Summary
与非肿瘤乳腺上皮细胞相比，乳腺癌细胞表现出不同的介电特性。据推测，基于介电特性的这种差异，可以出于免疫治疗目的将两个群体分开。为了支持这一点，我们模拟了一种微流体装置来分选MCF-7和MCF-10A细胞。
Abstract
介电泳装置能够利用施加外部电场使样品体积中的癌细胞极化的原理，以无标记、经济高效、稳健和准确的方式检测和操纵癌细胞。本文演示了如何使用细胞混合物中的流体动力介电泳（HDEP）利用微流体平台对非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）进行高通量连续分选。通过在HDEP微流控芯片中并排放置的两个电极之间产生电场，它们之间有微米大小的间隙，非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）可以被推开，在主通道内表现出负DEP，而非转移性乳腺癌细胞在悬浮在细胞培养基中时遵循其过程，由于电导率高于膜电导率。为了证明这一概念，对不同值的介质电导率进行了模拟，并研究了细胞的分选。进行了参数研究，发现合适的细胞混合物电导率为0.4 S/m。通过保持介质电导率固定，建立了足够的0.8 MHz交流频率，通过改变电场频率提供最大的分选效率。使用所演示的方法，在选择合适的细胞混合物悬浮介质电导率和施加的AC频率后，可以实现最大的分选效率。
Introduction
在乳腺组织内和乳腺组织周围发展的恶性肿瘤是全球女性乳腺癌的常见原因，导致严重的健康问题1。如果在早期发现，转移前的乳腺肿瘤可以通过手术治疗，但如果忽视，它们会扩散到他们的肺、脑和骨骼，对患者的生活产生严重影响。后期提供的治疗，如放射和化学疗法，具有严重的副作用2。最近的研究报告称，乳腺癌的早期诊断可将死亡率降低 60%3。因此，必须努力实现个性化的早期检测方法。为此，从事不同科学和技术领域的研究人员利用微流体技术开发了用于乳腺癌早期诊断的设备4。这些方法包括细胞亲和显微色谱、磁性激活微细胞分选仪、基于大小的癌细胞捕获和分离以及片上介电泳（DEP）5，6。文献中报道的这些微流体技术能够对定义明确的样品进行精确的细胞操作、实时监测和分类，这是许多诊断和治疗应用中的中间步骤5。这些分选机制与微流体的集成提供了对靶细胞7，8，9，10的灵活可靠的操作。这种集成的主要优点之一是能够处理纳升到微升体积的流体样品，并且还能够操纵样品流体的电特性。通过调节微流体装置内悬浮液的电导率，可以根据生物细胞的大小和介电特性的差异对生物细胞进行分类11，12。
在这些技术中，片上DEP通常是首选，因为它是一种利用生物样品电特性的无标记细胞分选技术。据报道，DEP 可以操纵生物样品，例如 DNA 13、RNA 14、蛋白质 15、细菌16、血细胞 17、循环肿瘤细胞 （CTC） 18 和干细胞 19。采用DEP分选生物样品的微流体装置已在文献20中广泛报道。据报道，基于储库的DEP微流体（rDEP）装置用于分选活菌和非活酵母细胞，可保护细胞免受电化学反应的不利影响21，22。Piacentini等人报道了一种卡斯特尔化微流体细胞分选机，该分选机以97%23的效率从血小板中分离红细胞。据报道，具有不对称孔和嵌入式电极的片上DEP器件也可以对活细胞和非活细胞进行分类24。Valero和Demierre等人通过在通道25，26的两侧引入两个微电极阵列来修改卡斯特尔式微流体细胞分选仪。这有助于将细胞聚焦在通道的中心。Zeynep等人提出了一种基于DEP的微流体装置，用于从白细胞27中分离和浓缩MCF7乳腺癌细胞。他们报告说，从白细胞中提取MCF7细胞的效率在74%-98%之间，频率为1 MHz，施加的电压范围为10-12 Vpp。补充表1表示基于DEP的微流体分选设备之间基于其设计，电极配置和操作参数（施加频率和电压）的定性和定量比较。
最近，研究人员试图测量微流控芯片28，29内乳腺上皮细胞（MCF-10A）和非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）介电行为的差异。Jithin等人还使用频率在200 MHz和13.6 GHz30之间的开放式同轴探针技术表征了不同癌细胞系的介电响应。MCF-7和MCF-10A细胞系介电响应的这些差异可用于在运行时将它们分离，并可能导致个性化早期诊断设备的开发。
在本文中，我们使用交流介电泳模拟了非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）的受控分选。电场的变化区域会影响微流控芯片内部的分选。所提出的技术易于实现，并允许将分选技术集成到各种微流控芯片布局中。通过计算流体动力学（CFD）模拟，通过改变悬浮细胞的流体培养基的电导率，研究非转移性乳腺癌细胞和非肿瘤乳腺上皮细胞的分离。在这些模拟中，表明通过保持电导率恒定并改变施加的频率，可以控制癌细胞和健康细胞的分离。
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Protocol
注意：此处的实验方案使用 COMSOL（一种多物理场仿真软件）来模拟使用交流电泳对非转移性乳腺癌细胞 （MCF-7） 和非肿瘤乳腺上皮细胞 （MCF-10A） 进行受控分选。
1.芯片设计及参数选择
- 打开多物理场软件并选择 空白模型。右键单击 全局定义 ，然后选择 参数。将 表 1 中给出的参数作为文本文件导入全局定义中，或单独输入值。
- 从主页选项卡中选择 添加组件 并添加 2D 组件。右键单击几何图形，然后双击该文件导入模型文件。
- 选择空白材料并使用 表 1 中的材料属性。
- 从主页选项卡中选择 添加物理场 ，然后键入 AC/DC。在 AC/DC 节点下，选择电流作为电场和电流子节点下的 物理 。
- 右键单击电流并选择电流守恒、绝缘和电势子节点以绝缘通道壁，为电极分配电位。
- 从主页选项卡中选择添加物理场，然后在流体流动节点下，选择单相流子节点下的爬行流物理场。右键单击“单相流”，并使用“墙”子节点将芯片边界渲染为墙。
- 右键单击 单相流 ，添加两个入口子节点和一个出口子节点。
- 使用入口子节点指定入口，并使用流 速 中的法线作为 边界条件。使用插座子节点分配插座。
- 从主页选项卡中选择添加物理场，然后在流体流节点下，选择粒子追踪子节点下的粒子追踪流物理场。
- 右键单击粒子追踪节点，添加子节点壁、双 粒子 属性子节点、两个入口子节点、一个出口子节点、两个介电泳力子节点和一个拖动力子节点。
- 使用“粒子属性”子节点设置 MCF-7 和 MCF-10A 单元格的粒子属性。从“全局定义”部分下的参数中选择粒子属性。
- 添加拖动力子节点以将介电泳 力 分配给两种类型的细胞。
- 在这种情况下，请从参数部分添加 粒子属性 。添加 Shell 子节点以模拟哺乳动物细胞。
- 从主页选项卡中，选择 添加 网格，然后选择 精细网格。从主页选项卡中选择构建网格以 构建网格 。
- 在主页选项卡中，单击添加研究以添加三个 研究 步骤。 研究步骤1 用于模拟频率响应;使用 频域 子节点。
- 要模拟爬行流，请选择 “稳态算例 ”节点。添加两个随时间变化的步骤来模拟具有介电泳力和无介电泳力的条件。
- 对于无介电泳条件，选择 物理场和变量选择，选中研究步骤的 修改模型配置 框，然后禁用 介电泳步骤。对于介电泳条件，请勿禁用。保存文件并按 计算 以运行模拟。
注意：设计用于分选非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）的微流控芯片具有两个独立的入口，分别用于细胞混合物流和流体动力流聚焦，宽度分别为20μm和40μm，如补充 图1 和 补充图2所示。 - 在频域子节点下分配频率 （f0），并使用电势子节点将电压分配给沿分选室顶部侧壁放置的刨床电极（宽度为 295 μm）。在出口处，使用“冻结”壁条件来可视化分类的颗粒。
2. 数学模型与计算分析
- 通过建立计算流体动力学（CFD）研究，验证微流体装置内分离非转移性乳腺癌细胞和非肿瘤乳腺上皮细胞的操作参数。
注意：多物理场软件（AC/DC、微流体和 粒子跟踪 模块）用于此目的。控制方程和理论背景在 补充文件1中有详细说明。该模型通过使用文献31，32中报道的非转移性乳腺癌细胞（MCF7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）的介电特性进行测试，这些特性总结在 表1中。 - 通过在细胞混合物入口处以 1：1 的比例引入非转移性乳腺癌 （MCF7） 和非肿瘤乳腺上皮 （MCF-10A） 细胞系来执行 CFD 模拟。
- 首先，执行网格独立性研究以优化模拟的网格大小33.
注意：进行了网格独立性研究，以找到操作参数的最佳解决方案。选择了一组五种不同的网格尺寸来量化解决方案收敛的最佳单元尺寸。观察到，当定义网格的元素总数为635（较粗的网格）时，如补充图3A所示，分选效率最低，一些MCF7单元移动到底部出口，如补充图3B所示。当网格尺寸增加到精细时，定义网格的单元数量也增加到 2，288。在这种情况下，分选效率达到最高，MCF7和MCF-10A细胞都向各自的出口移动。还模拟了更精细的网格，定义网格的单元数量增加到 3，188 个。在此之后，分拣效率仍然不受影响。因此，我们可以肯定地说，细网眼尺寸在我们的案例中效果最好。 - 求解两组 CFD 算例。
- 对于第一组，右键单击 算例 1 并添加 参数化扫描 子节点。按 + 符号添加流体介质电导率“σm”作为扫描变量。对流体介质电导率σ m 范围从 0.01 S/m 到 2.5 S/m 执行参数扫描研究，保持应用频率 f （Hz） 恒定在 800 kHz 的值。
- 对于第二组，通过将施加的交流频率从 100 kHz 更改为 100 MHz，同时保持流体介质的电导率 σm，在每种情况下固定为 0.4 S/m，进行参数扫描研究。这个σm值是根据第一个CFD研究的结果选择的，因为在这个值下观察到MCF-7和MCF-10A之间的最大间隔。
- 施加在导电介质中介电球形颗粒上的介电泳（DEP）力FDEP （-）的强度由公式1T34给出：
FDEP
[1]
使用介电泳力子节点下的公式1。在等式 1 中， r 表示应用 FDEP的粒子的半径;K（-）被称为克劳修斯-莫索蒂因子; εm（-）表示介质的介电常数;E（V/m） 是电场的均方根值。 - 使用公式2表示介电泳力子节点下的球形颗粒。
[2]
在公式2中，
（-）显示了施加DEP力的粒子的复介电常数; 
（-）显示了粒子周围流体的复介电常数。复介电常数 和 定义如下35： - 使用公式3表示介电泳力子节点下的球形颗粒：
[3]
在公式3中，εp （-）表示粒子复介电常数的实部;εm （-）表示粒子周围流体复介电常数的真实部分;σp （S/m） 表示颗粒电导率;σ m （S/m ） 表示颗粒周围介质的电导率;ω （Hz） 是外加电场的频率。
注意： Re（K） 的符号决定了 FDEP 的极性。如果Re（K）的符号为负，则粒子经历负介电泳力（nDEP）;与此相反，如果Re（K）的符号为正，则意味着正介电泳力（pDEP）。对于克劳修斯-莫索蒂因子 （K），变化在 -1 到 1 的范围内。
- 首先，执行网格独立性研究以优化模拟的网格大小33.
- 使用公式3的改进形式来模拟生物细胞，例如哺乳动物细胞，这些细胞更复杂且具有多层结构。
K （
） = 
[4]
在公式4中，
（-）包含细胞质的复介电常数（ 
-）和细胞膜 
的复介电常数（-），给出如下：36 - 使用公式 5 求解 “
”：
[5]
在公式5中，R cyto（m）和Rmem（m）分别显示了细胞质和细胞膜的半径。 - 然后，使用公式4绘制Re（K）作为癌症和健康细胞外加电场的函数。计算克劳修斯-莫索蒂（CM）因子Re（K）的实部，以量化粒子经历的介电泳力（DEP）。
- 右键单击 “结果 ”节点，添加 “粒子评估 ”子节点，然后在表达式部分中键入 fpt.deff1.K 以绘制粒子 1 的 CM 因子和粒子 2 的 fpt.deff2.K 。
注：正文中列出的所有协议步骤都可以在协议视频（视频1）中查看。
[1]
[2]
（-）显示了施加DEP力的粒子的复介电常数; 
（-）显示了粒子周围流体的复介电常数。复介电常数 
[3]
） = 
[4]
（-）包含细胞质的复介电常数（ 
-）和细胞膜 
的复介电常数（-），给出如下：36
”：
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Representative Results
研究基于DEP对非转移性乳腺癌（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮（MCF-10A）细胞进行有效分选的最佳操作参数
为了在进行介电泳时成功分离具有不同介电特性的非转移性乳腺癌（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮（MCF-10A）细胞，它们的K因子应通过保持应用频率固定37，38来区分。使用公式4实现了非转移性乳腺癌细胞和非肿瘤乳腺上皮细胞在外加电场下的介电反应的定量，并计算了“K”因子作为两种细胞系施加频率的函数。 图1 所示的结果是通过保持非转移性乳腺癌细胞和非肿瘤乳腺上皮细胞的所有介电参数固定而生成的，同时施加的电场频率随着细胞悬浮培养基的三种不同电导率值而变化σ m。
如图1所示，在每种情况下，K的值都在-1到 1的范围内，与以前的研究一致39，40。尽管如此，根据培养基电导率（σm）的值，非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）的real（K）与频率的关系图。 图1 所示的结果与最近的一项研究一致，其中σm 对MCF-7细胞Re（K）的影响被量化41。
图1：克劳修斯-莫索蒂因子。 克劳修斯-莫索蒂因子的实部 K 绘制为频率函数，对于悬浮在电导率为 （A） σ m = 0.01 S/m 的介质中的 MCF-7 和 MCF-10A 细胞;（B） σ米=0.4平方米/米 ;（C） σ m = 1.2 S/m . 请点击此处查看此图的大图。
图 1 是使用 MyDEP 工具绘制的三种不同的 σm 值，保持并改变施加的交流频率范围为 100 kHz 至 100MHz。最初，σm被选择为0.01 S/m，施加的交流频率在100 kHz和100 MHz之间变化，如图1A所示。在施加100 kHz的交流频率下，MCF-10A电池的Re（K）值为0.82，这意味着它们经历正介电泳（pDEP），并且应该向高电场强度的区域移动。同样，100 kHz的MCF-7电池也经历了Re（K）值为0.76的pDEP。频率以100 kHz的步长增加，并且两种细胞类型的CM因子值在整个应用的频谱中保持正侧。通过保持所有其他操作参数不变，介质电导率增加到0.4 S/m以绘制Re（K），如图1B所示。MCF-10A和MCF-7在100 kHz时表现出负介电泳（nDEP）行为，Re（k）值分别为-0.46和-0.31。当频率增加到0.8 MHz时，MCF-10细胞的DEP响应发生了变化，它们的Re（K）值为0.014。MCF-7细胞的这种行为是由细胞膜与周围细胞悬浮培养基39，41之间界面处的麦克斯韦-瓦格纳极化引起的。观察到DEP响应这种变化的频率称为交越频率，如图1A42，22所示。在这种情况下，MCF-7细胞经历了nDEP。频率进一步增加到100 MHz，但两种细胞类型都没有改变其DEP行为，因此不受施加电场频率变化的影响。当电导率增加到1.2 S/m时，MCF-10A和MCF-7电池在100 kHz下经历了nDEP。在这种情况下，MCF-10A和MCF-7电池的Re（k）值分别为-0.49和-0.43，如图1C所示。当频率增加到0.8 MHz时，细胞的DEP响应没有改变，因为它们一直在经历nDEP。MCF-7和MCF-10A细胞系在高值细胞悬浮培养基电导率下的负DEP行为与先前报道的研究一致39，43，44。细胞在高于第一交叉频率的频率下的DEP行为受细胞质电导率和悬浮溶液45，46之间的相互作用决定。另一方面，在低于第一交叉频率的频率下，细胞的介电响应由细胞膜电导率和细胞悬浮介质之间的相互作用决定。
根据 图 1 所示的结果，建立了 COMSOL 仿真。最初，使用此仿真软件量化电场强度，如图 2所示。可以看出，并排放置在分选通道顶壁上的两个电极产生的总电场大小的最大值位于电极边缘附近。箭头显示电场的方向。
图 2：电场强度。 并排放置的两个电极产生的电场。 请点击此处查看此图的大图。
通过保持施加的交流频率固定在0.8 MHz（交叉频率）并改变σ m的值来设置MCF-7和MCF-10A电池分选的模拟。 根据图1所示的Re（K）图选择了σm的三个值。最初，当σm为0.01 S/m时，两种细胞类型都经历了正DEP，向高电场强度区域移动，并从顶部出口移出，如图3A所示。在这种特殊情况下，两种细胞系σ细胞质的细胞质电导率都高于介质电导率σm，从而迫使两种细胞系靠近微流体通道47顶部的电极。当σ m增加到0.4S/m，施加的频率固定为0.8 MHz时，MCF-10A电池的DEP响应发生了变化，并且它们经历了负DEP。 图3B显示MCF-10A电池移动到顶部出口，而MCF-7电池移动到底部出口。这种分离的原因是MCF-7细胞比MCF-10A更极化，因为它们的细胞质电导率大于σ m的培养基电导率σ，如细胞分选视频（视频2）所示。
图 3：细胞分选固定频率。 在设计的微流体装置中，DEP模拟MCF-7和健康细胞随时间推移的分离。MCF-7和悬浮培养基在三种不同电导率值下的健康细胞分离：（A）0.01 S/m;（B） 0.4秒/米;（C） 1.2 秒/米在每种情况下，施加的频率为0.8 MHz，施加的电压Vpp 为1.5 V，注射入口处的流速为184 μm/s，流量聚焦入口处的流速为853 μm/s。在模拟中，MCF-7细胞和MCF-10A细胞分别用蓝色和红色圆圈表示。 请点击此处查看此图的大图。
随着培养基电导率进一步增加到1.2 S/m，由于细胞质电导率σ细胞质 值较低，MCF-7和MCF-10A细胞的极化程度都低于其周围的培养基。因此，它们经历了nDEP并远离高电场区域，如图 3C所示。
这些结果表明，培养基的电导率在基于DEP的MCF-10A非肿瘤乳腺上皮细胞中分离MCF-7非转移性乳腺癌细胞中起着重要作用。此外，如图 3B所示，为了实现有效分离，需要根据电池各自的介电特性，以电池经历pDEP或nDEP的方式调整介质电导率。
最后，通过将培养基电导率保持在0.4 S/m，研究了施加的介电泳力F DEP对两种细胞系分选行为的影响。 FDEP是外加电场频率48，49的函数，并且随着外加电场频率的变化， 细胞改变其 DEP 行为。通过将频率设置为100 kHz开始模拟，观察到MCF-10A和MCF-7细胞系都经历了nDEP，并从高电场区域向底部出口移动，如图4A所示。随着频率的增加，两种细胞系的DEP行为保持不变，直到0.8 MHz，当时MCF-10A改变了它们的DEP行为并交叉到pDEP区域。这是所研究的DEP响应单元之间最大分离和最大分选效率的点，如图4B所示。当频率增加到100 MHz时，观察到两种细胞系都经历了pDEP，并向顶部出口移动，如图4C所示。在高于0.8 MHz的较高频率下，细胞开始固定在通道壁上。细胞在通道壁上的固定会导致分选过程中的细胞损失，这反过来又会影响设备的整体效率。如果暴露较长时间，这些力的作用也会导致细胞活力的严重丧失。Yang等人通过将DEP力暴露于5 MHz的交流电场和20 VPP50的峰峰值电压来量化DEP力对单核细胞增生李斯特菌细胞系的影响。他们的结果表明，当在DEP力的作用下保持4小时时，活细胞损失为56%-89%。同样，据报道，当悬浮在可极化介质中时，DEP力也会对细胞的运动产生影响，并已用于固定细胞。Ettehad等人报告了一种带有叉指电极（IDE）的微流体装置，该装置使用1 MHz和20 VPP的交流频率来固定酵母细胞51。他们表明，酵母细胞的固定化取决于其IDE之间的间距和施加的电压的纵横比。IDE间距纵横比的增加导致细胞固定化急剧下降，并且为了将细胞固定在IDE之间间距较大的设备中，需要更高的VPP。当需要捕获细胞进行分析或生长时，细胞固定是理想的应用。先前的结果清楚地表明，施加的交流频率和电压对细胞固定有影响。在需要高通量分选或筛选结果的应用中，细胞固定会导致细胞损失并降低设备的输出效率。
为了量化施加频率和电压对细胞固定的影响，在1.5 VPP的固定施加电压下，从千赫兹到兆赫兹频率范围进行了一组模拟。结果如 补充图S4所示。结果表明，在kHz范围内的频率下，与MHz范围内的频率相比，细胞在通道壁上的固定性要小得多。由于DEP力与施加的交流频率成正比，我们可以推断，在高DEP力下，细胞的固定更加明显。对于这种微流体装置，在MCF7和MCF-10A电池的分选过程中会出现电池损耗，因为它需要在大于0.8 MHz的频率下工作。通过选择随机分布边界条件，进一步研究了细胞在入口处随机分布的影响。在这种情况下观察到更多的细胞-通道壁相互作用，如 补充图5所示。
图 4：使用固定介质电导率进行细胞分选。 外加交流电场的频率对模拟微流控装置中非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）分离的影响。（A） f= 100 KHz;（B） f= 0.8兆赫;（C） f= 100兆赫。流体介质电导率固定在 σ m = 0.4 S/m 。 请点击此处查看此图的大图。
| 用于仿真的介电特性 | ε细胞质 | σ细胞质 （实/月） |
ε膜 | σ膜 （实/月） |
| MCF-7 | 50 | 0.8 | 11 | 6× 10-6 |
| MCF-10A | 100 | 0.1 | 11 | 6 |
| f0 | 800 [千赫] | 1.2 x 103 赫兹 | 电场频率 |
| sigma_f | 0.4 [实/米] | 0.8 秒/米 | 流体介质电导率 |
| epsilon_f | 80 | 80 | 流体相对介电常数 |
| rho_f | 1000 [千克/米3] | 1000公斤/立方米 | 流体密度 |
| mu_f | 1 x 10-3 [帕·秒] | 0.001 帕·秒 | 流体动力粘度 |
| rho_p | 1050 [千克/米3] | 1050公斤/立方米 | 颗粒密度 |
| DP1 | 17 [微米] | 1.7 x 10-5 米 | 粒径 |
| DP2 | 16 [嗯] | 1.6 x 10-5 米 | 粒径 |
| sigma_p1 | 0.8 [实/米] | 0.6 秒/米 | 颗粒电导率 |
| sigma_p2 | 0.1 [实/米] | 1.1 秒/米 | 颗粒电导率 |
| epsilon_p1 | 50 | 55 | 健康的相对介电常数 |
| epsilon_p2 | 100 | 65 | 癌症相对介电常数 |
| sigma_s1 | 6 x 10-6 [实/米] | 6 x 10-6 秒/米 | 壳牌电导率 |
| sigma_s2 | 6 [实/米] | 6 秒/米 | 壳牌电导率 |
| epsilon_s1 | 11 | 11 | 壳相对介电常数 |
| epsilon_s2 | 11 | 11 | 壳相对介电常数 |
| th_s1 | 7 [海里] | 7 x 10-9 米 | 壳体厚度 |
| th_s2 | 7 [海里] | 7 x 10-9 米 | 壳体厚度 |
表 1：操作参数。 MCF-7和MCF-10A的介电性能
视频 1：显示协议步骤的视频。请点击此处下载此视频。
视频 2：细胞分选视频。请点击此处下载此视频。
补充文件1：控制方程和理论背景。请点击此处下载此文件。
补充图1：器件设计和参数。 微流体装置设计突出了装置的不同部分。 请点击此处下载此文件。
补充图2：电极之间的间隙。 两个贴片电极之间的间隙。 请点击此处下载此文件。
补充图3：网格独立性研究。 一项网格独立性研究，描述了不同网格尺寸对MCF-7和MCF-10A细胞分选的影响。（A）微流控装置的不同网格尺寸，描绘每个网格的单元数。构成网格的单元数量从粗网格增加到细网格。（B）通过保持所有其他操作参数不变，对不同网格尺寸的MCF7和MCF-10A细胞进行分类。细网和细网尺寸可产生最佳的分拣结果。 请点击此处下载此文件。
补充图4：细胞固定和随机分布测试。 对 10 KHz 和 6 MHz 之间的频率进行了仿真，以验证 DEP 力对细胞固定的影响。（A）在f = 10 kHz时，未观察到分选和细胞固定。（B）在f = 200 kHz时，未观察到分选和细胞固定。（C）在f = 0.8 MHz时，观察到出口壁的分选和细胞固定。 请点击此处下载此文件。
补充图5：随机分布。 芯片入口处随机分布的颗粒。 请点击此处下载此文件。
补充表1：不同基于DEP的微流控分选装置的比较。请点击此处下载此文件。
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Discussion
以前已经报道过用于细胞培养，捕获和分选的微流体装置47，52，53。在洁净室中制造这些设备是一个昂贵的过程，必须通过CFD仿真来量化所提出的微流体设备的输出和效率。本研究介绍了基于非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）介电特性的AC介电泳微流控装置的设计和模拟23。
该装置通过嵌入单个微流体分选通道的一组两个微电极 施加 交流电场来操作，以根据MCF-7和MCF-10A电池的介电特性分离MCF-7和MCF-10A电池。针对不同的介质电导率值和一系列施加的交流频率，对器件的分离效率进行了计算模拟。最佳应用交流频率和介质电导率值分别为0.8 MHz和0.4 S/m。在整个仿真过程中使用了1.5 Vp-p 的低电压。施加的交流频率范围和施加的电压与先前报道的文献23，47相当。在高于1 MHz的频率下，观察到电池固定效应，在将来的器件设计和制造中应考虑这一点。我们将这种细胞固定列为我们在细胞分选应用中的方法的局限性。我们相信更高频率的细胞固定可用于细胞分化，如先前在文献54中报道的那样，为这种提出的设计提供了新的方向。合成生物学研究人员对这一应用非常感兴趣。
正确实施该协议的关键步骤包括选择合适的物理节点和子节点（步骤1.5-1.9）。这些步骤构成了整个模拟方案的基础，有助于为每种电池类型、施加的力和施加的电压选择参数值。另一个关键步骤是选择正确的流体介质电导率和应用频率。这可以通过运行参数化扫描的故障排除步骤来实现。这两个参数的参数化扫描有助于确定未来任何仿真的最佳值。最后，在为任何未来的仿真选择合适的网格尺寸时，网格独立性研究也至关重要。强烈建议在完成任何未来的仿真之前，将网格独立性研究作为故障排除步骤。
本研究提供了第一个基于非转移性乳腺癌细胞（MCF-7）和非肿瘤乳腺上皮细胞（MCF-10A）介电特性的在线分离的模拟示例。我们相信这种设计可以进一步用于活细胞和非活细胞分选。
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Disclosures
作者声明没有潜在的利益冲突。
Acknowledgments
这项研究得到了巴基斯坦高等教育委员会的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| COMSOL | COMSOL | multiphysics simulation software |
References
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