Summary
本文提出了一种利用光致硫醇烯/硫醇-yne hydrothiolation 构建硫醚类/乙烯基硫化物栓系螺旋肽的协议。
Abstract
在这里, 我们描述了一个详细的协议, 以制备硫醚类栓肽使用在树脂内分子内/分子间硫醇-烯 hydrothiolation。此外, 本议定书还描述了用溶液中内硫醇-yne hydrothiolation 在 i、i+4 位置上具有烯烃/炔烃侧链和半胱氨酸残留物的乙烯基硫化物栓系肽的制备。采用标准的 n-芴甲氧羰基基固相肽合成 (许可证) 合成了线性多肽。硫醇烯 hydrothiolation 是使用分子内的硫原子-烯反应或分子间硫-烯反应, 取决于肽的长度。在本研究中, 在对短肽的情况下, 用脱的三苯甲酯的树脂在全合成了线性肽后, 对其进行了分子内硫-烯反应。然后将树脂设置为紫外线照射, 使用光 4-methoxyacetophenone (MAP) 和 2-羟基 1-[4-(2-hydroxyethoxy)-苯基]-2-甲基-1-丙酮 (基质)。在n-、n-甲基酰胺 (DMF) 溶剂中溶解 n-芴甲氧羰基胱氨酸-OH, 进行分子间硫醇烯反应。然后用树脂上的烯烃残留物对肽进行反应。之后, macrolactamization 使用 benzotriazole-1-yl-oxytripyrrolidinophosphonium 六氟磷酸盐 (PyBop)、1-hydroxybenzotriazole (对 hobt) 和 4-甲基啉) (NMM) 作为活化试剂在树脂上进行。随着 macrolactamization, 肽的合成继续使用标准许可证。在硫 yne hydrothiolation 的情况下, 线性肽从树脂中分解, 干燥后溶解在脱气 DMF 中。然后使用紫外光与光 22-藜-2-phenylacetophenone (DMPA) 进行辐照。反应后, 采用高效液相色谱法 (HPLC) 对 DMF 进行了蒸发, 并对粗渣进行沉淀纯化。这些方法可用于简化硫醚类栓循环多肽的产生, 因为使用的硫烯/yne 单击化学具有优越的功能群耐受性和良好的产量。将硫醚类键引入多肽, 利用了半胱氨酸残留物的亲核性质, 并与二硫键的氧化还原惰性有关。
Introduction
配体对蛋白质-蛋白质相互作用的调节 (PPIs) 的发展为现代药物发现提供了一种有吸引力的方法。因此, 我们投入了大量的精力研究新的化学模式, 可以有效地调节 PPIs1,2,3。PPIs 一般由浅, 大, 和/或停止相互作用的表面组成, 小分子通常被认为是不合适的配体为 PPIs4,5的调制。利用合适的暴露交互表面积, 模拟蛋白质界面结构特征的短肽代表了解决这个问题6,7的理想候选者。然而, 短肽通常是非结构化的水溶液。这是由于水分子与肽骨干和定义构象的分子内氢键网络竞争, 在水8中由熵不利。此外, 肽的固有低稳定性和细胞渗透性的特性在很大程度上限制了它们在生物应用中的应用9,10。根据蛋白质数据库 (PDB) 分析, > 50% 的 PPIs 涉及短α螺旋相互作用11。因此, 在螺旋稳定方面发展了不同的化学方法。这些包括二硫化物或硫醚类债券形成12,13,14, 圆环闭合置换15, 内酰胺圆环形成16, "点击" 化学17, 加法perfluoroarenes18,19, 和乙烯基硫化物形成20。
稳定的螺旋肽广泛用于各种细胞内靶, 包括 p53, 雌激素受体, Ras, BCL-2 家族蛋白, 其他21,22,23,24。ALRN-6924 是 MDM2 和 MDMX 的全烃类钉式双肽抑制剂, 目前正被用于临床研究25。在过去的几年中, 我们的小组重点研究了使用硫醇烯和硫醇-yne 反应26,27,28的新的肽稳定方法的发展。总的来说, 我们已经证明, 这些照片引发的反应是有效的温和条件下, 自然丰富的半胱氨酸使用。此外, 我们已经表明, 这些反应具有良好的功能组耐受性, 是生物正交, 并已被证明适用于肽和蛋白质的修改29。由此产生的硫醚类/乙烯基硫化物栓肽在很大程度上改善了约束肽的化学空间, 提供了一种不稳定的系绳修饰中心, 并被证明适用于许多生物应用30 ,31,32。迄今为止, 只有有限的报告被描述的硫醇烯/硫醇-yne 肽环合。在2009年发表的一项研究中, Anseth 了活性烯烃与半胱氨酸之间的肽环合的树脂内分子硫醇烯反应.在 2015年, 秋等。描述了一个双组分基启动的硫醇烯反应的肽吻合34和随后的, 顺序硫醇-yne/烯偶联反应35。最近, 我们描述了一系列的工作基于硫醚类/乙烯基硫化物栓肽20,26,27。本议定书描述了上述硫醚类/乙烯基硫化物栓肽的详细合成, 希望这将有助于更广泛的研究社区。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. 设备准备
- 对于手动多肽合成装置, 放置一个真空流形 (材料表) 在一个有效的油烟机罩。接下来, 将三路 stopcocks 到真空流形上, 并将其连接到氮气或氩气线。使用橡胶隔膜盖所有未使用的入口。
- 使用三路 stopcocks 连接树脂填充柱 (0.8 x 4 厘米, 10 毫升储层, 见材料表) 到歧管 (图 1)。使用与真空系统连接的泵作为真空过滤器或橡胶吸管灯泡, 通过挤出来去除列中的溶剂。
- 使用 photoreactor (图 2), 配有十 350 nm 灯 (材料表) 用于紫外线照射。通过 photoreactor 进气口将这些连接到氩气罐, 以确保 photoreactor 在 photoreactions 之前和期间充满氩气。
- 在打开 photoreactor 的 uv 灯之前, 确保 photoreactor 门关闭, 以防紫外线照射。
2. 树脂制备
注: 一般情况下, 采用 n-芴甲氧羰基基固相肽合成协议进行多肽基质的构建。这些是使用溜冰场酰胺树脂, 它留下一个 C 末端酰胺剩余的肽分裂。此协议在整个文件中使用。
注意: n, n-甲基酰胺 (DMF), 二氯甲烷 (DCM), 4-甲基啉) (NMM), 和n, n-diisoproylethylamine (DIPEA) 是有毒和有害的吸入, 摄取, 或皮肤接触。乙醚是高度易燃的。三氟乙酸酸 (TFA) 具有腐蚀性。12-ethanedithiol (EDT) 是高度恶臭。因此, 所有有机溶剂和化学品应使用适当的个人防护设备 (腈手套, 实验室大衣和防护眼镜) 处理, 并在化学油烟机内处理。
- 使用以下公式计算所需的树脂量:
鳞片 (毫摩尔)/(树脂负载能力 (毫摩尔/克) 1000 (毫克/克)) = 树脂质量 (毫克)
例如, 溜冰场酰胺 MBHA 树脂的数量 (0.5 毫摩尔/克) 为25µmol = 0.025 毫摩尔/(0.5 毫摩尔/克1000毫克/克) = 50 毫克。接下来, 在一列中重50毫克树脂, 用三路 stopcocks 在真空歧管上设置。 - 在柱体 (0.8 x 4 厘米, 10 毫升储层) 中加入 1-2 毫升的 DCM。要膨胀树脂, 用氮气或氩气流轻轻搅动10分钟。接下来, 用真空过滤法去除溶剂。
3. n-末端 n-芴甲氧羰基脱和洗涤
- 准备 n-末端 n-甲基芴甲氧羰基 deprotecting 溶液: 在玻璃瓶中准备一个适当体积 (200 毫升) 的 50% (v/v) 啉在 DMF 中。
- 在树脂上加入 1-2 毫升的脱溶液, 轻轻搅动10分钟, 然后用真空排出溶液。按该顺序使用 DMF (1-2 毫升) 和 DCM (1-2 毫升), 彻底清洗树脂和反应容器, 共3x。接下来, 重复脱和洗涤程序1x。
4. n-芴甲氧羰基保护氨基酸偶联
- 以丙氨酸渣的偶联为例, 在25µmol 的人工合成情况下, 称 n-芴甲氧羰基-5 equiv, 41.4 毫克, 2-(6-氯-1 h 苯三唑-1-基)-11, 33-tetramethylaminium 六氟磷酸盐 (HCTU; 4.9 equiv, 50.5 毫克) 在聚丙烯容器并将其溶解于 DMF (0.5 毫升)。
- 添加 DIPEA (10 equiv, 43.5 µl), 以产生0.25 米活化氨基酸溶液 (表 1)。经过大约1分钟的预活化, 加入溶液的树脂, 然后气泡与 N2约 1-2 小时。
- 从这一步开始, 将肽链中的每一种氨基酸作为一系列步骤进行整合: 首先是 n-端芴甲氧羰基基团的脱, 然后是洗涤, 然后用 HCTU 活化氨基酸的偶联。
注: 较长的耦合时间 (e.2 h) 建议, 如果耦合后, sterically 受阻氨基酸残留 [e., n-芴甲氧羰基-胱氨酸 (trt)-哦, n-芴甲氧羰基-他 (trt)-哦, n-芴甲氧羰基-Arg (Pbf)-哦]。含非天然氨基酸的烯烃/炔烃用于3当量而不是 5, 剩下的反应为 3 h。 - 用阿罗拉等四氯苯醌的方法, 监测肽合成的进展情况。36这些测试提供了对游离初级和次级胺的存在或缺失的定性评估。或者, 大约 2-3 毫克的肽可以从树脂中, 并通过 LC-MS 分析。
5. 硫醇烯 Hydrothiolation 和硫醇-yne 环合
- 通过树脂环合来构造硫醚类链接器 (图 3)。
- 准备大约50毫升的 Trt 脱解决方案 (TFA/TIS/DCM 0.03/0.06/1.0)。将胱氨酸-和 mS5轴承树脂 [NH2-r-ms5a a a a 胱氨酸 (Trt) r ' 树脂, 50 毫克] 与 1-2 毫升的 Trt 脱溶液在10毫升的专栏。用 N2轻轻搅动溶液10分钟。最后, 用 DCM (1-2 毫升) 清洗, 共3x。
注: MS5代表亚烷基构造块 (参见图 6中描述的结构), 用于肽偶联和硫原子环合38。 - 重复上述过程总共约 6x, 以删除半胱氨酸的三苯甲胺保护组, 直到解决方案颜色不再是黄色。
- 冒泡与 N2, 洗涤的 r-mS5a a-胱氨酸 (sh) r ' 树脂 [半胱氨酸与游离硫 (SH)] 与 DMF (1-2 毫升) 和 DCM (1-2 毫升) 按此顺序。用甲醇 (1-2 毫升) 收缩树脂2分钟, 然后用过滤法去除溶剂。接下来, 在2气体的蒸汽下依次干燥树脂, 在柱中约5分钟。
- 在嘴瓶内预先准备脱气 DMF, 通过将氮气泡在一个长针上, 并将其拉伸到溶剂中, 使其在大约1小时内起泡。
- 通过称重纸将树脂转化为10毫升的圆底烧瓶。将树脂悬浮在脱气 DMF 的2毫升内, 然后加入光 2-羟基 1-[4-(2-hydroxyethoxy)-苯基]-2-甲基 1-丙酮 (基质金属蛋白酶; 1 equiv, 5.6 毫克), 4-methoxyacetophenone (地图; 1 equiv, 3.8 毫克)。
- 在烧瓶中加入搅拌杆 (0.3 厘米), 用合适的橡皮塞将烧瓶盖上, 然后用油泵将瓶中的空气置换成氮气。
注: 在固相中, 有效的硫-烯 photoreaction 不需要严格的惰性气氛。然而, 在图 5中, 在溶液阶段的硫 yne photoreaction 是非常必要的。否则, 在紫外线照射时硫磺会氧化。 - 将反应瓶设置成 photoreactor, 在室温下紫外线照射下将树脂搅拌1小时 (图 2)。
注意: 在切换 photoreactor 紫外线灯之前, 确保 photoreactor 门关闭, 以防紫外线照射有害辐射。
注: 在 photoreactions 中经常取样反应混合物, 建议新的序列, 因为线性肽前驱体具有相同的分子量的产品。一般情况下, 线性和循环多肽的亲水性明显不同。这可以很容易地区分使用 HPLC。另外, 55 '-dithiobis (2 硝基苯甲酸) (DTNB) 试剂也可以用来研究游离硫醇37的存在。 - 将树脂从烧瓶中转移到柱上, 用真空过滤去除溶剂。按照步骤5.1.3 中所述, 清洗和烘干树脂。
- 准备大约 10 毫升的鸡尾酒 ( TFA / 小贴士 / EDT / H2O 94 / 1 / 2 . 5 / 2 . 5 ) 在通风罩。
- 将树脂转移到2毫升的聚丙烯容器中, 加入1毫升的裂解鸡尾酒 (TFA/小贴士/EDT/H2O 94/1/2.5/2.5) 到容器中, 并用螺钉盖紧密封容器。然后, 用 60 rpm 的速度在一个轨道振动筛上轻轻搅动 1.5-2 h 的容器。
注意: TFA 具有很强的腐蚀性。穿着防护服, 在有效的油烟机中工作。EDT 是一种高度恶臭的物质, 必须处理在一个有效的油烟机。 - 在通风罩中的 N2气体流下蒸发, 除去 TFA 鸡尾酒。接下来, 用冷二乙基醚 (1 毫升) 在三十年代沉淀残余物, 并通过离心 1.2万 x g 将其分离2分钟。离心后, 轻轻地将乙醚组件倒出来。重复2x 的沉淀和离心步骤。把残渣蒸发乾燥。
- 最后, 用 C18 分析柱 (4.6 x 250 毫米, 流速1.0 毫升/分) 溶解1毫升 H2/乙腈 (2:1) 中的残留物, 并用 HPLC 纯化。使用 H2O (含 0.1% TFA) 和纯乙腈作为溶剂在 2%/分钟线性梯度从20% 到70% 乙腈超过25分钟. 用紫外 280 nm 和 220 nm 波长 (表 2) 监测 HPLC 谱。
- 准备大约50毫升的 Trt 脱解决方案 (TFA/TIS/DCM 0.03/0.06/1.0)。将胱氨酸-和 mS5轴承树脂 [NH2-r-ms5a a a a 胱氨酸 (Trt) r ' 树脂, 50 毫克] 与 1-2 毫升的 Trt 脱溶液在10毫升的专栏。用 N2轻轻搅动溶液10分钟。最后, 用 DCM (1-2 毫升) 清洗, 共3x。
- 通过分子间硫-烯反应建立硫醚类链接器, 然后通过 macrolactamization cyclize 肽 (图 4)。
- 采用标准的 n-芴甲氧羰基基固相肽合成 (许可证), 在步骤 2-4 中所述, 合成了含线性肽 H2n-a a a-a-a-5(2 r ") R ' 树脂 (50 毫克) 的亚烷基残留物。接下来, 洗涤和干燥的树脂, 如步骤5.1.3 所述。
- 将树脂悬浮在含有2毫升脱气 DMF 的10毫升圆底烧瓶中, 如步骤5.1.4 所述。
- 添加光基质金属蛋白酶和地图 (基质金属蛋白酶: 1 equiv, 5.6 毫克;图: 1 equiv, 3.8 毫克), n-芴甲氧羰基-胱氨酸-OH (3 equiv, 25.7 毫克), 和搅拌棒 (0.3 厘米) 进入烧瓶。用合适的橡皮塞盖住烧瓶, 然后用油泵用氮气代替瓶子里的空气。
- 把反应瓶放进 photoreactor。在室温下, 在紫外线照射下搅拌 1-2 小时 (图 2)。
- 在 LC-MS 分析下监测反应: 使用裂解鸡尾酒对树脂进行 2-3 毫克的劈裂。然后用冷二乙基醚 (300 µL) 沉淀渣, 通过离心分离残渣, 并将残留物蒸发至干燥, 如步骤5.1.11 所述。然后, 在100µL2/乙腈 (2:1) 中溶解残渣。用 0.22-µm 微孔膜滤过多肽溶液, 并用 LC-MS 与电喷雾电离 (ESI) 中的复合电离进行分析, 并以正向模式进行操作。
- 如有必要, 重复步骤 5.2.2 5.2.4 以确保反应完成。
- 光反应完成后, 将树脂从烧瓶中转移到柱体中, 用真空过滤去除溶剂。按照步骤5.1.3 中所述, 清洗和烘干树脂。
- 添加 benzotriazole-1-yl-oxytripyrrolidinophosphonium 六氟磷酸盐的 DMF 溶液 (PyBob; 2.4 equiv, 31.2 毫克), 1-hydroxybenzotriazole (对 hobt; 2.4 equiv, 8.1 毫克), NMM (4 equiv, 11 µL) 的树脂在列为 macrolactamization。用 N2来泡这个溶液2小时。
- 此外, 按照步骤5.2.3 中的描述, 使用 LC MS 来监测这种耦合反应。如有必要, 重复此步骤以确保反应完成。
- 用标准的 n-芴甲氧羰基基许可证延长肽, 如步骤3和4所述。
- 在组装所有氨基酸残留物时, 将肽从树脂中分离出来, 如步骤5.1.10 和5.1.11 中所述, 并在步骤5.1.12 中加以纯化。
- 在溶液阶段构造乙烯基硫化物链接器 (图 5)。
- 用标准的 n-芴甲氧羰基基许可证合成炔烃残留量的线性肽, 如步骤 2-4 所述。根据前一项研究20中所述的一项完善的协议, 合成炔烃轴承氨基酸。
- 将肽从树脂中劈开, 用冷二乙基醚沉淀, 如步骤 5.1.9-5.1.11 中所述。在树脂的裂解和沉淀之后, 用离心法收集 1.2万 x g 的肽以2分钟。
- 在真空中干燥所产生的残余物。将脱气 DMF (50 毫升) 中的残渣溶解在100毫升圆底烧瓶中, 以达到最终浓度0.5 毫米 (根据树脂的负载, 0.025 毫摩尔 (1000 毫升/升/0.5 毫摩尔/升) = 50 毫升)。
- 添加光 DMPA (0.5 equiv, 3.2 毫克), 然后德加的反应解决方案10分钟使用 N2通过长针延伸到溶液中。接下来, 在室温下将样品照射到紫外线下 0.5-1 小时, 无需搅拌。
- 在高真空下去除 DMF, 加入二乙醚沉淀粗渣, 以溶解其有机副产品。然后, 用离心法将残渣分离 1.2万 x 克, 2 分钟。离心后, 轻轻地将乙醚组件倒出来。把残渣蒸发乾燥。最后, 在1毫升的 H2/乙腈 (2:1) 中溶解残留物, 并使用液相色谱法对其进行纯化, 如步骤5.1.7 所述。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
用树脂内分子内硫醇-烯 photoreaction YmS5AAAC-nh2及其环化烯产品 ac Y (环-15)-[MS5AAAC]-nh2的 HPLC 和 MS 谱, 在图中描述6B. 循环肽与其线性前体相比具有相同的分子量。然而, 在相同的分离条件下, 其液相色谱保留时间比其前体早约2分钟。有不同序列的短肽都被观察到有一个良好的转换, 如图 6C所示。
在图 7B中描述了硫 yne photoreaction 条件的筛选过程, 并利用反相 HPLC 积分法确定了异构体的转化率和比。紫外线照射后, 仅观察到肽2c 的微量含量。这很可能是由于构象倾向于在 N 终点的 thiyl 基的陷印, 在收缩步骤到 20-元环。两个肽1a 和1b 被发现产生两个异构体与8成员的乙烯基硫化物交联。肽 2 a a 和 2 a B, 这是由肽1a 生成, 表现出不同的保留时间以及不同的比率为不同的紫外线照射时间 (0-30 分钟) (图 7C)。这些被分配了作为 E/Z 异构体由于双重键质子信号在1h-核磁共振光谱学 (图 7D)。在肽 2 d-2 f 的情况下, Z 异构体被发现是主导产品。这很可能是由于在构建一个紧凑结构相对于8成员的乙烯基硫化物交联的构象偏好。如图 7E所示, 根据圆形二色谱 (CD) 谱, 2 a a/b 和 2 b a/b 的多肽, 拥有8成员的乙烯基硫化物交联显示一个随机线圈, 而肽2d 拥有7成员的乙烯基硫化物交联展示了螺旋构象。总之, 乙烯基硫化物粘结的 Z 异构体被发现是优先形成的, 表现出更好的螺旋诱导。
图 1: 用于固相肽合成的手动肽合成装置.柱被放置在真空流形上通过三路 stopcocks 和仪器连接到氮气或氩气线为冒泡。请单击此处查看此图的较大版本.
图 2: 用于 photoreactions 的 photoreactor 设备.该装置配备了十350纳米灯 (材料表), 用于紫外线照射和氩气罐, 以确保 photoreactor 在 photoreactions 之前和期间充满氩气。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: 在短肽的情况下, 树脂内分子内硫醇烯反应.这一反应是使用脱的三苯甲酯的树脂, 在完全合成的线性肽后, 然后设置树脂的紫外线照射使用光引发剂地图和基质金属蛋白酶。请单击此处查看此图的较大版本.
图 4: 在树脂分子间的硫-烯反应.这种反应是通过溶解 n-芴甲氧羰基胱氨酸-OH 在 DMF 溶剂, 然后辐照与烯烃含肽残留在树脂, 其次是 macrolactamization 使用 PyBop, 对 hobt, NMM 作为活化试剂。然后使用标准许可证继续进行肽的合成。请单击此处查看此图的较大版本.
图 5: 溶液相中的分子内硫醇-yne 反应.这一反应是在溶液阶段进行的, 在完全合成的线性肽, 之后, 线性肽被溶解在脱气 DMF 和辐照使用紫外光与光 DMPA。请单击此处查看此图的较大版本.
图 6: 用树脂内分子硫醇烯反应产生的硫醚类栓循环肽.这个面板显示了树脂内分子内硫-烯反应的方案。mS5: "m" 代表单取代 olenic 氨基酸, "s" 代表 S 配置的氨基酸, "5" 指的是侧链原子的数量38。这个面板显示了肽交流-YmS5AAAC-NH2在其环化之前和之后的 HPLC 和 MS 谱。这个面板显示了不同序列的循环肽的转换。这一数字已从赵, B等28 修改. 请点击这里查看这个数字的大版本.
图 7: 通过照片诱导的硫醇-yne hydrothiolation 肽装订.这是分子内硫醇-yne hydrothiolation 的示意图。这个小组显示了在本研究中评价的肽序列。启动器: (I) 0.5 eq DMPA, 1 h;(二) 没有发起者, 1 h;(III) 0.5 情商 DMPA, 0.5 情商图, 1 小时;(IV) 0.5 eq, 0.5 小时. 此面板显示了不同紫外照射时间的肽1a 反应混合物的 HPLC 示迹, 并监测了 220 nm。D. 这个小组显示了1的 H 核磁共振光谱 1a, 2 a a 和 2 a B (测量在 DMSO-d6 在400兆赫)。星号表示紫外辐照后乙烯基硫化物双键的形成。E. 此面板显示了含乙烯基硫化物交联的多肽的循环二色谱谱。这一数字已由天, Y等人修改。44请单击此处查看此图的较大版本.
材料 | M w | N(0.5mmol/克 Resin×0.05g×5eq) | M(氨基酸) (毫克) |
大 | 毫摩尔 | ||
n-芴甲氧羰基甘-哦 | 297 | 0.125 | 37。1 |
n-芴甲氧羰基-哦 | 331 | 0.125 | 41。4 |
芴甲氧羰基-瓦尔-哦 | 339 | 0.125 | 42。4 |
芴甲氧羰基-列伊-OH | 353 | 0.125 | 44。1 |
n-芴甲氧羰基-哦 | 353 | 0.125 | 44。1 |
n-芴甲氧羰基-亲 OH | 337 | 0.125 | 42。1 |
n-芴甲氧羰基-哦 | 387 | 0.125 | 48。4 |
n-芴甲氧羰基 Tyr (tBu)-哦 | 460 | 0.125 | 57。5 |
n-芴甲氧羰基-跨国激进党 (中行)-哦 | 527 | 0.125 | 65。9 |
n-芴甲氧羰基-tBu-哦 | 384 | 0.125 | 48 |
n-芴甲氧羰基 tBu-哦 | 398 | 0.125 | 49。8 |
n-芴甲氧羰基胱氨酸 (Trt)-哦 | 586 | 0.125 | 73。3 |
n-芴甲氧羰基-遇见-OH | 372 | 0.125 | 46。5 |
n-芴甲氧羰基-Asn (Trt)-哦 | 597 | 0.125 | 74。6 |
n-芴甲氧羰基 Gln (Trt)-哦 | 611 | 0.125 | 76。4 |
n-芴甲氧羰基-Asp (OtBu)-哦 | 412 | 0.125 | 51。5 |
n-芴甲氧羰基-谷氨酸 (OtBu)-哦 | 426 | 0.125 | 53。3 |
n-芴甲氧羰基-赖氨酸 (中行)-OH | 469 | 0.125 | 58。6 |
n-芴甲氧羰基-Arg (Pbf)-OH | 617 | 0.125 | 77。1 |
n-芴甲氧羰基 (Trt)-哦 | 620 | 0.125 | 77。5 |
HCTU | 414 | 0.122 | 50。5 |
DIPEA | 129 | 0.25 | 43.5 (ul) |
Dmf | 0.5 毫升 |
表 1: 耦合条件的数量。
列 | Zorbax 锑-蒽醌柱, 4.6 x 250 毫米 (孔径80Å, 粒度5微米) |
溶剂 | A: 水, 0.1% (卷/卷) TFA;乙: 乙腈 |
流量 | 1毫升/分 |
梯度 | 20–70% (音量/卷) B 超过25分钟;70%-98% 5 分钟;98% 5min 以上; |
注塑量 | 30–500 ul |
波长 (nm) | 280 (用于 n-芴甲氧羰基-, 多党或 Tyr 含肽), 或 494 (FITC 标记的多肽) 或 220 (其他) |
表 2: 高效液相色谱条件。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
在图 3所描述的树脂内分子内硫-烯环化中, 发现半胱氨酸残留物的三苯甲酯的去除是随后 photoreaction 的关键步骤。此外, 在反应之前和之后的肽分子量被发现是相同的, 如图 6B所示。因此, 需要使用 HPLC 鉴定或 DTNB 化验, 以监测反应。如图 4所述的分子间硫-烯反应, MS 监测是必要的。虽然发现内酰胺耦合的进一步步骤是需要建造一个硫醚类系绳, 我们建议, 这项议定书将用于长肽, 以达到整体更高的效率。
在用于树脂裂解的强酸性 TFA 溶液中, 硫 yne photoreaction 产生的乙烯基硫化物不稳定。因此, 采用了硫 yne photoreaction 在溶液相中的应用。这种反应被稀释到低浓度 (0.5 毫米), 以避免潜在的分子间反应。同样重要的是, 德加溶剂, 以避免产品氧化在 photoreactions。在反应之后, 有机溶剂 DMF 的真空蒸发也应小心进行, 以防止肽氧化/降解或机械折旧。图 5中描述的硫-yne 环化反应为后肽合成改性35提供了一种机制。
虽然分子内硫醇烯反应成功地产生了硫醚类栓肽与良好的转化, 一个简单的硫醚类交叉链没有约束的肽进入理想的螺旋构象。在此基础上, 建立了一种绳内手性中心诱导肽螺旋概念, 在肽 C 末端采用 R 构型的γ取代组, 能够诱导肽的螺旋构象 (图 4)39,40。与此方法相关的限制是光学纯非自然氨基酸的合成与两个手性中心 (α (S), γ (R))41,42。
这项研究表明, 硫 yne 反应可以约束肽成螺旋构象的良好转换, 如图 7E所示。在螺旋肽的构造方面, 我们建议用硫 yne photoreaction 来构造螺旋肽。通过树脂内分子间硫-烯环化, 证明适合于短硫醚类链肽的构建 (小于 15), 以防长肽过于灵活, 以保证有效的环合。此外, 还建议采用树脂间分子间硫-烯环合, 用于长肽的环合。
总之, 我们已经制定了一系列的化学协议, 以建设硫醚类/乙烯基硫化物栓多肽, 通过使用光致硫-烯/硫醚-yne 点击化学。反应效率高, 金属无催化剂, 操作方便, 并已被证明具有优越的功能基团耐受性和生物正交。此外, 为了稳定其他肽的二级结构, 如β发夹43,44, 开发了这种方法。本文表明, 硫醚类绳系提供了一个无影无踪的改装场地。这在很大程度上扩展了肽合成修饰后的化学空间。此外, 脂肪族硫醚类/乙烯基硫化物栓肽显示了相对于碳氢化合物短肽的减少膜毒性, 应用在不同的生物应用中, 表现良好的生物活性和生物利用度45,46。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
作者承认中国自然科学基金 (21372023、21778009和81701818号) 的财政支持;中华人民共和国科学技术部 (2015DFA31590 号);深圳市科技创新委员会 (no。JCYJ20170412150719814、JCYJ20170412150609690、JCYJ20150403101146313、JCYJ20160301111338144、JCYJ20160331115853521、JSGG20160301095829250 和 GJHS20170310093122365);和中国博士后科学基金会 (2017M610704)。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Rink Amide MBHA resin(0.53 mmol/g) | HECHENG | GRM50407 | |
Standard Fmoc-protected amino acids | GL Biochem (Shanghai) Ltd. | ||
N-Methyl-2-pyrrolidinone | Shenzhen endi Biotechnology Co.Ltd. | 3230 | skin harmful |
N,N-Dimethyl formamide | Energy | B020051 | skin harmful |
Dichloromethane | Energy | W330229 | skin harmful |
N,N-Diisoproylethylamine | Aldrich | 9578 | irritant |
Trifluoroacetic acid | J&K | 101398 | corrosive |
Triisopropylsilane | J&K | 973821 | |
1,2-Ethanedithiol | J&K | 248897 | Stench |
2-(6-Chloro-1H-benzotriazole-1-yl)-1,1,3,3-tetramethylaminium hexafluorophosphate | GL Biochem (Shanghai) Ltd. | 851012 | |
Morpholine | Aldrich | M109062 | irritant |
Diethyl ether | Aldrich | 673811 | flammable |
Acetonitrile | Aldrich | 9758 | toxicity |
Methanol | Aldrich | 9758 | toxicity |
2-hydroxy-1-[4-(2-hydroxyethoxy)-phenyl]-2-methyl-1-propanone | Energy | A050035 | |
4-methoxyacetophenone | Energy | A050098 | |
2,2-dimethoxy-2-phenylacetophenone | Energy | D070132 | |
5,5'-Dithiobis-(2-nitrobenzoic acid) | J&K | 281281 | |
Benzotriazole-1-yl-oxytripyrrolidinophosphonium hexafluorophosphate | Energy | E020172 | |
1-Hydroxybenzotriazole | Energy | D050256 | |
4-Methylmorpholine | Energy | W320038 | |
High Performance Liquid Chromatography | SHIMADZU | LC-30AD | |
Electrospray Ionization Mass | SHIMADZU | LCMS-8030 | |
Lyophilizer | Labconco | FreeZone | |
SpeedVac concentration system | Thermo | Savant | |
vacuum manifold | promega | A7231 | |
three-way stopcocks | Bio-Rad | 7328107 | |
poly-prep chromatography columns | Bio-Rad | 7311550 |
References
- Pelay-Gimeno, M., Glas, A., Koch, O., Grossmann, T. N. Structure-based design of inhibitors of protein-protein interactions: mimicking peptide binding epitopes. Angewandte Chemie International Edition. 54 (31), 8896-8927 (2015).
- Passioura, T., Katoh, T., Goto, Y., Suga, H. Selection-based discovery of druglike macrocyclic peptides. Annual Review of Biochemistry. 83, 727-752 (2014).
- Gonzalez, M. W., Kann, M. G.
Protein interactions and disease. PLoS Computational Biology. 8 (12), 1-11 (2012). - Wilson, A. J. Inhibition of protein-protein interactions using designed molecules. Chemical Society Reviews. 38 (12), 3289-3300 (2009).
- Teresa, A. F. C., Alessio, C. Cyclic and macrocyclic peptides as chemical tools to recognise protein surfaces and probe protein-protein interactions. ChemMedChem. 11 (8), 787-794 (2016).
- Craik, D. J., Fairlie, D. P., Liras, S., Price, D.
The future of peptide-based drugs. Chemical Biology & Drug Design. 81 (1), 136-147 (2013). - Cromm, P. M., Spiegel, J., Grossmann, T. N. Hydrocarbon stapled peptides as modulators of biological function. ACS Chemical Biology. 10 (6), 1362-1375 (2015).
- Zhang, Q. Z., Tian, Y., Lao, Y. Z., Li, Z. G. Peptides-staple method development and its application in cancer therapy. Current Medicinal Chemistry. 21 (21), 2438-2452 (2014).
- Cromm, P. M., Spiegel, J., Grossmann, T. N. Hydrocarbon stapled peptides as modulators of biological function. ACS Chemical Biology. 10 (6), 1362-1375 (2015).
- Wang, D., Liao, W., Arora, P. S. Enhanced metabolic stability and protein-binding properties of artificial alpha helices derived from a hydrogen-bond surrogate: application to Bcl-xL. Angewandte Chemie International Edition. 44 (40), 6525-6529 (2005).
- Bullock, B. N., Jochim, A. L., Arora, P. S. Assessing helical protein interfaces for inhibitor design. Journal of the American Chemical Society. 133, 14220-14223 (2011).
- Jackson, D. Y., King, D. S., Chmielewski, J., Singh, S., Schultz, P. G. General approach to the synthesis of short α-helical peptides. Journal of the American Chemical Society. 113 (24), 9391-9392 (1991).
- Timmerman, P., Beld, J., Puijk, W. C., Meloen, R. H. Rapid and quantitative cyclization of multiple peptide loops onto synthetic scaffolds for structural mimicry of protein surfaces. ChemBioChem. 6 (5), 821-824 (2005).
- Muppidi, A., Wang, Z., Li, X., Chen, J., Lin, Q. Achieving cell penetration with distance-matching cysteine cross-linkers: a facile route to cell-permeable peptide dual inhibitors of Mdm2/Mdmx. Chemical Communications. 47 (33), 9396-9398 (2011).
- Schafmeister, C. E., Po, J., Verdine, G. L. An all-hydrocarbon cross-linking system for enhancing the helicity and metabolic stability of peptides. Journal of the American Chemical Society. 122 (24), 5891-5892 (2000).
- Osapay, G., Taylor, J. W. Multicyclic polypeptide model compounds. 1. synthesis of a tricyclic amphiphilic alpha-helical peptide using an oxime resin, segment-condensation approach. Journal of the American Chemical Society. 112 (16), 6046-6051 (1990).
- Lau, Y. H., Andrade, dP., Wu, Y., Spring, D. R. Peptide stapling techniques based on different macrocyclisation chemistries. Chemical Society Reviews. 44 (1), 91-102 (2015).
- Spokoyny, A. M., Zou, Y., Ling, J. J., Yu, H., Lin, Y. S., Pentelute, B. L. A perfluoroaryl-cysteine S(N)Ar chemistry approach to unprotected peptide stapling. Journal of the American Chemical Society. 135 (16), 5946-5949 (2013).
- Lautrette, G., Touti, F., Lee, H. G., Dai, P., Pentelute, B. L. Nitrogen arylation for macrocyclization of unprotected peptides. Journal of the American Chemical Society. 138 (27), 8340-8343 (2016).
- Tian, Y., et al. Stapling of unprotected helical peptides via photoinduced intramolecular thiol-yne hydrothiolation. Chemical Science. 7 (5), 3325-3330 (2016).
- Chang, Y. S., et al. Stapled α-helical peptide drug development: a potent dual inhibitor of MDM2 and MDMX for p53-dependent cancer therapy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (36), 3445-3454 (2013).
- Zhao, H., et al. Crosslinked aspartic acids as helix-nucleating templates. Angewandte Chemie International Edition. 55 (39), 12088-12093 (2016).
- Leshchiner, E. S., et al. Direct inhibition of oncogenic KRAS by hydrocarbon-stapled SOS1 helices. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (6), 1761-1766 (2015).
- Wang, D., Qin, X., Zhao, H., Li, Z. N-cap helix nucleation: methods and their applications. Science China Chemistry. 60 (6), 689-700 (2017).
- Zorzi, A., Deyle, K., Heinis, C. Cyclic peptide therapeutics: past, present and future. Current Opinion in Chemical Biology. 38, 24-29 (2017).
- Hu, K., et al. An in-tether chiral center modulates the helicity, cell permeability, and target binding affinity of a peptide. Angewandte Chemie International Edition. 55 (28), 8013-8017 (2016).
- Lin, H., Jiang, Y., Zhang, Q., Hu, K., Li, Z. An in-tether sulfilimine chiral center induces helicity in short peptides. Chemical Communications. 52 (68), 10389-10391 (2016).
- Zhao, B., Zhang, Q., Li, Z. Constructing thioether-tethered cyclic peptides via on-resin intra-molecular thiol-ene reaction. Journal of Peptide Science. 22 (8), 540-544 (2016).
- Dondoni, A., Massi, A., Nanni, P., Roda, A. A new ligation strategy for peptide and protein glycosylation: photoinduced thiol-ene coupling. Chemistry. 15 (43), 11444-11449 (2009).
- Hu, K., Sun, C., Li, Z. Reversible and versatile on-tether modification of chiral-center-induced helical peptides. Bioconjugate Chemistry. 28 (7), 2001-2007 (2017).
- Shi, X., Jiang, Y., Yang, D., Zhao, H., Tian, Y., Li, Z. Reversibly switching the conformation of short peptide through in-tether chiral sulfonium auxiliary. Chinese Chemical Letters. , In Press (2017).
- Jiang, Y., et al. Switching substitution groups on the in-tether chiral centre influences backbone peptides' permeability and target binding affinity. Organic & Biomolecular Chemistry. 15 (3), 541-544 (2017).
- Aimetti, A. A., Shoemaker, R. K., Lin, C. C., Anseth, K. S. On-resin peptide macrocyclization using thiol-ene click chemistry. Chemical Communications. 46 (23), 4061-4063 (2010).
- Wang, Y. X., Chou, D. H. C. A thiol-ene coupling approach to native peptide stapling and macrocyclization. Angewandte Chemie International Edition. 54 (37), 10931-10934 (2015).
- Wang, Y., et al. Application of thiol-yne/thiol-ene reactions for peptide and protein macrocyclizations. Chemistry. 23 (29), 7087-7092 (2017).
- Patgiri, A., Menzenski, M. Z., Mahon, A. B., Arora, P. S. Solid-phase synthesis of short α-helices stabilized by the hydrogen bond surrogate approach. Nature Protocols. 5 (11), 1857-1865 (2010).
- Ozyurek, M., Baki, S., Gungor, N., Celik, S. E., Guclu, K., Apak, R. Determination of biothiols by a novel on-line HPLC-DTNB assay with post-column detection. Analytica Chimica Acta. 750, 173-181 (2012).
- Zhang, Q. Z., et al. Chiral sulfoxide-induced single turn peptide α-helicity. Scientific Reports. 6, 38573 (2016).
- Lin, H., et al. An in-tether sulfilimine chiral center induces beta-turn conformation in short peptides. Organic & Biomolecular Chemistry. 14 (42), 9993-9999 (2016).
- Hu, K., Li, W., Yu, M., Sun, C., Li, Z. Investigation of cellular uptakes of the in-tether chiral-center-induced helical pentapeptides. Bioconjugate Chemistry. 27 (12), 2824-2827 (2016).
- Hu, K., et al. A precisely positioned chiral center in an i, i + 7 tether modulates the helicity of the backbone peptide. Chemical Communications. 53 (50), 6728-6731 (2017).
- Li, J., et al. An in-tether chiral center modulates the proapoptotic activity of the KLA peptide. Chemical Communications. 53 (75), 10452-10455 (2017).
- Zhao, B., et al. A thioether-stabilized-D-proline-L-proline-induced β-hairpin peptide of defensin segment increases its anti-Candida albicans ability. ChemBioChem. 17 (15), 1416-1420 (2016).
- Tian, Y., Yang, D., Ye, X., Li, Z. Thioether-derived macrocycle for peptide secondary structure fixation. The Chemical Record. 17 (9), 874-885 (2017).
- Hu, K., Yin, F., Yu, M., Sun, C., Li, J., Liang, Y., Li, W., Xie, M., Lao, Y., Liang, W., Li, Z. G. In-tether chiral center induced helical peptide modulators target p53-MDM2/MDMX and inhibit tumor growth in stem-like cancer cell. Theranostics. 7 (18), 4566-4576 (2017).
- Tian, Y., Jiang, Y., Li, J., Wang, D., Zhao, H., Li, Z. Effect of stapling architecture on physiochemical properties and cell permeability of stapled α-helical peptides: a comparative study. ChemBioChem. 18 (21), 2087-2093 (2017).