Summary
荧光激活细胞分选 - 放射性配体处理组织（FACS-RTT）是研究18 kDa易位蛋白或血清素5HT2A受体表达在细胞尺度上阿尔茨海默病中的作用的强大工具。该协议描述了FACS-RTT在TgF344-AD大鼠模型中的 离体 应用。
Abstract
神经胶质细胞可能在神经退行性疾病（如阿尔茨海默病（AD））的病理生理学中具有相当大的影响。它们的改变可能与促炎状态有关。TgF344-AD大鼠菌株设计用于表达人类APP和人类PS1ΔE9 基因，编码淀粉样蛋白Aβ-40和Aβ-42，并随着年龄的增长显示淀粉样蛋白病理学和认知缺陷。本研究使用TgF344-AD大鼠模型来评估18 kDa易位蛋白（TSPO，神经胶质细胞活化的标志物）结合的细胞起源，以及可能在AD中破坏的5HT2A受体（5HT2AR）血清素受体水平。这里介绍的技术是荧光活化细胞分选为放射性配体处理组织（FACS-RTT），这是一种定量细胞类型特异性技术，补充 了体内 PET或SPECT或 离体/体外 放射自显影技术。它在细胞术细胞分选后使用γ计数器量化先前用于成像的相同放射性标记示踪剂。这允许确定具有高细胞特异性和灵敏度的放射性标记蛋白的细胞来源。例如，FACS-RTT的研究表明，（i）脂多糖（LPS）诱导的神经炎症大鼠模型中TSPO结合的增加与小胶质细胞相关，（ii）12个月和18个月时TSPO结合的增加首先与星形胶质细胞相关，然后与野生型（WT）大鼠相比，TgF344-AD大鼠中的小胶质细胞相关，以及（iii）纹状体密度为5HT2A在同一大鼠AD模型中，R在18个月时星形胶质细胞减少。有趣的是，这种技术可以扩展到几乎所有的放射性示踪剂。
Introduction
神经退行性疾病，如阿尔茨海默病（AD），其特征在于与症状增加相关的神经元丢失。AD是痴呆症最常见的原因，占病例的60%-70%，影响全球约5000万人1。在神经病理学水平上，AD的两个主要特征是细胞外淀粉样蛋白β（Aβ）斑块和细胞内Tau神经原纤维缠结的积累。神经胶质细胞改变也与AD2 和几种神经递质系统的可能破坏有关3，4。
TgF344-AD大鼠品系通过表达人APP和PS1ΔE9 转基因来模拟AD，导致可溶性和不溶性Aβ-40和Aβ-42表达以及淀粉样蛋白斑块形成5。它还呈现Tau蛋白的高磷酸化形式的积累，导致tau病。从9-24个月大，大鼠逐渐发展AD的病理标志和认知障碍5，6，7，8，9。
正电子发射断层扫描（PET），单光子发射计算机断层扫描（SPECT）和放射自显影是基于γ射线发射和定量的技术。放射性示踪剂在体内（PET和SPECT）或离体/体外（放射自显影）进行定量。这些敏感的技术有助于理解几种脑部疾病的机制，如AD。事实上，在神经炎症方面，有很多研究评估18 kDa易位蛋白（TSPO），一种体内神经炎症标志物，放射性标记的示踪剂，如[11C]-（R）-PK11195或[11C]PBR28（综述见10）。此外，已经使用放射性示踪剂11，12，13研究了神经递质系统的改变。
然而，这些技术并不能确定放射性信号的细胞来源。这可能会妨碍对PET / SPECT中放射性配体结合改变的生物学基础的解释。例如，在TSPO神经炎症研究的情况下，了解TSPO的增加或减少是由于星细胞还是小胶质细胞的变化至关重要。荧光活化细胞分选为放射性配体处理组织（FACS-RTT）技术是为了解决这些问题而开发的，允许分别评估每种细胞类型中的放射性配体结合并量化每个细胞的靶蛋白密度。因此，这种创新技术与PET和SPECT成像相辅相成且高度兼容。
在这里，该技术沿两个轴应用：使用TSPO特异性放射性配体研究神经炎症和评估5-羟色胺能系统。在第一个轴上，目的是了解TSPO信号响应急性炎症反应的细胞起源。因此，在通过脂多糖（LPS）注射诱导神经炎症后，以及在 体内 [125I]CLINDE SPECT成像研究之后，FACS-RTT用于大鼠的脑组织。此外，对12个月和24个月大的TgF344-AD大鼠和匹配的野生型（WT）大鼠应用相同的成像和FACS-RTT方案。第二轴旨在通过按细胞类型 进行离体 5-HT2AR密度评估来确定该大鼠模型中5-羟色胺能系统改变的起源。
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Protocol
所有实验程序均分别与日内瓦州人类和动物实验伦理委员会，州研究伦理委员会（CCER）和日内瓦州（瑞士）健康总方向达成协议。数据按照动物研究报告：报告 体内 实验（ARRIVE）指南。
1. SPECT相机的准备和校准
- 打开相机，加载操作软件（参见 材料表）。单击“ 主 XYZ 舞台 ”按钮以执行归位。
- 设置由一个10分钟的扫描采集组成的实验。将“ 步进 ”模式设置为 “精细 ”，将 “采集 ”模式设置为 “列表模式 ”（以记录整个发射光谱）。
- 设置床并确保加温系统，呼吸传感器和麻醉功能正常且安全（图1A-D）。然后，将幻影（即，在2 mL微量离心管中放置2 mL已知浓度为125I的微量离心管）放置在动物头部的位置（以该区域为中心，图1E）。
- 通过在屏幕底部的三个图像的帮助下滑动三个维度的光标来设置扫描区域。确保幻像和动物的扫描体积相同。
- 使用步骤 1.2-1.4 中建立的参数启动幻像扫描以进行后续校准。
2. SPECT成像的工作空间设置
- 用杀毒剂清洁工作空间，并在所有表面上放置软纸。
- 确保在各自的储罐中有足够的异氟醚和氧气。
- 通过切断蝴蝶导管的鳍来准备24G导管，以更清晰地看到大鼠尾静脉。
- 取出针头后，通过用肝素溶液（25000 U / mL）完全填充导管来涂覆导管。然后，将针头放回其中，以避免导管插入后形成血凝块。
3. [125I]克林德放射性示踪剂合成
注意：放射性物质可能具有足够的电离能来影响活细胞的原子并损害其遗传物质（DNA）。
- 确保在适当的环境中工作，授权用于涉及放射性的实验。
注意：穿戴适当的个人防护装备（PPE）进行放射性处理，包括手指和身体剂量计。尽量与任何放射性源保持安全距离。 - 将100μg三丁基素前体与碘化钠（Na125I）（参见 材料表）和5μL37%过氧乙酸在70°C下在手套箱中的热循环器中孵育20分钟。
- 使用50%乙腈（ACN）在水中稀释反应以达到500μL的体积，将500μL稀释的反应注入反相柱上（参见 材料表）。
- 用线性梯度分离[125I]CLINDE HPLC，从5%-95%ACN在7mM H3PO4 中运行10分钟。将分离物在H2O中稀释至最终体积10mL，然后将稀释的反应注入浓度柱（参见 材料表）。
- 用300μL无水乙醇从柱中洗脱[125I]CLINDE，然后通过在室温下在真空离心机中孵育乙醇40分钟来蒸发乙醇。
- 将含有[125I]CLINDE的残留物在300μL无菌盐水中稀释，以产生储备溶液。
- 测量其放射性后，在无菌盐水中稀释储备溶液，以获得500μL中0.037 MBq的溶液。
- 通过HPLC（高效液相色谱法）纯化示踪剂。使用450nm处的标准校准确定洗脱时间，并分离单个放射性峰。使用七种标准浓度的冷（非放射性）CLINDE（0.1μg，0.5μg，0.75μg，1μg，1μg，1.5μg，2μg和5μg）在400μL的50%ACN溶液中执行标准校准曲线。通过测量放射性TLC（薄层色谱）中的单个峰来确定放射化学纯度。确保放射化学品的纯度在60%以上。
- 检查测量450nm处紫外吸光度的放射性配体的比活性以及用冷参比化合物建立的校准曲线。确保比活性大于1000 GBq/μmol。
4. [125I]R91150放射性示踪剂合成
注意：请确保遵循与 CLINDE 综合部分中提到的相同的安全规则。
- 将300μgR91150前体在3μL无水乙醇，3μL冰醋酸，15μL无载体Na125I（参见 材料表）（10mCi）的溶液中混合在0.05M NaOH和3μL30%H2O2中。在手套箱中孵育30分钟。
- 将整个反应注入反相色谱柱（参见 材料表）。
- 通过等度HPLC运行（ACN /水50/50，10 mM乙酸缓冲液）以3 mL / min的流速分离[125I]R91150。
- 在H 2 O中稀释[125I]R91150，最终体积为10 mL。
- 将10 mL稀释的反应注入浓缩柱（参见 材料表）。
- 用300μL无水乙醇从色谱柱中洗脱[125I]R91150。
- 通过在室温下在真空离心机中孵育乙醇40分钟来蒸发乙醇。
- 将含有[125I]R91150的残留物稀释在300μL盐水中。
- 用高效液相色谱纯化示踪剂。使用450nm处的标准校准确定洗脱时间并分离单个放射性峰。通过测量放射性TLC中的单个峰来确定放射化学纯度。确保放射化学品的纯度在98%以上。
5. 动物准备
- 在具有3%异氟醚的诱导室中称重并麻醉TgF344-AD大鼠（雄性或雌性，2-24个月大）。深度麻醉后，将异氟醚在腔室中的流量降低至2%（0.4 L / min，100%O 2）。
- 将动物放在装有麻醉鼻锥的预热床上。将异氟醚保持在2%（0.4升/分钟，100%O2）。
- 在动物的眼睛上涂抹眼部凝胶润滑剂，并通过呼吸监测确认麻醉深度;如有必要，调整麻醉。
- 在尾静脉中进行24 G导管插入。
6. 光谱采集
- 将动物转移到装有温度控制加热垫的摄像床上，加热垫设置为38°C（图1E）。
- 将动物的头部固定在咬杆上，并固定头部支撑。
- 在60分钟的扫描中设置实验，构成60帧1分钟。重用在步骤 1 中设置的所有其他参数。单击“ 更新图像 ”按钮以更新动物位置。
- 通过借助屏幕底部的三个图像滑动光标来设置扫描区域。
- 注入500μL放射性示踪剂（[125I]CLINDE或[125I]R91150），然后用300μL无菌0.9%NaCl冲洗管。同时单击“ 开始采集” 以开始扫描。
- 在扫描期间，确保通过呼吸速率监测将动物保持在恒定麻醉状态。如果需要，调整异氟醚的流量。
- 扫描结束后，通过斩首快速对麻醉动物实施安乐死。
7. 扫描重建
- 打开扫描重建软件（参见 材料表），然后打开数据集，查找在扫描文件夹中创建的 [filename].parameters 文件。
- 选择感兴趣的同位素。请注意， Listmode 参数允许在此步骤中选择多个同位素。
- 选择以下参数：0.4 mm 体素大小、4 个 （POS-EM） 子集、6 次迭代（相当于 24ME-EM）、无后置滤波器以及同位素对应的衰变校正。选择输出格式为 NIfTI，然后选择“ 开始 SPECT 重建”。
8. 大鼠脑提取
- 在与扫描程序相同的麻醉事件中，通过监测其呼吸频率确保动物的深度麻醉状态后，通过断头台进行斩首，并迅速将头部转移到解剖台上。
- 用剪刀小心地将头顶的皮肤从后部到前面剪到眼睛中间。
- 切除颅底和颈椎周围多余的肌肉。
- 接下来，小心地将剪刀的一把刀片放在颅骨背面的孔中，孔大孔，并用手术钳取出颅骨的后部。
- 然后，用手术钳小心地取下颅骨的顶部。老年雄性大鼠的头骨可以厚，取出小块，以免对大脑造成伤害。
- 用剪刀小心地切开脑膜。脑膜在提取过程中会损害大脑;作为预防措施，请将其删除。
- 取出颅骨顶部后，转动动物的头部，并用小扁平的刮刀，通过切除视神经和三叉神经小心地将大脑拉出。
- 小心地将大脑转移到平坦，干净的玻璃表面上，以便在冰上进行解剖。
- 使用扁平的金属刮刀和剃须刀片来剖析大脑感兴趣的区域。将组织放入2 mL离心管中并称重获得的组织。直接使用大脑部分进行细胞分离，或将其快速冷冻在液氮中供以后使用。
9. 细胞分离
- 确保在干净无菌的环境中工作。建议在二级生物安全内阁（BSC）下工作。确保引入平衡计分卡的手套和每件设备都是无菌的。
- 为了准备用于细胞分选的细胞，请遵循Jaclyn M. Schwarz14的实验方案。
注意：在该实验中，市售的神经解离试剂盒（见 材料表）用于细胞制备。- 将样品放入装有1mL HBSS（无钙和无Mg）的2mL离心管中，然后离心（300× g，2分钟，室温= RT）并除去上清液而不干扰沉淀。
- 加入1900μL酶混合物-1，并在37°C下孵育15分钟，同时每5分钟通过倒置搅拌管。
- 加入30μL酶混合物-2，用移液器1（见 材料表）来回搅拌30次。然后，在37°C下孵育15分钟，同时每5分钟倒置搅拌一次管。
- 用移液器2轻轻来回混合，然后移液器3，然后在37°C下孵育10分钟以解离组织。
- 用80μm细胞过滤器过滤细胞，加入10mL HBSS（无钙和无镁）。离心机（300× g，10分钟，室温）并除去上清液而不干扰沉淀。
- 对于髓鞘消耗，用400μL髓鞘去除缓冲液（参见 材料表）重悬沉淀，然后加入100μL髓鞘去除珠（参见 材料表），然后在4°C下孵育15分钟。
- 加入5mL髓鞘去除缓冲液，离心（300× g，10分钟，室温），并在不干扰沉淀的情况下除去上清液。
- 加入500μL髓鞘去除缓冲液，并将管放入磁场柱中。用1mL髓鞘去除缓冲液洗涤色谱柱四次。
- 离心机（300× g，2分钟，室温）并除去上清液而不干扰沉淀。短暂涡旋（2 s）以解离细胞并加入5μLFc嵌段CD32。再次涡旋并在4°C下孵育5分钟。
- 加入100μL感兴趣的一抗混合物;在4°C下孵育20分钟。
- 离心（350× g，5分钟，4°C）并除去上清液而不干扰沉淀。在软纸上倒置印迹管。
- 短暂的涡旋（2秒）后，加入100μL二抗混合物，并在4°C下孵育15分钟。
- 加入2mL髓鞘去除缓冲液，离心（350× g，5分钟，4°C）并除去上清液而不干扰沉淀。在软纸上倒置印迹管。将细胞重悬于250μL无菌PBS中，并直接进行细胞分选。
10. 单元格排序
- 用500μL无菌PBS制备微量离心管，以收集分选的细胞。
- 每1000μL细胞溶液中加入10μLHoechst，对活细胞的细胞核进行着色，并将其与死细胞区分开来。
- 在4°C下尽快将细胞转移到细胞分选机中。
- 首先，按前向和侧散射对细胞进行排序，然后对Hoechst阳性细胞进行排序。接下来，根据感兴趣的抗体对细胞进行分类。分别收集阳性染色的细胞。确保将阳性细胞与自发荧光细胞区分开来。
- 计算每个感兴趣池的已排序单元格的数量。
11. 伽玛计数
- 使用 10 μL 用于 SPECT 校准的相同幻像溶液校准γ计数系统，但在 1 mL 水中稀释。
注意：由于γ计数系统的精度提高，幻像溶液被稀释。 - 将分拣的细胞管放入γ计数系统中，并根据制造商的协议进行γ计数。
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Representative Results
WT大鼠在单侧LPS注射后使用[125I]CLINDE放射性示踪剂进行体内SPECT扫描（图2）。该扫描（使用放射性示踪剂注射后45-60分钟图像的汇总数据）显示LPS注射部位[125I]CLINDE的结合（图2A）高于大脑对侧区域（图2B）。接受FACS-RTT的离体样品证实了这些结果，并显示仅在小胶质细胞中存在较多的[125I]CLINDE结合位点，表明大脑同侧[125I]CLINDE信号的细胞起源是小胶质细胞（图3A）15。
使用相同的[125I]CLINDE放射性示踪剂，然后在老TgF344-AD大鼠（12个月和24个月大）的海马体上进行该方案，并与24个月大的WT进行比较。结果表明，TgF344-AD大鼠12个月时TSPO结合的增加仅限于星形胶质细胞。在24个月大的大鼠中，TSPO结合的增加是由于星形细胞和小胶质细胞的改变（图3B）。结果表明，星形胶质细胞中的TSPO过表达可能在小胶质细胞之前观察到。独立地，使用放射性示踪剂[125I]R91150，该技术在细胞尺度上使用，以表明在较老的TgF344-AD大鼠中，纹状体星形胶质细胞与WT相比显示出降低的5HT2AR密度（图3C）16。
最后，对人类AD死后样本进行了FACS-RTT。解离后，在染色和FACS程序之前将细胞与[125I]CLINDE一起孵育。与年龄匹配的对照组相比，这允许在AD受试者的星形胶质细胞和小胶质细胞中发现TSPO的皮质过表达（图3D）。
图 1：SPECT 摄像机设置。 （A） SPECT 摄像机整体演示。（B）床位介绍，包括加热器和呼吸频率监测。（C）麻醉管塞。（四）加热床和呼吸探头插座。（五）幻像定位监控视图从软件。 请点击此处查看此图的大图。
图2：使用SPECT和[125I]CLINDE放射性示踪剂进行TSPO脑成像。在（A）LPS或（B）盐水注射后，海马体的代表性图像（注射[125I]CLINDE后45-60分钟）在大脑的同侧（白色）和对侧（红色）侧。在感兴趣的体积中测量的体内时间活动曲线在右侧面板中表示。SPECT：单光子发射计算机断层扫描;TSPO：易位蛋白;LPS：脂多糖。n = 每个条件7只动物。这个数字是从Tournier等人15中修改而来的。请点击此处查看此图的大图。
图3：TSPO和5HT2AR的定量 （A）单侧脑注射LPS后TSPO过表达的细胞起源。在注射的对侧（灰色，n = 7）和同侧（绿色，n = 7）的每个细胞群中测量放射性（注射剂量的百分比/ g组织）。使用的统计检验：成对 t 检验。（B）老TgF344-AD大鼠中的TSPO。在24个月大的野生型动物（灰色，n = 9）和12-（绿色，n = 8）和24个月大（紫色，n = 7）TgF344-AD大鼠中测定[125 I]CLINDE浓度（注射剂量的百分比剂量/ g组织）。使用的统计检验：双向方差分析。（C）5HT2AR在老TgF344-AD大鼠纹状体的星形胶质细胞中降低。[125I]R91150浓度在WT（灰色，n = 7）和老TgF344-AD（绿色，n = 11）大鼠的细胞水平（注射剂量/细胞的%注射剂量/细胞）中测定。使用的统计检验：单因子方差分析。（D）阿尔茨海默病（AD）额叶皮层中TSPO过表达的细胞来源。在每个细胞群中，在AD受试者（绿色，n = 9）和对照（灰色，n = 9）中测量放射性（注射剂量百分比/ g组织）。使用的统计检验：未配对 的 t 检验。所有数据均表示为 95% 置信区间±平均值，并使用以下注释：* p < 0.05，** p < 0.01，*** p < 0.001。 请点击此处查看此图的大图。
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Discussion
据我们所知，该技术是第一个描述一种方法的方法，该方法可以更好地了解细胞水平上放射性示踪剂的体内结合改变。该协议描述了一种多尺度方法，以[125 I]CLINDE（TSPO）或[125I]R91150（5HT2AR）为例，在细胞水平上量化放射性示踪剂结合。
该技术足够强大且灵敏，可以精确检测广谱神经胶质细胞改变的细胞起源，从LPS诱导的强烈炎症反应到AD大鼠模型中观察到的更细微的神经胶质细胞改变，为 体内 核神经影像学带来重要的互补信息，作为用SPECT确定的信号的小胶质细胞起源。该研究进一步表明，FACS-RTT甚至能够以5HT2AR为例在细胞尺度上辨别神经感受器密度变化（图3C）。最后，提供了在人类死后组织中使用该技术的证据，显示AD受试者的星形胶质细胞和小胶质细胞中的TSPO浓度增加。
该技术的主要优点是它与PET和SPECT成像的互补性。事实上，核成像是一种强大的技术，可以从大脑区域或体素水平中提取信息。然而，它的极限存在于细胞尺度上;不可能区分每种细胞类型对信号的贡献。FACS-RTT通过揭示每种细胞类型中的放射性示踪剂浓度来进一步。有趣的是，从理论上讲，可以使用这种技术评估无限的目标集，其局限性在于放射性示踪剂可用于感兴趣的目标。
该协议的关键步骤包括使用放射性，必须在有合格人员的安全环境中进行。此外，考虑放射性衰变至关重要。对于FACS制备，必须确保抗体特异性，波长，光强度因细胞类型而异，并且需要优化以进行有效的细胞分选。
这里介绍的研究中强调的这种技术的局限性之一在于由于自身荧光细胞而使用老年动物和人类死后脑部样本。脂褐素，即溶酶体消化的残基，是荧光的，并积聚在衰老的神经元，小胶质细胞和星形胶质细胞中。通过事先优化，FACS可以将自发荧光细胞与阳性标记的细胞区分开来，如果研究老年动物，这是必不可少的一步。该技术的另一个局限性是无法直接比较不同动物中不同分类细胞类型之间的放射性示踪剂浓度。如果考虑血液中非代谢，非蛋白质结合的放射性示踪剂的浓度用于动物的正常化，则可以进行此操作。
最后一个限制是，所使用的所有设备，例如回旋加速器，PET / SPECT相机，FACS和γ计数器，都需要彼此在物理上非常接近，特别是如果短半衰期同位素用于 体内 成像和FACS-RTT。
FACS-RTT也可以用作独立方法，即不一定 在体内 核成像研究15之后。脑部疾病的复杂性需要在细胞水平或单细胞尺度上研究机制。FACS-RTT可以是一种翻译工具， 将体内 成像方法与广泛的 离体 或 体外 细胞和分子生物学方法联系起来。
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Disclosures
作者声明没有利益冲突。
Acknowledgments
这项工作得到了瑞士国家科学基金会的支持（拨款320030-184713）。作者BBT和KC得到了Velux基金会（项目号1123）的支持。作者ST获得了瑞士国家科学基金会的支持（早期博士后流动奖学金，No.P2GEP3_191446），Max Cloetta教授基金会（临床医学加奖学金）和Jean和Madeleine Vachoux基金会。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetic acid | Sigma-Aldrich | ||
| Acetonitrile | Sigma-Aldrich | ||
| BioVet | BioVet | Software for vitals check | |
| Bondclone C18 reverse-phase column | Phenomenex, Schlieren, Switzerland | ||
| Des-Sur | University Hospital of Geneva | Virucide | |
| Fc Block / anti-CD32 | BD Biosciences | BDB550270 | Reactivity for rat |
| FITC-conjugated anti-rat CD90 | Biolegend | 202504 | Reactivity for rat |
| Heparin | B. Braun | B01AB01 | |
| HPLC | Knauer | ||
| Insyte-W 24 GA 0.75 IN 0.7 x 19 mm | BD Biosciences | 321312 | 24 G catheter |
| Isoflurane | Baxter | ZDG9623 | |
| Lacryvisc | Alcon | 2160699 | |
| LS Columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
| MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| Micropore soft tape | 3M | F51DA01 | |
| MILabs-Uspect II | MILabs | Software for SPECT Camera | |
| MoFlo Astrios | Beckman Coulter | Cell sorter | |
| Myelin Removal Beads II | Miltenyi Biotec | 130-096-733 | Contains beads and myelin removal buffer. |
| NaCl 0.9% Sterile solution | B. Braun | 395202 | |
| Neural Dissociation Kit (P) | Miltenyi Biotec | 130-092-628 | Contains the enzyme mixes, pipets 1, 2 and 3. |
| Nylon Mesh Sheet | Amazon | CMN-0074-10YD | 40 inch width, 80 micron size mesh |
| Peracetic acid | Sigma-Aldrich | ||
| QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
| R91150 précursor | CERMN | ||
| Sep-Pak C18 Column | Waters | Concentration column | |
| Sodium iodide Na125 | PerkinElmer | ||
| Tributylin precursor | CERMN | ||
| U-SPECT Rec2.38c | MILabs | Version Rec2.38c | Software for SPECT images reconstruction |
| USPECT II | MILabs | Spect Camera | |
| Wizard 3" | PerkinElmer | Gamma counter |
References
- Nichols, E., et al. regional, and national burden of Alzheimer's disease and other dementias, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. The Lancet Neurology. 18 (1), 88-106 (2019).
- Kinney, J. W., et al. Inflammation as a central mechanism in Alzheimer's disease. Alzheimer's & Dementia. 4, New York, N. Y. 575-590 (2018).
- D'Amelio, M., Puglisi-Allegra, S., Mercuri, N. The role of dopaminergic midbrain in Alzheimer's disease: Translating basic science into clinical practice. Pharmacological Research. 130, 414-419 (2018).
- D'Amelio, M., Serra, L., Bozzali, M. Ventral tegmental area in prodromal Alzheimer's disease: Bridging the gap between mice and humans. Journal of Alzheimer's Disease: JAD. 63 (1), 181-183 (2018).
- Cohen, R. M., et al. A transgenic Alzheimer rat with plaques, tau pathology, behavioral impairment, oligomeric aβ, and frank neuronal loss. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 33 (15), 6245-6256 (2013).
- Morrone, C. D., et al. Regional differences in Alzheimer's disease pathology confound behavioural rescue after amyloid-β attenuation. Brain: A Journal of Neurology. 143 (1), 359-373 (2020).
- Berkowitz, L. E., Harvey, R. E., Drake, E., Thompson, S. M., Clark, B. J. Progressive impairment of directional and spatially precise trajectories by TgF344-Alzheimer's disease rats in the Morris Water Task. Scientific Reports. 8 (1), 16153 (2018).
- Koulousakis, P., vanden Hove, D., Visser-Vandewalle, V., Sesia, T. Cognitive improvements after intermittent deep brain stimulation of the nucleus basalis of meynert in a transgenic rat model for Alzheimer's disease: A preliminary approach. Journal of Alzheimer's Disease: JAD. 73 (2), 461-466 (2020).
- Tournier, B. B., et al. Spatial reference learning deficits in absence of dysfunctional working memory in the TgF344-AD rat model of Alzheimer's disease. Genes, Brain, and Behavior. , 12712 (2020).
- Tournier, B. B., Tsartsalis, S., Ceyzériat, K., Garibotto, V., Millet, P. In vivo TSPO signal and neuroinflammation in Alzheimer's disease. Cells. 9 (9), (2020).
- Backes, H. [11C]raclopride and extrastriatal binding to D2/3 receptors. NeuroImage. 207, 116346 (2020).
- Millet, P., et al. Quantification of dopamine D(2/3) receptors in rat brain using factor analysis corrected [18F]Fallypride images. NeuroImage. 62 (3), 1455-1468 (2012).
- Tsartsalis, S., et al. A modified simplified reference tissue model for the quantification of dopamine D2/3 receptors with [18F]Fallypride images. Molecular Imaging. 13 (8), (2014).
- Schwarz, J. M. Using fluorescence-activated cell sorting to examine cell-type-specific gene expression in rat brain tissue. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (99), e52537 (2015).
- Tournier, B. B., et al. Fluorescence-activated cell sorting to reveal the cell origin of radioligand binding. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 40 (6), 1242-1255 (2020).
- Tournier, B. B., et al. Astrocytic TSPO upregulation appears before microglial TSPO in Alzheimer's disease. Journal of Alzheimer's Disease: JAD. 77 (3), 1043-1056 (2020).
