Summary
胰岛微血管血管舒缩调节胰岛血液分布, 维持胰岛β细胞的生理功能。本协议描述了使用激光多普勒显示器测定胰岛微血管血管舒缩在体内的功能状态, 并评估胰岛微循环对胰腺相关疾病的贡献。
Abstract
微血管血管舒缩作为微循环的功能性状态, 对于氧气和养分的输送以及二氧化碳和废弃物的去除具有重要意义。微血管血管舒缩的损伤可能是微循环相关疾病发展的关键步骤。此外, 高血管化胰岛适应内分泌功能。在这方面, 似乎可以推断胰岛微血管血管舒缩的功能状态可能影响胰岛功能。胰岛微血管血管舒缩功能状态的病理变化分析可能是确定胰岛微循环对相关疾病如糖尿病的贡献的可行策略,胰腺炎,等。因此, 本协议描述使用激光多普勒血流监测仪确定胰岛微血管血管舒缩的功能状态, 建立参数 (包括平均血流灌注、振幅、频率和相对胰岛微血管血管舒缩的速度, 用于评价微循环功能状态。在链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠模型中, 我们观察到胰岛微血管血管舒缩功能状态受损。总之, 这种评估胰岛微血管血管舒缩在体内的方法可能揭示与胰岛疾病有关的机制。
Introduction
微血管血管舒缩作为微循环功能状态的一个参数, 负责氧气、营养素和荷尔蒙的传递和交换, 对去除代谢产物, 如二氧化碳和细胞浪费至关重要。1. 微血管血管舒缩还调节血液流量分布和组织灌注, 从而影响局部微循环血压和炎症反应, 可诱发多种疾病的水肿。因此, 微血管血管舒缩对维持器官的生理功能非常重要2, 3, 4, 组织和组件单元格.微血管血管舒缩的损害可能是发展微循环相关疾病的关键步骤之一5。
激光多普勒初步发展为观察和定量在微循环研究领域的6。该技术与其他技术方法 (例如,激光散斑7, 经皮氧,等) 一起被认为是评价微循环血流的黄金标准。根据多普勒移位原理, 用激光多普勒装置测定局部微循环 (即,毛细血管, 动脉, 静脉,等) 的血流灌注的基本原理。当光粒子遇到微血管中的运动血细胞时, 受激发射光的波长和频率会发生变化, 或者保持不变。因此, 在微循环中, 血细胞的数量和速度是与多普勒转移光的大小和频率分布有关的关键因素, 而微血管血流方向则无关紧要。使用不同的方法, 各种组织已被用于微循环研究, 包括 mesenteries 和背皮脂室的小鼠, 大鼠, 仓鼠, 甚至人类8。然而, 在本协议中, 我们重点研究胰岛微血管血管舒缩的功能状态, 用激光多普勒和自制的评价参数系统进行评价。
胰岛微循环主要由胰岛微血管构成, 表现出鲜明的特征。胰岛毛细血管网络显示五倍以上的密度比毛细管网络的外分泌对应9。胰岛内皮细胞提供输入葡萄糖和传播胰岛素的导管, 将氧气传递给胰岛β细胞代谢活性细胞。此外, 新的证据也表明, 胰岛微血管不仅涉及调节胰岛素基因表达和β细胞生存, 而且还影响β细胞功能;促进β细胞增殖;并产生一些血管活性、血管生成物质和生长因子10。因此, 在这方面, 我们推断胰岛微血管血管舒缩的功能状态可能影响胰岛β细胞功能, 并参与疾病的发病机制, 如急性/慢性胰腺炎, 糖尿病等与胰腺有关的疾病。
分析胰岛微血管血管舒缩功能状态的病理变化可能是确定胰岛微循环对上述疾病贡献的可行策略。详细的分步过程描述的方法, 以确定胰岛微血管血管舒缩在体内提供这里。然后, 将在代表性结果中显示典型的度量值。最后, 在讨论中突出显示方法的优点和限制, 以及进一步的应用程序。
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Protocol
所有动物实验都是按照所有相关的指导方针、法规和监管机构执行的。目前正在示范的这项议定书是在北京协和医学院 (PUMC) 的微循环动物伦理委员会 (IMAEC) 的指导和批准下进行的。
1. 动物
- 实验开始前, 在 5%-小时的光暗循环下, 保持每笼三 BALB 小鼠, 控制温度 (24 1 摄氏度) 和湿度 (55 @ 12)。允许老鼠免费获得正常的食物和水。
- 将小鼠随机分为非糖尿病对照组和糖尿病组。用每只老鼠的身体质量准确地称量每只老鼠并计算注射量。
- 在4小时内快速的小鼠在链脲佐菌素 (STZ) 注射和提供常规水正常的实验日1。
- 在 pH 值4.3 上制备0.1 米柠檬酸钠缓冲液。将1毫升的溶液放入一个1.5 毫升的离心管中, 用铝箔包裹离心管, 以避免光线暴露。
- 在使用前, 将在柠檬酸钠缓冲液 (pH 4.3) 中的 STZ 分解为5毫克/毫升的最终工作浓度。
- 用1毫升注射器和25克针, 用40毫克/千克的剂量, 给糖尿病组腹腔注射 STZ 的老鼠。用相同体积的柠檬酸钠缓冲液注射非糖尿病控制的小鼠 (pH 为 4.3)。
- 把老鼠放回笼子里, 用普通的食物和10% 的蔗糖水供给它们。
- 在实验日2到 5 (即,连续4天) 重复步骤 1.3-1.7。
- 在最后一次注射后, 用常规水代替10% 的蔗糖水。
- 将小鼠快速6小时, 但给他们免费获得水, 并测量他们的血糖水平九天后 (实验日 14)。从尾部静脉收集血液样本, 用血糖监测系统确认高血糖。
注: 血糖水平 > 200 毫克/dL 的老鼠被认为是糖尿病。
2. 文书的编写
- 用软的非研磨布清洁激光多普勒装置探头尖端和探头接头的光学表面, 以除去任何灰尘或微粒。将电缆插入仪器的端口 (图 1A)。
- 通过允许焊剂标准与实验环境 (室温, 通常为30分钟) 的热平衡来装配校准架。轻轻摇动焊剂标准十年代, 让它休息2分钟。
- 将通量标准容器放置在校准基座的中间。将夹具调整到最大高度, 并将夹具中的探头固定, 使其向下指向容器。确保磁通标准正确定位在探头下方。
- 慢慢地将探头向下移动, 直到刀尖正确地浸入通量标准中。选择并按下激光多普勒装置的 "校准", 选择探头连接到的工作通道。运行校准程序, 直到 "校准成功" 的通知显示在屏幕上的激光多普勒仪器。
- 使用探头持有者来保护探头。手动保护探头以避免移动。
- 保持实验室恒温 (24 1 摄氏度) 和湿度 (~ 50-60%)。
- 在进行实验前, 关闭任何外部光源 (如荧光灯和光斑灯), 以避免外部光线诱发的变化。
3. 动物的准备
- 对手术器械进行高压灭菌, 在使用前使其降温至室温。
- 用激光多普勒检测胰岛微血管血管舒缩, 给小鼠10分钟的适应实验环境。
- 用1毫升3% 戊巴比妥钠填充1毫升注射器。注射戊巴比妥钠溶液 (75 毫克/千克 ip) 麻醉小鼠。
- 用预湿的医用纱布遮住老鼠的眼睛, 以防干燥。
- 确保鼠标完全失去知觉, 不再响应尾巴或 hindfoot 捏钳。在麻醉和手术中每15分钟监测麻醉情况, 必要时补充10% 的戊巴比妥溶液的初始注射量。
- 在动物下方放置一个半绝缘层的加热垫, 将动物置于仰卧位置, 将其转移到激光多普勒装置的工作台。用手术胶带将鼠标固定在工作平台上。
- 用 betadine 拭去老鼠的腹部皮肤, 然后用75% 乙醇擦拭腹部清洁。
- 注射2% 利多卡因/0.5% 布比卡因 (50/50) 混合物皮下。 在纱布海绵的中心切一个直径为3厘米的孔。用纱布海绵覆盖腹部区域。
- 用手术刀或皮剪刀在腹部中线上用镊子抬起腹部皮肤。
- 用钳和切口抓住底层肌肉进入腹腔。不要伤害任何器官。将皮肤和底层肌肉折叠在胸前, 露出腹腔。用一双钝鼻钳轻轻地将胰体和脾脏暴露出来。
4. 数据获取分析
- 通过点击 "文件" → "新建" 来创建一个新的测量文件, 运行激光多普勒装置的软件。要配置已连接的监视器, 请在 "常规" 选项卡下, 将监视持续时间设置为 "自由运行"。使用出厂默认值 "监视器" 选项卡. 单击 "下一步"。
- 在 "显示设置" 对话框中设置图形显示。通过检查各个框, 选择 "通量、轻质、速度" 通道。选择以下参数: "通道的数据源" 和 "标签、单位和颜色"。单击 "下一步"。
- 在 "文件信息" 对话框中输入有关主题和度量 (即名称和主题编号、运算符、监视时间、注释、等) 的用户信息, 然后单击 "下一步" 以完成测量配置。
注意: 测量窗口由软件自动创建 (图 1B)。 - 手动将电极推进胰腺。确保探头与胰腺组织之间的距离在1毫米以内。不适当的距离会人为地增加或减少血流读数。
- 单击 "开始" 工具栏图标开始记录微血管血流灌注单元 (PU) 数据。每次运行时连续收集 PU 数据1分钟。单击 "停止" 以停止测量。选择 "文件" → "另存为" 以命名并保存完成的测量文件。
- 每次运行后手动重新定位探头, 以避免附加效果和收缩和松弛容量的局部耗尽。重复步骤 4.1-4.4 收获多点 (即,三随机选择点从胰腺组织) 微血管 PU 数据为每只老鼠。测量非反射板的 PU 数据作为基线控制。
- 用缝合闭合腹部肌肉层和皮肤层。实验后把动物放在干净的笼子里。
- 把恢复笼半放在加热垫上, 保持动物的保暖。
注意: 注意保暖、卫生、液体和食物摄取, 以及感染。对2毫克/千克卡洛芬的小鼠进行48小时的术后疼痛管理。 当观察到小鼠处于严重的疼痛或窘迫状态时, 注射150毫克/千克戊巴比妥钠, 以此来进行安乐死。
5. 微血管血管舒缩参数的计算
- 使用激光多普勒软件的 "导出" 命令将时间和 PU 原始数据导出为 xlsx 文件, 并在电子表格中打开该文件。
- 计算平均基线灌注单元 (PUb) (请参见步骤 4.6)。
- 计算平均血液灌注 (pua) 的测量值为1分钟, 如下所示: 平均血液灌注 (pua) = 浦-浦b (等式 1)。
- 计算每1分钟测量的频率 (周期/分钟)。
注: 微血管血管舒缩的频率定义为每分钟微血管血管舒缩波发生的峰值数。 - 计算每1分钟测量的振幅 (ΔPU)。
- 计算微血管血管舒缩的振幅为最大值 (浦max) 和最小值 (浦min) 的差异: 振幅 (ΔPU) =PU最大-浦最小 (等式 2)。
- 计算每1分钟测量的相对速度 (PU)。
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Representative Results
在图 1A中显示了配备半导体激光二极管的微血管血管舒缩测量激光多普勒装置的照片。用户界面软件显示在图 1B中。采用上述方法, 对非糖尿病对照和糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的血流动力学参数进行检测。许多技术, 包括激光多普勒血流仪, 反射和散射光, 红外光谱和成像技术, 已被用来研究微血管血管舒缩, 因为它是首次定义。表 1总结了使用激光多普勒技术确定微循环在糖尿病和相关疾病中的作用的研究组和发表的文章。
一般情况下, 胰岛的微循环条件以胰岛微血管血管舒缩的功能状态为代表, 其微血管参数包括平均血流灌注、振幅、频率、相对速度 (图 2)。代表性微血管血管舒缩原理图主要由周期性收缩和松弛阶段组成(图 2A)。血流动力学现象为微血管网络中的血液流量灌注提供了一种模式。采用激光多普勒仪采集的 PU 数据绘制图散图, 显示微血管血流灌注的分布规律。在目前的协议中, 胰岛微血管血流灌注在非糖尿病和糖尿病小鼠中的分布模式完全不同 (图 2B)。与非糖尿病对照组相比, 糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的血流灌注量较低。胰岛微血管血管舒缩的收缩和松弛节律在 STZ 诱导的糖尿病小鼠中是混沌和不规则的, 而非糖尿病控制则有节律性振荡(图2C 和图 2D). 在图 2C和图 2D的虚线中提取胰岛微血管血流灌注的 5-s 数据, 表明糖尿病小鼠胰岛微血管血流灌注的混沌变化丧失了调节胰岛微血管血管舒缩功能状态的能力, 应在血糖fluctuation(图 2E) 中发生。
此外, 为了应对高血糖, 胰岛需要 sufficient 和 biorhythmic 血flow 灌注来输送胰岛素。以 PU 剖面为基础, 对胰岛微血管血管舒缩参数 (包括平均血流灌注、振幅、频率和相对速度) 进行了计算和定量分析。如图 3所示, 与非糖尿病对照组相比, STZ 诱导的糖尿病小鼠胰岛微循环的平均血流灌注减少 (图 3A)。同时, 糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的振幅(图 3B) 和频率(图 3C) significant 减少。糖尿病组胰岛血流灌注的相对速度明显降低, 与非糖尿病对照比较 (图 3D)。如上文所述, 糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的功能状态受损。我们推测, 节律异常, 伴随着胰岛微血管血管舒缩的频率、振幅和相对速度的降低, 可能导致微血管血流 deficiency, 从而损害胰岛β细胞并减少胰岛素分泌。
图1。用于测定胰岛微血管血管舒缩体内的仪器。A.用于测定小鼠胰岛微血管血管舒缩的测量仪器的照片。探头插座和激光开关按钮在左面板中。液晶显示器在中间板上。菜单按钮 (即,向上、向下和 enter 按钮) 和电源发光二极管位于右侧面板中。不显示外围设备 (即计算机和电缆)。B.截图, 说明了激光多普勒仪器软件的典型元素和图形通道。"通量"、"轻质"、"DC" 和 "速度" 测量读数显示在图形通道中。"通量" 代表组织微血管血流灌注, "轻质" 代表组织微血管血细胞浓度, "DC" 代表反射光的平均强度, "速度" 代表微血管血流的相对速度。请单击此处查看此图的较大版本.
图2。胰岛微血管血管舒缩在小鼠中的功能状态。采用激光多普勒仪对胰岛微血管血管舒缩的血流灌注进行评估, 并对其功能状态进行分析。A.与微血管血管舒缩有关的参数示意图。Ac 代表微血管血管舒缩收缩的振幅, Ar 代表微血管血管舒缩松弛的振幅, Tc 代表微血管血管舒缩收缩时间的长短, Tr 代表时间的长短微血管血管舒缩松弛。B.非糖尿病和糖尿病小鼠胰岛微血管血流灌注的分布规律。红点: 非糖尿病小鼠。蓝点: 糖尿病小鼠。绿线虚线显示非糖尿病和糖尿病微血管血流灌注模式之间的分界。以血flow 动态微血管灌注为基础, 对对照组胰岛微血管血管舒缩进行了评价. 以血flow 动态微血管灌注为基础, 对糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩进行了评价. E.图示 (5 s 范围) 胰岛微血管血管舒缩在非糖尿病控制和糖尿病小鼠之间。红线: 非糖尿病控制。蓝线: 糖尿病小鼠。浦: 灌注单元。请单击此处查看此图的较大版本.
图3。胰岛微血管血管舒缩参数的Quantification。对非糖尿病对照组和糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩参数, 包括平均血流灌注、振幅、频率和相对速度进行了分析比较。A. Quantification 非糖尿病和糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的平均血流灌注 (PU/分钟)。糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的B. 振幅 (ΔPU) 、 C. 频率 (循环/分钟)和D. 相对速度 (PU) 比非糖尿病对照小鼠低。微血管血管舒缩的振幅计算为最大值 (浦max) 和最小 (pu最小) 之间的差异。微血管血管舒缩的频率被定义为每分钟微血管血管舒缩波发生的峰或谷数。这些数据在每个组中都显示为平均 * SD (n = 6)。*p < 0.05, **P < 0.01。请单击此处查看此图的较大版本.
| 疾病 | 对象 | 装置 | 裁判编号 |
| 内皮功能 | h | LSCI | 11、12、等 |
| dn | H、R | ldf | 13、14、15、等 |
| 博士 | h | ldf | 16、17、18、等 |
| 皮肤/皮肤微循环 | h | ldf | 11、19、20、等 |
| 心脏微循环 | 研发 | ldf | 21 |
| 听力障碍 | m | ldf | 22 |
| DN, 糖尿病神经病。糖尿病视网膜病变激光多普勒血流仪。 | |||
| LSCI, 激光散斑对比成像。R, 老鼠。H, 人类, M, 老鼠。 | |||
表1。微循环在糖尿病及其并发症中的作用.研究小组使用激光多普勒来确定微循环在糖尿病及其并发症中的作用数十年。最近几年的相关文章在这里列出。这些发表的文章主要集中在内皮功能障碍, 糖尿病神经病 (DN), 糖尿病视网膜病变 (DR), 皮肤和皮肤微血管损伤, 以及相对罕见的并发症, 如心脏微循环障碍和听力损害.DN: 糖尿病神经病变。糖尿病视网膜病变。激光多普勒血流仪。LSCI: 激光散斑对比成像。R: 老鼠。H: 人类。M: 老鼠。
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Discussion
在涉及微血管功能障碍的病例中 (例如,糖尿病、急性胰腺炎、周围微血管疾病、等), 一些疾病导致血流减少。除了血液流动的变化, 还有重要的指标, 如微血管血管舒缩, 反映微循环的功能状态。具体指标, 微血管血管舒缩, 一般被定义为微血管的音调在微血管床上的振荡。在本协议中, 微血管血流灌注监测系统允许对微血管血管舒缩的功能状态进行直接的可视化和定量分析。我们的微循环评估方法可以选择性地应用于靶组织和器官, 通过确定血液灌注的动态变化。其他团体发表的关于使用激光多普勒来确定微血管血流灌注在糖尿病及其并发症中的作用的报告摘要载于表 1。在本研究中, 为了证明我们的方法, 对糖尿病小鼠胰岛微血管血管舒缩的功能状态进行了评价。
微血管血管舒缩被认为是微循环功能状态的参数, 通过调整局部组织中的分布23, 可以调节血流灌注。胰腺的微血管, 可分为胰岛, 腺泡细胞和导管, 已经研究了数十年。基本上, 这种分离的胰腺成不同的部分是为了方便, 只是因为微血管实际上是互联和同类作为一个有机实体24。该微血管网络支持胰岛血流的调节。因此, 我们利用激光多普勒测定的功能状态参数来表示胰岛微血管血管舒缩。然而, 由于胰腺结构的特点, 在应用现有方法确定血液灌注是否来源于内分泌部分或胰腺外分泌部分时, 仍未做出判断。使用胰岛特定的标记染料, 如双硫腙和中性红色, 可能成为理解这个问题的可能方法之一, 至少在某种程度上。
测量步骤的一个重要方面是探针和胰腺组织之间的距离。不适当的距离会人为地增加血流读数。通过探针尖端应用于组织和器官的物理力将减少微血管血流。因此, 在测量时应采用最小压力。另一点值得注意的是激光器的威力。高功率激光器通常容易损伤胰岛的微血管, 因此激光束的频率需要控制, 在限制范围内。对于一般和时间测量, 建议使用1赫兹或更低频率。为避免微血管血管舒缩容量 (包括收缩和松弛) 的局部耗竭和附加效应, 在任何实验中建议每次测量后多点测定和重新定位。
在目前的方法中, 用 PU 数据表示微血管血流的血流量。由于微循环中微血管血流的特点, 确定绝对流动单位 (如特定器官或组织的 mL/min/100 g) 是不可行的。因此, 本文所用的评价参数系统是以相对血流灌注单元为基础的。小波分析、快速傅里叶变换等频谱分析算法是进行激光多普勒信号的常用方法。在本议定书中, 我们建立了一种使用血流动力学参数 (即血流灌注、振幅、频率和相对速度) 的方法来显示微血管血管舒缩的功能状态。此外, 测量的准确度与目标的深度和探头设计的精度有关, 一般约为1毫米。因此, 较厚或紧凑的器官和组织可能不适用于激光多普勒的应用和目前的方法。另外, 由于血流灌注所产生的数据可能会受到其他引起明显变化的条件的影响, 包括温度、湿度、外部光线以及小鼠位置的改变, 应遵守一些规则。在实验过程中。实验室需要保持恒温和湿度, 外部照明需要屏蔽。建议修复小鼠以避免位置上的变化。认为这些策略可以克服上述局限性, 提高血流灌注数据的准确性。
本议定书与文献中所报道的其他研究相比, 其优点是对组织和器官局部微血管血管舒缩敏感, 反应灵敏。这将有助于在临床和实验研究中更广泛地应用这种方法来评估或调查微循环, 特别是微血管血管舒缩的功能状况。这些应用包括但不限于: 缺血可视化、血液灌注评估和微血管血管舒缩功能状态的评估。结论: 本方法可用于对小鼠胰岛微血管血管舒缩的功能状态进行调查和评价, 并可满足临床上对微循环功能的评价。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项工作得到了北京协和医学院青年基金和中央大学基础研究基金的资助 (3332015200 号赠款)。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| MoorVMS-LDF2 | Moor Instruments | GI80 | PeriFlux 5000 (Perimed Inc.) can be used as an alternative apparatus to harvest data |
| MoorVMS-PC Software | Moor Instruments | GI80-1 | Software of MoorVMS-LDF2 |
| Calibration stand | Moor Instruments | GI-cal | Calibration tool |
| Calibration base | Moor Instruments | GI-cal | Calibration tool |
| Calibration flux standard | Moor Instruments | GI-cal | Calibration tool |
| One Touch UltraEasy glucometer | Johnson and Johnson | #1955685 | Confirm hyperglycemia |
| One Touch UltraEasy strips | Johnson and Johnson | #1297006 | Confirm hyperglycemia |
| Streptozotocin | Sigma-Aldrich | S0130 | Dissolve in sodium citrate buffer (pH 4.3) |
| Pentobarbital sodium | Sigma-Aldrich | P3761 | Working concentration 3 % |
| Ethanol | Sinopharm Inc. | 200121 | Working concentration 75 % |
| Sucrose | Amresco | 335 | Working concentration 10 % |
| Medical gauze | China Health Materials Co. | S-7112 | Surgical |
| Blunt-nose forceps | Shang Hai Surgical Instruments Inc. | N-551 | Surgical |
| Surgical tapes | 3M Company | 3664CU | Surgical |
| Gauze sponge | Fu Kang Sen Medical Device CO. | BB5447 | Surgical |
| Scalpel | Yu Lin Surgical Instruments Inc. | 175C | Surgical |
| Skin scissor | Carent | 255-17 | Surgical |
| Suture | Ning Bo Surgical Instruments Inc. | 3325-77 | Surgical |
| Syringe and 25-G needle | MISAWA Inc. | 3731-2011 | Scale: 1 ml |
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