Summary
تحليل القراد الهيموليمف يمثل مصدرا هاما للمعلومات حول كيفيه بعض مسببات الامراض تسبب المرض وكيف القراد الاستجابة المناعية لهذه العدوى. توضح الدراسة الحالية كيفيه تطعيم المروج الفطرية وجمع الأورام اللمفية من الإناث المجهرية الصغيرة.
Abstract
القراد هي إلزام همتوفغوس طفيليات و rhipicephalus ميكروبلاس له اهميه كبيره في الطب البيطري لأنه يسبب فقر الدم ، وفقدان الوزن ، وانخفاض قيمه الجلد الحيوانية وأيضا يمكن ان تكون بمثابه ناقل للعديد من مسببات الامراض. بسبب التكاليف الباهظة للسيطرة علي هذه الطفيليات ، والاضرار التي لحقت البيئة الناجمة عن الاستخدام غير المناسب لمبيدات آلافات الكيميائية ، وزيادة المقاومة ضد الطفيليات التقليدية ، والسيطرة البديلة من القراد ، من خلال استخدام الفطريات الحشرية ، علي سبيل المثال ، وقد اعتبر نهجا مثيرا للاهتمام. ومع ذلك ، أظهرت دراسات قليله كيف يعمل جهاز المناعة في القراد لمحاربه هذه المركبات الحشرية. ولذلك ، يوضح هذا البروتوكول طريقتين المستخدمة لتلقيح الحشرات في الإناث محتقن واثنين من التقنيات المستخدمة لجمع الهيموليمف وحصاد الخلايا الدموية. التلقيح من مسببات الامراض في الادراج الساق في الجسم الإناث القراد يسمح تقييم المعلمات البيولوجية الإناث علي عكس التلقيح بين الشجار والاستسلام ، والتي كثيرا ما تضر الجهاز Gené's. وقد أسفرت مجموعه الأورام اللمفية الظهرية عن انتعاش أكبر في الحجم من الجمع عبر الساقين. وتشمل بعض القيود من جمع الهيموليمف القراد ومعالجه ط) معدلات عاليه من اضطراب الخلايا الدموية ' ، 2) التلوث النصفي مع الأمعاء المعطلة ، والثالث) انخفاض الانتعاش حجم الهيميميمف. عندما يتم جمع الهيموليمف من خلال قطع الساق ، يستغرق الوقت المستغرق في التراكم في الساق ، ويفضل عمليه التخثر. بالاضافه إلى ذلك ، يتم الحصول علي عدد اقل من الخلايا الدموية في المجموعة من خلال الساق مقارنه بالمجموعة الظهرية ، علي الرغم من ان الطريقة الاولي تعتبر أسهل في الأداء. فهم الاستجابة المناعية في القراد بوساطة وكلاء الحشرات يساعد علي كشف النقاب عن المرض وتطوير أهداف جديده للسيطرة علي القراد. عمليات التلقيح الموصوفة هنا تتطلب موارد تكنولوجية منخفضه جدا ويمكن استخدامها ليس فقط لفضح القراد إلى الكائنات المجهرية المسببة للامراض. المثل ، فان مجموعه من القراد الهيموليمف تمثل الخطوة الاولي للعديد من الدراسات الفسيولوجية.
Introduction
القراد الماشية ، rhipicpasus ميكروبلاس، هو المري ectoparite مع تاثير سلبي هائل علي الماشية في المناطق الاستوائية. هذا القراد هو المتجه من العوامل المسببة للامراض مثل babesia بوفيس]، babesia bigemina، والهامشية انبلازما انه ، بالاضافه إلى الضرر المباشر الأرقاء ، يمكن ان تقلل من إنتاج الحليب واللحوم ، وتسبب فقر الدم والموت في نهاية المطاف. وقدرت الخسائر الناجمة عن هذا الطفيليات في 3,240,000,000 دولار سنويا في البرازيل1. ويطلب اتباع أساليب مستدامه ويعتبر استخدام عوامل الحشرات الحشرية بديلا واعدا للحد من استخدام مبيدات الجراثيم الكيميائية2،3،4.
الفطريات الحشرية ، مثل Metarhizium spp. ، هي أعداء طبيعيه من المفصليات بما في ذلك القراد ، وبعض العزلات يمكن استخدامها كمتحكمات حيوية. هذه الممرضات تصيب بنشاط المضيف من خلال اهاب واستعمار الجسم2,5,6. ومع تطور العدوى ، يتم التوسط في الاستجابات الخلوية والخلطيه من خلال نظام المناعة القراد. تم الإبلاغ عن تحليل القراد الهيموليمف كاداه مفيده لتقييم الاستجابات المناعية بعد التحدي مع مسببات الامراض7,8.
وتنقسم استجابه المفصليات المناعية إلى استجابات الخلطيه والخلوية. وتنطوي الاستجابة الحميدة علي عمليات التراص الدموي وإنتاج البروتينات/الببتيدات المضادة للميكروبات ، في حين يتم تنفيذ الاستجابة المناعية الخلوية من خلال الخلايا الدموية. هذه الخلايا موجودة في الجسم اللمفي من جميع المفصليات ويقال لتطوير دور تعبيري في الدراسات التي تنطوي علي الاستجابة المناعية الفطرية9، كما انه يرتبط مباشره إلى كثرة الكريات وعمليات التغليف. وفقا لذلك ، يمكن ان تساعد الدراسات حول الخلايا الدموية في التحقيق في مسار الموت وفهم العمليات مثل الفحص الألى ، المبرمج ، والنخر. في بعض لافقاريات كصمامات ، تواجه مجموعه الخلايا الدموية قيودا مثل انقطاع الخلايا ، وانخفاض حجم الخلايا الدموية التي تم الحصول عليها ، وتركيز منخفض للخلايا المستردة10. في كثير من الأحيان ، اعتمادا علي المنهجية المطبقة ، يتم الحصول علي انخفاض تركيز الخلايا ، مما يؤثر مباشره علي القياس الكمي للخلايا وتحليلها.
عدد الخلايا الدموية المتداولة في الهيموسيفي هو متغير بين المفصليات المختلفة ، ويمكن ان تتغير في نفس النوع بسبب مراحل فسيولوجية مختلفه مثل الجنس ، والعمر ، والمرحلة التنموية المفصلية11. يمكن أيضا العثور علي الخلايا الدموية الانضمام إلى بعض الأعضاء ويتم الإفراج عنهم في الدورة الدموية فقط بعد عمليه العدوى11. ومع ذلك ، أبلغت معظم الدراسات عن استخدام الحشرات ، في حين لا تزال القراد اقل استكشافا فيما يتعلق بفسيولوجيتها وعلم الامراض. علي الرغم من التلقيح الممرض وجمع الهيموليمف في القراد هي تقنيات اقل استخداما ، وإنشاء أساليب قياسيه تساعد علي تطوير دراسات أكثر دقه.
وكان الهدف من هذه الدراسة للمقارنة بين الطرق الأكثر استخداما لجمع البوليمرات الدموية والتلقيح من مسببات الامراض في R. ميكروبلاس القراد ، وتقييم الفعالية في اكتساب الخلايا الدموية وتركيز الكريات الدموية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
تم الحصول علي القراد المستخدمة في هذه الدراسة من مستعمره اصطناعية ، الستائر في الجامعة الريفية الاتحادية في ريو دي جانيرو ، والتي تمت الموافقة علي الأساليب من قبل لجنه الأخلاق لاستخدام الفقاري الحيوانية (خه/UFRRJ #037/2014).
1. القراد محتقن الإناث
- بعد جمع القراد ، وغسل محتقن الإناث باستخدام مياه الصنبور وتزج بهم في 0.5 ٪ (v/v) محلول الصوديوم هيبوكلويد لمده 3 دقائق في المتلقي كوب الزجاج 500 mL ، لنظافة بشره (الشكل 1) ، ثم تجف جميع الإناث باستخدام المناشف الورقية العقيمة (الشكل 2).
- تقسيم الإناث في مجموعات المرجح متجانسة (مع 20 الإناث لكل منهما): مجموعه واحده دون اي علاج ، واحده مجموعه التحكم تطعيم مع 5 μl من 0.1 ٪ بولي اوكسي اتيلين سوربيتان محلول مائي أحاديه الشكل (v/v) ، واحد المصابين-مجموعه تطعيم مع 5 μl في 1.0 x 10 7 المسام البدائية mL-1.
ملاحظه: تم استخدام القراد غير المعالجة فقط لوحده التخزين وتركيز الخلايا الدموية. تم تنفيذ ثلاثه نسخ متماثلة من كل مجموعه.
2-مسببات الامراض التلقيح بين الشجار والاستسلام
ملاحظه: في هذه الدراسة ، استخدمت التعليقات الفطرية الحشرية كمثال.
- التوقف المرحلي الفطرية المسام في 1 مل من 0.1 ٪ بولي اوكسي اتيلين سوربيتان محلول مائي أحاديه الشكل (v/v) والتكيف مع التركيز النهائي من 1.0 x 107 المسام البدائية mL-1. أضافه إلى الانسداد من 5 μL ميتارهيميوم المسام (الشكل3) تعليق علي سطح فيلم البارافين البلاستيك.
ملاحظه: تم تعديل نظام التعليق البدائي المسام Metarhizium باستخدام غرفه نيوبوير. لتسريع عمليه التلقيح ، يمكن أضافه فقاعات متعددة إلى سطح الفيلم البارافين البلاستيك ، كل فقاعه المقابلة ل 5 μL. - استخدم حقنه انسولين فائقه الغرامة 1 مل وابره 0.3 مم لسحب التعليق وتطعيمه في القراد. تذكر ان تاخذ كل الهواء من الحقنه قبل استخدامه.
- تطعيم 5 μL من تعليق الفطرية في القراد الإناث بين الشجار والاستسلام. تطعيم الإناث من مجموعه التحكم مع 5 μl من 0.1 ٪ بولي اوكسي اتيلين سوربيتان محلول مائي مونووليمات (v/v) مع عدم وجود الفطريات.
ملاحظه: قد يكون هناك حجم صغير من الهيولوليمف موجود علي الورم بعد إدخال الابره. كن حذرا لعدم تطعيم الهواء.
3. تلقيح الفطريات الحشرية بين الفخذ الساق والجسم القراد الإناث
- تطعيم الإناث مع تعليق الفطرية (5 μL في 1.0 x 107 المسام البدائية mL-1) بين tigh الساق وجسم الأنثى ، وذلك باستخدام 1 مل فائقه الدقة حقنه الانسولين إلى جانب ابره 0.3 mm. تطعيم الإناث من مجموعه التحكم مع 5 μl من 0.1 ٪ بولي اوكسي اتيلين سوربيتان محلول مائي مونوولياتي (v/v).
ملاحظه: عندما يتم اجراء التلقيح البدائية ميتارهينيوم بين tigh الساق والجسم الإناث القراد ، وحجم صغير من الهيموليمف يمكن ان تكون موجودة علي tigh بعد إدخال ابره. كن حذرا لعدم تطعيم الهواء.
4. جمع الهيولوليمف الظهري
- استخدم الجزء المطاطي من مجموعه التسريب المجنحة ، وأنبوب شعري 0.3 ملم ، وطرف مصفي لأداء مجموعه الهيمولياس.
- تعطيل جلد الظهرية الإناث باستخدام ابره 0.3 mm.
- بعد التعطيل ، ضع ضغطا لطيفا علي الجزء الامامي من جسم القراد. مراقبه سائل شفاف تقريبا سحب من موقع التعطيل. جمع الهيموليمف عن طريق مص السائل من خلال غيض مرشح إلى جانب المطاط جزء من مجموعه ضخ المجنح ، وأنبوب الشعرية 0.3 مم.
ملاحظه: لا تضغط علي جسم القراد بالبالكاد اثناء التجميد لان هذا قد يعطل الأمعاء الوسطي ويلوث الهيميدوليف. الانتظار حتى ضغط لطيف يمكن ان يطرد السائل دون تلوث.
5. جمع hemolymph من الساق القراد
- وضع القراد ، قطع قطعه من الساق الاماميه مع زوج من المقص.
ملاحظه: يمكن قطع ساق واحده أو أكثر ، وكذلك ، يمكن قطع نفس الساق أكثر من مره واحده. - تطبيق ضغط لطيف علي جزء الجسم الخلفي القراد. مراقبه فقاعه سائله شفافة التي تظهر علي موقع قطع وجمعها مع أنبوب الشعرية ، كما هو موضح في الخطوة 4.3.
ملاحظه: لا تضغط علي جسم القراد بالبالكاد اثناء التجميد لان هذا قد يعطل الأمعاء الوسطي ويلوث الهيميدوليف. الانتظار حتى ضغط لطيف يمكن ان يطرد السائل دون تلوث.
6. معالجه الهيوليمف
- بعد جمع الهيموليمف ، إيداعه في الأنابيب المجهرية 1.5 mL معباه سابقا مع 30 μl البروتيني كوكتيل و 82 μl العازلة المالحة. الحفاظ علي الأنابيب المجهرية علي الجليد في جميع انحاء جمع الهيموليمف.
- عينات الطرد المركزي (500 x g لمده 3 دقائق في 4 °c). سيتم تشكيل بيليه لينه من الخلايا الدموية بعد طرد الدموية.
ملاحظه: بالنسبة للقياس الكمي للاوليمب النصفي ، يمكن قياس حجم الهيميميميه التي تم الحصول عليها من خلال احتساب الحجم الكلي داخل الأنبوب المجهري وخصم حجم كوكتيل الانزيم البروتيني والعازل الملحي. - بعناية أزاله سوبرناتانت (الخلايا الخالية من الهيسومف). برفق أعاده تعليق الخلايا في ، علي سبيل المثال ، الثقافة L-15 Leibovitz تعديلها لدرجه الحموضة 7.0-7.2. قياس الخلايا الدموية عن طريق وضع 10 μL من الخلايا الدموية المعاد تعليقها في غرفه نيوبوير.
7. اعداد شرائح الكريات الدموية
- قطع الساق الاماميه القراد مع زوج من المقص.
- تطبيق ضغط لطيف علي جزء الجسم الخلفي القراد. لاحظ فقاعه سائله شفافة تظهر علي موقع القطع.
- تطبيق قطرات الهيموليمف مباشره علي الشرائح المجهر نظيفه ، وبعد ذلك ، استخدم الأساليب المعتمدة لوصمه عار الخلايا.
- لتلطيخ الخلايا الدموية باستخدام giemsa ، والهواء والجافة الهيموليمف علي الشريحة لمده 30 دقيقه ، وإصلاحه في درجه حرارة الغرفة مع الميثانول لمده 3 دقائق ، ووصمه عار في محلول giemsa (1:9 نسبه الحل العازلة سورينسن ، pH 7.2) لمده 30 دقيقه في درجه حرارة الغرفة. غسل الشرائح مع المياه الجارية لأزاله الزائدة من صبغه ، الهواء الجاف الشريحة وتقييم الخلايا في 400x في المجهر البصري.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
تقترب هذه المقالة من التلقيح وطرق جمع الهيموليمف المطبقة علي القراد. بعد التلقيح بين الفخذ الساق والجسم القراد الإناث ، وبعض السوائل (hemolymph) يمكن ان يفرز اثناء العملية. مهما, هو مهمة ان يلاحظ ان عندما التلقيح يكون أنهيت, ما من سائل أو انسجه كان حاضره في الابره راس أو في التلقيح موقعه, يضمن ان التعليق فطريه كان تماما تلقيح. عندما أجريت عمليه التلقيح بشكل صحيح ، لم يسبب الادراج ابره القراد الإناث ' الموت. من ناحية أخرى ، توفي القراد حوالي 48 ساعة بعد التلقيح من الفطريات الحشرية. التلقيح بين الفخذ الساق والقراد الجسم الإناث يمكن ان تتلف أجهزه القراد المتدرب مثل ميدغوت والأنابيب الملبيغيان ، في حين ان الضرر الذي لحق الجهاز الجينات يمكن ان يحدث اثناء التلقيح بين الشجار والاستسلام.
عندما يتم تعطيل القناة الهضمية القراد بواسطة الابره اثناء جمع الهيميميداس الظهرية ، والسائل الذي تم الحصول عليه هو الأحمر ، وليس عديم اللون. يشير هذا إلى مجموعه غير صحيحه من الهيولوليمف. في هذه الحالات ، يجب التخلص من المادة اللمفية لأنها ملوثه بالمحتوي المعوي.
جمع الهيموليمف الصحيح أمر حاسم لاجراء التجارب بشكل صحيح والحصول علي نتائج موثوق بها. عندما تم جمع الهيموليمف من قطع القراد الساقين (ن = 20 القراد وزنها متجانس) ، وكان حجم الحصول علي اقل من المجموع الكلي التي تم الحصول عليها من جمع الظهرية (ن = 20 القراد وزن متجانس) (الشكل 4). ومن المقترح انه نظرا لانخفاض حجم كل قطره تسحب من الساق المقطوعة ، يمكن ان يكون تخثر الهيموليمف موجودا في كثير من الأحيان خلال هذه العملية من جمع الهيموليمف. وقد يؤثر ذلك سلبا في اكتساب الخلايا الدموية وتصنيفها (الشكل 5 والشكل 6). علي الرغم من ارتفاع حجم الإنجاز من الهيموليمف ، ويعتبر جمع الظهرية أكثر صعوبة في القيام به.
الشكل 1 : القراد ' ترطيب البشرة. Rhipicvvus ميكروبلاس الإناث بالبالكامل محتقن تم غسلها باستخدام مياه الصنبور ومغمورة في 0.5 ٪ محلول الصوديوم هيبوكلويد (v/v) لمده 3 دقائق في 500 mL الزجاج الكاس المتلقي. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2 : القراد ' جفاف البشرة. وقد جفت الإناث الصغيرة بالبالكامل باستخدام المناشف الورقية المعقمة. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3 : ميتارهيميوم المسام البدائية. Propaluges الفطرية المستخدمة في التلقيح القراد. شريط مقياس = 50 μm. الرجاء النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4 : الرسم البياني التمثيلي الذي يظهر حجم الصورة النصفية التي تم الحصول عليها مع كل طريقه collecton. Rhipicephalus ميكروبلاس حجم الهيموليمف التي تم الحصول عليها بعد جمع الظهرية أو الساق. واستخدمت مجموعه من 20 القراد المتجانس وزنها لكل طريقه. ولم يتم تطعيم هذه القراد في السابق. القيم المتوسطة ± الانحراف المعياري يتبع لنفس الحرف لا تختلف إحصائيا بعد تحليل الفرق (ANOVA) اختبار (P ≥ 0.05). يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
الشكل 5 : تركيز الخلايا الدموية التي تم الحصول عليها مع كل طريقه جمع الهيموسيف. Rhipicvvus ميكروبلاس تركيز الخلايا الدموية التي تم الحصول عليها بعد أعاده التعليق في المتوسطة الثقافية L-15 في leibovitz بعد جمع الظهرية أو الساق. القيم المتوسطة ± الانحراف المعياري المتبع لنفس الحرف لا تختلف إحصائيا بعد اختبار كروكال واليس (P ≥ 0.05). يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
الشكل 6 : الخلايا الدموية الموجودة في [رهيبيسفيوس] [ميكروبلس] مسحه الهيموليمف. كانت ملطخه بالخلايا الدموية من قبل Giemsa. الأسهم السوداء تشير إلى خلايا مختلفه في القراد hemolymph. شريط مقياس = 100 μm. الرجاء النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
التلقيح من مسببات الامراض مفيد عندما تهدف الدراسة إلى التحقيق في العمل المجري من الكائنات المجهرية في نماذج المفصليات التجريبية لأنه يؤكد ان الممرض هو داخل المضيف. ويمكن أيضا تطبيق هذه التقنية لتطعيم جزيئات مثل تداخل RNA (RNAi). اعتبرت تلقيح بين ال [سكوتثم] واستسلام يكون يسهل ان ينجز غير ان غالبا إتلافات [جنيه] جهاز, يضعف البيضات صلاحيه12,13. ويقع جهاز gené's بشكل تشريحي بالقرب من الجزء الامامي من الاستسلام ، وهو جهاز مهم لوضع القراد14. وبناء علي ذلك ، فان التلقيح بين الساق وجسم الأنثى هو أكثر ملاءمة إذا كانت الدراسة تتطلب مراقبه المعلمات البيولوجية للإناث لان جهاز الجينات لن يصاب. علي الرغم من طريقه التلقيح بين الفخذ الساق والجسم القراد يعتبر أكثر صعوبة وسهوله الضرر أو فضح الأعضاء الداخلية القراد ، مثل القناة الوسطي والأنابيب الملبيغيان ، عندما يتم تنفيذه بشكل جيد ، فانه لن يعطل هذه الاجهزه.
تحليل hemolymph ضروري لفهم الجهاز المناعي مفصليه وكذلك لفهم التسبب15,16. وفقا لذلك القراد الهيموليمف يمكن استخدامها للكشف عن فسيولوجيا القراد ، وضمان القراد عدوي ، وفهم التفاعلات القراد الممرض ، والاستجابات المناعية الخلوية و الخلطيه9،17،18.
وذكرت مجموعه القراد الهيموليمف من خلال قطع الساق في العديد من الدراسات19,20,21. علي الرغم من هذه الطريقة كونها بسيطه مع عدم وجود أو منخفضه جدا تلوث الخلايا اللمفية ، فانه يعتبر مضاده الانتاجيه للدراسات التي تتطلب تركيزات عاليه من الكريات الدموية أو كميات كبيره من الهيوليمف. من ناحية أخرى ، فان التنفيذ الصحيح لجمع الهيموليمف من خلال المنطقة الظهرية من الإناث محتقن ليس من السهل تحقيقه منذ الأمعاء تحتل تقريبا كامل الجسم القراد وتمزقه مع الابره يسبب التلوث الهيموليمف. التلوث بسبب اضطراب الأمعاء ويمكن أيضا ان يلاحظ عندما يتم أصابه القراد بشكل طبيعي مع كميات عاليه من hemoparasites (بما في ذلك ، Babesia spp.) ، أو في الخطوات النهائية لعمليه الوفاة الناجمة عن الحشرات الحشرية8. في هذه الحالات ، يجب التخلص من الدم اللمفي نظرا لان الخلايا الدموية وتحليلات البلازما يمكن ان تتاثر.
السرعة الطردة لعينات الهيموليسيس لحصاد الخلايا الدموية هي أيضا مهمة وتؤثر بشكل مباشر علي تركيز الخلايا الدموية ، نظرا لان سرعات حقل الطرد المركزي العالية النسبية تساهم في: i) خليه بيليه من الصعب أعاده تعليق ، ii) الخلايا اضطراب ، و iii) الخلايا الدموية ديتحبيب. بيليه الخلية المثالي هو بيليه لينه سهله لأعاده التعليق. لهذا السبب ، تم استخدام طرد في 500 x g لمده ثلاث دقائق عند 4 درجه مئوية8 . في هذه الدراسة ، تم أعاده تعليق الخلايا الدموية في وسط الثقافة وليس في المحلول الملحي الفوسفات المخزنة (التلفزيونية) لان الوسط الثقافي يدعم سلامه الخلية أفضل.
قد تواجه الطرق المعروضة هنا قيودا عند تطبيقها علي مراحل النضوج (اليرقات والحوريات) من القراد أو البالغين المنحلين. طريقه التلقيح ، علي سبيل المثال ، يتم تطبيقها فقط للإناث محتقن الكبار لان حجم ابره سوف تضر مراحل غير ناضجه وربما القراد الكبار منحل. لتطعيم هذه المراحل ، يجب استخدام حاقن صغير. المثل ، جمع الهيموليمف من خلال المنطقة الظهرية هو أكثر فعاليه عند تطبيقها علي القراد محتقن ، في حين جمع الهيموليمف عن طريق قطع الساقين يمكن استخدامها في الدراسات مع القراد الكبار المنحل أو مراحل غير ناضجه. وعلي الرغم من ذلك ، فان هدفنا هنا هو إظهار الأساليب التي تتطلب موارد تكنولوجية منخفضه جدا. الاضافه إلى ذلك ، طرد تقنيه يجب ان يؤديها في قوه طرد منخفضه لان القوه العالية أو الوقت الطويل تدور يمكن ان تتلف الخلايا.
ويمكن استخدام الأساليب التي تم الكشف عنها هنا كمبادئ توجيهيه للدراسات التي تنطوي علي تلقيح الحشرات الحشرية في القراد وحصاد الخلايا الدموية/الكريات الدموية. التقنيات المعروضة هنا تتطلب موارد تكنولوجية منخفضه جدا وهي خطوات كلاسيكية للدراسات حول علم وظائف الجسم القراد ، والامراض ، والاستجابة المناعية القراد.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
وليس لدي المؤلفين ما يفصحون عنه.
Acknowledgments
وقد تم تمويل هذه الدراسة جزئيا من قبل الcoordenacão العليا (الرؤوس) من البرازيل ، والقانون المالي 001. قدمت الرؤوس منحه الدكتوراه لa.f. Marciano. نشكر المجلس الوطني للتنمية العلمية والتكنولوجية في البرازيل علي تقديم منحه الدكتوراه ل j. Fiorotti. وكان هذا البحث مدعوما أيضا بمنح من مؤسسه كارلوس تشاغف# يلهو للبحوث في ولاية ريو دي جانيرو (FAPERJ) و CNPq. V.R.E.P. Bittencourt هو باحث CNPq.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Alkaline Hypochlorite solution | Sigma-Aldrich | A1727 | |
| D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G8270-1KG | |
| EDTA | Synth | 2706 | |
| Fetal Bovine Serum | Gibco | 16000036 | |
| Flexible rubber | BD | ||
| Giemsa stain | Sigma-Aldrich | 48900-500ML-F | |
| Glass capillary | CTechGlass | CT95-02 | |
| Insulin syringe (needle) | BD | SKU: 324910 | |
| KH2PO4 | Vetec | 60REAVET014512 | |
| Leibovitz's L-15 culture medium | Gibco | 11415-064 | |
| Methanol | Sigma-Aldrich | 34860-1L-R | |
| Microscope slides | Kasvi | K5-7105 | |
| Microtubes | BRAND | Z336769-1PAK | |
| Na2HPO4 | Vetec | 60REAVET014593 | |
| NaCl | Sigma-Aldrich | S7653-1KG | |
| Neubauer chamber | Kasvi | K5-0111 | |
| Penicillin | Gibco | 15140163 | |
| Protease inhibitor cocktail | Sigma-Aldrich | P2714 | |
| Tween 80 | Vetec | 60REAVET003662 |
References
- Grisi, L., et al. Reassessment of the potencial economic impact of cattle parasites in Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 23 (2), 150-156 (2014).
- Schrank, A., Vainstein, M. H. Metarhizium anisopliae enzymes and toxins. Toxicon. 56 (7), 1267-1274 (2010).
- Camargo, M. G., et al. Metarhizium anisopliae for controlling Rhipicephalus microplus ticks under field conditions. Veterinary Parasitology. 223, 38-42 (2016).
- Perinotto, W. M. S., et al. In vitro pathogenicity of different Metarhizium anisopliae s.l. isolates in oil formulations against Rhipicephalus microplus. Biocontrol Science and Technology. 27 (3), 338-347 (2017).
- Pedrini, N., Crespo, R., Juarez, M. P. Biochemistry of insect epicuticle degradation by entomopathogenic fungi. Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology and Pharmacolpgy. 146 (1-2), 124-137 (2007).
- Ortiz-Urquiza, A., Keyhani, N. O. Action on the surface: Entomopathogenic fungi versus the insect cuticle. Insects. 4 (3), 357-374 (2013).
- Angelo, I. C., et al. Detection of serpins involved in cellular immune response of Rhipicephalus microplus challenged with fungi. Biocontrol Science and Technology. 24 (3), 351-360 (2014).
- De Paulo, J. F., et al. Rhipicephalus microplus infected by Metarhizium: unveiling hemocyte quantification, GFP-fungi virulence, and ovary infection. Parasitology Research. 117, 1847-1856 (2018).
- Marmaras, V. J., Lampropoulou, M. Regulators and signalling in insect haemocyte immunity. Cell Signal. 21, 186-195 (2009).
- Hinzmann, M. F., Lopes-Lima, M., Gonçalves, J., Machado, J. Antiaggregant and toxic properties of different solutions on hemocytes of three freshwater bivalves. Toxicological & Environmental Chemistry. 95, 790-805 (2013).
- Nation, J. L. Insect Physiology and Biochemistry. , University of Florida. Gainesville, FL. (2016).
- Gene, J. Mémoires de l'Académie royale des sciences. Torino. 9, 751 (1848).
- Lees, A. D., Beament, J. W. L.
- Sonenshine, D. E., Roe, R. M. Biology of ticks. , Oxford University Press. Oxford, UK. (2014).
- Tan, J., et al. Characterization of hemocytes proliferation in larval silkworm Bombyx mori. Journal of Insect Physiology. 59 (6), 595-603 (2013).
- Bowden, T. J. The humoral immune systems of the American lobster (Homarus americanus) and the European lobster (Homarus gammarus). Fish Research. 186, 367-371 (2017).
- Sonenshine, D. E., Hynes, W. L. Molecular characterization and related aspects of the innate immune response in ticks. Frontiers in Bioscience. 13, 7046-7063 (2008).
- Tsakas, S., Marmaras, V. Insect immunity and its signaling: an overview. Invertebrate Survival Journal. 7, 228-238 (2010).
- Burgdorfer, W. Hemolymph Test. A technique for detection of Rickettsiae in ticks. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 19, 1010-1014 (1970).
- Dunham-Ems, S. M., et al. Live imaging reveals a biphasic mode of dissemination of Borrelia burgdorferi within ticks. Journal of Clinical Investigation. 119, 3652-3665 (2009).
- Patton, T. G., et al. Saliva, salivary gland, and hemolymph collection from Ixodes scapularis ticks. Journal of Visualized Experiments. 60, e3894 (2012).
