1-استنساخ متجهات التعبير والتحول سلالة إنتاج أوكسوتروفيك
هنا، تم مأخوذة من لاكتيس L. الجينات تخليق نيسين الحيوي، إلا وهي نيسابك، ونقلها إلى نواقل التعبير بلازميد المستندة إلى T7. يمكن الاطلاع على كامل تسلسل الحمض النووي من نيسابك في بنك الجينات دخول X6830734. قد وضعت في الجينات للسلائف الببتيد (النساء) على ناقل الحيوانات الأليفة-3a يمنح المقاومة الأمبيسلّين. وضعت الجينات ديهيدراتاسي (نسب) وسيكلاسي (كبيرة) على ناقل برسفدويت-1، كما تم الإبلاغ عنها سابقا35، الذي يمنح المقاومة كاناميسين.
ملاحظة: ل النساء، كانت تحور codons الأحماض الأمينية الأربعة الأخيرة (ASPR) في التسلسل زعيم لترميز VSLR36 لتجعل بقايا برولين في الببتيد أساسية فريدة من نوعها وضمان بريبيبتيدي السليم معالجة بواسطة نيسب. في N-المحطة، تمت إضافة علامة سداسي-الحامض الأميني الذي كان واقفاً إلى جانب بقايا رابط لأغراض تنقية (انظر الشكل 1).

الشكل 1 . التمثيل التخطيطي تخليق الحيوي و PTM نيسا في كولاي فضلا عن انشقاق الزعيم بالسلالة مؤشر لاكتيس L. في تحليل نشاط لاحقاً. في الخطوة الأولى، برينسين الخطي غير نشط (تتألف من زعيم ومنطقة ببتيد أساسية التي تحتوي على برولين فريدة من نوعها (الوردي) في الموضع 9) مرمزة بواسطة مشفر يتم تصنيعه نيسا . بعد ذلك، بوستترانسلاتيونالي يتم تعديل برينسين بجفاف بقايا سيرين وثريونين ديهيدروالانيني (Dha) وديهيدروبوتيريني (المجالس الصحية المحلية) كما حفزت بنسب. أشكال سيكلاسي كبيرة في ثيوثير الجسور عن طريق إضافة مايكل سيستين سلفهيدريل الجماعات مع إدارة الشؤون الإنسانية أو المجالس الصحية المحلية. برينيسين تم التعديل غير نشط هو تنقيته من كولاي واختبارها لنشاط مضادات الميكروبات. وهنا ينقل داخل خلية سلالة مؤشرات إيجابية لاكتيس لام . هو المشقوق الزعيم بحوزتي نسب (كما هو مبين برأس سهم) بالإفراج عن نيسين نشط بشكل كامل. كما يمكن إزالتها في المختبر بالمعاملة مع التربسين (*). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
- استخدام صدمة الحرارة القياسية البروتوكول37 أو انهانسر38 لتحويل برولين أوكسوتروفيك كولاي سلالة (انظر أعلاه) مع البلازميدات الحيوانات الأليفة-3a نيسا(VSLR) وبرسفدويت-1 نيسبك.
- "الماصة؛" 25-100 ميليلتر من تعليق خلية المحولة على أجار لوحات تتضمن الأمبيسلّين، كاناميسين، والجلوكوز 1% (w/v). استخدام الناشرة لوحة أو الخرز الزجاج لنشر الحل بشكل متساو على اللوحات.
- احتضان لوحات بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية.
- بعد ظهر اليوم التالي، استخدم مستعمرة واحدة لتطعيم متوسطة 10 مل رطل تتضمن الأمبيسلّين، كاناميسين، والجلوكوز 1% (w/v) في قارورة 50 مل.
- هزة الثقافة بين عشية وضحاها (12-16 ح) في 37 درجة مئوية و 200 لفة في الدقيقة.
- تأخذ 250 ميكروليتر معقمة 80% والغليسيرول والثقافة ميليلتر 550 ومزيج جيد في أنبوب 2 مل وتخزينها كمخزون الخلية مجمدة عند 80 درجة مئوية.
2-إعداد الحد الأدنى المتوسطة (نم) الجديدة
ملاحظة: يستخدم هذا البروتوكول نم20 كوسيلة محددة كيميائيا نمو بكتيرية سائلة. أيضا، فإنه ينصح باتباع ترتيب إعداد دقة. وبخلاف ذلك، يمكن أن يحدث هطول الأمطار. لأشكال من الأحماض الأمينية مختلفة عن تلك المذكورة في الجدول المواد (مثلاً، هيدروتشلوريديس)، والتحقق من قابلية الذوبان. NMM19 يحتوي على 19 الأحماض الأمينية فيما عدا الجهاز المركزي للمحاسبات لتحل محلها (هنا، برولين) ببث نكا. انظر الجدول 1 لتركيزات العنصر النهائي. اعتماداً على سلالة البكتيريا المستخدمة للإنتاج، البيوتين والثيامين قد تكون اختيارية.
- إعداد الخليط من الأحماض الأمينية
- حل ز 0.5 الفنيل ألانين، الحزب وصور في 100 مل ddH2س مع إضافة بضع قطرات من HCl تتركز حتى انحلال.
- تزن من 0.5 ز كل من الأحماض الأمينية 16 المتبقية. مزيج مع 22 مل من 1 م خ2ص4 و 48 مل من 1 م ك2مكتب البراءات الهنغاري4. إضافة ddH2س لمل ~ 800. يقلب حتى يصبح الحل واضح.
- إضافة المذاب الفنيل ألانين والراديكالي وصور وضبط مستوى الصوت حل ل 1 مع ddH2o.
- تعقيم الخليط من الأحماض الأمينية عن طريق الترشيح فراغ مع وحدة تصفية أعلى زجاجة.
- حلول الأسهم ل NMM19
- أولاً، إعداد 1 م الحلول المخزون من العناصر التالية: (NH4)2حتى4، خ2ص4، ك2مكتب البراءات الهنغاري4، مجسو4 ومن 5 م الأسهم الحل من كلوريد الصوديوم. تعقيم بالتعقيم.
- إعداد الأرصدة 50 مل د-الجلوكوز (1 م)، كاكل2 (1 غرام/لتر)، فيكل2 (1 غرام/لتر)، الثيامين (10 غرام/لتر)، البيوتين (10 غرام/لتر) والعناصر النزرة (CuSO4، الحركة2(NH4)2مو4، زنكل2؛ 1 مغ/لتر ). تعقيم كل منهما عن طريق الترشيح مع عامل تصفية المحاقن.
- إعداد NMM19
- تخلط جميع الحلول الأسهم للحصول على تركيز نهائي من 7.5 مم (NH4)2هكذا4مم 1.7 كلوريد الصوديوم، 22 مم خ2ص4، 50 مم ك2مكتب البراءات الهنغاري4، 1 مم MgSO4 وعيار 20 ملم د-الجلوكوز، والأحماض الأمينية 50 مغ/لتر مزيج، 1 ميكروغرام/لتر كاكل2, 1 ميكروغرام/لتر فيكل2، 10 ميكروغرام/لتر الثيامين، البيوتين 10 مغ/لتر والعناصر النزرة ميكروغرام/مل 0.01.
3-التعبير عن نيسين المؤتلف مع إدماج النظير برولين من SPI
في هذا القسم، التعبير المؤتلف من بريبيبتيدي (هنا: النساء) والجينات PTM (هنا: نيسبك) يتم تنفيذ. أولاً، الخلايا وتزرع في حضور الهيئة كافة، حيث يتم استخدام وسيلة معقدة رطل. يتم إضافة السكر لقمع التعبير الجيني الهدف على مستوى الخلفية، التي يمكن أن يؤدي إلا إلى إنتاج ببتيد البرية من نوع (هنا: نيسين) سبب يجتازها المروجين. فقط بعد الهدف الجهاز المركزي للمحاسبات (هنا: برولين) هو النضوب، إضافة نكا وهو فعل التعبير الجيني المستهدف في المتوسط محددة كيميائيا. ينبغي القيام بالحضانة للثقافات السائل في قوارير مناسبة مع تهوية (مثلاً 500 مل في قارورة Erlenmeyer ل 2 200 لفة في الدقيقة).
- ابدأ باستخدام تلميح ماصة معقمة، ثقافة جديدة بين عشية وضحاها من مخزون الخلايا المجمدة أو مستعمرة جديدة (راجع الخطوة 1). استخدام مل 25 رطل المتوسطة المحتوية على الأمبيسلّين، كاناميسين، والجلوكوز 1% (w/v) واحتضان بين عشية وضحاها (12-16 ح) عند 37 درجة مئوية و 200 لفة في الدقيقة.
- تطعيم 1 لتر متوسطة الطازجة عقيمة مع الثقافة بين عشية وضحاها 10 مل (1% v/v)، واحتضان في 37 درجة مئوية و 200 لفة في الدقيقة حتى OD600 = 0.5.
- أجهزة الطرد المركزي في 4 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة في 4,500 س ز.
- من أجل إيقاف المادة طافية وريسوسبيند بيليه مع 20 مل NMM19 (تم إعداده في الخطوة 2، 3) التي تحتوي على المضادات الحيوية والجلوكوز 1% (w/v). أجهزة الطرد المركزي في 4 درجة مئوية لمدة 10 دقائق في 4,500 س ز.
- ريسوسبيند بيليه الخلية في 500 مل الوسط نفسه واحتضان في 30 درجة مئوية و 200 لفة في الدقيقة ح 1.
ملاحظة: في هذه الخطوة، استنفاد الجهاز المركزي للمحاسبات (هنا، برولين) يأخذ مكان.
- تقسيم الثقافة إلى أجزاء متساوية (واحد لكل نكا). حمل كل ثقافة مع 1 مم الأيزوبروبيل β-د-1-ثيوجالاكتوبيرانوسيدي (إيبتج) والعرض 1 مم برولين النظير (4S/R-فلوروبروليني، 4S/R-برولين أو 4S/R-ميثانوبروليني).
ملاحظة: كمراقبة، يمكن توفيره ثقافة واحدة مع برولين 1 مم، أسفر عن إنتاج ببتيد البرية من نوع.
- تبني بين عشية وضحاها (12-16 ح) عند 28 درجة مئوية و 200 لفة في الدقيقة.
- الطرد المركزي الخلية الثقافات في أنابيب 50 مل عند 4 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة في غ. س 5,000 من أجل إيقاف المادة طافية وتخزين الكريات في-80 درجة مئوية حتى تنقية.
4-عزل وتنقية من النظير نيسين صاحب معلم
يتم تنقيتها الببتيدات تحت يشوه الظروف مع غوانيدين هيدروكلوريد (جوكل)39، قوية ديناتورانت.
تنبيه: جوهكل ضار إذا ابتلع أو استنشق ويسبب الجلد وتهيّج العين الخطيرة. ارتداء القفازات وحماية العين.
- تحضير 250 مل ملزمة المخزن المؤقت (5 م جوكل، 300 مم كلوريد الصوديوم، 25 مم تريس، ودرجة الحموضة 7.4) ويغسل المخزن المؤقت (300 ملم كلوريد الصوديوم، 25 مم تريس، ايميدازول 25 مم، الرقم الهيدروجيني 7.4) وشطف المخزن المؤقت (300 ملم كلوريد الصوديوم، 25 مم تريس، ايميدازول 250 مم، الرقم الهيدروجيني 7.4). لهؤلاء، نقل المواد الصلبة في زجاجة 250 مل وملء يصل إلى 200 مل مع مزيج O. ddH2جيدا وضبط ال pH إلى 7.4 مع 1 م هيدروكسيد الصوديوم أو HCl. ثم ملء يصل إلى 250 مل مع تصفية O. ddH2جميع الحلول المخزن المؤقت باستخدام وحدة تصفية أعلى زجاجة.
- تحلل الخلية
وهنا، يستخدم سونيكاتور (مع إخراج أقصى عالية التردد (HF) ث 200)؛ لاحظ أن إعدادات الطاقة اللازمة لتعطيل الخلية قد تختلف عن غيرها من الصكوك. يتم تنفيذ كافة الخطوات في الجليد. وبدلاً من ذلك، يمكن استخدام تحلل الخلية الكيميائية، الخالطون سائلة أو صحافة فرنسية.
- إضافة 12 مل ربط المخزن المؤقت لكل أنبوبة الطرد المركزي (من الخطوة 3، 8) وريسوسبيند فورتيكسينج.
- غمر غيض المسبار سونيكاتور في تعليق خلية. تعيين سونيكاتور في السعة 40% مع نبض 1 s على/5 s إيقاف لمدة 15 دقيقة.
ملاحظة: تنظيف تلميح سونيكاتور بين عينات لتجنب ترحيل. مسح المجس سونيكاتور مع الإيثانول 70%.
- الطرد المركزي وقف تفكيك خلية عند 4 درجة مئوية لمدة 40 دقيقة في 15,000 س ز بيليه خلية الحطام. نقل سوبيرناتانتس إلى أنبوب رد فعل جديد.
- التقارب اللوني
لايون معدني المعطل تداولها التقارب اللوني (ايماك)40، يمكن استخدام مضخة تمعجية أو نظام فبلك مع خرطوشة 1 مل (شغل هنا مع الراتنج ني-الإدارة الوطنية للسياحة). لإعداد المخازن المؤقتة، راجع الخطوة رقم 4، 1.
ملاحظة: من الممكن تنقية ايماك منذ الببتيد المؤتلف المنتجة يحمل ن شفاء صاحب معلم مسؤول، التي تتم إزالتها في الخطوة 6 من قبل زعيم peptidase نسب، الإفراج عن نيسين ناضجة. إجراء التنقية في درجة حرارة الغرفة أو في 4 درجات مئوية. استخدم معدل تدفق من 1 مل في الدقيقة الواحدة إذا أمكن لخرطوشة ايماك.
- أولاً، أغسل الخرطوشة مع العمود 5 مجلدات (cv) ddH2س لإزالة المخزن المؤقت لتخزين.
- حجته مع 10 السيرة الذاتية لربط المخزن المؤقت.
- عملية الخلية ليستي (الخطوة 4، 2) استخدام المحاقن تصفية لإزالة الجسيمات، ثم تنطبق على الخرطوشة.
- أغسل مع 15 السيرة الذاتية من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي من أجل إزالة المواد غير محدد وغير منضم.
- الوت مع 10 السيرة الذاتية للمخزن المؤقت شطف ومل 1 جمع الكسور في أنابيب 1.5 مل. تخزين الكسور في 4 درجات مئوية لمدة قصيرة (تصل إلى 3 أيام) أو عند-20 درجة مئوية لمدة أطول.
- للتخزين، وتغسل الخرطوشة مع 10 السيرة الذاتية ddH2س تليها 5 السيرة ذاتية إيثانول 20%.
5-LC-ESI-TOF التحليل الشامل والمطيافيه من النظير نيسين
ملاحظة: انظر مواد الجدول على سبيل المثال أجهزة قياس اللوني السائل مقرونا اليكتروسبراي التأين وقت الطيران الطيف الكتلي (LC-ESI-TOF-MS).
- تنفيذ فصل [هبلك] 15-20 ميليلتر الببتيد الحل (تم إعداده في الخطوة 4، 3) على عمود C5 بمرحلة متنقلة للمياه (A) والاسيتو الانيتريل (ب) على حد سواء وتستكمل مع حمض الفورميك 0.1% وتدرج من 5-80% ب ما يزيد على 20 دقيقة. الكتلي (مللي ثانية)، استخدام شطف بعد 5 دقائق.
ملاحظة: اعتماداً على محتوى الببتيد وتقارب للعمود [هبلك]، حجم العينة وفصل تحتاج التحسين.
- استخدام البرمجيات المناسبة ديكونفولوتي الأطياف الشامل قياس وحساب المسؤول ببتيد مختلفة عن الدول41. مقارنة كتلة الأنواع الببتيد الملاحظة إلى الكتلة البرية من نوع محسوب تم تعديلها من قبل هيئة الطيران المدني ← نكا الاستبدال. تأخذ في الاعتبار أن بريبيبتيدي الخطي بوستترانسلاتيونالي معدلة بواسطة ثمانية ديهيدريشنز (-8 ح2س)، وخمسة سيكليزيشنز (انظر الشكل 1).
ملاحظة: باستخدام المخازن المؤقتة التي تحتوي على الصوديوم، يمكن إظهار تحليل مرض التصلب العصبي المتعدد في وضع إيجابي adducts الصوديوم. هذه تصبح مرئية كقمم إضافية مع كتلة ديكونفولوتيد أعلى (لكل الصوديوم أدوكت، كتلة ديكونفولوتيد لوحظ أعلى 22.99 دا). لإزالة هذه أدوكتس، ويمكن أن يؤديها [هبلك] تنقية42 أو الغسيل الكلوي واسعة43 .
6-مضادات الميكروبات نشاط الاختبار
- إعداد لوحات أجار GM17 تحت ظروف معقمة
- إعداد ثقافة بين عشية وضحاها من الجلوكوز سلالة NZ9000 L. lactis يحمل بلازميد بابوا نيو غينيا نسبت44 في 30 درجة مئوية في مرق M1745 مع 1% (w/v) مؤشر (= GM17) و 5 ميكروغرام/مل الكلورامفينيكول.
- قياس القطر الخارجي600، وتطعيم متوسطة جديدة للتطوير التنظيمي600 = 0.1 واحتضان حتى OD600 = 0.4-0.6. ثم ضع قارورة على الجليد.
ملاحظة: سوف تستهلك كل قياس600 OD حجم الثقافة. ضع في اعتبارك أن لكل لوحة أجار المقايسة، ستكون هناك حاجة ثقافة البكتيرية 1 مل. إذا لزم الأمر، مقياس يصل حجم السائل الثقافة تبعاً لذلك.
- لاجار 1.5 ٪، تزن بها أجار ز 4.5 في زجاجة وسائل الإعلام زجاج. إضافة 300 مل ddH2س ومزيج اﻷوتوكﻻف.
- إعداد 2 مرق x M17 (two-times مركزة) في 300 مل ddH2س والاوتوكلاف.
- مزيج 25 مل مرق x M17 2 التي تحتوي على 10 ميكروغرام/مل الكلورامفينيكول والسكر 2% مع 1 مل لاكتيس ل. بريكولتوري (4% v/v).
- إضافة 25 مل المنصهر أجار 1.5% (طازجة يعقم أو ساخنة في فرن ميكروويف).
ملاحظة: قبل ذلك، السماح لتبرد زجاجة للمس (حوالي 50 درجة مئوية). وهذا ضروري نظراً لاكتيس لام كائن الوسطى حساسة لدرجات الحرارة المرتفعة.
- من أجل الحل في طبق بتري كبيرة. لوحات جافة لمدة 10-15 دقيقة.
- تعقيم ينتهي من الزجاج ماصة باستور باللهب. انتظر حتى تبرد، ثم استخدم في نهاية نطاق واسع لخلق ثقوب في طدت GM17-أجار.
- إعداد نموذج
- أخذ 1 مل ثقافات التعبير كولاي (تم إنشاؤه في الخطوة 3، 7) في أنبوب توسم 1.5 مل والطرد المركزي لمدة 3 دقائق في غ. س 7,000 Aspirate المتوسطة المتبقية وريسوسبيند بيليه الخلية في 500 ميليلتر نا ف (50 مم فوسفات الصوديوم العازلة ، درجة الحموضة 7.4 من فوسفات هيدروجين الصوديوم 0.5 م 0.5 م ثنائي فوسفات هيدروجين).
- Sonicate العينات على الجليد (الخطوة مقارنة 4-2-2). غمر غيض المسبار سونيكاتور في تعليق خلية. تعيين سونيكاتور في السعة 30% مع نبض 1 s s 5 وعلى إيقاف لمدة 3 دقائق.
- الطرد المركزي لمدة 10 دقيقة في 13,000 س ز بيليه الحطام الخلية الخلية. نقل المادة طافية إلى أنبوب رد فعل جديد على الجليد.
- تمييع وتطبيع supernatants استخراج الخلية إلى 1 مل OD600 = 0.6، بالنسبة إلى كثافة الخلية المقطوع، مع نا-ص
- اختبار النشاط
- إضافة 40 ميليلتر لكل عينة تم تسويتها في حفرة من لوحة أجار مؤشر (الشكل 3). استخدام الكلورامفينيكول في 400 ميكروغرام/مل كمضاد عنصر تحكم مركب. استخدام شطف المخزن المؤقت كعنصر سلبي. انتظر حتى هي موزع جميع العينات إلى أجار. احتضان لوحة بين عشية وضحاها في 30 درجة مئوية.
- التقاط صور لوحات أجار باستخدام الكاميرا الرقمية أو الماسح الضوئي المسطح. يمكن أن تكون أحجام هالة تثبيط النمو يقاس باليد أو باستخدام إيماجيج46.
7-الأسفار الفحص المجهري
من أجل مراقبة تأثير الامبير على الخلايا البكتيرية، يمكن استخدام مجهر الضوء والأسفار. علما أن وضع نيسين العمل يعتمد على زعزعة الاستقرار وتشكيل المسام في الأغشية البكتيرية6. هنا، يتم استخدام النيل الأحمر لوصمة عار غشاء الخلية البكتيرية، التي يصبح تحلل الخلية متناثرة ومجمعة على.
ملاحظة: انظر مواد الجدول الأجهزة على سبيل المثال. ويمكن تعديل المبالغ المضافة إلى حل أمبير اعتماداً على تركيز الببتيد وبيواكتيفيتي.
- إعداد الخلية
- إعداد 10 ملم النيل الأحمر حل الأسهم في ثنائي ميثيل سلفوكسيد ([دمس]).
- تنمو سلالة مؤشر لاكتيس L. OD600 = 1.0 كما هو الحال في الخطوة 6.1.1-6.1.2.
- الطرد المركزي 1 مل الثقافة لمدة 3 دقيقة في 4 درجات مئوية و 5,000 x ز.
- تجاهل المادة طافية، ريسوسبيند في 1 مل مخزنة الفوسفات المالحة (PBS)47.
- أجهزة الطرد المركزي وريسوسبيند مرة أخرى.
- إضافة 1 ميليلتر النيل الأحمر حل الأسهم، وتخلط بلطف.
- الحصول على الصور المجهرية
- إضافة 30 ميليلتر من إعداد الخلية على شريحة غطاء أثناء مثيرة في 520 نانومتر.
- تعيين اكتساب الوقت 0.2 s، السلسلة الحركية 0.1 هرتز، سلسلة طولها 200 الصور.
- أضف 0.3-1.5 ميليلتر من الخلية ليساتي أو عينة ايماك (من الدرجة 6.2.4 أو 4.3.5، على التوالي). للحصول على نماذج ايماك، يمكن استخدام شطف المخزن المؤقت كعنصر سلبي.
- رصد وتسجيل الانبعاثات fluorescence في λ ≥ 560 نانومتر.
- تحليل البيانات
- تسلسل صورة مجهرية يتم تخزينها كملفات الفيلم (.avi). ويتم تحليل الصور واحدة مع إيماجيج46.