Summary
该协议描述了通过平底鸟类标本使用热像仪和热水浴进行热传播的量化。该方法允许使用干平皮标本获取有关羽毛大衣跨物种热性能的定量比较数据。
Abstract
羽毛对鸟类的绝缘至关重要,因此对热调节的成本也至关重要。关于各种生态环境下鸟类热调节的能量成本,有丰富的文献。然而,很少有研究将羽毛单独描述为热调节。先前的几项研究已经建立了测量动物毛皮绝缘值的方法,但它们需要破坏性的取样方法,这对鸟类来说是个问题,因为鸟类的羽毛在皮肤上分布不均匀。需要更多信息,包括1)羽毛对热调节的贡献在物种之间和物种内部的变化,2)羽毛大衣在空间和时间上的变化。这里报道的是一种使用干燥的全皮肤标本快速直接测量羽毛大衣和皮肤的热性能的方法,无需破坏皮肤标本。这种方法分离和测量羽毛涂层的热梯度的方式,测量热损失和代谢成本的活鸟,使用行为和生理策略来热调节,不能。该方法采用热像仪,可快速收集定量热数据,通过皮肤测量来自稳定来源的热损失。此协议可以很容易地应用于各种研究问题,适用于任何鸟类分类,并且不需要破坏皮肤标本。最后,它将通过简化和加速收集定量数据,进一步理解被动热调节在鸟类中的重要性。
Introduction
羽毛是鸟类的决定性特征,具有多种功能,其中最关键的是绝缘1。鸟类的平均核心温度是任何脊椎动物群中最高的,而羽毛使它们免受环境温度变化的隔热是能量平衡的重要组成部分,尤其是在寒冷的环境中。尽管羽毛很重要,但大多数关于鸟类热条件变化的文献都集中在对温度变化的代谢反应上,而不是羽毛作为绝缘体的功能,如绝缘3、4、5、6、7、8、9、10(详情请参阅Ward等人)。11,12,13。然而,羽毛本身可能因时间、个体和物种而异。
此处介绍的方法可用于仅量化羽毛大衣的整体热值。它消除活鸟的混淆因素,如行为热调节1 和不同数量的绝缘脂肪。更广泛地测量羽毛大衣的热性能是必要的,以提高对羽毛如何促进绝缘的理解,以及在整个鸟类的生命历史和年度周期中,这些物种之间和物种内部是如何变化的。
羽毛通过在皮肤和羽毛之间以及羽毛内部捕获空气来隔离鸟类,它们为热量损失创造了物理屏障。羽毛由中央羽毛轴组成,称为拉奇,投影称为 barbs14。巴布是小,二次投影的酒吧,与相邻的酒吧联锁在一起,"拉链"羽毛,并给它的结构。此外,羽绒羽毛缺乏中央拉奇,几乎没有巴布,因此在皮肤上形成松散的,绝缘的巴布质量14。羽毛大衣因物种15、16、17、18和可比个体2、19、20、21、22、23、24而异。然而,关于羽毛数量的变化、鸟类上不同种类羽毛的相对丰度或刺/栏杆数量的变化如何影响羽毛大衣的整体热性能,几乎没有定量信息。先前的研究重点是确定特定物种11、12、13的绝缘和导热的单一平均值。
众所周知,羽毛大衣因物种而异。例如,大多数鸟类的皮肤区域各不一,羽毛从这些区域生长,或不长出,分别称为斑马和紫杉。pterylae(有时称为"羽毛带")的位置因物种而异,并具有一定的分类特征14的价值。然而,一些鸟类(即老鼠和企鹅)已经失去了这种腺病,并有一个统一分布的羽毛在整个身体14。此外,不同的物种,特别是那些居住在不同环境,有不同的比例的羽毛类型15。例如,生活在较冷气候中的鸟类比生活在温暖环境中的物种拥有更多的羽绒羽毛15和轮廓羽毛,其羽毛的羽状部分大于16。
某些类型的羽毛的微观结构也可能对25、26物种的绝缘产生影响。雷等人比较了许多中国路人麻雀轮廓羽毛的微观结构,发现栖息在较冷环境中的物种在每个轮廓羽毛中羽状棒的比例较高,球状体较长,节点密度较高,节点较大,比居住在温暖环境中的物种多。D'alba等人比较了普通羽毛(索马特里亚·莫利西玛)和灰鹅(安瑟安瑟)羽绒羽毛的微观结构,并描述了这些差异如何影响羽毛的凝聚力和羽毛捕获空气的能力。关于羽毛变化如何影响不同物种羽毛涂层整体热性能的定量比较数据有限(有关更多详细信息,请参阅泰勒和沃德等人)。11,13.
在一个物种中,羽毛大衣的热性能可能会有所不同。有些物种,如僧鹦鹉(米约普西塔莫纳丘斯)17,栖息在非常大和多样化的地理范围。这些不同环境造成的不同热应力可能会影响区域内鸟类的羽毛外衣,但目前没有关于这一主题的数据。此外,布罗吉等人比较了北半球的两个大山雀(帕鲁斯主要L.)种群。他们表明,北方人口较多的轮廓羽毛比南方人口更密集,但更短,比例更小。然而,当两种种群的鸟类在同一地点饲养时,这些差异消失了。
此外,Broggi等人将这些发现解释为对不同热条件的塑料反应,但他们没有测量这些不同羽绒大衣的绝缘值。研究结果还表明,轮廓羽毛密度比轮廓羽毛中羽毛中羽毛的比例更重要,但布罗吉等人认为,北方种群可能因缺乏足够的营养而无法产生最佳的羽毛。对这些羽绒服整体热性能的定量测量将进一步理解羽毛差异的重要性。
随着时间的推移,个别鸟类的羽毛外衣会有所不同。每年至少一次,所有的鸟都会剥落(替换所有的羽毛)19。随着一年的流逝,羽毛变得磨损2,20和少无数18,21,22,23。有些鸟每年的毛绒不止一次,每年给它们多件不同的羽毛大衣19件。米德尔顿显示,美国金雀(脊柱三叶草),每年软糖两次,有较高的羽毛数量和羽绒羽毛的比例,在他们的基本羽毛在冬季几个月比他们在夏季的替代羽毛24。羽毛大衣的这些年度差异可能使鸟类在寒冷时期被动地保存更多的热量,或在温暖的季节被动地散发更多的热量,但是没有研究能最终证明这一点。
虽然鸟类在行为上调节行为1,27,并可以适应不同的热条件3,4,5,6,7,8,9,10,26,羽毛发挥重要的作用,在热调节提供恒定的绝缘层。这里描述的方法旨在通过隔离羽毛来回答有关羽毛涂层及其在被动热调节中的作用的问题(即活鸟在不改变其行为或新陈代谢的情况下保留多少热量?虽然主动和生理热调节在生态上很重要,但了解羽毛本身如何帮助绝缘以及它们如何影响主动行为和生理温度调节的需求也很重要。
先前的研究已经建立了量化动物皮毛11、12、13、28的导热性和保温方法。这里介绍的方法是"保护热板"方法11,12,13,28的扩展。但是,此处描述的方法使用热像仪而不是热电偶测量羽毛涂层外边界的温度。防护热板方法对通过皮毛的能量流动给出了非常精确的估计,但它需要构建一个多材料热板,对热电偶和热电瓶的使用有所熟悉,并且必须切成小块的毛皮的破坏性使用。然后对这些部件进行润滑,以消除样品和热板设备之间的空气。除了少数缺乏阿普特里亚(例如企鹅)的鸟类外,从鸟皮上切出小方块对于比较而言是有问题的,因为切口的位置对实际附着在(和过度)皮肤上的羽毛数量有很大影响。这个问题因ptyerlae14的存在、大小和位置的差异而加剧。
此外,虽然博物馆标本可能是评估鸟类绝缘变化的潜在丰富资源,但一般来说,在科学收藏中,切割和润滑皮肤标本的许可是无法实现的。此外,从野外采集的用于保护热板测量的标本随后不能用作博物馆标本。这里介绍的方法不同于保护热板方法,因为它可以与整个干燥的鸟皮一起使用,无需 1) 要求销毁标本,2) 润滑皮肤底面。它使用热像仪,这是越来越实惠(虽然仍然相对昂贵),精确,并用于活鸟测量热关系。
这种方法不会像保护热板方法那样直接测量通过皮肤和羽毛的能量流(因此热电导率或绝缘值)。相反,它使用热像仪测量羽毛大衣外边界的温度。由此产生的值表示通过皮肤、羽毛和空气被动地损失的热量的综合测量(与下面的热源相比)。标本作为扁平皮肤准备,并使用上述技术测量,可以存储在收藏品中,并无限期地为未来的研究提供价值。这种方法提供了一种标准化、可比性和相对简单的方法来测量任何平皮标本中的羽绒外衣热性能,这在特定的相互比较和内部比较中特别有用。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
这项工作不涉及任何活体动物的工作,因此不受动物护理审查。
1. 设置和材料(图1)
- 如果没有感兴趣的物种的扁平皮肤,请使用 Spaw 的协议29 从新鲜或冷冻标本中创建皮肤。将羽毛放入整齐、自然的位置,干燥,以便在进行测量之前获得恒定的重量。
- 设置恒温热水浴池。
注意:这个设置相当高,所以它是最容易把热水浴在地板上。 - 将一块透明丙烯酸玻璃(材料表)放在恒温热水浴的表面。玻璃允许热量传输到皮肤的底面,而不会弄湿标本。
注:本试验研究使用了一块丙烯酸玻璃(厚度0.125)。玻璃的厚度不会影响材料的发射率30( 始终为 0.86),但会影响玻璃表面的绝对温度(即, 较厚的玻璃会导致较低的温度)。因此,所有测量都应使用厚度相同的丙烯酸玻璃片进行。 - 将一块泡沫芯板(1 厚)放在丙烯酸玻璃上,在丙烯酸玻璃上放置一个圆形孔(直径 0.5)。
注:鸟的大小应引导孔的大小,因此不间断的羽毛接收热量从源头的大小。在这里,使用了一个直径为0.5的孔,因为这个大小足够大,足以实现足够的热量传输到标本,同时仍然足够小,以集中乳房羽毛带下的热量(所有鸟类除最小的鸟)。无论热开口大小如何,要为每只鸟获得可比和可复制的价值,请务必用相同大小的孔进行测量。 - 将热像仪连接到摄像机最小对焦距离设置正上方的三脚架上。
注:这里使用FLIR SC655热像仪(680 px x 480 px 分辨率,±2 °C 或±2% 的读取精度,40 厘米的最小对焦距离)。其他摄像机的分辨率可能不同。 - 通过将以下信息输入热像仪软件来校准摄像机:
- 通过在泡沫上放置铝箔(朝上闪亮的一侧),在相机校准软件中将发射值设置为 1.0 来查找反射温度。拍摄热图像。铝箔表面的温度是反射温度,应与房间的环境温度相似。
- 将发射值31 到 0.95 设置为 0.95。
注:1) 放射性是物体发射32 的相对热量,范围从 0 到 1。具有高发射值的物体会释放出大量的热量,而具有低发射值的物体会散射少量热量。此值表示羽毛的放电性。2) 此值 (0.95) 存在争议。科辛斯和鲍尔声称羽毛的放射值在0.90-0.95之间,但没有包括任何证据31。哈梅尔报告的价值为0.98,但他从冷冻标本中获得了这个值,所以它可能不准确33。尽管缺乏证据,但0.95发射率是热像文献中最常用的价值(科辛斯和鲍尔斯31证明了这一点)。 - 确保房间的环境温度和湿度保持不变。这些值应在每次测量和更新相机校准软件之前进行测量。所有室内房间的温度和湿度都会有一定波动,因此在软件中记录这些值并更新这些值可减少测量误差。
注:这里,使用FLIR研究最大软件。此软件不会为所有图像保存数据,因此记录每个图像的所有这些值至关重要。
2. 测量性能
- 将恒温热水浴设定为目标温度(40 °C 是大多数路人鸟类平均内部核心温度的代理)34。
注意:如果与休息核心温度较高(如蜂鸟34)或更低(如企鹅34或鼠34,35)的物种合作,则可能适合相应地调整热水浴。图3显示了热水浴的温度与丙烯酸玻璃表面温度之间的关系(例如,平底皮肤暴露在热源的实际温度)。- 从该协议中获得的结果(见 图5)表明,获得一系列温度的测量结果也有助于了解热性能差异。要实现此目的,请使用 30+55 °C 的 5 °C 增量遵循协议。
- 在热像仪软件中,在散热的泡沫孔上画一个圆圈/椭圆。这使得在将皮肤放在泡沫上时能够可视化此区域,以确保测量平底皮肤上的正确区域。
- 将扁平皮肤标本放在泡沫上,在孔上放置感兴趣的区域。
注:在这里,测量每只鸟的腹部区域,因为它不受身体的其他部位,如翅膀的阻碍,并位于中心位置足以不受到边缘的影响。皮肤在热孔上的位置会因实验问题而异。一般来说,建议将位置直接放置在羽毛道上,并尽可能远离皮肤边缘。放置皮肤时,请确保不要使羽毛变平或紊乱。如有必要,在放置皮肤后将其置于自然位置。 - 等待 15 分钟,让皮肤适应热源。如果测量太早,羽毛大衣表面的温度值将太低。在这里,通过皮肤和羽毛的温度传输稳定在15分钟,所以等待超过15分钟不会产生人为的高结果。
- 拍摄扁平皮肤的热图像。
- 在拍摄热图像之前,将发射值设置为31 到 0.95。
- 从泡沫中取出皮肤,并立即拍摄未在泡沫上平底皮肤的设置的热图像。这量化了丙烯酸玻璃表面的温度,并校准了热源区域与平底皮肤上的测量区域。
- 在这里,使用的30 丙烯酸玻璃的放电性是0.86。在拍摄没有皮肤的照片之前,请务必在热像仪软件中记录这一点。
注:热水浴所显示的温度不一定是丙烯酸玻璃表面的温度(图3),因为它的热传导并不完美。使用玻璃的温度可以减少估计皮肤底面温度的错误,因此可以综合估计皮肤和羽毛会损失多少热量。
- 在这里,使用的30 丙烯酸玻璃的放电性是0.86。在拍摄没有皮肤的照片之前,请务必在热像仪软件中记录这一点。
- 将皮肤放回泡沫上,置于同一位置。重复步骤 2.502.6 共五次试验。
- 要正确放置标本皮肤,请用一根指尖轻轻触摸目标测量区域的羽毛,然后取下手指并查看热图像。手指的剩余热量将在热图像上短暂可见。检查以确保采样区域位于软件中绘制的可见圆圈内,该圆圈表示热水浴中通过皮肤辐射的热量区域。如果不是,移动皮肤,直到它是。这个过程在 图2中得到了说明。
注:虽然新鲜皮肤(如果可用)可能更密切地代表活鸟皮肤的自然热性能,但这些测量使用干燥的皮肤可以在更大的标本池上产生可比的可重复结果。因此,所有测量都应使用干燥到恒定的重量的皮肤进行,或者使用标本的新鲜和干燥皮肤进行测量。
- 要正确放置标本皮肤,请用一根指尖轻轻触摸目标测量区域的羽毛,然后取下手指并查看热图像。手指的剩余热量将在热图像上短暂可见。检查以确保采样区域位于软件中绘制的可见圆圈内,该圆圈表示热水浴中通过皮肤辐射的热量区域。如果不是,移动皮肤,直到它是。这个过程在 图2中得到了说明。
3. 热图像数据收集
- 每个测量包括两个热图像:一个平底皮肤和一个丙烯酸玻璃。首先,打开丙烯酸玻璃的图像。将软件中绘制的圆圈与图像中可见的泡沫中的孔对齐。记录圆的中心温度值。
注意:有关从热图像中提取数据的更多详细信息,请参阅高级等人。- 确保校准具有正确值的相机。在记录温度值之前,将发射率设置为30 到 0.86,并设置环境温度和湿度以匹配实验室中的当前条件。
- 打开平底皮肤的热图像。无需移动圆,即可记录圆中心的温度值。
注:由于圆圈未记录在图像中,因此必须校准圆圈的位置,并校准第 2.6 节中丙烯酸玻璃的图像。- 确保校准具有正确值的相机。将发射率31 到 0.95 设置,并确保在记录温度值之前,将环境温度和湿度设置为实验室中的当前条件。
- 对于所有标本的所有测量,重复步骤 3.1-3.2。
4. 热性能计算
- 从丙烯酸玻璃的温度中减去羽毛涂层表面的温度。此值表示羽毛涂层保留的热量。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
图 4 和 图5中介绍了在6个温度下测量的5个物种中每个物种中一个个体的代表性结果。这些结果表明,皮肤位置的微小变化可能导致高达 1.7 °C 的读数变化。 图 4 显示了对调查员的培训如何提高测量的可重复性。例如,同一个单个家麻雀(路人家居)被一个缺乏经验的调查员在一个目标温度下测量了五次(图4A)。在对不同物种的各种标本进行培训后,一名研究人员(J.G.)在同一目标温度下测量了同一标本五次(图4B)。丙烯酸玻璃温度与羽毛表面温度之间的关系的估计仅变化了一小笔(但也许很重要)。因此,测量本身的可重复性几乎增加了四倍。因此,强烈建议非样本皮肤上的操作员重复练习(在进行将要分析的测量之前),直到测量结果趋同并使测量变化稳定下来(即,通过其他实践看不到可重复性的进一步改善)。在分析每个标本中的重复措施(或重复措施的手段)之前,这一点很重要。
图5中显示的数据代表一个小的试验样本,但表明这种测量羽毛涂层热性能的方法可能会对鸟类的热生态产生重要的见解。为了减少测量误差,只有一名调查员(J.G.)对测量进行了培训并进行了测量。虽然这些数据只代表每个列出的物种中的一个(家麻雀,东菲奥尼斯菲比),灰猫鸟[杜梅泰拉卡罗琳西斯],东方蓝鸟[西亚利亚西亚利斯],和塔夫特山雀[贝奥洛普斯双色]),但由此产生的数据的斜坡变化表明,羽毛大衣的热性能在这些个体之间有所不同。此外,这些差异的严重程度表明,这种差异可能是由于物种差异造成的。
此外,鉴于单个训练有素的调查员在图5中执行了所有测量,仅靠调查员技能无法控制R2值的变化。例如,与东部的菲比和东部的蓝鸟(图4,图5)相比,即使在训练之后,在家麻雀中也很难反复获得测量结果。后两只鸟都是孵化年份的个体。因此,他们的年龄组可能会影响他们的绝缘的均匀性(虽然,这是猜测没有进一步研究),但没有理由期望他们的皮肤放置测量应该比房子麻雀更容易重复。因此,一些不完全了解的羽毛大衣质量的房子麻雀可能需要进一步调查。同样,图5中线的坡度变化表明,测量温度范围(例如,一个物种的热中性区)的热性能可能比使用单一参考热水平更具有生物学信息性。
图1:完整的热像仪和热水浴池设置图。请单击此处查看此图的较大版本。
图2:热图像代表在多个试验中复制相同位置的方法。椭圆形已经放置在丙烯酸玻璃上的加热区域。这些图像显示皮肤的运动,而不是椭圆形。轻轻地短暂地触摸指尖到羽毛涂层上的目标测量区域。指尖会在皮肤上留下几秒钟的热痕。(A) 显示的是椭圆外的热标记,这意味着目标测量区域不会暴露在热量中。小心不要移动泡沫或丙烯酸玻璃(这会导致椭圆不准确地表示热暴露区域),调整平底皮肤的位置,并再次触摸目标测量区域。继续这个过程,直到(B) 热标记包含在椭圆中。 请单击此处查看此图的较大版本。
图3:热水浴的温度(显示读数)与丙烯酸玻璃表面的温度(例如,平底皮肤暴露的实际热源)之间的关系。需要注意的是,丙烯酸玻璃表面的温度始终略高于热水浴所显示的温度。使用此图只是为了了解此关系,并且始终测量每次试验丙烯酸玻璃表面的温度(第 2.6 节)。 请单击此处查看此图的较大版本。
图4:单只鸟羽毛大衣表面温度测量的可重复性提高。这些值是在调查员对测量性能进行可重复性培训之前和(B)之前从单个房屋麻雀(A) 获得的。请单击此处查看此图的较大版本。
图5:五种鸟类单一标本中丙烯酸玻璃表面温度与羽毛表面温度的关系。任何单个图形上的点表示同一个体在六种不同目标温度下的重复测量。需要注意的是,虽然在参考加热点 40 °C 的测量结果相似,但这些线的坡度各不相同。这表明,这些鸟类羽毛大衣的热性能不同(坡度为0是一个完美的绝缘体,1的坡度是完全非绝缘的)。还应指出,测量可重复性各不相同。即使在对调查员进行测量培训后,反复测量的差异也最高,而东部的菲比和东部蓝鸟的差异也最低。 请单击此处查看此图的较大版本。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
本文为可重复、标准化的鸟类平底皮肤标本热成像测量提供了协议。这种方法使得比较羽毛大衣在物种之间、物种内部、可比个体之间以及个体身体的不同位置之间的热性能,所有这些都无需破坏标本。
必要材料和设备的提供可能是这种方法的局限性。虽然热像仪正迅速变得更加容易获得和负担得起,研究级热像仪仍然花费数万美元37。然而,热像仪可用于生物学的许多实际应用。麦卡弗里28日主张使用热像仪调查生态问题。热像仪特别适用于收集有关该领域自由生物体的数据,因为它们是远程和非侵入性工具。这里介绍的方法使现场和实验室研究与同一设备执行的相同单位的测量相结合成为可能。
使用此处使用的热像仪软件以外的软件可能需要修改此协议,但此类更改只会影响设置阶段(第 1 节)。对小鸟类的研究或关于较大鸟类的某些问题可能需要在泡沫层中出现大小不同的孔。
同样,热水浴的温度(第2.1步)可能需要修改一些物种的核心温度更高或更低,如果目标是测量温度与实验问题直接生物相关。一般来说,水浴温度标准化在40°C跨研究将促进对不同种类完整的羽毛和羽毛结构的相对热性能的比较分析。如果需要精确测量皮肤和羽毛之间的能量通量,则保护热板方法 11、12、13、28 可能是更好的方法,因为它 1) 消除热源和皮肤之间的空气,2) 直接测量皮肤内部表面的温度。然而,虽然这种方法不能直接测量或计算能量转移,但它旨在促进对整个标本的快速和可重复的测量。最后,结果表明,在检测羽毛热性能变化模式方面,精度很高。
这种方法使用扁平的皮肤,这是目前没有广泛在大多数博物馆收藏。圆皮在大多数自然历史收藏中都非常可用,如果拆卸、软化、扁平和重新涂上,则可以使用这种方法。然而,在大多数情况下,策展人不太可能批准这种重装。为了增加对鸟类羽毛热值进行比较研究的资源,我们主张在尽可能多的物种中广泛采用扁平剥皮。平皮的额外好处是,平皮不需要像圆皮那样部分破坏标本的骨骼和肌肉,而平底皮肤的数量可以存储在圆皮肤所需的相同空间中。
在任何特定物种的皮肤中,必须开发一种技术,以便每次将皮肤准确放置在同一地点的热孔上。此处获得的结果表明,该技术(如第 2.7 步所述)比单单在皮肤放置方面的做法更快速、更有效地最小化测量误差。然而,特别密集的羽毛(例如企鹅11号)可能无法通过羽毛失去足够的热量,使热图像上的皮肤和羽毛能够直观地看到热孔,这是合理的。
由于大多数鸟类中都存在斑纹,因此在标本上将羽毛排列在皮肤上会影响羽毛涂层的热传递模式。因此,重要的是,羽毛的位置尽可能接近其自然位置的活鸟。将羽毛预置成整齐、自然的位置是平底标本协议中的最后一步。因此,如果标本准备得当,羽毛的位置应该适合不同标本的物种。羽毛的贴片量也会通过在羽毛大衣中吸收绝缘空气来影响羽毛大衣的热性能。相比之下,在扁平的皮肤标本中,羽毛平放在皮肤上,因此在所有标本中,皮毛应有效可比。
虽然这项研究侧重于鸟类,但这种方法可能同样对哺乳动物的皮肤有用。Boonstra等人断言,鸟类羽毛比哺乳动物毛皮更具绝缘性,但这项研究是基于对热视频39的视觉分析进行的定性评估,而不是对从可比身体区域逸出的热量的定量测量。据认为,这里描述的方法将有助于扩大比较热研究,并产生伟大的洞察力的演变和生态的热调节结构,如羽毛40。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项研究部分由康涅狄格大学研究咨询委员会学院资助,该学院向鲁贝加大学提供大笔资助。K. 布尔吉奥在国家科学基金会NRT-IGE赠款#1545458支持M.鲁贝加。两位匿名评论者的深思熟虑的反馈大大改善了手稿。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Aluminum Foil | Reynolds Wrap | 109000831 | 30 square ft.; this exact model need not be used. |
Foam Core Board | Foamular | 20WE | 1 in. x 4 ft. x 8 ft; this exact model need no be used. |
General Purpose Water Bath | PolyScience | WB02 | Ambiet +5 °C to 100 °C; ±.01 °C |
PDF Data logger | Elitech | RC-51H | Built in temperature and humidity sensor |
Plexiglass | AdirOffice | 1212-3-C | Acrylic glass; 12 in. x 12 in. x 1/8 in.; this exact model need not be used. |
Thermal Image Analysis Software | FLIR | ResearchIR Max v4.40.7.26 (64-bit) | Allows collection of precise, quantitative thermal data |
Thermal Imaging Camera | FLIR | SC655 | 680x480-pixel resolution, ±2 °C or ±2% accuracy, 40 cm minimum focusing distance |
Tripod | The Audubon Shop | The Birder Tripod with Manfrotto 700RC2 Rapid Release Head | 65" maximum height; this exact model need not be used. |
References
- Morris, D. The Feather Postures of Birds and the Problem of the Origin of Social Signals. Behaviour. 9, 75-111 (1956).
- Wetmore, A. A Study of the Body Temperature of Birds. Smithsonian Miscellaneous Collections. 72 (12), Smithsonian Institution. City of Washington. (1921).
- Hart, J. S. Seasonal Acclimatization in Four Species of Small Wild Birds. Physiological Zoology. 35 (3), 224-236 (1962).
- Veghte, J. H. Thermal and Metabolic Responses of the Gray Jay to Cold Stress. Physiological Zoology. 37 (3), 316-328 (1964).
- Brush, A. H. Energetics, Temperature Regulation and Circulation in Resting, Active and Defeathered California Quail, Lophortyx californicus. Comparative Biochemistry and Physiology. 15, 399-421 (1965).
- Dawson, W. R., Carey, C. Seasonal Acclimatization to Temperature in Cardueline Finches. Journal of Comparative Physiology. 112, 317-333 (1976).
- Cooper, S. J., Swanson, D. L. Seasonal Acclimatization of Thermoregulation in The Black-Capped Chickadee. The Condor. 96, 638-646 (1994).
- Bush, N. G., Brown, M., Downs, C. T. Seasonal Effects on Thermoregulatory Responses of the Rock Kestrel, Falco rupicolis. Journal of Thermal Biology. 33, 404-412 (2008).
- Nzama, S. N., Downs, C. T., Brown, M. Seasonal Variation in the Metabolism-Temperature Relation of House Sparrows (Passer domesticus) in KwaZulu-Natal, South Africa. Journal of Thermal Biology. 35, 100-104 (2010).
- Noakes, M. J., Wolf, B. O., McKechnie, A. E. Seasonal Metabolic Acclimatization Varies in Direction and Magnitude among Populations of an Afrotropical Passerine Bird. Physiological and Biochemical Zoology. 90 (2), 178-189 (2016).
- Taylor, J. R. Thermal insulation of the down and feathers of pygoscelid penguin chicks and the unique properties of penguin feathers. The Auk. 103 (1), 160-168 (1986).
- Ward, J. M., Houston, D. C., Ruxton, G. D., McCafferty, D. J., Cook, P. Thermal resistance of chicken (Gallus domesticus) plumage: a comparison between broiler and free-range birds. British poultry science. 42 (5), 558-563 (2001).
- Ward, J. M., Ruxton, G. D., Houston, D. C., McCafferty, D. J. Thermal consequences of turning white in winter: a comparative study of red grouse Lagopus lagopus scoticus and Scandinavian willow grouse L. l. lagopus. Wildlife Biology. 13 (2), 120-130 (2007).
- Lucas, A. M., Stettenheim, P. R. Avian Anatomy: Integument. , US Government Printing Office. Washington, D.C. (1972).
- Osváth, G., et al. How feathered are birds? Environment predicts both mass and density of body feathers. Functional Ecology. 32, 701-712 (2018).
- Pap, P. L., et al. A phylogenetic comparative analysis reveals correlations between body feather structure and habitat. Functional Ecology. 31 (6), 1241-1251 (2017).
- Caccamise, D. F., Weathers, W. W. Winter Nest Microclimate of Monk Parakeets. The Wilson Bulletin. 89 (2), 346-349 (1977).
- Broggi, J., Gamero, A., Hohtola, E., Orell, M., Nilsson, J. Å Interpopulation variation in contour feather structure is environmentally determined in great tits. PLoS ONE. 6 (9), 24942 (2011).
- Howell, S. N. G. Molt in North American Birds. , Houghton Mifflin Harcourt. ISBN 13: 9780547152356 (2010).
- Willoughby, E. J. An Unusual Sequence of Molts and Plumages in Cassin's and Bachman's Sparrows. The Condor. 88 (4), 461-472 (1986).
- Wetmore, A. The Number of Contour Feathers in Passeriform and Related Birds. Auk. 53, 159-169 (1936).
- Staebler, A. E. Number of Contour Feathers in the English Sparrow. The Wilson Bulletin. 53 (2), 126-127 (1941).
- Barnett, L. B. Seasonal Changes in Temperature Acclimatization of the House Sparrow, Passer domesticus. Comparative Biochemistry and Physiology. 33, 559-578 (1970).
- Middleton, A. L. A. Seasonal Changes in Plumage Structure and Body Composition of the American Goldfinch, Carduelis tristis. The Canadian Field-Naturalist. 100 (4), 545-549 (1986).
- Lei, F. M., Qu, Y. H., Gan, Y. L., Gebauer, A., Kaiser, M. The feather microstructure of Passerine sparrows in China. Journal für Ornithologie. 143 (2), 205-213 (2002).
- D'alba, L., Carlsen, T. H., Ásgeirsson, Á, Shawkey, M. D., Jónsson, J. E. Contributions of feather microstructure to eider down insulation properties. Journal of Avian Biology. 48 (8), 1150-1157 (2017).
- Gilbert, C., Robertson, G., Le Maho, Y., Naito, Y., Ancel, A. Huddling behavior in emperor penguins: dynamics of huddling. Physiology & Behavior. 88, 479-488 (2006).
- Kvadsheim, P. H., Folkow, L. P., Blix, A. S. A new device for measurement of the thermal conductivity of fur and blubber. Journal of thermal Biology. 19 (6), 431-435 (1994).
- Spaw, C. Combination Specimens a la Burke Museum. , 21-28 (1989).
- Infrared Emissivity Table. ThermoWorks. , Available from: https://www.thermoworks.com/emissivity_table (2019).
- Cossins, A. R., Bowler, K. Temperature Biology of Animals. , Chapman and Hall. London. (1987).
- Orlove, G. Emissivity and Reflected Temperature. Infrared Training Center. , Available from: http://irinformir.blogspot.com/2012/02/thermographic-measurement-techniques.html (2012).
- Hammel, H. T. Infrared Emissivities of Some Arctic Fauna. Journal of Mammalogy. 37 (3), 375-378 (1956).
- McNab, B. K. An Analysis of the Body Temperatures of Birds. The Condor. 68 (1), 47-55 (1966).
- Crawford, E. C., Lasiewski, R. C. Oxygen Consumption and Respiratory Evaporation of the Emu and Rhea. The Condor. 70, 333-339 (1968).
- Senior, R. A., Hill, J. K., Edwards, D. P. ThermStats: An R Package for Quantifying Surface Thermal Heterogeneity in Assessments of Microclimates. Methods in Ecology and Evolution. 10, 1606-1614 (2019).
- FLIR Systems, Inc. , Available from: https://www.flir.com (2019).
- McCafferty, D. J. Applications of thermal imaging in avian science. Ibis. 155 (1), 4-15 (2013).
- Boonstra, R., Eadie, J. M., Krebs, C. J., Boutin, S. Limitations of Far Infrared Thermal Imaging in Locating Birds. Journal of Field Ornithology. 66 (2), 192-198 (1955).
- Rodbard, S.
Weight and Body Temperature. Science. 111 (2887), 465-466 (1950).