 있기 때문에이 기술은, 이러한 RPE 또는 photoreceptors과 같은 망막 세포의 타겟팅 할 수 있습니다. 이전 방법은 유체가 유리 캐비티 내에 위치 intravitreal 주사를 포함하고 이러한 특정 지역을 타겟팅하기 위해 망막을 통해 마이그레이션해야합니다. Intravitreal 주입은 대상 photoreceptors 또는 RPE가 아닌부터 모든 바이러스 입자가 올바른 위치에 마이그레이션되는 유전자 치료 벡터의 전달을 감소시킨다. 또한, 줄기 세포는 병에 걸린 RPE 또는 photoreceptors을 대체하기가 점점 인기를 끌고 있으며, 이러한 차별화 된 세포는 하위 내 이식해야합니다망막 공간 5.
이 망막 분리 또는 주변 눈에 손상의 가능성을 감소와 함께 치료 효능을 가지고하기 위해 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포 유래 조직의 정확한 위치를 보장 때문에이 절차의 중요한 단계는 subretinal 공간에 항목입니다 조직. 케어는 미리 문제를 해결하기 위해주의해야하며 찾아 subretinal 공간으로 유체를 삽입 할 수 있습니다. 주입 바늘은 색소 마우스의 눈에서 볼 수 없습니다 때문에 비디오와 같이이 작업은, 색 염료와 흰둥이 마우스를 사용하여 연습을 통해 수행 할 수 있습니다. 연습 후, 연구자는 유체가 제대로 subretinal 공간에 배치하고 적시에 완료 할 수있는 수술 절차에 편안하게되어 압력의 차이를 느낄 수 배우게 될 것입니다.
이 수술을위한 잠재적 인 수정이 있습니다. 이 주사는 수행 할 수 있습니다다른 연령대의 마우스에 에드, 주입 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포 유래 조직의 양이 마우스의 연령에 따라 다릅니다 수는 있습니다. 주의 얼마나 많은 유체는 안과 질환에 대한 치료를 홍보하지만 분리 및 망막에 손상을 연장하지 않습니다 결정하기 위해주의해야한다. 가져온 모세관 바늘이 다른 직경을 가지고 수정할 수 있습니다. 작은 바늘은 바이러스 주사에 충분한 있지만, 큰 직경 세포 이식을위한 더 나은 수 있습니다. 또한, 수술은 성인 쥐에서 수행 할 수 있습니다. 안구 조직 밀도가 훨씬 커야하므로, 신선한, 날카로운 수술 블레이드는 subretinal 공간으로 침투 할 필요가 있습니다. 모든 경우에, 수정은 유전자 치료 벡터 또는 줄기 세포 유래 조직을 성공적으로 subretinal 주사를 완료하려면이 프로토콜을 기반으로 만들 수 있습니다.
모든 subretinal 주사는 내 주입 유체의 존재로 인해 일시적으로 망막 분리가 발생합니다subretinal 공간,하지만,이 분쟁은 수술 후 24 시간 이내에 치료를해야합니다. 마우스는 신중하게 남아있는 부대에 대한 현미경으로 확인하실 수 있습니다. 그것은 어떤 쥐도 잘 쏴서 주입 한 후 자연적으로 치료를하지 않을 수 있습니다. 모든 마우스는 검사를 받아야 할 수 있습니다 및 최대 일주일이 24 시간 시간 동안 다음과 같은 실험 그러나 눈 때문에 사출 절차와 압력의 변화에 부드러운 될 수 있습니다. 따라서,이 기법 중 하나 제한은 첫 번째 수술 주 동안 보조 주사을 수행 할 수있는 능력입니다. 수술 후 치료를하지 않는 망막 손상이 발생이 증가되어 있기 때문에 또 다른 주입은 즉시 수술 기간 동안 수없는 경우가 있습니다. 그것은 마우스 눈을 다시 주입하기 전에 같은 긴 달로, 오랜 기간 동안 기다려 좋습니다.
마우스 안과 질환과 잠재적 인 치료 t을 연구하는 중요한 모델 생물이되었다모자는 인간의 임상 실험으로 이어질 것입니다. 그들은 유전자 변형 마우스 모델 에서처럼 9-12이 절차의 두 번째 한계는, 모든 셀이 subretinal 주입에 따라 DNA 벡터와 transfected된다는 것입니다. 그러나,이 절차는하지 않는 셀이 transfected되어 인간의 임상 절차를보다 밀접하게 대략적인 수도 있습니다. 따라서이 기술은 유전자 치료 바이러스 성 벡터 또는 연령 관련 황반 변성과 인간의 다른 vitreoretinal 질병을 치료하는 줄기 세포 유래 세포 이식 치료의 가능성을 확립하는 데 도움이 될 수 있습니다. 미래의 응용 프로그램이 트리트먼트의 조합을 사용하여 서로 다른 망막 세포 추구하고 차별화 된 줄기 세포, 또는 여러 개의 주사의 사용을 포함 할 수 있습니다.
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Disclosures
관심 없음 충돌이 선언 없습니다.
Acknowledgments
타카유키 나가사키에서 실험 지원; 실명 방지를위한 조사이 연구는 안과 및 Visual 연구에서 동물의 사용에 대한 ARVO 보호 정책을 준수합니다. KJW는 NIH 보조금 5T32EY013933 및 5T32DK007647-20에 의해 지원됩니다. VBM은 NIH 보조금 K08EY020530에 의해 지원됩니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.8-1.10 x 100 mm Capillary Tube (glass) | Kimble Glass, Inc. | 34502 99 | |
| Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instrument | P-97 | Narishige microforge can be used instead. Catalog #MF-900 |
| Sigmacote | Sigma Aldrich | SL2-25ML | Silicone |
| Dubecco's Phosphate Buffered Saline with Calcium Chloride and Magnesium Chloride | Gibco-Invitrogen | 14040-133 | |
| Safety-Lok 25 3/4G x 12"; Blood Collection Set | B-D Vacutainer | 367298 | |
| 1 ml Sub-Q 26 5/8G Slip-Tip Syringe | Becton-Dickinson | 309597 | |
| 0.5-10 μl Finnpipette II Adjustable-Volume Pipetter | Fisherbrand | 21-377-815 | |
| 1-200 μl Natural Beveled Tips | USA Scientific, Inc. | 1111-1700 | |
| Discovery.V8 Stereo Microscope | Zeiss | MC1500 | |
| 60 mm x 15 mm Style Treated Polystyrene Cell Culture Dish | Corning Incorporated | 430166 | |
| Vannas Straight Scissors | Storz Ophthalmics | E3383 S | |
| Curved Dressing Forceps with Serrations Delicate | Storz Ophthalmics | E1408 | |
| 15 Degree Microsurgery Knife | Wilson Ophthalmic Corp. | 091204 | |
| Ketamine | Ketaset III | NADA #45-290 | |
| Xylazine | Lloyd Laboratories | NADA #139-236 | |
| Bupivacaine (Marcaine) | AstraZeneca | N/A | |
| Buprenorphine | Sigma Aldrich | B9275 |
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