مقالة منهجية

سبع خطوات لخلايا النجمية

DOI:

10.3791/2710

⸱

مايو 10, 2011

 ,  , 
1Immune Disease Institute, Program in Cellular and Molecular Medicine at Children's Hospital, Department of Pathology, Harvard Medical School

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نحن هنا تصف طريقة لعزل الخلايا الكبدية النجمية من كبد الفأر. لتنقية الخلايا النجمية ، يتم هضمها كبد الفأر في الموقع و في المختبر من جانب pronase - كولاجيناز العلاج قبل الطرد المركزي المتدرج الكثافة. هذه التقنية عالية الغلة نقية الخلايا النجمية الكبدية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الخلايا النجمية الكبدية والكبد وخلايا المقيمين النجوم مثل التشكل وتقع في فضاء Disse بين خلايا الكبد والبطانية الجيبية 1،2 خلايا الكبد. يتم اشتقاق الخلايا النجمية من السلائف نخاع العظم وتخزين ما يصل الى 80 ٪ من فيتامين A الجسم الكلي 1 و 2. عند التنشيط ، والخلايا النجمية تفرق في myofibroblasts لإنتاج المصفوفة خارج الخلية ، مما يسهم في تليف الكبد 3. على أساس قدرتهم على العقد ، يمكن أن الخلايا النجمية myofibroblastic ينظم نغمة الأوعية الدموية وارتفاع ضغط الدم يرتبط المدخل 4. مؤخرا ، أظهرت لنا أن الخلايا الكبدية النجمية هي خلايا مولدة قوية ، ويمكن تقديم تنشيط خلايا NKT فضلا عن الخلايا اللمفية تي التقليدية 5.

هنا نقدم طريقة لإعداد كفاءة الخلايا الكبدية النجمية من كبد الفأر. نظرا لتوطين perisinusoidal بهم ، وعزل الخلايا الكبدية النجمية هي عملية متعددة الخطوات. لجعل الخلايا النجمية للوصول إلى العزلة من مساحة Disse ، يتم perfused كبد الفأر في الموقع مع Pronase E الهضمي الانزيمات وكولاجيناز P. التروية بعد ، يخضع للعلاج أنسجة الكبد الأنزيمية إضافية مع Pronase E و P في كولاجيناز المختبر. في وقت لاحق ، وطريقة الاستفادة من كمية هائلة من قطرات الدهون فيتامين A - تخزينها في الخلايا الكبدية النجمية. هذه الميزة تسمح للانفصال عن غيرها من الخلايا النجمية أنواع الخلايا الكبدية بواسطة الطرد المركزي على التدرج Nycodenz 8 ٪. بروتوكول الموصوفة هنا تعطي السكان نقية جدا ومتجانسة من الخلايا النجمية. ويمكن تقييم نقاء استعدادات لتلوين هذا البروتين علامة الدبقية جزيء ييفي الحمضية (GFAP) ، قبل التحليل المجهري مضان أو التدفق الخلوي. مزيد من الضوء ويكشف المجهر مظهر فريد من النجوم على شكل خلايا الكبدية النجمية التي تؤوي على كميات عالية من الدهون قطرات.

أخذت معا ، نقدم بروتوكول مفصلة للعزلة كفاءة الخلايا الكبدية النجمية ، بما في ذلك الصور ممثل مظهرهم المورفولوجية والتعبير GFAP التي تساعد على تحديد الجهة الخلايا النجمية.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وينبغي أن تستخدم C57BL / 6 أسابيع في الفئران 20 ~ من العمر أو المسنين. فمن المستحسن استخدام الفئران الذكور وزنها 25 - 30G. ويمكن زيادة الغلة من الخلايا النجمية عن طريق تغذية الفئران فيتامين A - المخصب الوجبة الغذائية لمدة 2 أشهر قبل نجمي العزلة الخلية. يمكن تنقية حوالي 2x10 5 خلايا الكبدية النجمية من كبد الفأر C57BL / 6 واحد ، في حين أن العائد من الخلايا النجمية من BALB / ج الفئران هي أعلى بكثير. ويتم تعديل البروتوكول التالي ل5 الفئران. وأجريت التجارب ورعاية الحيوانات وفقا للرعاية الحيوان وافق المؤسسية وبروتوكولات اللجنة الاستخدام.

1. نضح في الموقع من كبد الفأر مع الإنزيمات الهضمية

  1. تدفئة العازلة SC1 والحلول نضح الانزيم في حمام ماء C ° 37.
  2. شن مجموعة التسريب المجنح على أنبوب السيليكون من مضخة تمعجية.
  3. معايرة المضخة مع برنامج تلفزيوني للحصول على تدفق الصفحي من 6.5ml/min ، وهو معدل التدفق الذي سيتم استخدامه لنضح في الوضع الطبيعي للكبد. يوازن أنبوب السيليكون مع SC1 الحل.
  4. تخدير الماوس عن طريق الحقن داخل الصفاق من الكيتامين (90 ملغ / كلغ) وزيلازين (10 ملغ / كلغ) حل واختبار ردود الافعال عن خسارة لضمان التخدر عميقة.
  5. الإصلاح الماوس في موقف ضعيف على قاعدة مناسبة.
  6. استخدام المقص والملقط لإجراء شق طولي في جلد البطن وفضح البريتوني.
  7. فتح بعناية الصفاق وتحريك الأمعاء خارج تجويف البطن إلى الجانب الأيمن من الحيوانات من أجل فضح الوريد البابي.
  8. إدراج قنية التسريب من مجموعة إلى الوريد البابي. لهذه الخطوة ، فمن المستحسن استعمال stereomicroscope.
  9. بدء نضح من الكبد مع الحل SC1 30ml. فتح الوريد الأجوف السفلي مباشرة بعد بدء التدفق. يشار بيغ النجاح في الكبد عن طريق فقدان لون أنسجة الكبد.
  10. يروي الكبد مع 30ml Pronase حل E. على الهضم ناجحة ، سوف فصوص الكبد تضخم ، وسوف تظهر فصيصات متميزة من خلال الكبسولة.
  11. يروي الكبد مع 30ml كولاجيناز حل ف. فقد الكبد عند هذه النقطة يبدو شكله ونائي وغير متبلور.
  12. بعناية فصل الكبد من الحجاب الحاجز والأجهزة المحيطة بها وتخزينها في 70ml SC2 الحل على الجليد.
  13. كرر الإجراء بالنسبة للفئران إضافية.

2. في الهضم من كبد فأر المختبر

وينبغي تنفيذ جميع الخطوات الأخرى العاملة تحت ظروف معقمة في تدفق الصفحي هود.

  1. قطع الكبد إلى قطع ما يقرب من 3 2x2x2mm باستخدام مقص حاد.
  2. الجمع بين تعليق 70ml SC2 بما في ذلك قطع الكبد مع 50ml من محلول Pronase P - E كولاجيناز وإضافة 1ml من محلول أنا الدناز.
  3. هضم للكبد في 37 20min C مع التحريك درجة.

3. تنبيذ متدرج الكثافة

  1. تعليق تصفية خلية خلية من خلال مصافى 70μm في أنابيب فالكون 6 50ml وتضيف ما يصل الى 50ml مع SC2 العازلة. الطرد المركزي ل10min في 600G و 4 درجات مئوية.
  2. نضح بعناية 40ml من طاف ، ثم تضاف حل 150μl أنا الدناز لكل أنبوب وresuspend الخلايا.
  3. تجمع تعليق خلية في أنابيب فالكون 4 50ml وتغسل مع GBSS - B ، في الطرد المركزي ل10min 600G و 4 درجات مئوية.
  4. نضح بعناية أكبر قدر من طاف ممكن من دون إزعاج بيليه وإضافة 150μl أنا الدناز حل لكل أنبوب. Resuspend الكريات خلية في 10ML GBSS - B في الأنبوب.
  5. تجمع الخلايا في أنابيب فالكون 2 50ml وإضافة GBSS - B إلى إجمالي حجم 36ml في الأنبوب. إضافة 14ml Nycodenz حل لكل أنبوب وتخلط جيدا.
  6. نقل 10ML لتعليق خلية في واحدة 12ml التدرج أنبوب الطرد المركزي ، مما أدى في 10 أنابيب في المجموع. تراكب بلطف مع التعليق الخلية في أنبوب 1.5ml GBSS - B.
  7. أجهزة الطرد المركزي ل15min التدرجات في 1500g و 4 درجات مئوية دون فرامل. في وقت لاحق ، وسوف تكون مكعبات الكبد في الجزء السفلي من الأنبوب في حين تم العثور على الخلايا النجمية في الطور البيني باعتباره حلقة بيضاء.
  8. الحصاد بعناية الطور البيني الذي يحتوي على الخلايا النجمية ، ويغسل لهم GBSS - B ؛ ل10min الطرد المركزي في 600G و 4 درجات مئوية.
  9. نضح في وطاف resuspend الخلايا في DMEM 20ml تستكمل مع الحرارة المعطل FBS 10 ٪ ، 1 ٪ HEPES البنسلين / الستربتوميسين ، L - 2mm والجلوتامين ، البيروفات 1MM الصوديوم ، و10MM. نقل الخلايا في قوارير زراعة الأنسجة مع تركيز 2x10 4 خلية / سم 2. احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية و 5 ٪ CO 2.
  10. تغيير وسائل الإعلام في أقرب وقت الخلايا الكبدية النجمية هي ملتصقة (حوالي 2H بعد الإعداد) ليغسل خلايا ميتة والحطام الخلية.
  11. في اليوم التالي ، الخلية النجميةوينبغي ليالي تطوير قدراتها المميزة على شكل نجمة التشكل مع حويصلات فيتامين A - محيط بالنواة الدهون تخزينها.
  12. لتجارب لاحقة ، يمكن بسهولة الخلايا الكبدية النجمية يمكن فصل من السطوح البلاستيكية غير المغلفة باستخدام حلول الأنزيمية خفيفة مثل Accutase ، على سبيل المثال

4. ممثل النتائج :

بعد إعداد الخلايا الكبدية النجمية باستخدام بروتوكول المقدمة ، ويمكن اختبار نقاء السكان المعزولين النظر في ثلاث خصائص رئيسية من هذا نوع من الخلايا ، مثل النجوم التي تشبه شكل ، قطرات الدهون محيط بالنواة ، والتعبير عن بروتين الدبقية ييفي الحمضية (GFAP ). وصفت الصور ممثل لظهور سمات نجمي الخلايا الكبدية 2H بعد عزل الخلايا ، وكذلك في يوم 1 و 3 من الثقافة في المختبر في الشكل 1. الشكل 2 يبين تلطيخ ممثل المناعي للخلايا النجمية GFAP في الكبد ، والتي تم تربيتها لمدة 3 أيام بعد عزل الخلية. الخلايا النجمية في الخلايا الكبدية التفريق myofibroblastic في المختبر خلال الثقافة. ومن السمات المميزة لهذه الخاصية تنشيط الخلايا النجمية هو تعبير عن العضلات ألفا أكتين السلس (αSMA). الشكل 3 يبين تلطيخ المناعي للأسماء وIIA الميوسين في تنشيط الخلايا النجمية في يوم 7 من الثقافة في المختبر.

figure-protocol-1
الشكل 1. التشكل المميزة من الخلايا النجمية الكبدية. تم عزل الخلايا النجمية من كبد فأر باستخدام بروتوكول المقدمة. وتصور هذه المشاهد الخلايا النجمية 2H بعد عزل الخلية (أ ، ب) ، وكذلك في يوم 1 (ج) ويوم 3 (د) من الثقافة في المختبر. الخلايا النجمية الكبدية يحمل كميات كبيرة من الدهون في مواقع حويصلات محيط بالنواة واكتساب المتميزة مثل نجمي التشكل خلال الأيام الأولى من المختبر في الثقافة (التكبير 200X).

figure-protocol-2
الشكل 2. الخلايا النجمية الكبدية أعرب GFAP تحديدا في الكبد. وكانت الخلايا النجمية معزولة والملون لimmunofluorescently GFAP (الحمراء) في يوم 3 من الثقافة في المختبر. وصفت نواة خلية في الزرقاء (هويشت صمة عار).

figure-protocol-3
الشكل 3. خلايا الكبد النجمية تفرق في myofibroblasts. ومثقف الخلايا النجمية الكبدية المعزولة من الفئران C57BL / 6 لمدة 7 أيام. في وقت لاحق ، تم نقلهم إلى غرفة الشرائح والملون لأسماء (كما هو موضح باللون الأحمر) والميوسين IIA (كما هو مبين باللون الأخضر). وكانت نواة الخلية counterstained مع هويشت (الأزرق).

SC1 العازلة
EGTA 190mg
جلوكوز 900mg
HEPES 10 مل من محلول المخزون 1M
بوكل 400mg
غ 2 هبو 4 × 2 H 2 O 151mg
كلوريد الصوديوم 8G
ناه 2 ص 4 × H 2 O 78mg
NaHCO 3 350mg
الفينول الأحمر 6mg
DH 2 O ملء تصل إلى 1L
SC2 العازلة
CaCl 2 × 2H 2 O 560mg
HEPES 10ML من محلول المخزون 1M
بوكل 400mg
غ 2 هبو 4 × 2 H 2 O 151mg
كلوريد الصوديوم 8G
ناه 2 ص 4 × H 2 O 78mg
NaHCO 3 350mg
الفينول الأحمر 6mg
DH 2 O ملء تصل إلى 1L
GBSS - A العازلة
بوكل 370mg
CaCl 2 × 2H 2 O 225mg
جلوكوز 991mg
KH 2 PO 4 30mg
MgCl 2 × 6 H 2 O 210mg
MgSO 4 × 7 H 2 O 70mg
غ 2 هبو 4 × 2 H 2 O 75mg
NaHCO 3 227mg
الفينول الأحمر 6mg
DH 2 O ملء تصل إلى 1L
GBSS - B العازلة
CaCl 2 × 2H 2 O 225mg
جلوكوز 991mg
بوكل 370mg
KH 2 PO 4 30mg
MgCl 2 × 6 H 2 O 210mg
MgSO 4 × 7 H 2 O 70mg
غ 2 هبو 4 × 2 H 2 O 75mg
كلوريد الصوديوم 8G
NaHCO 3 227mg
الفينول الأحمر 6mg
DH 2 O ملء تصل إلى 1L
Pronase الحل E الإرواء
Pronase E 100mg (4000 PU / دقيقة ملغ)
SC2 العازلة 200ml
كولاجيناز الحل ف الإرواء
ف كولاجيناز 85mg (1.78 U / ليو ملغ)
SC2 العازلة 200ml
Pronase الحل P - E كولاجيناز
Pronase E 50mg (4000 PU / دقيقة ملغ)
ف كولاجيناز 85mg (1.78 U / ليو ملغ)
SC2 العازلة 50ml
الدناز أنا الحل
أنا الدناز 6mg (2000U/mg كاليفورنيا.)
GBSS - B 3ml
Nycodenz الحل
Nycodenz 8G
GBSS - A 28ml

الجدول 1. مخازن والحلول المطلوبة لانزيم عزل الخلايا النجمية الكبدية. ينبغي تعديل الرقم الهيدروجيني للجميع المخازن المؤقتة إلى 7،3-7،4. وعلاوة على ذلك ، فمن المستحسن الترشيح معقمة من جميع المخازن. فمن المهم للتكيف مع كمية الانزيم المستعملة وفقا لنشاط الأنزيمي معين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الخلايا النجمية الكبدية تنظيم العمليات الأساسية الفسيولوجية والمرضية في جسم المريض في الكبد. علاوة على ذلك ، تمتلك خصائص الخلايا النجمية تقديم المستضد ، جعلها عنصرا هاما من عناصر الاستجابة الكبد المناعي. على الرغم من أن الخلايا الكبدية النجمية تشكل 10-15 ٪ من إجمالي عدد الخلايا في الكبد ، وعزل هذه الخلايا تشكل تحديا بسبب التعريب في الفضاء perisinusoidal من Disse.

نقدم هنا طريقة واضحة لعزل الخلايا الكبدية النجمية ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل على جائزة عائلة سميث للتميز في مجال الأبحاث الطبية الحيوية والمعاهد الوطنية للصحة RO1 AI083426 - 01 (مهاجم). معتمدة باتريك Maschmeyer وفلاتش بواسطة ميلاني زمالات الدكتوراه من مؤسسة بورنغير إنغلهايم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
اسم الكاشف شركة رقم الكتالوج
70μm خلية مصفاة دينار بحريني 352350
CaCL 2 × 2H 2 O سيغما الدريخ C3306
ف كولاجيناز روش 11249002001
DMEM Gibco 11960
أنا الدناز روش 10104159001
DPBS Cellgro 21-031 - CV
EGTA Fluka 3777
المصل البقري الجنين Gibco 16000
جلوكوز سيغما الدريخ G7528
أنابيب الطرد المركزي الانحدار غرينر بيو واحد 163160
HEPES Gibco 15630
بوكل سيغما الدريخ P9541
KH 2 PO 4 سيغما الدريخ P9791
L - الجلوتامين Gibco 25030
MgCl 2 × 6H 2 O Fluka 63068
MgSO 4 × 7H 2 O سيغما الدريخ M2773
غ 2 هبو 4 × 2H 2 O Fluka 71643
كلوريد الصوديوم سيغما الدريخ S3014
ناه 2 ص 4 × H 2 O Fluka 71507
NaHCO 3 Fluka 71628
Nycodenz Accudenz AG AN7050/BLK
البنسلين / الستربتوميسين Gibco 15140
مضخة تمعجية كول Parmer HV - 7523-70
الفينول الأحمر سيغما الدريخ P4633
Pronase E Calbiochem 7433-2
سيليكون الخراطيم Masterflex HV - 96440-14
الصوديوم البيروفات Gibco 11360
نسيج قارورة الثقافة (25cm 2) دينار بحريني 353108
المجنح تسريب مجموعة Terumo 1SV27EL

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Friedman, S. L. Hepatic stellate cells: protean, multifunctional, and enigmatic cells of the liver. Physiol Rev. 88, 125-172 (2008).
  2. Geerts, A. H. istory heterogeneity, developmental biology, and functions of quiescent hepatic stellate cells. Semin Liver Dis. 21, 311-335 (2001).
  3. Gressner, A. M. &, Weiskirchen, R. Modern pathogenetic concepts of liver fibrosis suggest stellate cells and TGF-beta as major players and therapeutic targets. J Cell Mol Med. 10, 76-99 (2006).
  4. Reynaert, H., Thompson, M. G., Thomas, T., Geerts, A. Hepatic stellate cells: role in microcirculation and pathophysiology of portal hypertension. Gut. 50, 571-581 (2002).
  5. Winau, F. Ito cells are liver-resident antigen-presenting cells for activating T cell responses. Immunity. 26, 117-129 (2007).
  6. Minicis, S. D. e Gene expression profiles during hepatic stellate cell activation in culture and in vivo. Gastroenterology. 132, 1937-1946 (2007).
  7. Knittel, T. Localization of liver myofibroblasts and hepatic stellate cells in normal and diseased rat livers: distinct roles of (myo-)fibroblast subpopulations in hepatic tissue repair. Histochem Cell Biol. 112, 387-401 (1999).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

GFAP

مقالات ذات صلة