Summary
Здесь мы описываем радиосинтез 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофана, позитронно-эмиссионного томографического агента для изучения метаболизма триптофана, с использованием двухэтапной стратегии в системе синтеза радиохимии с хорошими радиохимическими выходами, высоким избытком энантиомерик и высокой надежностью.
Abstract
Путь кинуренина (КП) является основным путем метаболизма триптофана. Данные убедительно свидетельствуют о том, что метаболиты КП играют жизненно важную роль в пролиферации опухоли, эпилепсии, нейродегенеративных заболеваниях и психических заболеваниях из-за их иммуномодулирующих, нейромодулирующих и нейротоксических эффектов. Наиболее широко используемый агент позитронно-эмиссионной томографии (ПЭТ) для картирования метаболизма триптофана, α-[11C]метил-L-триптофан ([11C]AMT), имеет короткий период полураспада 20 мин с трудоемкими процедурами радиосинтеза. Для радиосинтезирования [11C]AMT требуется циклотрон на месте. Только ограниченное число центров производят [11C]AMT для доклинических и клинических исследований. Следовательно, срочно необходима разработка альтернативного агента визуализации, который имеет более длительный период полураспада, благоприятную кинетику in vivo и легко автоматизируется. Полезность и ценность 1-(2-[18F]фторэтил)-L-триптофана, аналога триптофана, меченого фтором-18, была зарегистрирована в доклинических приложениях в ксенотрансплантатах, полученных из клеточных линий, ксенотрансплантатах, полученных от пациентов, и трансгенных моделях опухолей.
В данной работе представлен протокол радиосинтеза 1-(2-[18F]фторэтил)-L-триптофана с использованием двухэтапной стратегии. Используя этот протокол, радиоиндикатор может быть получен в 20 ± 5% (распад с поправкой в конце синтеза, n > 20) радиохимического выхода, как с радиохимической чистотой, так и с энантиомерным избытком более 95%. Протокол содержит небольшое количество прекурсора с не более чем 0,5 мл реакционного растворителя на каждой стадии, низкую нагрузку потенциально токсичного 4,7,13,16,21,24-гексаокса-1,10-диазабицикло[8.8.8]гексакона (K222) и экологически доброкачественную и инъекционную подвижную фазу для очистки. Протокол может быть легко сконфигурирован для получения 1-(2-[18F]фторэтил)-L-триптофана для клинических исследований в коммерчески доступном модуле.
Introduction
У человека триптофан является важным компонентом ежедневного рациона. Триптофан в основном метаболизируется через кинурениновый путь (КП). КП катализируется двумя ферментами, ограничивающими скорость, индоламином 2, 3-диоксигеназой (IDO) и триптофаном 2, 3-диоксигеназой (TDO). Более 95% триптофана превращается в кинуренин и его последующие метаболиты, в конечном итоге генерируя никотинамидадениндинуклеотид, который необходим для трансдукции клеточной энергии. КП является ключевым регулятором иммунной системы и важным регулятором нейропластичности и нейротоксических эффектов1,2. Аномальный метаболизм триптофана участвует в различных неврологических, онкологических, психиатрических и метаболических расстройствах; поэтому радиомаркированные аналоги триптофана широко используются в клинических исследованиях. Двумя наиболее распространенными клинически исследованными триптофановыми радиоиндикаторами являются 11C-α-метил-L-триптофан ([11C]AMT) и 11C-5-гидрокситриптофан (11C-5-HTP)3.
В 1990-х годах 11C-5-HTP использовался для визуализации серотонинсекретирующих нейроэндокринных опухолей4, а также для диагностики и мониторинга терапии метастатической гормоно-рефрактерной аденокарциномы предстательной железы5. Позже он был использован в качестве инструмента визуализации для количественной оценки серотонинергической системы в эндокринной поджелудочной железе6. 11 См. C-5-HTP также является многообещающим индикатором для неинвазивного обнаружения жизнеспособных островков при внутрипортальной трансплантации островков и диабете 2 типа7,8. За последние два десятилетия многие радиомаркированные аминокислоты продвинулись до клинических исследований9,10. В частности, меченый углеродом 11 аналог триптофана [11C]AMT получил широкое внимание для картирования синтеза серотонина мозга11,12,13,14 и локализации эпилептических очагов, эпилептогенных опухолей, комплекса туберозного склероза, глиом и рака молочной железы15,16,17,18,19,20 ,21,22,23,24,25,26. [11С] АМТ также имеет высокое поглощение в различных низко- и высокосортных опухолях у детей27. Кроме того, кинетический индикаторный анализ [11C]AMT у людей использовался для дифференциации и оценки различных опухолей и дифференциации глиомы от радиационно-индуцированного повреждения тканей15. [11С] Визуализация под управлением АМТ показывает значительные клинические преимущества при расстройствах головного мозга3,25. Однако из-за короткого периода полураспада углерода-11 (20 мин) и трудоемких процедур радиосинтеза использование [11C]AMT ограничено несколькими ПЭТ-центрами с циклотроном на месте и радиохимической установкой.
Фтор-18 имеет благоприятный период полураспада 109,8 мин, по сравнению с 20-минутным периодом полураспада углерода-11. Все чаще усилия были сосредоточены на разработке меченых фтором 18 радиоиндикаторов для метаболизма триптофана3,28. В общей сложности было зарегистрировано 15 уникальных радиодифференцированных триптофановых радиоиндикаторов фтора-18 с точки зрения радиомаркировки, транспортных механизмов, стабильности in vitro и in vivo, биораспределения и поглощения опухолями в ксенотрансплантатах. Однако быстрое дефторирование in vivo наблюдалось для нескольких индикаторов, включая 4-, 5- и 6-[18F]фтортриптофан, что исключало дальнейшую клиническую трансляцию29. 5-[18F]Фтор-α-метилтриптофан (5-[18F]FAMT) и 1-(2-[18F]фторэтил)-L-триптофан (L-[18F]FETrp, также известный как (S)-2-амино-3-(1-(2-[18F]фторэтил)-1H-индол-3-ил)пропановая кислота, молекулярная масса 249,28 г/моль), являются двумя наиболее перспективными радиоиндикаторами с благоприятной кинетикой in vivo в животных моделях и большим потенциалом превзойти [11 C]AMT для оценки клинических состояний с дерегулированным метаболизмом триптофана28. 5-[18F]FAMT показал высокое поглощение IDO1-положительными опухолевыми ксенотрансплантатами мышей с ослабленным иммунитетом и более специфичен для визуализации КП, чем [11C]AMT28,30. Тем не менее, стабильность in vivo 5-[18F]FAMT остается потенциальной проблемой, поскольку данные о дефторировании in vivo не были зарегистрированы после 30 мин после инъекции индикатора30.
Доклиническое исследование в генетически модифицированной модели мыши с медуллобластомой показало, что по сравнению с 18F-фтордезоксиглюкозой (18F-FDG), L-[18F]FETrp имел высокое накопление в опухолях головного мозга, незначительную дефторирование in vivo и низкое фоновое поглощение, демонстрируя превосходное соотношение мишени к нецелевой цели31,32. Исследования радиационной дозиметрии на мышах показали, что L-[18F]FETrp имел примерно на 20% более низкое благоприятное дозиметрическое воздействие, чем клинический 18F-FDG PET tracer33. В соответствии с выводами других исследователей, данные доклинических исследований предоставляют существенные доказательства в поддержку клинической трансляции L-[18F]FETrp для исследования аномального метаболизма триптофана у людей с нарушениями головного мозга, такими как эпилепсия, нейроонкология, аутизм и туберозный склероз28,31,32,33,34,35,36 . Общее сравнение между тремя наиболее широко исследованными индикаторами метаболизма триптофана, 11C-5-HTP, [11C]AMT и L-[18F]FETrp, показано в таблице 1. Как 11C-5-HTP, так и [11C]AMT имеют короткий период полураспада и трудоемкие процедуры радиомаркировки. Здесь описан протокол радиосинтеза L-[18F]FETrp с использованием двухэтапного подхода. Протокол предусматривает использование небольшого количества прекурсора радиомаркировки, небольшого объема реакционных растворителей, низкой нагрузки токсичного K222, а также экологически доброкачественной и инъекционной подвижной фазы для очистки и легкой рецептуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
ВНИМАНИЕ: Протокол касается радиоактивных материалов. Любая дополнительная доза радиоактивных материалов может привести к пропорциональному увеличению вероятности неблагоприятных последствий для здоровья, таких как рак. Исследователи должны следовать практике дозы «настолько низкой, насколько это разумно достижимо» (ALARA), чтобы направлять протокол радиосинтеза с адекватной защитой в горячей клетке или свинцовом капюшоне. Минимизация времени прямого контакта, использование свинцового щита и соблюдение максимального расстояния для любого этапа радиационного воздействия в процессе радиосинтеза имеют важное значение. Носите значок радиационной дозиметрии и кольца для ручного мониторинга на протяжении всего эксперимента и часто контролируйте потенциально загрязненные поверхности, такие как перчатки, рукава и ноги. Комиссия по ядерному регулированию (NRC), местные и институциональные правила должны соблюдаться при использовании, транспортировке и захоронении любых радиоактивных материалов.
1. Начальная подготовка
- Готовят 10% этанол в подвижной фазе ацетата натрия/уксусной кислоты 50 мМ для полупрепаратной высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ).
- Поместите 3 мл ледниковой уксусной кислоты в чистую объемную колбу объемом 1000 мл. Добавьте 900 мл сверхчистой воды (удельное сопротивление 18 миллионов Ом-см при 25 °C) в объемную колбу; добавить приблизительно 8 мл раствора гидроксида натрия 6 М и отрегулировать рН до 5,5 с помощью калиброванного рН-метра и полосы рН. После того, как раствор остынет до комнатной температуры, заполните объем до 1000 мл сверхчистой водой для приготовления раствора ацетата/уксусной кислоты (рН 5,5) 50 мМ.
- Вакуумная фильтрация раствора через мембранный фильтр 0,2 мкм и перенос раствора в две бутылки с растворителем по 500 мл.
- Поместите приблизительно 250 мл вышеуказанного буфера в объемную колбу объемом 500 мл. Используйте градуированный цилиндр для измерения 50 мл этанола Фармакопеи США (USP) и добавьте этанол в объемную колбу. Составьте объем до 500 мл с 50 мМ ацетата натрия / уксусной кислоты и измерьте значение pH с помощью полосы pH.
- Подготовка решений по контролю качества (QC) для проверки пригодности системы.
- Наполните бутылки с растворителем ВЭЖХ свежей сверхчистой водой (растворитель А) и этанолом (растворитель В). Загрунтуйте насос ВЭЖХ и загрузите программу ВЭЖХ со скоростью потока 1 мл/мин, состоящей из 30% растворителя А и 70% растворителя В (v/v).
- Сделайте управляющее решение (пустое решение) для контроля качества. Добавьте 5 мл 0,9% хлорида натрия в стеклянный флакон объемом 20 мл. Добавьте 0,15 мл 23,4% хлорида натрия в вышеуказанный раствор. Добавьте 6 мл полуподготовленной подвижной фазы ВЭЖХ, приготовленной на стадии 1.1.3 (10% этанола в 50 мМ ацетата натрия/уксусной кислоты, рН 5,5), в стеклянный флакон.
- Готовят 1 мкг/мл нерадиолабелированного L-FETrp и 5 мкг/мл рацемических L-FETrp и D-FETrp смесей (стандартные растворы).
- Постройте калибровочную кривую с использованием стандартных растворов L-FETrp (0,1 мкг/мл, 0,5 мкг/мл, 1,0 мкг/мл, 10 мкг/мл, 100 мкг/мл).
- Настройте последовательность ВЭЖХ. Убедитесь, что последовательность включает один прогон пустого образца раствора, два пробега стандартного L-FETrp (1 мкг/мл), один прогон рацемических смесей L-FETrp и D-FETrp (5 мкг/мл) и один прогон конечного радиофармацевтического препарата.
- Запустите частичную последовательность ВЭЖХ для проверки пригодности системы перед анализом радиоактивных образцов с использованием аналитической колонки ВЭЖХ (250 x 4,6 мм).
- Запустите один пустой образец и убедитесь, что хроматограмма пустого образца не показывает никаких или незначительных пиков между объемом пустоты и 10 минутами хроматограммы.
- Запустите две реплики стандартного раствора (содержит 1 мкг/мл L-FETrp). Убедитесь, что области L-FETrp в двух репликах находятся в пределах ±5% от среднего значения.
- Запустите один образец смесей L-FETrp и D-FETrp (5 мкг/мл L-FETrp и D-EFTrp, соответственно). Убедитесь, что L-FETrp и D-FETrp могут быть идентифицированы на хроматограмме и исходные условия разрешены.
- Подготовьте решения для радиомаркировки и другие расходные материалы.
- Добавьте следующие растворы в пять флаконов по 1,5 мл V-образной формы соответственно. Флакон 1: 1 мл раствора карбоната калия (K2CO3)/K222 (5 мг/мл K222 и 1 мг/мл K2CO3 в растворе воды/ацетонитрила, 1/99, v/v) для элюирования [18F]фторида; Флакон 2: 0,4 мл безводного ацетонитрила для [18F]фторидной сушки; Флакон 3: предшественник радиомаркировки в безводном ацетонитриле (1-2 мг в 0,5 мл безводного ацетонитрила) для включения фторида [18F]; Флакон 4: соляная кислота (2 М, 0,25 мл) в ацетонитриле (0,25 мл) для ацидолиза; Флакон 5: 2 М гидроксид натрия (0,25 мл) для нейтрализации реакционных смесей.
- Активируйте четвертичный легкий картридж с метиламмонием (QMA), сначала пройдя через 10 мл насыщенного раствора бикарбоната натрия, затем 10 мл сверхчистой воды, а затем промыть картридж потоком азота. Обусловите легкий картридж C8 и нейтральный картридж оксида алюминия, пройдя через 10 мл этанола, а затем 10 мл сверхчистой воды.
- Добавьте 0,15 мл 23,4% хлорида натрия и 5 мл 0,9% хлорида натрия во флакон стерильного состава объемом 30 мл для корректировки тонуса и разбавления фракции ВЭЖХ.
- Готовят раствор (1 мл буфера ацетата натрия/уксусной кислоты, 50 мМ, рН = 5,5, приготовленный на стадии 1,1,1, 1 мл этанола и 0,5 мл воды [всего 2,5 мл]) в шприце для промывки реакционного сосуда; загрузить в 10 мл стерильный флакон.
2. Соберите блоки радиомаркировки и радиосинтезируйте L-[18F]FETrp
- Соберите расходные материалы для радиомаркировки.
- Включите питание модуля, углекислый газ, сжатый воздух, аргоновые линии и питание программируемого логического контроллера (ПЛК). Нажмите кнопку mod_pscf18 , чтобы активировать программу системы синтеза радиохимии. Инициализируйте MVP ввода, вывода и формулировки и убедитесь, что MVP находятся в позициях 4, 1, 1 соответственно.
- Убедитесь, что петля ВЭЖХ находится в положении впрыска, а картридж QMA — в положении улавливания фтора [18F].
- Установите полуподготовленный флакон мобильной фазы ВЭЖХ (содержащий раствор, приготовленный на этапе 1.1.3). Уравновешивайте систему ВЭЖХ, пропуская подвижную фазу через хиральную колонну ВЭЖХ (250 x 10 мм) и колонну C18 (100 x 10 мм) со скоростью потока 2 мл/мин в течение не менее 30 мин, затем переключите отводной клапан, позвольте мобильной ВЭЖХ пройти только через хиральную колонну ВЭЖХ и увеличьте расход до 3 мл/мин.
- Установите световой картридж QMA в линию улавливания/высвобождения фтора [18F].. Установите сложенные картриджи из глинозема/C8 между входной позицией MVP 6 и промежуточным флаконом, который представляет собой V-образный флакон объемом 10 мл, соединенный с петлей образца ВЭЖХ. Установите пустой флакон объемом 10 мл (вентиляционный флакон) в выходное положение MVP 4 с другой иглой, прикрепленной к флакону в качестве вентиляционного отверстия. Устанавливают реагентные флаконы 1-5 на входные позиции MVP 1-5 соответственно.
- Установите флакон, содержащий раствор для полоскания, приготовленный на шаге 1.3.4, на выходную позицию MVP 6.
- Установите бутылку с отходами объемом 500 мл (для сбора отходов ВЭЖХ, проходящих через хиральную и C18 колонны) в позицию MVP состава 1. Установите еще одну бутылку для отходов объемом 500 мл (для сбора отходов ВЭЖХ, проходящих через хиральную колонну) на конец сбора отходов четырехпортового двухпозиционного клапана.
- Подключите флакон для сбора фракций (предварительно заполненный раствор, приготовленный на этапе 1.3.3) к формуле MVP позиции 2. Подключите выходную позицию MVP 3 (газовая линия) и линию доставки конечного продукта к флаконам MVP позиции 2 для восстановления конечного рецептурного продукта. Установите пустой стерильный флакон объемом 10 мл в состав MVP позиции 3, который будет использоваться в качестве резервного флакона для сбора целевой фракции.
- Установите короткую колонну C18 между четырехпортовым двухпозиционным отводным клапаном и формулой MVP.
ПРИМЕЧАНИЕ: Во время установки реагента и флаконов с рецептурой убедитесь, что подача аргона на панели управления отключена, а давление аргона равно нулю, чтобы избежать неожиданного переноса жидкости во время сборки флакона. Дважды проверьте все соединения игл, положения флаконов и позиции MVP для воспроизводимого радиосинтеза.
- Радиосинтез L-[18F]FETrp
- Прием и исследование [18F]фторида.
- При получении раствора фторида [18F] (15 ± 3 гигабеккереля (GBq) в начале синтеза см. Таблицу материалов), осмотрите свинцовый ящик на поверхности и на расстоянии 1 м зафиксируйте максимальные показатели радиационного облучения. Проведите тест на салфетку, чтобы убедиться, что транспортная коробка не загрязнена. Запишите дозу и время [18F]фтора.
- Перенос [18F]фтора.
- Перенос радиоактивности в систему радиохимического синтеза.
- Соедините линию аргона короткой иглой и линию переноса фтора [18F] длинной иглой с флаконом [18F]фторида. Закройте стеклянную дверь с горячими ячейками и свинцовую дверь.
ВНИМАНИЕ: Используйте длинный зажим, чтобы протолкнуть обе иглы; убедитесь, что длинный наконечник иглы находится в нижней части флакона с фторидом [18F], чтобы весь [18F] фторид мог быть перенесен наружу. Как правило, для доставки [18F]фторида требуется V-образный флакон.
- Улавливать, элюировать и азеотропно сухой [18F]фторид.
- Щелкните Ar Supply , чтобы включить линию питания аргона, увеличить давление аргона, включить линию толкания фтора [18F] и протолкнуть водный [18F]фторид через картридж QMA. После того, как радиоактивность задерживается в световом картридже QMA, а показания детектора радиоактивности устойчивы, увеличьте давление аргона и продуйте аргон через картридж еще на 5 минут, чтобы удалить лишнюю воду.
- Выключите линию толкания фторида [18F], уменьшите давление аргона до нуля, переключите шестипортовый двухпозиционный клапан из положения улавливания фтора [18F] в положение элюирования. Откройте реакционный флакон, включите входное положение MVP позиции 1 аргоновой линии, протолкните раствор K222/K2CO3 во входное положение MVP 1 флакон через легкий картридж QMA, чтобы элюдировать радиоактивность в реакционный флакон. Переключите положение элюирования фторида [18F] в положение улавливания.
- Нажмите кнопку «Тепло », чтобы нагреть реактор при 110 °C, включите выходную позицию MVP позиции 4 аргоновой линии (подметальной линии), которая соединяется с реактором, и испарите растворитель в выходной MVP позиции 4 флакона.
- Нажмите кнопку Cool , чтобы охладить реактор до комнатной температуры со сжатым углекислым газом, выключите подметальную линию, переключите входную позицию MVP 1 в положение 2 и добавьте безводный ацетонитрил во флакон 2. Включите подметальную линию и нагреватель, чтобы азеотропно высушить [18F]фторид при 110 °C.
- Добавьте прекурсор радиомаркировки и включите [18F]фторид.
- Охладите реактор до комнатной температуры, выключите подметальную линию, переключите входную позицию MVP 2 в положение 3 и добавьте предшественник радиомаркировки тозилата во флакон 3. Закройте реактор и нагревайте реакционные смеси при 100 °C в течение 10 мин.
- Испаряют реакционный растворитель и ацидолизуют.
- Охладите и откройте реактор, включите подметальную линию и испарите реакционный растворитель при 100 °C.
- Охладите реактор, выключите подметальную линию, переключите входную позицию MVP 3 на позицию 4 и добавьте смесь соляной кислоты/ацетонитрила (0,5 мл, 1/1, v/v). Реакцию нагревают при 100°С в течение 10 мин для дезащиты трет-бутиловых и трет-бутилоксикарбонил-защитных групп в прекурсоре радиомаркировки.
- Нейтрализовать реакцию.
- Охладите реактор до комнатной температуры и переключите входную позицию MVP 4 на позицию 5, чтобы добавить 2 М гидроксида натрия для нейтрализации реакционной смеси. Отключите входную строку АРГОНА MVP.
- Перенесите реакционную смесь в промежуточный флакон.
- Нажмите кнопку F в выходном MVP, чтобы переключить выходной MVP из позиции вентиляции 4 в позицию 5, а затем нажмите кнопку F во входном MVP, чтобы переключить входной MVP из позиции 5 в позицию 6. Включите выходную строку аргона MVP. Протолкните реакционную смесь через сложенные нейтральные картриджи оксида алюминия и C8 в промежуточный флакон, установленный перед контуром образца ВЭЖХ.
- Промыть реактор и перенести раствор.
- Переключите выходное положение MVP 5 в положение 6, протолкните раствор промывки во флаконе выходного MVP положения 6 через реакционный флакон и картриджи в промежуточный флакон, последовательно. Отметим, что объем комбинированной смеси составляет примерно 3,5 мл. Закройте реакционный сосуд.
- Загрузите комбинированную смесь в петлю ВЭЖХ и очистите смесь.
- Переключите петлю ВЭЖХ из положения впрыска в положение нагрузки, включите входную линию аргона MVP и загрузите смеси в петлю ВЭЖХ 5 мл. Когда нагрузка будет завершена, переключите кнопку нагрузки для впрыска и нажмите кнопку ВПР ВЭЖХ , чтобы запустить хроматограмму ВЭЖХ со скоростью потока 3 мл/мин. Нажмите кнопку монитора ВЭЖХ , чтобы получить доступ к хроматограмме ВЭЖХ в режиме реального времени.
- Перенаправьте целевую фракцию в столбец C18.
- Нажмите кнопку MVP перенаправления , чтобы перенаправить целевую фракцию ВЭЖХ в короткий столбец C18 примерно через 12 минут.
- Промыть хиральную колонну ВЭЖХ и очистить фракцию в колонке C18.
- После того, как целевая радиоактивность собрана в колонке C18 (и мобильная фаза ВЭЖХ перетекает в формулу MVP положения 1 бутылки для отходов), переключите четырехпортовый двухпозиционный отводной клапан в положение сбора отходов. Промывайте хиральную колонну со скоростью 4 мл/мин в течение 6 мин, чтобы удалить незначительный энантиомер D-[18F]FETrp и другие ультрафиолетовые (УФ) примеси.
- Нажмите кнопку отвода MVP , чтобы отвести мобильную фазу ВЭЖХ обратно в позицию MVP состава 1 со скоростью потока 3 мл/мин. Обратите внимание, что подвижная фаза проходит через хиральную колонну и колонну C18 для очистки L-[18F]FETrp, удерживаемого в колонке C18.
- Соберите целевую фракцию.
- Собирают элюент примерно через 32-34 мин в состав MVP позиции 2 флакона.
ПРИМЕЧАНИЕ: Обычно собирают 2-минутную фракцию ВЭЖХ, а общий объем плюс предварительно заполненный раствор хлорида натрия составляет 8-15 мл.
- Собирают элюент примерно через 32-34 мин в состав MVP позиции 2 флакона.
- Доставьте дозу в стерильный флакон с конечным продуктом.
- Протолкните раствор в составе MVP позиции 2 флакона через линию доставки и стерильный фильтр в флакон конечной дозы (через предустановленную стерильную вентиляционную фильтрующую иглу).
ПРИМЕЧАНИЕ: Этапы протокола 2.2.9-2.2.13 представляют собой этапы, используемые для очистки ВЭЖХ L-[18F]FETrp.
- Протолкните раствор в составе MVP позиции 2 флакона через линию доставки и стерильный фильтр в флакон конечной дозы (через предустановленную стерильную вентиляционную фильтрующую иглу).
- Анализ радиоактивности и объема дозы.
- Снимите стерильный фильтр и проведите анализ активности и объема конечной дозы.
- Промывайте систему сверхчистой водой с последующим этанолом со скоростью 4 мл/мин в течение не менее 15 мин каждый. Выключите насос ВЭЖХ и блок ПЛК; закрыть программу; отключение линии сжатого воздуха, аргоновой линии и линии углекислого газа; и выключите основное питание модуля.
- Снимите дозу КК и запустите образцы КК.
- Выведите приблизительно 0,1 мл конечной дозы в 0,2 мл флакона с КК. Запустите горячий образец как программу «частичной последовательности» после теста на пригодность системы, описанного в шаге 1.2.6.
- Анализируйте данные КК и высвобождайте дозу.
- Рассчитать химическую и радиохимическую чистоту, энантиомерную избыточную величину и молярную активность; определить значение pH.
- Отпустите дозу, если все результаты испытаний пройдут допустимый диапазон.
- Прием и исследование [18F]фторида.
3. Очистка системы после запуска
- Обследуйте модуль радиомаркировки с помощью измерителя Гейгера-Мюллера (GM), чтобы убедиться, что радиоактивность адекватно распадается (по крайней мере, за 24 часа) до очистки системы.
- Включите питание модуля радиомаркировки и питание блока PLC; активировать программу системы синтеза радиохимии; и инициализируйте входной MVP, выходной MVP и MVP формулировки. Переключите селектор столбцов в положение байпаса.
- Отсоедините картриджи QMA light, глинозема и C8.
- Сначала промыть все флаконы и линии сверхчистой водой, а затем этанолом. Высушите флаконы и линии аргоном высокой чистоты.
- Запечатайте каждое линейное вентиляционное отверстие стерильной иглой с колпачком. Замените флаконы с реагентами и реакционный сосуд на сгоревшие в духовке флаконы и реакционный сосуд соответственно.
- Выключите насос ВЭЖХ и блок ПЛК; закрыть программу; отключение линии сжатого воздуха, аргоновой линии и линии углекислого газа; и выключите основное питание модуля.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Схема реакции показана на рисунке 1. Радиомаркировка включает следующие две стадии: 1) реакция предшественника радиомаркировки тозилата с [18F]фторидом обеспечивает 18F-меченый промежуточный продукт и 2) депротекция трет-бутилоксикарбониловых и трет-бутил-защитных групп в промежуточном продукте, обеспечивающем конечный продукт L-[18F]FETrp. Обе стадии реакции продолжаются при 100 °C в течение 10 мин.
Перед получением [18F]фтора от коммерческого поставщика соберите флаконы с реагентами, флаконы с рецептурой и картриджи; уравновешивание полуприготовительных, QC систем; и провести тест на пригодность системы контроля качества. Подробный рабочий процесс радиосинтеза L-[18F]FETrp описан на рисунке 2. Короче говоря, радиоактивность исследуется и переносится в систему синтеза радиохимии, а фторид [18F]азеотропно высушивают в реакционном сосуде после этапов улавливания/высвобождения. После включения [18F]фторида на первой стадии добавляют кислоту для депротекции двух функциональных групп с последующей нейтрализацией оснований. Реакционную смесь переносят в промежуточный флакон, а реакционный сосуд промывают смешанным раствором. Комбинированная смесь загружается в контур ВЭЖХ для очистки. Для удаления химических примесей используется комбинация хиральных колонн и колонн ВЭЖХ C18. Целевую фракцию собирают во флакон препарата, предварительно заполненный хлоридом натрия для корректировки дозы концентрации и тонуса. Конечный продукт стерильно фильтруют во флакон с конечной дозой, анализируют и аликвотируют на КК до высвобождения доз.
Принципиальная схема настройки системы показана на рисунке 3. Модуль состоит из следующих основных компонентов: 1) входной MVP для добавления реагента, 2) выходной MVP для вентиляции и промывки реактора, 3) состав MVP для сбора фракций ВЭЖХ и дозирования, 4) [18F]улавливание и высвобождение фторида MVP и 5) система очистки ВЭЖХ. Тенденции радиоактивности, температуры реакции и давления можно отслеживать в режиме реального времени через панель управления. Типичная полуподготовительная хроматограмма ВЭЖХ показана на рисунке 4. Целевая фракция, содержащая УФ-примеси, направляется в короткую колонку C18 (черный след перекрывается красным УФ-следом, рисунок 4). Примеси в целевом компоненте могут быть удалены путем пропускания фракции через колонну C18. Очищенная фракция ВЭЖХ, элюированная из колонки С18, собирается во флаконе препарата. Доза анализируется и аликвотируется для КК.
Репрезентативные ВЭЖХ-хроматограммы для КК показаны на рисунке 5. Хроматограмма пустого образца показывает незначительные пики между объемом пустоты и 10 мин программы. Нерадиолабелированный стандартный эталон L-FETrp показывает один изомер, хорошо отделенный от стандартного эталона его D-аналога. Конечная доза L-[18F]FETrp показывает высокую химическую чистоту и радиохимическую чистоту. Испытания стабильности конечного продукта при максимальной концентрации дозы в течение до 8 ч показывают, что L-[18F]FETrp стабилен с точки зрения химической чистоты, радиохимической чистоты, энантиомерного избытка и значения рН (таблица 2)37. Этот протокол для двухэтапного радиосинтеза L-[18F]FET занимает около 100 минут. Выход с поправкой на распад составляет 20 ± 5%, с химической и радиохимической чистотой более 95%. Начиная с 12-18 ГБк [18F]фторида, молярная активность L-[18F]FET составляет 88-118 ГБк/мкмоль. Массовая концентрация обычно составляет менее 0,5 мкг/мл, при этом концентрация дозы находится в диапазоне 37-185 МБк/мл.
Рисунок 1: Схема реакции для однокорпусного двухступенчатого радиосинтеза L-[18F]FETrp. Сокращения: MeCN = ацетонитрил; L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан; K222 = 4,7,13,16,21,24-гексаокса-1,10-диазабицикло[8.8.8]гексакозан. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Обзор рабочего процесса радиосинтеза L-[18F]FETrp. * Полный контроль качества в соответствии с USP823, USP797 будет соблюдаться для использования человеком L-[18F]FETrp. Сокращения: QC = контроль качества; MeCN = ацетонитрил; L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Производство L-[18F]FETrp. Принципиальная схема установки (слева) и фотография платформы радиосинтеза (справа). Настройка включает в себя следующие основные компоненты: 1. Входной MVP; 2. Вывод MVP; 3. Формулировка MVP; 4. [18F]Фторид-улавливание/высвобождение MVP; 5. QMA картридж; 6. Промежуточный флакон; 7. Картриджи из глинозема/C8; 8. Реактор; 9. Хиральная колонна ВЭЖХ; 10, колонка C18; 11. Бутылка для отходов ВЭЖХ в хиральную колонну; 12. Диверсионный MVP; 13. Бутылка для отходов ВЭЖХ в хиральную и C18 колонны; 14. Флакон с рецептурой; 15. Резервная копия флакона. Сокращения: L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан; MVP = модульный позиционер флакона; QMA = четвертичный метиламмоний. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Типичная полуподготовительная хроматограмма для очистки L-[18F]FETrp. Красный след, УФ-канал при 254 нм. Черный след, канал радиоактивности. Стрелки 1, 2 обозначают начало и конец отвода радиоактивной фракции, содержащей L-[18F]FETrp, в колонку C18 соответственно. Стрелки 3, 4 указывают начало и конец сбора очищенной целевой фракции L-[18F]FETrp, элюированной из колонки C18 соответственно. Аббревиатура: L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 5: Типичная аналитическая хроматограмма ВЭЖХ для контроля качества L-[18F]FETrp. 1) Пустой раствор, 2) стандартный раствор L-FETrp, 3) стандартный раствор смесей L-FETrp и D-FETrp, 4) УФ-след L-FETrp при 230 нм, 4) след радиоактивности состава L-[18F]FETrp. Аббревиатура: L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан; L-FETrp = 1-(2-фторэтил)-L-триптофан; D-FETrp = 1-(2-фторэтил)-D-триптофан. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Трассер | Клинические исследования | Основные показания | Плюсы | Минусы | |||
11 См. С-5-ПВТ | Да | Визуализация серотонин-продуцирующих нейроэндокринных опухолей, нервно-психических заболеваний | Чувствителен при обнаружении небольших нейроэндокринных опухолей | Необходим циклотрон на месте, короткий период полувыведения, трудоемкие процедуры, мультиферментативный радиосинтез, чувствительный к концентрации предшественников и рН раствора, неспецифическое поглощение в дофаминергических и норадренергических областях | |||
[11С] АМТ | Да | Локализация эпилептогенной ткани и опухолей головного мозга на основе сильных активаций кинурениновых путей | Доступно производство цГМФ, не включенное в синтез белка | Нужен циклотрон на месте, короткий период полувыведения, трудоемкие процедуры, сложная количественная оценка при патологических состояниях | |||
L-[18F]FETrp | Нет | Визуализация кинуренинового пути, включая эпилептические очаги, опухоли головного мозга, и обнаружение связанных с эпилепсией нейровоспалительных аномалий | Благоприятный период полураспада, доступный для спутниковой доставки, радиосинтеза cGMP, высокой стабильности к дефторированию и благоприятной радиационной дозиметрии | Поглощение облегчается как переносчиком L-аминокислот, так и транспортером аланин-серин-цистеина, исследований на людях пока нет |
Таблица 1: Сравнение 11C-5-HTP, [11C]AMT и L-[18F]FETrp. Сокращения: cGMP = текущая надлежащая производственная практика; α-[11C]метил-L-триптофан; L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан; 11 См. C-5-HTP = 11C-5-гидрокситриптофан.
Часы после окончания синтеза анализа | Радиохимическая чистота по ВЭЖХ (%) | Химическая чистота (%) | Энантиомерный избыток (%) | Значение pH |
0 | 99 | >95 | 98 | 5.5 |
1 | 99 | >95 | 99 | 5.5 |
2 | 99 | >95 | 99 | 5.5 |
4 | 99 | >95 | 98 | 5.5 |
6 | 98 | >95 | 98 | 5.5 |
8 | 97 | >95 | 97 | 5.5 |
Таблица 2: Испытание на стабильность L-[18F]FETrp в типичной партии при максимальной концентрации дозы. Аббревиатура: L-[18F]FETrp = 1-(2-[18F]Фторэтил)-L-триптофан.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Триптофан является незаменимой аминокислотой для человека. Он играет важную роль в регуляции настроения, когнитивной функции и поведения. Радиомаркированные производные триптофана, особенно меченый углеродом 11 [11C]AMT, были широко изучены из-за их уникальной роли в картировании синтеза серотонина38,39, обнаружении и классификации опухолей40, руководстве хирургией эпилепсии41,42 и оценке ответа на лечение при диабете43. Однако короткий период полураспада и трудоемкие процедуры радиомаркировки ограничивают широкое применение [11C]AMT. В настоящее время предпринимаются усилия по разработке фтор-18-меченых агентов для метаболизма триптофана. В двух недавних обзорных статьях обобщены свойства развития и визуализации фтор-18-меченых триптофана3,28.
По сравнению со своим предшественником, меченым 11C, L-[18F]FETrp демонстрирует благоприятные свойства визуализации in vivo, хорошую метаболическую стабильность и устойчивость к дефторированию33. Кроме того, L-[18F]FETrp демонстрирует благоприятный дозиметрический профиль по сравнению с 18F-FDG и был предложен в качестве перспективного триптофана для клинической трансляции32,33. Методология, описанная здесь, использует двухэтапную стратегию радиосинтеза L-[18F]FETrp в системе синтеза радиохимии. L-[18F]FETrp производили с высокой химической чистотой, радиохимической чистотой и энантиомерным избытком. Общая нерадиолабелированная масса L-FETrp в конечной дозе составляет не более 5 мкг, а содержание этанола не более 10%. L-[18F]FETrp обычно производится в ПЭТ-центре для визуализации метаболизма триптофана в трансгенной медуллобластомной модели опухоли головного мозга мыши и показал благоприятные результаты визуализации32. По сравнению с сообщенным методом для L-[18F]FETrp, текущий протокол включает преимущества, подробно описанные ниже.
Во-первых, для радиомаркировки используют небольшой реакционный сосуд и меньше прекурсоров и реакционных растворителей по сравнению с другими сообщенными модулями и способами радиомаркировки (в которых использовалось 9 мг предшественника в 1,1 мл растворителя)35, и только 1-2 мг предшественника радиометки в 0,5 мл растворителя добавляют к реакции, но с гораздо более высоким выходом энантиомера. Сообщалось о выходе менее 1% для трехступенчатого радиосинтеза L-[18F]FETrp без какого-либо сообщения о энантиомерном избыточном значении44.
Во-вторых, используется самое низкое количество токсичного K222 по сравнению с зарегистрированными процедурами для L-[18F]FETrp или рацемического [18F]FETrp. Обычно используется 4-5 мг K222 по сравнению с 37,5 мг, используемыми другими35. K222 является катализатором фазового переноса, часто используемым в радиосинтезе 18F-меченых ПЭТ-индикаторов. Предел, указанный в USP для K222, составляет менее 50 мкг/мл. Тест на цветовое пятно для обнаружения остаточной концентрации K222 должен быть выполнен для соответствия критериям перед выпуском конечной дозы для клинического применения45.
В-третьих, только 1% воды вводится в раствор K2CO3/K222 для элюирования фторида [18F], что ускоряет процесс сушки водного [18F]фторида. [18F]фторидные анионы сильно гидратированы и становятся химически инертными в водных средах46. Поэтому для включения [18F]фторида требуется усиление нуклеофильности путем дезинсушения [18F]фторида и азеотропная сушка водного раствора. Вода также будет конкурировать с [18F]фторидом для гидролиза вместо желаемого [18F]фторидного нуклеофильного замещения предшественника радиомаркировки.
В-четвертых, для очистки L-[18F]FETrp используется инъекционная подвижная фаза. Десятипроцентный этанол в 50 мМ ацетата натрия / уксусной кислоты, рН 5,5, используется в качестве подвижной фазы для очистки радиоиндикатора, легко доводя содержание этанола до менее 10% в конечной дозе для клинического использования. В то время как 90% этанола в воде, как сообщается, разрешают энантиомеры, требуется больше времени, чтобы испарить содержание этанола до менее чем 10% при 78 ° C34.
Доклиническое исследование L-[18F]FETrp в модели мыши с трансгенной медуллобластомой показывает, что 1-L-[18F]FETrp имел высокое накопление опухоли головного мозга с благоприятной кинетикой, незначительной дефторированием in vivo и низким фоновым поглощением32. 1-L-[18F]FETrp также показывает превосходное соотношение цели к нецелевой цели по сравнению с 18F-FDG31. Кроме того, протокол легко настроить для производства L-[18F]FETrp для клинических исследований37. Дополнительные комплексные тесты на КК, включая целостность фильтра, радионуклидную чистоту, остаточные уровни растворителя, концентрацию K222, уровень бактериального эндотоксина и тесты на стерильность, могут быть легко выполнены для конечной дозы радиофармацевтического препарата. Активно продолжается процесс одобрения регулирующими органами клинического использования L-[18F]FETrp у людей.
Метод имеет некоторые ограничения. Две колонны ВЭЖХ используются для получения адекватной химической чистоты и энантиомерного избытка L-[18F]FETrp. Для очистки используется расход подвижной фазы при 3 мл/мин. Более высокий расход приводит к высокому противодавленному давлению, в то время как более низкий расход приводит к увеличению времени очистки и плохому базовому разрешению пиков. Альтернативные колонки ВЭЖХ, совместимые с подвижной фазой и показывающие лучшую селективность по отношению к энантиомерам и хорошее разрешение над примесями, могут упростить этапы очистки.
Модуль синтеза радиохимии является некоммерческой системой. Полностью автоматизированный радиосинтез рацемического [18F]FETrp был зарегистрирован в коммерческом синтезаторе GE FASTlab. Хиральное разделение энантиомеров осуществляется хиральной аналитической колонкой ВЭЖХ; конечные L- и D-изомеры формулируются на второй кассете FASTLab35. Xin и Cai34 сообщили об автоматическом радиосинтезе оптически чистого L-[18F]FETrp с использованием системы GE FX-N. В то время как два энантиомера могут быть легко разделены полупрепаратной хиральной колонкой ВЭЖХ, подвижная фаза с высоким содержанием этанола (90% этанола в воде) не подходит для прямого введения человеком34. Использование коммерческого радиосинтезизатора и инъекционной подвижной фазы для L-[18F]FETrp с высоким энантиомерным избытком крайне желательно для легкого клинического исследования.
В заключение, фтор-18-меченый аналог триптофана L-[18F]FETrp был синтезирован в системе синтеза радиохимии с использованием двухэтапного подхода с высокой надежностью и воспроизводимостью. Радиосинтез имеет небольшое количество предшественника радиомаркировки и растворителей, инъекционную мобильную фазу и простую реализацию для клинического производства L-[18F]FETrp для использования человеком. Протокол будет способствовать более широкому использованию этого радиоиндикатора для неврологических расстройств и раковых заболеваний, связанных с метаболизмом триптофана.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что конкурирующих финансовых интересов не существует.
Acknowledgments
Эта работа была поддержана Диагностическим и исследовательским центром ПЭТ / МРТ, а также отделениями биомедицинских исследований и радиологии в больнице Nemours / Alfred I. duPont для детей.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
[18F]Fluoride in [18O]H2O | PETNET Solutions Inc. | N/A | |
4,7,13,16,21,24-hexaoxa-1,10-diazabicyclo[8.8.8]hexacosane | ACROS | 291950010 | Kryptofix 222 or K222, 98% |
Acetic acid | ACROS | 222142500 | 99.8% |
Acetonitrile | Sigma-Aldrich | 271004 | anhydrous, 99.8% |
Agilent 1260 HPLC system | Agilent Technologies | Agilent 1260 | Agilent 1260 series |
Analytcial chiral HPLC column | Sigma-Aldrich | 12024AST | Astec CHIROBIOTIC T, 25 cm × 4.6 mm |
Carbon dioxide, 60 LBS | Airgas | REFR744R200S | 99.99% |
D-FETrp standard reference | Affinity Research Chemicals Inc | N/A | Custom synthesis |
Empty sterile vial | Jubilant HollisterStier | 7515 | 20 mm closure, 10 mL |
Ethanol | Decon Labs | 2716 | 200 proof, USP grade. ≥99.9% |
Fisherbrand 13 mm Syringe Filter, 0.22 µm, PVDF, sterile | Fisher Scientific | 09-720-3 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 30721 | ≥37% |
Isopropanol | Decon Labs | 8316 | 70%, sterile |
L-[18F]FETrp radiolabeling precursor | Affinity Research Chemicals Inc | N/A | Custom synthesis |
L-FETrp standard reference | Affinity Research Chemicals Inc | N/A | Custom synthesis |
Light C8 cartridge | Waters | WAT036770 | Sep-Pak C8 plus light cartridge |
Needle, 20 G x 1 | Becton-Dickinson & Co. | 305175 | |
Needle, 20 G x 1 ½ | Becton-Dickinson & Co. | 305176 | |
Needle, 21 G x 2 | Becton-Dickinson & Co. | 305129 | |
Neutral aluminum oxide | Waters | WAT023561 | Sep-Pak alumina N plus light |
Nylon membrane (0.20 µm ) | MilliPore | GNWP04700 | 47 mm |
Pall Acrodisc 25 mm syringe sterile filter | Pall Corporation | 4907 | |
PETCHEM radiochemistry synthesis system | PETCHEM Solutions Inc. Pinckney, MI | N/A | Radiosynthesizer |
pH strips 2.0 - 9.0 | EMD Millipore | 1.09584.0001 | |
Potassium carbonate | Sigma-Aldrich | 367877 | 99.995% |
Quaternary methylammonium light cartridge | Waters | 186004051 | Sep-Pak QMA light |
Semi-preparative C18 HPLC column | Phenomenex | 00D-4253-N0 | 100 × 10 mm |
Semi-preparative chiral HPLC column | Sigma-Aldrich | 12034AST | Astec CHIROBIOTIC T, 25 cm × 10 mm |
Sodium chloride injection 23.4% | APP Pharmaceutical, LLC | 18730 | USP grade |
Sodium chloridei injection 0.9% | Hospira | NDC 0409-4888-10 | USP grade |
Sodium hydroxide | Honeywell | 306576 | 99.99% |
Spinal needle, 20 G x 3 ½ | Becton-Dickinson & Co. | 405182 | |
Sterile alcohol prep pads | BioMed Resource Inc. | PC661 | |
Sterile empty vials, 2 mL | Hollister Stier | 7505ZA | 13 mm closure |
Sterile empty vials, 30 mL | Jubilant HollisterStier | 7520ZA | 20 mm closure |
Syringe PP/PE, 3 mL, Luer Lock | Air-Tite | 4020-X00V0 | |
Syringe PP/PE, 5 mL, Luer Lock | Becton-Dickinson & Co. | 309646 | |
Syringe, PP/PE, 10 mL, NORM-JECT | Air-Tite | 4100-000V0 | |
Syringe, 1 mL, Luer Slip | Becton-Dickinson & Co. | 309659 | |
Syringe, 3 mL, Luer-Lock | Becton-Dickinson & Co. | 309657 | |
Ultra high purity argon | Airgas | AR UHP300 | 99.999% |
Ultrapure water | MilliporeSigma | ZRQSVP300 | Direct-Q 3 tap to pure and ultrapure water purification system |
References
- Cetina Biefer, H. R., Vasudevan, A., Elkhal, A. Aspects of tryptophan and nicotinamide adenine dinucleotide in immunity: A new twist in an old tale. International Journal of Tryptophan Research. 10, 1178646917713491 (2017).
- Savitz, J. The kynurenine pathway: a finger in every pie. Molecular Psychiatry. 25 (1), 131-147 (2020).
- Zlatopolskiy, B. D., et al. 11C- and 18F-labelled tryptophans as PET-tracers for imaging of altered tryptophan metabolism in age-associated disorders. Russian Chemical Reviews. 89 (9), 879-896 (2020).
- Eriksson, B., et al. Positron emission tomography (PET) in neuroendocrine gastrointestinal tumors. Acta Oncologica. 32 (2), 189-196 (1993).
- Kälkner, K. M., et al. Positron emission tomography (PET) with 11C-5-Hydroxytryptophan (5-HTP) in patients with metastatic hormone-refractory prostatic adenocarcinoma. Nuclear Medicine and Biology. 24 (4), 319-325 (1997).
- Eriksson, O., et al. Quantitative imaging of serotonergic biosynthesis and degradation in the endocrine pancreas. Journal of Nuclear Medicine. 55 (3), 460-465 (2014).
- Carlbom, L., et al. 11C]5-hydroxy-tryptophan pet for assessment of islet mass during progression of type 2 diabetes. Diabetes. 66 (5), 1286-1292 (2017).
- Eriksson, O., et al. Positron emission tomography to assess the outcome of intraportal islet transplantation. Diabetes. 65 (9), 2482-2489 (2016).
- Jager, P. L., et al. Radiolabeled amino acids: Basic aspects and clinical applications in oncology. Journal of Nuclear Medicine. 42 (3), 432-445 (2001).
- Langen, K. J., Galldiks, N. Update on amino acid pet of brain tumours. Current Opinion in Neurology. 31 (4), 354-361 (2018).
- Chugani, D. C., Muzik, O., Chakraborty, P., Mangner, T., Chugani, H. T. Human brain serotonin synthesis capacity measured in vivo with α-[C-11]methyl-L-tryptophan. Synapse. 28 (1), 33-43 (1998).
- Chugani, D. C., Muzik, O. Alpha[C-11]methyl-L-tryptophan PET maps brain serotonin synthesis and Kynurenine pathway metabolism. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 20, 2-9 (2000).
- Diksic, M., Nagahiro, S., Sourkes, T. L., Yamamoto, Y. L. A new method to measure brain serotonin synthesis in vivo. I. Theory and basic data for a biological model. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 10 (1), 1-12 (1990).
- Diksic, M., Young, S. N. Study of the brain serotonergic system with labeled α-methyl-L-tryptophan. Journal of Neurochemistry. 78 (6), 1185-1200 (2001).
- Alkonyi, B., et al. Accurate differentiation of recurrent gliomas from radiation injury by kinetic analysis of α-11C-methyl-L-tryptophan PET. Journal of Nuclear Medicine. 53, 1058-1064 (2012).
- Bagla, S., et al. A distinct microRNA expression profile is associated with α[11C]-methyl-L-tryptophan (AMT) PET uptake in epileptogenic cortical tubers resected from patients with tuberous sclerosis complex. Neurobiology of Disease. 109, 76-87 (2018).
- Alkonyi, B., et al. Increased tryptophan transport in epileptogenic dysembryoplastic neuroepithelial tumors. Journal of Neuro-oncology. 107 (2), 365-372 (2012).
- Chugani, D. C. α-methyl-L-tryptophan: Mechanisms for tracer localization of epileptogenic brain regions. Biomarkers in Medicine. 5 (5), 567-575 (2011).
- Chugani, D. C., et al. Imaging epileptogenic tubers in children with tuberous sclerosis complex using α-[11C]methyl-L-tryptophan positron emission tomography. Annals of Neurology. 44 (6), 858-866 (1998).
- Chugani, H. T., et al. α-[11C]-Methyl-L-tryptophan-PET in 191 patients with tuberous sclerosis complex. Neurology. 81 (7), 674-680 (2013).
- Jeong, J. W., et al. Multi-modal imaging of tumor cellularity and tryptophan metabolism in human Gliomas. Cancer Imaging. 15 (1), 10 (2015).
- Juhász, C., et al. Quantitative PET imaging of tryptophan accumulation in gliomas and remote cortex. Clinical Nuclear Medicine. 37 (9), 838-842 (2012).
- Juhász, C., et al. Tryptophan metabolism in breast cancers: Molecular imaging and immunohistochemistry studies. Nuclear Medicine and Biology. 39 (7), 926-932 (2012).
- Juhász, C., et al. Successful surgical treatment of an inflammatory lesion associated with new-onset refractory status epilepticus. Neurosurgical Focus. 34, 5 (2013).
- Kumar, A., Asano, E., Chugani, H. T. α-[11C]-methyl-L-tryptophan PET for tracer localization of epileptogenic brain regions: Clinical studies. Biomarkers in Medicine. 5 (5), 577-584 (2011).
- Tiwari, V. N., Kumar, A., Chakraborty, P. K., Chugani, H. T. Can diffusion tensor imaging (DTI) identify epileptogenic tubers in tuberous sclerosis complex? Correlation with α-[11C]methyl-L-tryptophan ([11C]AMT) positron emission tomography (PET). Journal of Child Neurology. 27 (5), 598-603 (2012).
- Juhász, C., et al. In vivo uptake and metabolism of α-[11C]methyl-L-tryptophan in human brain tumors. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 26 (3), 345-357 (2006).
- John, F., Muzik, O., Mittal, S., Juhász, C. Fluorine-18-labeled PET radiotracers for imaging tryptophan uptake and metabolism: a systematic review. Molecular Imaging and Biology. 22 (4), 805-819 (2020).
- Zlatopolskiy, B. D., et al. Discovery of 7-[ 18 F]fluorotryptophan as a novel positron emission tomography (PET) probe for the visualization of tryptophan metabolism in vivo. Journal of Medicinal Chemistry. 61 (1), 189-206 (2018).
- Giglio, B. C., et al. Synthesis of 5-[18F]fluoro-α-methyl tryptophan: New trp based PET agents. Theranostics. 7 (6), 1524-1530 (2017).
- Yue, X., et al. Comparison of 1-(2-[18F]fluoroethyl)-L-tryptophan and FDG for the detection of medulloblastoma in a transgenic mouse model. Journal of Nuclear Medicine. 60, Supplement 1 545 (2019).
- Xin, Y., et al. PET imaging of medulloblastoma with an 18F-labeled tryptophan analogue in a transgenic mouse model. Scientific Reports. 10 (1), 3800 (2020).
- Michelhaugh, S. K., et al. Assessment of tryptophan uptake and kinetics using 1-(2-18F-fluoroethyl)-L-tryptophan and α-11C-methyl-L-tryptophan PET imaging in mice implanted with patient-derived brain tumor xenografts. Journal of Nuclear Medicine. 58 (2), 208-213 (2017).
- Xin, Y., Cai, H. Improved radiosynthesis and biological evaluations of L- and D-1-[18F]fluoroethyl-tryptophan for PET imaging of IDO-mediated kynurenine pathway of tryptophan metabolism. Molecular Imaging and Biology. 19 (4), 589-598 (2017).
- Henrottin, J., et al. Fully automated radiosynthesis of N1-[18F]fluoroethyl-tryptophan and study of its biological activity as a new potential substrate for indoleamine 2,3-dioxygenase PET imaging. Nuclear Medicine and Biology. 43 (6), 379-389 (2016).
- Xin, Y., et al. Evaluation of l-1-[18F]Fluoroethyl-tryptophan for PET imaging of cancer. Molecular Imaging and Biology. 21 (6), 1138-1146 (2019).
- Yue, X., et al. Automated production of 1-(2-[18F]fluoroethyl)-L-tryptophan for imaging of tryptophan metabolism. Applied Radiation and Isotopes. 156, 109022 (2020).
- Booij, L., et al. Brain serotonin synthesis in adult males characterized by physical aggression during childhood: A 21-year longitudinal study. PLoS ONE. 5 (6), 11255 (2010).
- Chandana, S. R., et al. Significance of abnormalities in developmental trajectory and asymmetry of cortical serotonin synthesis in autism. International Journal of Developmental Neuroscience. 23 (2-3), 171-182 (2005).
- Juhász, C., Dwivedi, S., Kamson, D. O., Michelhaugh, S. K., Mittal, S. Comparison of amino acid positron emission tomographic radiotracers for molecular imaging of primary and metastatic brain tumors. Molecular Imaging. 13 (6), 1-10 (2014).
- Rubí, S., et al. Positron emission tomography with α-[11C]methyl-L-tryptophan in tuberous sclerosis complex-related epilepsy. Epilepsia. 54 (12), 2143-2150 (2013).
- Chugani, H. T., et al. Clinical and histopathologic correlates of 11C-alpha-methyl-L-tryptophan (AMT) PET abnormalities in children with intractable epilepsy. Epilepsia. 52 (9), 1692-1698 (2011).
- Muzik, O., Burghardt, P., Yi, Z., Kumar, A., Seyoum, B. Successful metformin treatment of insulin resistance is associated with down-regulation of the kynurenine pathway. Biochemical and Biophysical Research Communications. 488 (1), 29-32 (2017).
- Sun, T., et al. Radiosynthesis of 1-[18F]fluoroethyl-L-tryptophan as a novel potential amino acid PET tracer. Applied Radiation and Isotopes. 70 (4), 676-680 (2012).
- Mock, B. H., Winkle, W., Vavrek, M. T. A color spot test for the detection of Kryptofix 2.2.2 in [18F]FDG preparations. Nuclear Medicine and Biology. 24 (2), 193-195 (1997).
- Kim, D. W., Jeong, H. J., Lim, S. T., Sohn, M. H. Recent trends in the nucleophilic [18F]-radiolabeling method with no-carrier-added [18F]fluoride. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 44 (1), 25-32 (2010).