يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

السلف المستمدة من نظام الثقافة دبقية قليلة التغصن من دماغ الجنين البشري

14.3K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/4274

⸱

ديسمبر 20, 2012

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Molecular Medicine and Neuroscience, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health, 2Laboratory of Neurophysiology, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health

في هذه المقالة

ملخص

الأولية، والإنسان الجنين الدماغ المستمدة، تتكاثر الخلايا الاصلية multipotential في المختبر مع الحفاظ على القدرة على التمايز إلى خلايا عصبية والخلايا النجمية. هذا العمل يدل على أن يمكن أن يتسبب الأسلاف العصبية للتميز من خلال مراحل النسب oligodendrocytic من تكييف عوامل النمو مختارة.

الملخص

التفريق بين الأسلاف العصبية الإنسان في أنواع الخلايا العصبية والدبقية تقدم نموذجا للدراسة والمقارنة بينها تنظيم الخلية العصبية الجزيئية للتنمية النسب. في توسيع المختبر من الأسلاف العصبية من الأنسجة الجنينية CNS اتسمت أيضا. على الرغم من تحديد وعزل الأسلاف الدبقية من الكبار المسألة الفرعية القشرية الإنسان الأبيض وتطور الأوضاع المختلفة لثقافة التمييز المباشر من الأسلاف العصبية الجنينية في إنتاج oligodendrocytes قد المايلين، والحصول على oligodendrocytes قد البشرية الكافية لفي المختبر التجريب لا يزال صعبا. التفريق بين غالاكتوسيريبروزيد + (GalC) وO4 + تم الإبلاغ عن السلائف دبقية قليلة التغصن أو الخلايا الاصلية (OPC) من الخلايا العصبية باستخدام السلائف 2 الثلث الدماغ الجنين. ومع ذلك، فإن هذه الخلايا لا تتكاثر في غياب الخلايا النجمية بما في ذلك دعم والخلايا العصبية، وسرعان ما فقدت مع مرور الوقت في الثقافة. لا تزال الحاجة لنظام الثقافة لإنتاج خلايا دبقية قليلة التغصن من سلالة مناسبة لفي التجريب المختبر.

يمكن أن ثقافة الإنسان oligodendrocytes قد الابتدائي، على سبيل المثال، تكون نموذجا مفيدا لدراسة العوامل المعدية التسبب في الموجهات العصبية مثل الفيروسة التورامية الإنسان، JCV، في الجسم الحي أن يصيب تلك الخلايا. يمكن لهذه الخلايا المستزرعة توفر أيضا نماذج من الأمراض الأخرى المزيل من الجهاز العصبي المركزي (CNS). الأولية، والجنين البشري الدماغ المستمدة، multipotential تتكاثر الخلايا الاصلية العصبية في المختبر مع الحفاظ على القدرة على التمايز إلى خلايا عصبية (عصبونات السلف المستمدة، PDN) والخلايا النجمية (المشتقة من الخلايا النجمية السلف، PDA) تظهر هذه الدراسة أن يمكن أن يتسبب الأسلاف العصبية للتميز من خلال العديد من مراحل التنمية النسب oligodendrocytic (السلف المستمدة من oligodendrocytes قد، PDO). نحن الخلايا العصبية الثقافة السلف في وسائل الإعلام المصل خالية DMEM-F12 سوبplemented مع عامل نمو الخلايا الليفية الأساسية (bFGF)، الصفائح الدموية المستمدة عامل النمو (PDGF-AA)، القنفذ الصوتي (SHH)، وعامل التغذية العصبية 3 (NT-3)، N-2 و triiodothyronine (T3). وpassaged في الخلايا المستزرعة في خلايا 2.5e6 في قوارير 75CM تقريبا كل سبعة أيام. باستخدام هذه الشروط، فإن غالبية الخلايا في الثقافة حفاظ على مورفولوجيا تتميز بعض العمليات وعلامات صريحة من قبل خلايا دبقية قليلة التغصن، مثل A2B5 وO-4. عندما كنا إزالة عوامل النمو الأربعة (GF) (bFGF، PDGF-AA، SHH، NT-3) وإضافة وسائط مكيفة من PDN، تبدأ الخلايا للحصول على مزيد من العمليات وعلامات صريحة محددة من التمايز دبقية قليلة التغصن، مثل GalC والمايلين الأساسية البروتين (MBP). أجرينا توصيف المظهري باستخدام متعدد الألوان التدفق الخلوي لتحديد علامات فريدة من دبقية قليلة التغصن.

البروتوكول

ملاحظة: للحصول على زراعة الروتيني للسلف العصبية والخلايا النسب oligodendrocytic، ويتم حضانة في 37 ° C في مرطب الجو 2 5٪ CO. كل يوم 2، يتم استبدال المتوسطة باستخدام 50 إلى 100٪ من متوسط ​​جديدة اذا الثقافة هي متموجة 40-70٪. في وقت confluency القريب، وpassaged الثقافات في قارورة 2-2.5e6/T75 عادة على الجدول الأسبوعي.

1. إعداد قارورة المغلفة

  1. لإعداد قوارير المغلفة تمييع 5 ملغ من بولي-D-يسين (PDL) في 100 مل من الماء منزوع الأيونات (DI-الماء)، ثم معطف T75 القوارير مع 50 ميكروغرام / مل من PDL في درجة حرارة الغرفة (RT) في الظلام. بعد ساعة ½ 1، نضح في PDL وشطف القوارير مرة واحدة مع DI-الماء. السماح للقوارير جافة قبل البذر الخلايا (الجدول 1).

2. بدء تمايز الخلايا العصبية في السلف السلف oligodendrocytes قد المشتقة (PDO)

بروتوكول لهوolate الإنسان الخلايا الاصلية CNS الموضح في نشرة سابقة وأنها ليست جزءا من هذا البروتوكول 1. تم عزل الخلايا الاولية CNS الإنسان من الدماغ الانتهائي من الدماغ الحمل لمدة 8 أسابيع الجنين، تم الحصول عليها في المعاهد الوطنية للصحة فقا للمبادئ التوجيهية.

  1. ينمو السكان multipotential من الخلايا الاصلية العصبية على قوارير مغلفة في PDL المتوسطة neurobasal تستكمل مع 25 نانوغرام / مل من bFGF و 20 نانوغرام / مل عامل نمو البشرة (EGF) (الشكل 1A). لا تستخدم إذا كان لهم أعلى من مرور 11 (P11).
  2. تبدأ في التفريق بين الخلايا العصبية عند السلف ثقافة ما يقرب من 70٪ متموجة.
  3. جعل كاملة التمايز المتوسطة باستخدام المصل دبقية قليلة التغصن خالية DMEM / HAMS المتوسطة 1:01 F12 تستكمل مع مصل الألبومين البقري، الجلوتامين L-، جنتاميسين، مكونات N2، T3، SHH، NT-3، bFGF، وPDGF-AA (الجدول 1) . وسيتم تحديد هذه الوسيلة كوسط بنسبة ضئيلة مع عوامل النمو (بنسبة ضئيلة المتوسطة + GF).
  4. إزالة PROGENوسائل الإعلام itor من قوارير، وشطف الخلايا مرة واحدة مع الفوسفات مخزنة المالحة (PBS)، ثم يضاف بنسبة ضئيلة المتوسطة + GF (التفاصيل الواردة في 2.3) لبدء التمايز دبقية قليلة التغصن. والخلايا فقط ملتزمة نسب النمو oligodendrocytic (1B الشكل). ثقافة الخلايا في هذه الوسيلة لمدة 3 أسابيع.
  5. كل أسبوع، عندما الخلايا في مرور 90-95٪، التقاء لهم باستخدام التربسين (0.05٪)-EDTA (0.1٪) (4 مل لقارورة T75). نقل متوسطة بالكامل من الخلايا المراد passaged في أنبوب 50 مل المخروطية، وسيتم استخدام هذه الوسيلة مكيفة لارواء التربسين. تأكد من عدم تجفيف الخلايا. ثم يضاف التربسين.
  6. احتضان الخلايا في التربسين لمدة 5 دقائق في RT، والتنصت بلطف القارورة عدة مرات للمساعدة في مفرزة الخلية.
  7. إخماد التربسين بإضافة مل 4-5 من متوسطة إلى تكييف القارورة مع خلايا منفصلة.
  8. نقل متوسطة وخلايا في أنبوب 50 مل المخروطية نفسها. أجهزة الطرد المركزي على المديين المتوسط ​​وخلايا في 1200 دورة في الدقيقة (~300 XG) لمدة 5 دقائق في RT.
  9. نضح طاف، وإعادة تعليق بيليه الخلية، بلطف ترجيح الأنبوب، ثم قم بإضافة جديدة بنسبة ضئيلة المتوسطة + GF. بلطف ماصة المتوسطة وخلايا صعودا ونزولا لجعل التعليق خلية موحدة.
  10. عد الخلايا، ونقل 2.5e6 في كل قارورة T75 الجديدة PDL المغلفة.

3. الخطوة النهائية في التفريق بين oligodendrocytes قد

  1. بعد 3 أسابيع من الثقافة في المتوسط ​​بنسبة ضئيلة + GF، عندما الخلايا في التقاء 70-80٪، وبدء عملية التمايز النهائي (الشكل 1C).
  2. إعداد المتوسطة بنفس الطريقة باعتبارها وسيلة بنسبة ضئيلة + GF ولكن دون إضافة GF الأربعة: SHH، NT-3، وbFGF PDGF AA-. وسيتم تحديد هذه الوسيلة دون GF الأربعة المتوسطة بنسبة ضئيلة - GF.
  3. نضح المتوسطة بنسبة ضئيلة + GF من القارورة، وشطف مرة واحدة مع برنامج تلفزيوني ثم قم بإضافة وحدة تخزين ما مجموعه 16 مل من المتوسط، والتي ¾ (12 مل) بنسبة ضئيلة هي المتوسطة - GF و¼ (4 مل) هو PDN المتوسطة مكيفة، ل 6-10 يوما). استخدام تكييف الهواء والمتوسطة من PDN ليست حرجة لعملية التمايز أو لبقاء الخلايا. ونحن في الحقيقة لاحظت أن الاتصال المباشر الوحيد من شركة تنمية نفط عمان مع خلايا PDN في المشاركة في التجارب ثقافة كان لها تأثير على طول بقاء شركة تنمية نفط عمان. ويمكن تمديد GF إلى أسبوعين أو ثلاثة أسابيع إذا هي الخلايا شركة تنمية نفط عمان شارك في تربيتها مع خلايا PDN - الوقت البقاء على قيد الحياة في المتوسط ​​بنسبة ضئيلة. يوصف بروتوكول للتمييز خلايا العصبية في PDN السلف في منشور السابقة وأنها ليست جزءا من هذا البروتوكول 1. انسحاب النمو عامل من نتائج ثقافة المتوسط ​​في الثقافة متباينة من الخلايا تدريجيا مع عمليات متعددة (1D الشكل).

4. تدفق الخلوي الفحص

الفحص التدفق الخلوي يقارن اقتناء علامات دبقية قليلة التغصن أثناء عملية التمايز في العلاقة مع تلك من سكانها الوالدين.

  1. استخدام برو العصبيةgenitors والسيطرة. شركة تنمية نفط عمان في خلايا البذور 2.5x10 6 خلايا في اثنين من قوارير T75 المغلفة مع البولي يسين GF-D في المتوسط ​​بنسبة ضئيلة +.
  2. وبعد أسبوع، مع استبدال المتوسطة المتوسطة بنسبة ضئيلة الطازجة + GF في قوارير وثقافة الرقابة لبقاء الخلية، في حين كان بنسبة ضئيلة قوارير أخرى متوسطة - GF.
  3. لفصل الخلايا في كل من شركة تنمية نفط عمان وسائل الإعلام استخدام 20 U / مل من التربسين وغراء لا. وذلك لأن لديها غراء ألطف تأثير على الخلايا خلال التفكك الحفاظ على التشكل الخلوية.
  4. إضافة 5 مل من محلول الملح المتوازن للايرل (EBSS) إلى قارورة غراء. ضع قارورة في C ° 37 لمدة 10 دقيقة أو حتى يذوب تماما غراء والحل يبدو واضحا. هذا هو الحل غراء يستخدم لفصل الخلايا.
  5. إضافة 0.5 مل من EBSS إلى قارورة ديوكسي ريبونيوكلياز (الدناز) I (الجدول 1). المزيج بلطف. إضافة 0.25 مل من هذا المحلول إلى قارورة من غراء المنحل. هذا المستحضر يحتوي على تركيز النهائي من غراء حوالي U / 20 مل و 00.005٪ الدناز.
  6. مكان غراء الحل (كما هو موضح أعلاه) على الخلايا واحتضان في C ° 37 ل15-30 دقيقة؛ رصد مفرزة من الخلايا باستخدام المجهر. وقف رد الفعل مع 5 مل من المتوسط ​​مع أو بدون GF وأجهزة الطرد المركزي في 1200 دورة في الدقيقة لمدة 7 دقائق.
  7. نقل الكريات خلية من كل من القوارير إلى قسمين أنابيب البولي بروبلين مختلفة 5 مل وغسلها مع المتوسطة الفسيولوجية الطبيعية (NPM: 145 مم كلوريد الصوديوم، 5 ملي بوكل، 1.8 ملي CaCl 2، ملي Hepes 10 و 10 ملي الجلوكوز) تستكمل مع 1 ملغ / مل الأبقار مصل الزلال (NPM + BSA).
  8. أداء سطح المناعية عند 4 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة باستخدام الأجسام المضادة الأولية المحددة ومعاير مناسب لO4، A2B5، GalC (الجدول 2).
  9. غسل الخلايا مع NPM + C BSA في ° 4 لمدة 5 دقائق واحتضان مع الأجسام المضادة الثانوية لهم محددة في C ° 4 لمدة 20 دقيقة (الجدول 2).
  10. وصمة عار لمستضدات الخلايا بما في ذلك nestin، ييفي الحمضية الدبقية بروتين (GFAP)، ويكون من الدرجة الثالثةتا؛-تويولين، والبروتين المايلين الأساسية (MBP) (الجدول 2)، وإصلاح الخلايا في بارافورمالدهيد 2٪ (PFA) لمدة 20 دقيقة في RT وpermeabilize من البرد الإيثانول 70٪ لمدة 15 دقيقة في -20 ° C.
  11. غسل الخلايا مع 1X PBS واحتضان مع الأجسام المضادة الثانوية محددة (الجدول 2).
  12. على التمييز بين الخلايا السليمة والحطام التحت خلوية خلال تحليل التدفق الخلوي، وصمة عار مع خلايا 4،6-diamidino-phenyllindole-2، هيدروكلوريد (دابي) (لايف تكنولوجيز، وغراند ايلاند، نيويورك).
  13. في تحقيق الاستفادة المثلى من بروتوكول أعلاه، أجرينا كل التجارب المراقبة المناسبة لتأكيد خصوصية كل immunoreagent. لفترة وجيزة، عن الأجسام المضادة المسماة مباشرة، كان عنصر التحكم المناسب سلبية على الضد مترافق مباشرة للطبقة المناعي نمط إسوي نفس (أو فئة فرعية) والمكورات ملون تألقي والأجسام المضادة الأولية (أي سيطرة نمط إسوي). لالمناعية غير المباشرة من الأجسام المضادة الأولية، والتحكم المناسبة السلبية ثكما الأجسام المضادة الثانوية مترافق إلى ملون تألقي الفائدة التي تستهدف على وجه التحديد الطبقة الغلوبولين المناعي (أو فئة فرعية) من المضيف الذي تم إنشاء الأجسام المضادة الأولية. كنا عندما استخدمت الأجسام المضادة الأولية من المضيفين متعددة (الماوس، الأرنب، الدجاج) معا، والأجسام المضادة الثانوية استهداف الأجسام المضادة الأولية من كل مضيف والأجسام المضادة الثانوية تستخدم كل وعادة عبر كثف المناعية ضد من المضيفين الآخرين لتقليل عبر استضافة تفاعلية مناعية. تضمنت الضوابط الإيجابية المناعية مباشرة أو غير مباشرة من الخلية يعرف الاستعدادات للتعبير عن مستضدات ذات الاهتمام باستخدام إما مباشرة أو غير مباشرة immunoreactions مع الأجسام المضادة الأولية المحددة لهذه المستضدات. نفذت أساليب التحسين المذكورة أعلاه مرة واحدة لكل نوع من التجارب المناعية. كشفت immunoreactions التحكم لم كبيرة عبر حاتمة تفاعلية مناعية بين الأجسام المضادة الأولية والثانوية. تم إجراء التدفق الخلوي بشكل موحد علىعلقت الخلايا fluorescently المسمى باستخدام خلية SE FACVantage فارز (BD العلوم البيولوجية، سان خوسيه، كاليفورنيا) مجهزة مع ثلاثة أشعة الليزر، والتي توفر موجات الإثارة ضبطها إلى 488 نانومتر، 647 نانومتر، والأشعة فوق البنفسجية واسعة (351-364 نانومتر) (الشكل 2) .

5. الفحص المناعي

ملاحظة: للحصول على التجارب المناعي، ومطلي شركة تنمية نفط عمان في GF بنسبة ضئيلة أو متوسطة + المتوسطة بنسبة ضئيلة - GF في 2.5e5 في 6 لوحات مغلفة جيدا PDL. يتم إصلاح الخلايا في PFA 2٪ عند نقاط زمنية مختلفة بعد الانسحاب من عوامل النمو. يتم تنفيذ الأجسام المضادة وصمة عار على لوحات بلاستيكية 6 جيدا بدلا من coverslips الزجاج.

  1. إزالة وسائل الاعلام وإضافة PFA 2٪. احتضان لمدة 10 دقيقة في RT. تجاهل PFA. غسل الخلايا مع برنامج تلفزيوني 3 مرات، 5 دقائق في كل مرة. يجب الحرص على عدم تجفيف الخلايا.
  2. Permeabilize الخلايا داخل الخلايا باستخدام علامات ل0.25٪ تريتون في حل PBS لمدة 10 دقيقة في RT.
  3. لمنع غير محددة وملزمة الخلايا كتلة، وأو 10 دقيقة مع HHG (1 عازلة HEPES ملم، 2٪ من مصل الحصان، و 10٪ مصل الماعز في حل هانكس "الملح متوازن). تخفيف الأجسام المضادة الأولية محددة (الجدول 2) إلى تركيز محدد مسبقا في HHG. وضع الأجسام المضادة المخفف على الخلايا. 1 ساعة احتضان RT في على شاكر أو بين عشية وضحاها في 4 درجة مئوية.
  4. غسل الخلايا 3 مرات مع برنامج تلفزيوني، لمدة 5 دقائق في كل مرة. تخفيف الأجسام المضادة الثانوية المناسبة (الجدول 2) إلى جانب وجود ملون تألقي إلى تركيز محدد مسبقا في HHG. ضع مزيج من الأجسام المضادة الثانوية المخفف على الخلايا. 1 ساعة احتضان RT في على شاكر في الظلام.
  5. غسل الخلايا 3 مرات مع برنامج تلفزيوني، لمدة 5 دقائق في كل مرة.
  6. لتجنب photobleaching إضافة 10 ميكرولتر من إطالة الذهب مع دابي إلى الخلايا ووضع ساترة الزجاج على رأسها. تصور الخلايا المسماة باستخدام المجهر مضان Axiovert 200M (زايس، Thornwood، NY) (الشكل 3).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

من المهم جدا لبدء عملية التمايز من -80٪ 70٪ متموجة العصبية السلف زراعة الخلايا (الشكل 1A). سوف تنقرض العديد من الخلايا بعد تغيير ثقافة المتوسط ​​من السلف والمتوسطة بنسبة ضئيلة نظرا لأنه يتضمن عوامل نمو محددة. هذا يدل على أن لن نمو الخلايا العصبية السلف لم يرتكب إلى النمط الظاهري oligodendrocytic تكون معتمدة من قبل هذه الوسيلة الجديدة (1B الشكل). أدى الحضانة في المتوسط ​​بنسبة ضئيلة + GF لمدة أسبوع في الثقافة وسيطة واظهار الضيق التشكل الثنائي القطب...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

هذا البروتوكول يصف كيفية اشتقاق oligodendrocytes قد الجنين من المرحلة الابتدائية خلايا العصبية السلف وتميز النمط الظاهري وذلك باستخدام كل من التدفق الخلوي المناعي وتلطيخ. وقد تم توسيع ونمو الأسلاف العصبية من الجهاز العصبي المركزي الجنين بشكل جيد للغاية ووصف 1-4. ومع ذلك، الحصول على oligodendrocytes قد البشرية الكافية لإجراء التجارب في المختبر لا يزال من الصعب، على الرغم من أنه من الممكن لتحديد وعزل السلائف الدبقية من مادة بيضاء الكبار الإنسان 5-13. ك...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

وأيد هذا البحث من قبل برنامج بحوث ضمن الجدران في المعاهد الوطنية للصحة، NINDS. فإن الكتاب أود أن أشكر جميع أعضاء مختبر الطب الجزيئي وعلم الأعصاب، ريك درايفوس لمساعدة مع المجهري وباميلا النخل C. لمساعدة مع التحرير.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
اسم كاشف شركة كتالوج رقم تركيز النهائي
بورصة دبي للطاقة / HAMS F12 01:01 أوميغا عالم DM-251 1X
الأبقار الزلال سيجما A9418 1٪
جنتاميسين الجودة البيولوجية 120-098-031 50 ميكروغرام / مل
الجلوتامين L- الجودة البيولوجية 118-084-061 2 مم
T3 سيجما T2877 3 نانومتر
مكونات N2 Gibco BRL 17502 1:100
NT-3 شركة PeproTech 450-03 2 نانوغرام / مل
SHH R & D النظام 1314-SH/CF 2 نانوغرام / مل
bFGF شركة PeproTech 100-18B 20 نانوغرام / مل
PDGF-AA شركة PeproTech 100-13A 10 نانوغرام / مل
PDL سيجما P6407 50 ميكروغرام / م
PFA علوم المجهر الإلكتروني 15712 2٪
التربسين الجودة البيولوجية 118-087-721
غراء ورثينجتون LK003178 20 سنة FIFA / مل
الدناز قارورة ورثينجتون LK003172 0.005٪
EBSS ورثينجتون LK003188
إطالة الذهب
معدابي 		إينفيتروجن P36931

الجدول 1. الكواشف.

الرئيسية ABS (كل في 1 ميكروغرام / مل) الأنواع نمط إسوي مصدر الثانوية عبس
تدفق الخلوي
A2B5-البيوتين فأر الغلوبولين المناعي هدية J. نيلسون Streptavidin PETR، إينفيتروجن، CA
O4FITC فأر الغلوبولين المناعي هدية من نيلسون J.
A2B5 فأر الغلوبولين المناعي ميليبور، MA gαm الغلوبولين المناعي-FITC، إينفيتروجن، CA
O4 فأر الغلوبولين المناعي ميليبور، MA gαm الغلوبولين المناعي-FITC، إينفيتروجن، CA
GalC فأر مفتش 3 ميليبور، MA gαm مفتش 3-PE، جنوب الحيوية، AL
MBP دجاج IGY ميليبور، MA dαck IGY-AMCA، جاكسون اللقاحات.، PA
Nestin فأر مفتش 1 Messam وآخرون 2000 28 gαm مفتش 1-PECy5، إينفيتروجن، CA
GFAP أرنب مفتش الحكومة ميليبور، MA gαrb مفتش-PE، جاكسون اللقاحات، PA
βIII تويولين فأر مفتش 2 كوفانس، CA gαm مفتش 2 A-PETR، إينفيتروجن، CA
كيمياء سيتولوجية مناعية
βIII تويولين
(1:1،500) 		فأر مفتش 2A كوفانس، CA gαm مفتش 2A-FITC، إينفيتروجن، CA
(1:1،000)
GFAP
(1:1،000) 		أرنب مفتش الحكومة ميليبور، MA gαrb مفتش-FITC، جاكسون اللقاحات، PA
(1:500)
MBP
(1:50) 		دجاج IGY ميليبور، MA dαck IGY-FITC، جاكسون اللقاحات، PA
(1:100)
O4
(1:100) 		فأر الغلوبولين المناعي ميليبور، MA gαm الغلوبولين المناعي-AF546، إينفيتروجن، CA
(1: 100)
GalC
(1:10) 		أرنب مفتش الحكومة ميليبور، MA gαm الغلوبولين المناعي-AF750، إينفيتروجن، CA
(1:100)

الجدول 2 الأجسام المضادة (ABS) المستخدمة في التدفق الخلوي وفحوصات الأجسام المضادة كيمياء سيتولوجية مناعية تقارن: PE، فيكوإيريترين؛ PETR، فيكوإيريترين تكساس الأحمر؛ AMCA، ميثيل الأمينية الكومارين-خلات؛ قبرصي، cyanine؛ FITC، فلوريسئين ايزوثيوسيانيت صك الحكم:. المناعي. . AF: اليكسا فلور؛ gαm: الماعز المضادة للماوس؛ gαrb: الماعز المضادة للأرنب؛ dαck: حمار مكافحة الدجاج.

المراجع

  1. Messam, C. A., Hou, J., Gronostajski, R. M., Major, E. O. Lineage pathway of human brain progenitor cells identified by JC virus susceptibility. Ann. Neurol. 53, 636-646 (2003).
  2. Vescovi, A. L., Reynolds, B. A., Fraser, D. D., Weiss, S. bFGF regulates the proliferative fate of unipotent (neuronal) and bipotent (neuronal/astroglial) EGF-generated CNS progenitor cells. Neuron. 11, 951-966 (1993).
  3. Johe, K. K., Hazel, T. G., Muller, T., Dugich-Djordjevic, M. M., McKay, R. D. Single factors direct the differentiation of stem cells from the fetal and adult central nervous system. Genes Dev. 10, 3129-3140 (1996).
  4. McKay, R. Stem cells in the central nervous system. Science. 276, 66-71 (1997).
  5. Belachew, S., et al. Postnatal NG2 proteoglycan-expressing progenitor cells are intrinsically multipotent and generate functional neurons. J. Cell Biol. 161, 169-186 (2003).
  6. Almazan, G., McKay, R. An oligodendrocyte precursor cell line from rat optic nerve. Brain Res. 579, 234-245 (1992).
  7. Filipovic, R., Zecevic, N. Neuroprotective role of minocycline in co-cultures of human fetal neurons and microglia. Exp. Neurol. 211, 41-51 (2008).
  8. Goldman, S. A., Natesan, S. A niche-defying feat: induced oligoneogenesis in the adult dentate gyrus. Cell Stem Cell. 3, 125-126 (2008).
  9. Nunes, M. C., et al. Identification and isolation of multipotential neural progenitor cells from the subcortical white matter of the adult human brain. Nat. Med. 9, 439-447 (2003).
  10. Lyssiotis, C. A., et al. Inhibition of histone deacetylase activity induces developmental plasticity in oligodendrocyte precursor cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 14982-14987 (2007).
  11. Sim, F. J., Goldman, S. A. White matter progenitor cells reside in an oligodendrogenic niche. Ernst Schering Res. Found Workshop. , 61-81 (2005).
  12. Raff, M. C., Miller, R. H., Noble, M. A glial progenitor cell that develops in vitro into an astrocyte or an oligodendrocyte depending on culture medium. Nature. 303, 390-396 (1983).
  13. Windrem, M. S., et al. Progenitor cells derived from the adult human subcortical white matter disperse and differentiate as oligodendrocytes within demyelinated lesions of the rat brain. J. Neurosci. Res. 69, 966-975 (2002).
  14. Chen, Y., et al. Isolation and culture of rat and mouse oligodendrocyte precursor cells. Nat. Protoc. 2, 1044-1051 (2007).
  15. Armstrong, R. C. Isolation and characterization of immature oligodendrocyte lineage cells. Methods. 16, 282-292 (1998).
  16. Hu, B. Y., Du, Z. W., Li, X. J., Ayala, M., Zhang, S. C. Human oligodendrocytes from embryonic stem cells: conserved SHH signaling networks and divergent FGF effects. Development. 136, 1443-1452 (2009).
  17. Gard, A. L., Williams, W. C. 2nd, Burrell, M. R. Oligodendroblasts distinguished from O-2A glial progenitors by surface phenotype (O4+GalC-) and response to cytokines using signal transducer LIFR beta. Dev. Biol. 167, 596-608 (1995).
  18. Hu, B. Y., Du, Z. W., Zhang, S. C. Differentiation of human oligodendrocytes from pluripotent stem cells. Nat. Protoc. 4, 1614-1622 (2009).
  19. Reubinoff, B. E., et al. Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 19, 1134-1140 (2001).
  20. Pfeiffer, S. E., Warrington, A. E., Bansal, R. The oligodendrocyte and its many cellular processes. Trends Cell Biol. 3, 191-197 (1993).
  21. Zhang, S. C., Ge, B., Duncan, I. D. Tracing human oligodendroglial development in vitro. J. Neurosci. Res. 59, 421-429 (2000).
  22. Bradl, M., Lassmann, H. Oligodendrocytes: biology and pathology. Acta Neuropathol. 119, 37-53 (2010).
  23. Chong, S. Y., Chan, J. R. Tapping into the glial reservoir: cells committed to remaining uncommitted. J. Cell Biol. 188, 305-312 (2010).
  24. Jakovcevski, I., Filipovic, R., Mo, Z., Rakic, S., Zecevic, N. Oligodendrocyte development and the onset of myelination in the human fetal brain. Front Neuroanat. 3, 5(2009).
  25. Rao, R. C., Boyd, J., Padmanabhan, R., Chenoweth, J. G., McKay, R. D. Efficient serum-free derivation of oligodendrocyte precursors from neural stem cell-enriched cultures. Stem Cells. 27, 116-125 (2009).
  26. D'Intino, G., et al. Triiodothyronine administration ameliorates the demyelination/remyelination ratio in a non-human primate model of multiple sclerosis by correcting tissue hypothyroidism. J. Neuroendocrinol. 23, 778-790 (2011).
  27. Cui, Q. L., et al. Human fetal oligodendrocyte progenitor cells from different gestational stages exhibit substantially different potential to myelinate. Stem Cells Dev. , (2012).
  28. Messam, C. A., Hou, J., Major, E. O. Coexpression of nestin in neural and glial cells in the developing human CNS defined by a human-specific anti-nestin antibody. Exp. Neurol. 161, 585-596 (2000).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

السلف المستمدة من نظام الثقافة دبقية قليلة التغصن من دماغ الجنين البشري
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.