Verwendung von Mehrfachlichtstreuung zur Untersuchung der Stabilität von Phyllanthus emblica L. Extrakte, die mit verschiedenen Extraktionsmethoden gewonnen wurden

Summary

Hier stellen wir eine Stabilitätsbewertungsmethode vor, die auf der Mehrfachlichtstreuungstechnologie basiert, um die Stabilität von Extrakten aus der Traditionellen Chinesischen Medizin zu bewerten.

Abstract

Das Extraktionsintermediat der Traditionellen Chinesischen Medizin ist das wichtigste Zwischenprodukt im Zubereitungsprozess, und seine Stabilität hat einen wichtigen Einfluss auf die Wirksamkeit und Qualität des Endprodukts. Bestehende Methoden zur Bewertung der Stabilität sind jedoch oft zeit- und arbeitsintensiv, erfordern eine Langzeitbeobachtung und den Betrieb komplexer Geräte (z. B. Hochleistungsflüssigkeitschromatographie), und es ist schwierig, mehr physikalische Informationen über die Instabilität des Systems zu erhalten. Daher ist es dringend notwendig, eine schnelle und genaue Stabilitätsanalysetechnologie für die Traditionelle Chinesische Medizin zu etablieren. Die Mehrfachlichtstreuung ist eine hochmoderne Analysemethode, mit der die Stabilität traditioneller chinesischer Arzneimittel auf umweltfreundliche Weise genau und schnell bewertet werden kann, ohne die Art oder den Zustand der Probe zu verändern oder organische Reagenzien zu verwenden.

In dieser Arbeit konnte das vorliegende Protokoll unter Verwendung der präzisen Scandaten der Mehrfachlichtstreuung schnell die Variationskurven für die Schichtdicke, die Partikelmigrationsgeschwindigkeit und die durchschnittliche Partikelgröße über die Zeit erfassen. Dies ermöglichte die genaue Identifizierung des Mechanismus und der entscheidenden Merkmale, die die Instabilität des Systems in seinen frühen Stadien verursachen. Bemerkenswert ist, dass der Untersuchungszeitraum für den Extraktionsprozess durch die detaillierte Quantifizierung der Systemstabilität erheblich verkürzt werden kann, was auch eine schnelle, genaue und tiefgehende Analyse der Auswirkungen verschiedener Extraktionsprozesse auf die Stabilität von Phyllanthus emblica L ermöglicht.

Introduction

Bei der Herstellung der Traditionellen Chinesischen Medizin (TCM) steht seit jeher die Stabilität der TCM-Extraktionsintermediate und verwandter flüssiger Zubereitungen im Fokus der Inspektion¹. Die klinische Wirksamkeit von Arzneimitteln, insbesondere mit Polyphenolen als primärem Wirkstoff, leidet unter erheblichen Stabilitätsproblemen ^2,3. Sanajon Flüssigkeit zum Einnehmen und Nuodikang Flüssigkeit zum Einnehmen sind Beispiele für typische Fälle dieser Ausgabe⁴. Daher ist es wichtig zu lernen, wie man effiziente Werkzeuge einsetzt, um die Stabilität von flüssigen Zwischenprodukten im TCM-Produktionsprozess schnell und genau zu bewerten und zu optimieren. Phyllanthus emblica L. (PE), eine in Südostasien weit verbreitete Heilpflanze, wird angenommen, dass sie gute antioxidative Eigenschaften⁵ sowie entzündungshemmende⁶, antibakterielle⁷ und antitumorale Wirkungen⁸ hat. Während des thermischen Extraktionsverfahrens wandeln sich die Tannine in PE heftig um⁹. Bei der Katalyse mit hohen Temperaturen hydrolysieren diese Tannine schnell zu Molekülen wie Gallussäure und Ellagsäure, die aufgrund ihrer schlechten Löslichkeit zu Instabilität oder Ausfällung führen¹. Aktuelle Methoden zur Bewertung der TCM-Stabilität, wie z.B. beschleunigte Tests oder Zentrifugation, sind in der Regel umständlich⁴, was die Weiterentwicklung entsprechender Präparationsprozesse einschränkt.

Basierend auf dem Prinzip der Mehrfachlichtstreuung (MLS) haben wir eine schnelle Stabilitätsbewertungsmethode für PEF-Extrakte etabliert und den Instabilitätsmechanismus analysiert. MLS ist ein Messverfahren, das auf der Abtastung von Nahinfrarot-Lichtquellen basiert. Jeder Wechsel des Lösungssystems führt zu einer Änderung der Lichtintensität. Das einfallende Licht wird gestreut, wenn es von den Partikeln der Probe absorbiert oder durchdrungen wird. Das System zeichnet das Sendelichtsignal auf, wenn es die Probe durchläuft. Ist die Lichtdurchlässigkeit der Probe schlecht, zeichnet das System das rückstreuende Lichtsignal auf. Im Vergleich zur visuellen Beobachtung kann dies viel Zeit sparen¹ und kann das Instabilitätsphänomen schnell und genau im Detail analysiert werden, wodurch nützlichere Informationen für die Optimierung des Extraktionsprozesses bereitgestellt werden.

Protocol

1. Zubereitung des Extrakts

1. Wiegen Sie eine angemessene Menge PE genau ab und fügen Sie 10x (Gewicht) deionisiertes Wasser für die Rückflussextraktion hinzu.
2. Fünf Proben für die Rückflussextraktion für 0 h (E1), 0,5 h (E2), 1 h (E3), 1,5 h (E4) und 2 h (E5) nach dem Wiegen einstellen.
3. Kühlen Sie die Proben nach der Extraktion auf Raumtemperatur ab und wiegen Sie, um das verlorene Gewicht auszugleichen und die Konsistenz mit den Gewichten vor der Extraktion zu gewährleisten.
4. Zentrifugieren Sie die Proben 10 Minuten lang bei 8.581 × g , um sicherzustellen, dass unlösliches Material und pflanzliche Rückstände aus der Probenlösung entfernt werden.
5. Verwenden Sie eine Pipette, um 20 ml Probenlösung in die Probenflasche zu geben, um sicherzustellen, dass die jedes Mal hinzugefügte Lösung die gleiche Höhe hat.
   Anmerkungen: Vermeiden Sie Verunreinigungen, wie z. B. Fingerabdrücke, auf dem Scanteil der Probenflasche, stellen Sie sicher, dass die Probenflasche sauber ist, und prüfen Sie, ob sich sichtbare Kratzer auf der Flaschenoberfläche befinden. Achten Sie beim Hinzufügen der Probenlösung darauf, dass die Probenflasche nicht verschüttet oder verspritzt wird, und stellen Sie sicher, dass sich der Flüssigkeitsstand in jeder Flasche auf der gleichen Höhe befindet.

2. Bedienung des Instruments

1. Schalten Sie das MLS-Erkennungsinstrument ein und wärmen Sie es 30 Minuten lang auf.
2. Klicken Sie im oberen Menü auf die Schaltfläche Datei erstellen (oder klicken Sie auf die Schaltfläche Datei | Neue Dateifunktion ), um eine neue Testdatei zu erstellen.
3. Klicken Sie im oberen Menü auf die Schaltfläche Turbiscan Lab Temperature anzeigen , um die Zieltemperatur des Geräts auf 25 °C einzustellen.
   Anmerkungen: Die eingestellte Temperatur des Geräts muss höher als die Raumtemperatur sein. Andernfalls wird die Probentemperatur durch die Raumtemperatur beeinflusst.
4. Klicken Sie im oberen Menü auf Program Scan , um das Setup-Analyseprogramm aufzurufen. Fügen Sie das Programm der Liste hinzu, fügen Sie in der Taskleiste 5 Minuten als Zyklus hinzu, scannen Sie 48 Stunden lang in der Analysesequenz und stellen Sie die Ausgleichszeit auf 20 Minuten ein. Wählen Sie dieses Analyseprogramm für alle nachfolgenden Messungen aus.
5. Bewegen Sie die vorbereitete Probenflasche in das MLS-Detektionssystem. Nachdem Sie das Programm eingerichtet haben, klicken Sie auf Start , um die Messung zu starten.
   Anmerkungen: Achten Sie darauf, die Glasflasche beim Einlegen der Probe nicht zu schütteln. Die Messung kann erst gestartet werden, nachdem die Probentemperatur und die Einstelltemperatur ausgeglichen sind.

3. Programmeinstellung für die Analyse mehrerer Lichtstreuungen

1. Klicken Sie nach der Datenerfassung auf die Liste der Berechnungsparameter , um die optischen Parameter zur Berechnung des Stabilitätsindex (SI), der Partikelgröße und der Partikelmigrationsgeschwindigkeit einzustellen.
2. Stellen Sie die optischen Parameter wie folgt ein: die kontinuierliche Phasenlichtdurchlässigkeit (T₀) auf 99,99 % (Wasser), den Brechungsindex der dispersen Phase (np) auf 1,36 und den kontinuierlichen Phasenbrechungsindex (nf) auf 1,33.

Representative Results

Abbildung 1 zeigt das Prinzip der Mehrfachlichtmessung und die Bedeutung der gesammelten Ergebnisse. In den MLS-Spektrenergebnissen (Abbildung 2) war die Abszisse die Höhe der Probenzelle, und die Ordinate war die Intensität der Transmission (T%) und Rückstreuung (BS%). Durch die Berechnung der MLS-Spektrenergebnisse kann das System die Änderungen der wichtigsten physikalischen Parameter der Probe während des Messzeitraums ermitteln, einschließlich des Delta-Transmissionsmittelwerts (ΔT) (Abbildung 3A), des photonenfreien Weges (Abbildung 3B), des SI (Abbildung 3C) und der Partikelgröße (Abbildung 3D). Mit der Verlängerung der Messzeit schwanken die MLS-Spektren stabiler Extrakte wenig oder gar nicht, und ihre physikalischen Parameter, einschließlich des ΔT, des photonenfreien Weges und der Partikelgröße, sind tendenziell stabil.

Typische Ergebnisse der Probeninstabilität sind in Abbildung 2A,C-E dargestellt. Die spektralen Ergebnisse stabiler Proben waren tendenziell zu allen Scanzeiten konsistent, wie in Abbildung 2B dargestellt, was ein typisches Merkmal stabiler Proben ist. Um die Stabilitätsparameter weiter zu quantifizieren, kann der SI zur Bewertung herangezogen werden. Das aktuelle Protokoll ermöglicht die schnelle Identifizierung der Stabilität unter verschiedenen Extraktionsmethoden auf der Grundlage von SI (Abbildung 3C) und die Analyse des Mechanismus der Instabilität. Es ist zu beachten, dass niedrigere SI-Werte mit einer besseren Stabilität verbunden sind. Die Probe gilt als stabil, wenn der SI innerhalb des Scanzeitraums <10 beträgt. Durch den Vergleich der SI-Werte konnten die Stabilitäten der fünf Proben genau unterschieden und die relevanten Stabilitätscharakteristikspektren erhalten werden (Abbildung 4). Die Partikelmigrationsrate (Tabelle 1) in Kombination mit dem oben genannten Parameter kann einen weiteren Einblick in den Instabilitätsmechanismus der Probe geben.

Abbildung 1: Analyseprinzip von MLS. Das MLS verwendet gepulstes Nahinfrarotlicht als Lichtquelle (Wellenlänge: 880 nm), und zwei synchrone optische Detektoren detektieren das Transmissionslicht (T, 0° von der einfallenden Strahlung, Transmissionssensor) bzw. das Rückstreulicht (BS, 135° von der einfallenden Strahlung, Rückstreudetektor), das die Probe durchdringt. Die Messsonde besteht aus der Lichtquelle, dem Transmissionslichtdetektor und dem Rückstreulichtdetektor. Die Messung von unten nach oben in der Probenzelle besteht aus einem Scan. Jede Instabilität in der Probe hat einen leichten Einfluss auf die T - und BS-Signalstärken . Diese Auswirkungen werden aufgezeichnet und analysiert, um verschiedene instabile Phänomene zu charakterisieren, darunter Flockung, Schichtung und Sedimentation⁴. Durch die Berechnung mehrerer Scanergebnisse können der Mechanismus und die Geschwindigkeit der Instabilität des Lösungssystems im Anfangsstadium der Instabilität genau analysiert werden, und die Beziehungskurve der Schichtdicke (Sedimentschicht, Schwimmschicht und Klärschicht) mit der Zeit, sowie die Beziehungskurve der Partikelmigrationsgeschwindigkeit und der Partikelgröße mit der Zeit, erhalten werden. Abkürzung: MLS = multiple Lichtstreuung. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Abbildung 2: MLS-Spektren (Transmission und Rückstreuung) von PE-Extrakt mit verschiedenen Extraktionsmethoden. (A-E) MLS-Spektren von E1-E5. Aus den Spektraldaten lässt sich grob ableiten, dass (B) die E2-Probe weniger schwankte, was darauf hindeutet, dass die Probe stabiler war, während (A) E1 aufgrund der allgemeinen Abnahme des Transmissionslichts möglicherweise eine Trübung aufwies. (C-E) Die E3-E5-Proben waren ziemlich instabil, und die Spektraldaten der Proben in verschiedenen Höhen waren unterschiedlich, was darauf hindeutet, dass die Schichtung in der späteren Periode stattfand. Abkürzungen: MLS = Mehrfachlichtstreuung, PE = Phyllanthus emblica L., EN = Extrakt nach Methode N. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Abbildung 3: Ergebnisse der MLS-Spektrenanalyse . (A) Im Laufe der Zeit wird der T-Wert höher und die Probe ist instabiler. Für E3 und E4 kehrte derΔ-T-Spiegel am Ende auf den des früheren Stadiums zurück, was darauf hindeutet, dass in diesen Extrakten Aggregation und Ausfällung auftraten. Das ΔT von E5 blieb nach der Trübung auf einem niedrigen Niveau, was darauf hindeutet, dass E5 möglicherweise eine große Menge an Sedimentation hatte. (B) Der Trend in der photonenfreien Weglänge kann die Änderungen im transmittierten Licht der Probe widerspiegeln. (C) Die Stabilität verschiedener Extrakte schwankte im Laufe der Zeit kontinuierlich, wobei E2 > E1 > E5 > E3 > E4 die Reihenfolge der Stabilität im Laufe der Lagerzeit darstellten. (D) Dynamische Änderungen der Partikelgröße können die Aggregation von Partikeln in der Probe aufdecken. Die Ergebnisse zeigen, dass sich die Partikelgrößen aller Proben innerhalb von 8-20 h stark veränderten, wobei die Partikelgröße von E3 und E5 sogar den Messbereich überstieg. Daher ist diese Phase entscheidend für die Bildung instabiler Aggregate von Molekülen oder Partikeln in der Probe. In ähnlicher Weise wurde in der Endphase, als die Partikel zu nukleieren begannen und weiter aggregierten, schließlich eine Verringerung der Partikelgröße beobachtet, nachdem genügend Partikel große Agglomerate gebildet und ausgefällt hatten. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Abbildung 4: Instabilität von PE-Extrakten, die durch verschiedene Extraktionsmethoden gewonnen wurden. Das Ergebnis braucht Zeit, da die Abszisse und die Farbe die Intensität des Durchlichts oder des Rückstreulichts darstellen. Das Ergebnis kann direkt die reale Situation der Trübung und Schichtung der Proben zu verschiedenen Zeitpunkten und Höhen widerspiegeln. Das Farbband am oberen Rand jedes Ergebnisses stellt die Lichtintensitätswerte dar, die verschiedenen Farben entsprechen, wobei der blaue Teil T% und der braune Teil BS% darstellt. (A) Der T-% von E1 begann nach 16 h zu sinken, was darauf hindeutet, dass die Probe trüb war und der gesamte Prozess nicht delaminierte oder ausfiel. (B) Der T-% von E2 war während des gesamten Messzeitraums konstant, was darauf hindeutet, dass die Probe stabil war. (C) E3 war nach 16 h trüb und sein BS% stieg nach 20 h plötzlich an, was darauf hindeutet, dass sich die Partikel in der Probe in diesem Moment ansammelten, geschichteten und ausfielen. (D) Das Ergebnis ist hier ähnlich wie in (C). (E) E5 erfuhr nach 20 h eine starke Delamination, die bis zum Ende der Messung anhielt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Messung	Berechnungszone	Migrationsrate (mm/h)
E1	0-24 h	1.56
E2	0-24 h	0.005
E3	0-24 h	1.476
E4	0-19 Uhr	2.732
E5	0-24 h	1.377

Tabelle 1: Ergebnisse der Partikelmigrationsrate. In den Ergebnissen kann die Partikelmigrationsrate als Partikelausfällungsrate angesehen werden, die bis zu einem gewissen Grad die Stabilität der Probe widerspiegeln kann. Höhere Migrationsraten deuten auf eine schlechtere Stabilität hin. Aus den Ergebnissen geht hervor, dass die Migrationsrate als E4 > E1 > E3 > E5 > E2 eingestuft wurde, und diese Reihenfolge unterscheidet sich etwas von den Ergebnissen für den Stabilitätsindex SI. Dies liegt daran, dass dieses Ergebnis die durchschnittliche Migrationsrate der Partikel in der Probe während des Messzeitraums widerspiegelt und nicht die Partikelmigrationsrate während der schnellen Ausfällung der Probe.

Discussion

Die schnelle und genaue Beurteilung der TCM-Stabilität ist seit jeher ein Schwerpunkt der TCM-Forschung. Um weitere nützliche Informationen für die Verbesserung des Extraktionsprozesses zu erhalten, analysierte diese Studie die Stabilitäts- und Instabilitätsmechanismen einer Probe mit einer zerstörungsfreien Nahinfrarot-Technologie.

In diesem Protokoll werden die wichtigen Stabilitätsparameter auf der Grundlage genauer MLS-Scandaten berechnet. MLS-Scans können die Transmission (T%) und Rückstreuung (BS%) der Probe in Echtzeit erfassen und den Stabilitätsindex (SI), die Partikelgröße, die Partikelmigrationsgeschwindigkeit und andere wichtige physikalische Parameter berechnen. Die Berechnungsformel ergibt sich aus Gleichung (1)⁴:

TSI = (1)

wobei x i die durchschnittliche Transmission für jede Messminute ist, x T der Durchschnitt x _i, x _T = (x ₁ + x₂ + ... x_i + x_i+1 ... + x n)/n, und n ist die Anzahl der Scans. Das SI ist ein wichtiger Parameter, der die Stabilität der Probe widerspiegelt, und ein Anstieg des SI-Wertes deutet auf eine Abnahme der Stabilität hin. Das SI enthält alle Messdaten für die Berechnung, d.h. es kann verwendet werden, um die Stabilität von Proben kurzfristig vorherzusagen und zu bewerten.

Die Partikelgrößenberechnung basiert auf dem Beer-Lambert-Gesetz. Die Berechnungsformel ergibt sich aus Gleichung (2):

T(l,ri) = T₀ , l(d,φ) = (2)

wobei ri der Innendurchmesser der Zelle und T₀ die Transmissionslichtintensität der kontinuierlichen Phase ist. Anhand der gemessenen Transmissionslichtintensität (T), des Partikelvolumenanteils (φ) und der eingestellten Parameter kann die Partikelgröße berechnet werden.

Die Sedimentationsgeschwindigkeit wird mit Gleichung (3) berechnet:

(3)

V ist die Partikelmigrationsrate (ms−1), ρ _c ist die kontinuierliche Phasendichte (kgm−3), ρ_p ist die Partikeldichte (kgm−3), g ist die Schwerkraftkonstante (9,81 ms⁻²), d ist der durchschnittliche Partikeldurchmesser (μm), v ist die kontinuierliche Phasenviskosität (cP) und ist der Volumenprozentsatz.

Bei der Extraktion mit Hitze hydrolysiert eine große Anzahl hydrolysierbarer Tannine im PE und setzt die unlösliche Aglycon-Ellagsäure frei. Da Ellagsäure ein planares unpolares Molekül ist, erfährt sie aufgrund hydrophober Wechselwirkungen intermolekulare Aggregation und Ausfällung, und dies ist die Hauptursache für die Ausfällung in der Lösung¹. Mit der Verlängerung der Extraktionszeit wird mehr Ellagsäure gebildet, was zu einer schlechten Stabilität der Probe führt und die Klärzeit der entsprechenden Probe verkürzt wird. Dies spiegelt sich gut in den Ergebnissen in Abbildung 4 wider.

Aus den obigen Berechnungsergebnissen lässt sich schließen, dass die durch die Aggregation von Komponenten oder Partikeln hervorgerufene Ausscheidung, die in den E3-E5-Proben nachweisbar ist, die Hauptursache für den Instabilitätsmechanismus der PE-Extraktionslösung ist. Aufgrund der während des Extraktionsprozesses gelösten Polysaccharide war E2 relativ stabil, da der Fällungsprozess durch seine hohe Viskosität^{behindert wurde 10}. Da die Extraktionszeit jedoch verlängert wurde, entstanden große Mengen an unlöslichen Bestandteilen wie Ellagsäure, was es schwierig machte, den stationären Zustand aufrechtzuerhalten. Insgesamt begann die beschleunigte Instabilität bei ~12 h, und die Extraktionsdauer korrelierte negativ mit der Stabilität, was für die Prozessoptimierung entscheidend war.

Die Bedeutung der MLS-Methode im Vergleich zu bestehenden Methoden ist wie folgt. Erstens sind die Messergebnisse genauer und authentischer, da die Methode einfach anzuwenden ist, keine Probenvorbehandlung erfordert und die Messungen ohne Berührung der Probe durchgeführt werden können. Selbst Proben mit hohen Konzentrationen benötigen keine Verdünnung. Zweitens hat MLS eine hohe Empfindlichkeit. Die sich ändernden Geschwindigkeiten in Abhängigkeit von Partikelkonzentration und -größe können zu Beginn der Änderung der in der flüssigen Zubereitung dispergierten Partikel erkannt werden. Im Vergleich zur visuellen Beobachtung ist MLS also ~200-mal zeiteffizienter.

Da Temperaturänderungen die Streulichtintensität des Systems beeinflussen können, sollte betont werden, dass die Probentemperatur nach der Installation konstant gehalten werden sollte, was eine Äquilibrierungszeit erfordert. Zusätzlich müssen störende Elemente (z. B. Rückstände von medizinischem Material) entfernt werden, um die Stabilität des Extrakts angemessen beurteilen zu können. Schließlich ist es wichtig, die physikalischen Eigenschaften vor der Prüfung genau zu messen, um die physikalischen Parameter, wie z. B. die Partikelgröße und den photonenfreien Weg, genau zu bestimmen.

Dieser Ansatz weist mehrere Einschränkungen auf. So führt beispielsweise die Oxidation aus der Langzeitlagerung zu abrupten Farbänderungen in der Extraktionslösung, die sich auf die Niederschlagsbeurteilung und das Aggregationsverhalten auswirken können. Es kann schwierig sein, die Konsistenz einiger Proben zu gewährleisten, wenn parallele Proben erforderlich sind, da nicht mehrere Proben gleichzeitig gemessen werden können. Die für diese Technologie erforderlichen Ausrüstungsinvestitionen sind relativ teuer, was das Haupthindernis für ihre Anwendung und Förderung darstellt.

Wir sind zuversichtlich, dass diese Methode in Zukunft herausragende Beiträge im Bereich der pharmazeutischen Präparate leisten wird, insbesondere bei der Bewertung von Dispersion und In-vitro-Auflösung. Sie kann zur Untersuchung neuartiger Wirkstoffverabreichungssysteme wie Liposomen, Nanopartikel und In-situ-Gele eingesetzt werden, und aufgrund ihrer Vorteile, effizienter, schneller, einfacher und umfassender zu sein, könnte diese Methode den Forschungszyklus erheblich verkürzen^11,12. Zusätzlich konnte ein Stabilitätsvorhersagemodell realisiert werden, das auf einer großen Menge an Medikationsinstabilitätsdaten basiert. Diese Technologie könnte in Zukunft mit anderen Nachweistechniken gekoppelt und verbessert werden, die zur pharmazeutischen Forschung und Entwicklung beitragen könnten.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Adjustable electric heating jacket	Beijing Kewei Yongxing Instrument Co., Ltd	MH-1000	www.keweiyq.com
Analytical balance(1/10000)	Sartorious, Germany	BSA224S	www.sartorius.com.cn
CNC ultrasonic instrument	Kunshan Ultrasonic Instrument Co., Ltd	KQ-500DE	www.ks-csyq.com
GL-16 high-speed centrifuge	Sichuan Shuke Instrument Co., Ltd	18091403	www.sklxj.com
Phyllanthus emblica L.	Hehuachi medicinal materials market	YJL2004	Produced in Yunnan
Turbisoft Lab multiple light scattering instrument	French Formulaction Company	Turbisoft Lab 2.3.1.125 Fanalyser 1.3.5	www.formulaction.com
UPR-II-5T ultra-pure water device	Sichuan ULUPURE  Ultrapure Technology Co., Ltd	Z16030559	www.ccdup.com