مقالة منهجية

بروتوكول لتطوير نموذج قطع عظم الفخذ في فئران ويستار ألبينو

2.9K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/63712

⸱

أغسطس 31, 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Orthopedics, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 2Department of Biochemistry, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 3Department of Anaesthesiology Pain Medicine and Critical Care, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 4Department of Radiodiagnosis, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 5Department of Pathology, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 6Central Council for Research in Homoeopathy (CCRH)

في هذه المقالة

ملخص

هنا ، نقدم بروتوكولا لكسر عمود عظم الفخذ من فئران Wistar albino ومتابعة تطور الكالس. يمكن أن يساعد نموذج قطع عظم الفخذ هذا الباحثين في تقييم عملية التئام الكسور ودراسة كيفية تأثير الدواء على التئام الكسور.

الملخص

التئام الكسور هو عملية فسيولوجية تؤدي إلى تجديد عيوب العظام من خلال العمل المنسق لبانيات العظم والخلايا الآكلة للعظم. الأدوية الابتنائية العظمية لديها القدرة على زيادة إصلاح الكسور ولكن لها قيود مثل التكاليف المرتفعة أو الآثار الجانبية غير المرغوب فيها. يمكن تحديد إمكانات شفاء العظام للدواء في البداية من خلال الدراسات المختبرية ، ولكن هناك حاجة إلى دراسات في الجسم الحي للإثبات النهائي للمفهوم. كان هدفنا هو تطوير نموذج للقوارض العظمية لعظم الفخذ يمكن أن يساعد الباحثين على فهم تطور تكوين الكالس بعد كسر عمود عظم الفخذ ويمكن أن يساعد في تحديد ما إذا كان الدواء المحتمل له خصائص شفاء العظام. تم استخدام ذكور الفئران البيضاء Wistar albino البالغة بعد تصريح لجنة أخلاقيات الحيوان المؤسسية. تم تخدير القوارض ، وفي ظل ظروف معقمة ، تم إنشاء كسور عرضية كاملة في الثلث الأوسط من مهاوي عظم الفخذ باستخدام قطع العظم المفتوح. تم تقليل الكسور وإصلاحها داخليا باستخدام أسلاك K داخل النخاع ، وسمح بحدوث التئام الكسور الثانوية. بعد الجراحة ، تم إعطاء المسكنات داخل الصفاق والمضادات الحيوية لمدة 5 أيام. الأشعة السينية الأسبوعية المتسلسلة تقييم تشكيل الكالس. تم التضحية بالفئران بناء على نقاط زمنية محددة إشعاعيا مسبقا ، وتم تحليل تطور الكالس المكسور إشعاعيا وباستخدام الكيمياء المناعية.

المقدمة

العظم هو نسيج ضام كثيف يتكون من الخلايا المكونة للعظام ، وبانيات العظم ، والخلايا الممتصة للعظام ، ناقضات العظم. التئام الكسور هو عملية فسيولوجية تؤدي إلى تجديد عيوب العظام من خلال العمل المنسق لبانيات العظم والخلايا الآكلة للعظم1. عندما يكون هناك كسر ، فإن نشاط العظم العظمي والعظم العظمي في موقع الكسر هي بعض العوامل المهمة التي تحدد شفاء العظام2. عندما ينحرف التئام الكسر عن مساره الطبيعي ، فإنه يؤدي إلى تأخر الاتحاد أو سوء الاتحاد أو عدم الاتحاد. يقال إن الكسر يكون في حالة عدم الاتحاد عندما يكون هناك فشل في اتحاد الكسر لمدة 9 أشهر ، مع عدم وجود تقدم في الإصلاح في آخر 3 أشهر3. ما يقرب من 10٪ -15٪ من جميع الكسور تعاني من تأخير في الإصلاح قد يتطور إلى nonunion4. معدل عدم الاتحاد لجميع الكسور هو 5٪ -10٪ ويختلف باختلاف العظم المعني وموقع الكسر5.

يشتمل النظام الحالي لعلاج عدم اتحاد الكسور على طرائق جراحية و / أو طبية. في الوقت الحالي ، يمكن التغلب على الكسور المتأخرة أو غير المنتظمة عن طريق الاستراتيجيات الجراحية مثل تطعيم العظام. ومع ذلك ، فإن تطعيم العظام له حدوده ومضاعفاته مثل توافر أنسجة الكسب غير المشروع ، وألم موقع المتبرع ، والمراضة ، والعدوى6. يشمل العلاج الطبي أدوية الابتنائية العظمية مثل البروتين المورفولوجي العظمي (BMP) وتيريباراتيد (نظير هرمون البارات). عوامل الابتنائية العظمية المستخدمة حاليا لديها القدرة على زيادة إصلاح الكسور ولكن لها قيود مثل التكاليف الباهظة أو الآثار الجانبية غير المرغوب فيها7. وبالتالي ، هناك مجال لتحديد بدائل غير جراحية فعالة من حيث التكلفة لشفاء العظام. يمكن تحديد إمكانات شفاء العظام للدواء في البداية من خلال الدراسات المختبرية ، ولكن هناك حاجة إلى دراسات في الجسم الحي للإثبات النهائي للمفهوم. يجب تقييم الدواء المعروف بتعزيز التئام العظام في المختبر ، وإذا وجد واعدا ، يمكن استخدامه في دراسات النماذج الحيوانية في الجسم الحي . إذا أثبت الدواء أنه يعزز تكوين العظام وإعادة تشكيلها في النموذج الحي ، فيمكن أن ينتقل إلى المرحلة التالية (أي التجارب السريرية).

يعد تقييم التئام الكسور في الحيوانات خطوة منطقية إلى الأمام لتقييم عامل جديد تم تقديمه لشفاء العظام قبل أن يخضع لتجارب بشرية. بالنسبة لدراسات النموذج الحيواني في الجسم الحي لالتئام الكسور ، أصبحت القوارض نموذجاشائعا بشكل متزايد 8. ولدت نماذج القوارض اهتماما متزايدا بسبب انخفاض تكاليف التشغيل ، والحاجة المحدودة للمساحة ، والوقت الأقل اللازم لشفاء العظام9. بالإضافة إلى ذلك ، تحتوي القوارض على مجموعة واسعة من الأجسام المضادة والأهداف الجينية ، والتي تسمح بإجراء دراسات على الآليات الجزيئية لشفاء العظام وتجديدها10. سلط اجتماع توافقي الضوء بشكل شامل على العديد من نماذج شفاء عظام الحيوانات الصغيرة وركز على المعلمات المختلفة التي تؤثر على شفاء العظام ، بالإضافة إلى التأكيد على العديد من نماذج كسور الحيوانات الصغيرة والغرسات11.

يمكن تقسيم نماذج الكسر الأساسية على نطاق واسع إلى نماذج مفتوحة أو مغلقة. تستخدم نماذج الكسور المغلقة قوة ثني من ثلاث أو أربع نقاط على العظم ولا تتطلب نهجا جراحيا تقليديا. أنها تؤدي إلى كسور مائلة أو حلزونية ، تشبه كسور العظام الطويلة في البشر ، ولكن عدم توحيد موقع الكسر وأبعاده قد يكون بمثابة عامل مربك فيها12. تتطلب نماذج الكسور المفتوحة الوصول الجراحي لقطع العظم العظمي ، وتساعد على تحقيق نمط كسر أكثر اتساقا في موقع الكسر ، ولكنها ترتبط بتأخر الشفاء مقارنة بالنماذج المغلقة13. يبقى اختيار العظام المستخدمة لدراسة التئام الكسور بشكل أساسي الساق وعظم الفخذ نظرا لأبعادهما وإمكانية الوصول إليهما. عادة ما يكون اختيار موقع الكسر هو الحجاب الحاجز أو الميتافيزيس. يتم اختيار منطقة metaphyseal خصيصا في الحالات التي يتم فيها دراسة التئام الكسور في مواضيع هشاشة العظام ، حيث أن metaphysis أكثر تأثرا بهشاشة العظام14. يمكن استخدام العديد من الغرسات مثل المسامير داخل النخاع والمثبتات الخارجية لتثبيت الكسر11,15.

كان الهدف من هذه الدراسة هو تطوير نموذج بسيط وسهل المتابعة للقوارض يمكن أن يساعد الباحثين ليس فقط على فهم تطور الكالس بعد كسر عظم الفخذ ولكن يمكن أن يساعد في تحديد ما إذا كان الدواء المحتمل له خصائص شفاء العظام من خلال فهم الآلية التي يعمل بها.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء التجارب على الحيوانات بعد الحصول على الموافقة الأخلاقية من لجنة أخلاقيات الحيوان المؤسسية (IAEC) ، AIIMS ، نيودلهي ، الهند (286 / IAEC-1/2021).

1. إجراء ما قبل الجراحة

  1. منزل ذكور فئران Wistar albino من 6-8 أسابيع من العمر ، ويزن كل منها ما بين 150-200 غرام ، في مرفق الحيوانات المركزي (CAF) في أقفاص فردية منفصلة. هذا يضمن عدم وجود إصابة جراحية / كسر في الموقع عندما تشترك الفئران المتعددة في الأقفاص.
  2. حافظ على الفئران عند درجة حرارة 23 درجة مئوية ± 2 درجة مئوية في بيئة يتم التحكم فيها بالرطوبة مع رطوبة نسبية تبلغ 50٪ ± 5٪ ، وتعريضها لدورة مظلمة / خفيفة لمدة 12 ساعة ، وإعطاء ad libitum إمكانية الوصول إلى الطعام (النظام الغذائي شبه الاصطناعي القياسي): حمية بيليه (جافة) والماء. تكوين النظام الغذائي شبه الاصطناعي القياسي هو كما يلي: دقيق البنغال المحمص (60 ٪) ، دقيق القمح (22 ٪) ، الكازين (4 ٪) ، مسحوق الحليب الخالي من الدسم (5 ٪) ، الزيت المكرر (4 ٪) ، خليط الملح مع النشا (4.8 ٪) ، وخليط فيتامين الكولين مع النشا (0.2 ٪).
  3. تأقلم الفئران لمدة لا تقل عن 48 ساعة قبل الجراحة.
  4. قم بوزن كل فأر على ميزان رقمي ولاحظ الوزن.
  5. يتم تطبيق حقن سيفوروكسيم داخل الصفاق (100 ملغ/كغ من وزن الجسم)، ترامادول (25 ملغ/كغ من وزن الجسم)، ومزيج من الكيتامين (75 ملغ/كغ من وزن الجسم) مع زيلازين (10 ملغ/كغ من وزن الجسم) للفئران قبل 15 دقيقة من البدء بالعملية الجراحية. ضع مرهم العيون على كلتا العينين لمنع جفاف العين.
  6. قم بإزالة الشعر من الطرف السفلي الأيمن ، من منطقة الجناح حتى مفصل الركبة ، مع التطبيق الموضعي لكريم إزالة الشعر.
    ملاحظة: يمكن جمع الدم (0.5 مل) من الوريد الخلفي لكل فأر لتحليل خط الأساس لمعلمات مختلفة. يمكن جمع الدم مرة أخرى كل 2 أسابيع بعد الجراحة.

2. إجراء جراحي لإنشاء كسر عرضي كامل من خلال قطع العظم المفتوح

ملاحظة: استخدم غرفة عمليات مخصصة مزودة بطاولة عمليات ودرجة حرارة محيطة مثالية (26 درجة مئوية) لتنفيذ الإجراء.

  1. ضع كتلة الشمع (صينية ألومنيوم 30 سم × 30 سم × 4 سم تحتوي على شمع حتى عمق 2.5 سم) على طاولة العمليات وقم بتغطيتها بستائر معقمة. تمنع كتلة الشمع أي تغيير في وضع الحيوان أثناء الجراحة.
  2. تأكيد بداية التخدير (عن طريق التحقق من فقدان قرصة إصبع القدم). ضع الجرذ المخدر على ستارة معقمة في الوضع الجانبي الأيسر. اطلب من أحد المساعدين أن يمسك الطرف السفلي الأيمن (الركبة والورك) في التمديد. احتفظ بدعامة صلبة معقمة (كتلة رخامية) أسفل الساق اليمنى لدعم عظم الفخذ. تنظيف موقع الجراحة مع الكحول والبيتادين.
  3. حقن التخدير الموضعي (0.25 مل من 1٪ lignocaine) في موقع الشق (الجانب الجانبي من الفخذ الأيمن) ، وقطع ثقب في ثنى معقم آخر ، وفضح فقط الساق اليمنى للفأر من خلاله لإجراء عملية جراحية.
  4. قم بإحداث شق عمودي للجلد بطول 1 سم على الجانب الجانبي من الفخذ الأيمن ، وقم بتمديده حسب الحاجة بشفرة جراحية رقم 15.
  5. كشف العضلة الوعائية الجانبية عن طريق فصل اللفافة العميقة باستخدام مقص Metzenbaum. قم بتقسيم الأوعية الدموية الجانبية بما يتماشى مع ألياف العضلات باستخدام ملقط الشريان حتى يتم الوصول إلى عمود عظم الفخذ.
  6. حرر العظم من العضلات المرتبطة به باستخدام مصعد السمحاق.
  7. حقن التخدير الموضعي (0.2 مل من 1٪ lignocaine) في وحول السمحاق لمنع المنعكس الوعائي المبهمي.
  8. قم بإنشاء مسافة بادئة في الثلث الأوسط من عمود عظم الفخذ باستخدام الشفرة الجراحية رقم 15 ، وكسر العظم في الثلث الأوسط من العمود (كسر كامل) عن طريق وضع إزميل على المسافة البادئة (بحيث لا ينزلق الإزميل) والنقر برفق على الإزميل بمطرقة. استخدم الدعامة الصلبة المعقمة (كتلة رخامية) لدعم العظم أثناء كسره لضمان كسر نظيف.
    ملاحظة: عادة لا يسبب الدعم الصلب المعقم إصابة كبيرة للعضلات الموجودة تحته.
  9. قم بإصلاح الكسر داخليا باستخدام سلك K معقم (1.0 مم) يتم تثبيته بمساعدة مثقاب طاقة يعمل بالبطارية. مرر السلك K إلى القناة النخاعية للجزء البعيد عبر موقع الكسر. بعد ذلك ، قم بحفر سلك K من خلال الطرف البعيد لعظم الفخذ باستخدام مثقاب الطاقة الذي يعمل بالبطارية.
    ملاحظة: قم بتطهير سطح المثقاب الكهربائي بالكحول قبل الاستخدام. قم بتغيير القفازات بعد إصلاح سلك K.
  10. بعد تقليل الكسر ، قم بدفع سلك K من الطرف البعيد إلى قناة الجزء القريب حتى يحصل على الشراء في منطقة المدور. اقطع الجزء البعيد من سلك K البارز عبر الجلد باستخدام قاطع الأسلاك.
  11. ثني طرف السلك K إلى حوالي 90 درجة باستخدام كماشة واستخدم ضمادة شاش مبللة في البيتادين لتضميد موقع الدبوس. يعمل السلك K كجبيرة داخل النخاع للحفاظ على الكسر في وضع منخفض.
  12. تأكد من الإرقاء الكامل قبل إغلاق الجلد باستخدام خياطة نايلون 3-0. الضغط على منطقة النزيف باستخدام شاش معقم أو ملقط شرياني لوقف أي نزيف.
  13. تنظيف الجرح مع betadine ، وتغطيته بشاش معقم وشريط لاصق micropore.

3. رعاية ما بعد الجراحة

  1. أعد الفئران إلى أقفاصها ، واسمح بالتنقل الطبيعي ، واستمر في إعطاء نظام غذائي شبه اصطناعي قياسي حتى التضحية بها ، وكذلك المضادات الحيوية (حقن سيفوروكسيم 100 مجم / كجم) والمسكنات (حقن ترامادول 25 مجم / كجم / يوم في جرعتين مقسمتين) داخل الصفاق لمدة 5 أيام بعد العملية.
    ملاحظة: يمكن تقسيم الفئران إلى مجموعات علاج وتحكم لاختبار دواء معين. إذا كان الدواء قابلا للذوبان في الماء ، فيمكن إعطاؤه عن طريق الفم من خلال التزويج. يمكن ملاحظة وزن الحيوانات الفردية لحساب جرعة الدواء المراد استخدامها. يمكن اتباع معايير التضمين والاستبعاد لضمان تجانس المجموعات الحيوانية.
  2. ضع الحيوانات في أقفاص فردية في ظل ظروف مماثلة لفترة ما قبل الجراحة. افحص موقع الجراحة كل يوم للبحث عن أي علامات لألم ما بعد الجراحة أو عدوى الجرح أو انزلاق الغرز أو أي تورم أو إزعاج في البطن.
  3. تقييم التئام العظام عن طريق الأشعة السينية للموقع المكسور مرة واحدة أسبوعيا.

4. الإجراء الإشعاعي

  1. قبل الأشعة السينية، تخدير الفئران بحقنة الكيتامين داخل الصفاق (50 مغ/كغ من وزن الجسم) والزيلازين (5 مغ/كغ من وزن الجسم).
  2. حافظ على مفصل الورك للفأر في وضع مرن ومختطف بينما يتم الاحتفاظ بمفصل الركبة شبه مرن لأخذ الأشعة السينية للطرف المكسور مع إعدادات التعرض التالية: المرجع kVp ≈ 62 ؛ المرجع mAS = 6.4 ؛ وإعدادات التعرض التلقائي (المرجع. مللي أمبير = 160).
    ملاحظة: تم أخذ الأشعة السينية عند خط الأساس (1 يوم بعد الجراحة) ثم مرة واحدة أسبوعيا حتى التضحية أو 5 أسابيع.

5. القتل الرحيم للحيوانات واسترجاع الكالس

  1. التضحية بالفئران بجرعة زائدة من ثاني أكسيد الكربون (إدارة 100٪ CO2 بمعدل تدفق 7-8 لتر / دقيقة لمدة 1 دقيقة ، تليها فترة انتظار من 4-5 دقائق) ، في نقطتين زمنيتين محددتين مسبقا ، بناء على المظهر الإشعاعي للنسيج الناعم والصلب ، على التوالي.
  2. شق الجلد بالتوازي مع عظم الفخذ وافصل العضلات العلوية بعناية لتجنب تلف أنسجة الكالس.
  3. كسر العظم بين مفصل الورك وأنسجة الكالس باستخدام مطرقة وإزميل. وبالمثل ، كسر العظم بين الكالس ومفصل الركبة. قم بإزالة السلك K ونظف قطعة العظم في محلول ملحي لإزالة جلطات الدم والأنسجة الرخوة.
  4. انقل الكالس على الفور إلى حاوية تحمل علامة بها 10٪ فورمالين محايد (20 مل لكل عينة) واحتفظ به لمدة 3 أيام في درجة حرارة الغرفة (RT).

6. إزالة الكلس من العظام وأنسجة الكالس

  1. خذ نسيج الكالس من الفورمالين واحتفظ به في RT في محلول ETDA بنسبة 20٪ ، الرقم الهيدروجيني 7 ، لإزالة الكلس من الأنسجة العظمية.
  2. قم بتغيير محلول EDTA الطازج كل 2 أيام لمدة 3 أسابيع تقريبا ، وتحقق من إزالة الكلس العظمي عن طريق دس العظم بإبرة دون إزعاج أنسجة الكالس. يشار إلى إزالة الكلس المثلى بفقدان الإحساس الطبيعي بالرمل للأنسجة العظمية.
  3. بعد إزالة الكلس بالكامل ، قم بقطع القسم السهمي من الكالس وقم بإعداد كتل البارافين من أنسجة الكالس. قطع أقسام بسمك 4 ميكرومتر من أنسجة الكالس لعلم الأنسجة16 وأي تحليل مقارن آخر17.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

أجريت هذه الدراسة لتطوير نموذج قطع عظم الفخذ في فئران Wistar albino. يمكن استخدام هذا النموذج لتقييم التئام العظام ، وكذلك التأثير العظمي لدواء ابتنائي عظمي واعد في التئام العظام. تم اتباع الاحتياطات والبروتوكولات الجراحية القياسية. تم استخدام العباءات المعقمة والستائر والمعدات الجراحية لهذا الإجراء (الشكل 1). تم تعقيم المعدات (الجدول 1) قبل 48 ساعة من الجراحة. تم استخدام التخدير والمسكنات والمضادات الحيوية وفقا للبروتوكول لضمان إبقاء الحيوانات خالية من الألم والعدوى في جميع...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تصف هذه الطريقة بوضوح التفاصيل اللازمة لتطوير نموذج قطع العظم للكسر في فئران Wistar albino. يمكن استخدام هذا النموذج لتقييم التأثير العظمي لدواء ابتنائية عظمي واعد في التئام الكسور ، وكذلك فهم تعقيدات التئام العظام. الميزة البارزة لهذه الطريقة هي أنها بسيطة ولا تحتاج إلى الكثير من الوقت أو المعدات المتطورة. في هذه الطريقة ، تم اختيار ذكور الفئران البيضاء Wistar البالغة كنموذج للقوارض للتجارب. تم اختيار الجنس الموحد لإزالة أي عامل مربك على شفاء العظام المتعلق بالهرمونات الجنسية.

اتبعت هذه الدرا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى أي من المؤلفين أي تضارب في المصالح أو أي إفصاحات مالية أخرى.

شكر وتقدير

يود المؤلفون أن يشكروا المجلس المركزي للبحوث في المعالجة المثلية (CCRH) ، وزارة AYUSH ، حكومة الهند ، على تمويل البحوث. يعرب المؤلفون عن امتنانهم لمساعدة ودعم مرفق الحيوان المركزي ، AIIMS ، نيودلهي ، لمساعدتهم ودعمهم في التجارب على الحيوانات و CMET ، AIIMS ، نيودلهي ، لمساعدتهم ودعمهم في التصوير الفوتوغرافي والفيديو.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الكحولرامان & أمبير Weil Pvt. Ltd ، مومباي ، ماهاراشترا ، الهندMFG / MD / 2019 / 000189المطهر لليدين الستيريليوم
  ؛السديم الجراحي ، غوجارات ، الهندG.105.05S5 "، مقبض
مستقيم Bard-Parker السديم الجراحي ، غوجارات ، الهندG.103.03الحجم رقم 3
حل البيتادينWin-medicare نيودلهي ، الهندUP1425000000110٪ وزن / فول محلول اليود بوفيدون
ضام جلد مخلب القط   ؛السديم الجراحي ، غوجارات ، الهند908.Sمختبرات أبحاث
EDTASisco الصغيرة Pvt. المحدودة ، ماهاراشترا ، الهند43272ملح ثنائي الصوديوم
EosinSigma Aldrich ، Merck Life Sciences Pvt Ltd ، مومباي ، ماهاراشترا ، الهند115935لتحضير محلول التلوين   ؛
ملقط (عادي)السديم الجراحي ، غوجارات ، الهند115.066 "،
ملقط عادي (مسنن)السديم الجراحي ، غوجارات ، الهند117.066 "، مختبرات
الفورمالديهايدالمسننة سيسكو Pvt. المحدودة ، ماهاراشترا ، الهند84439لإعداد الفورمالين المحايد المخزن   ؛
HaematoxylinSigma Aldrich ، Merck Life Sciences Pvt Ltd ، مومباي ، ماهاراشترا ، الهند104302لتحضير محلول التلوين   ؛
سديم المطرقةالجراحية ، غوجارات ، الهند401.M
حقن سيفوروكسيمأكومنتيس للرعاية الصحية المحدودة ، ثين ، ماهاراشترا ، الهند48 / UA / SC / P-2013سيفوروكسيم الصوديوم IP ، 1.5 جم / قارورة   ؛
حقن الكيتامينباكستر المستحضرات الصيدلانية الهند الخاصة المحدودة ، غوجارات ، الهندG / 28-B / 6هيدروكلوريد الكيتامين IP ، 50 مجم / مل & nbsp ؛
حقن زيلازينالهندية المناعية المحدودة ، حيدر أباد ، تيلانجانا ، الهند28 / RR / AP / 2009 / F / Gزيلازين هيدروكلوريد USP ، 20 مجم / مل
حقن مختبرات ليجنوكائينجاكسون Pvt Limited ، البنجاب ، الهند & nbsp ؛1308-B2٪ ليجنوكائين هيدروكلوريد IP ، 21.3 مجم / مل
حقن ترامادول   ؛إنتاس للمستحضرات الصيدلانية المحدودة ، أحمد أباد ، غوجارات ، الهندMB / 07/500ترامادول هيدروكلوريد IP ، 50 مجم / مل
K-wire   ؛السديم الجراحي ، غوجارات ، الهند166 (1 مم)12 بوصة ،
مثقاب ميكانيكي مزدوج النهاية لإدخال K-wire& lrm ؛ Bosch, Germany 06019F70K4GSR 120-LI مقص قطع
Metzenbaum المهنية السديم الجراحي ، غوجارات ، الهندG.121.06S6 "، مستقيم
حامل إبرةالسديم الجراحي ، غوجارات ، الهندG.108.066 "، مرهم العيون المستقيم
  ؛GlaxoSmithKline Pharmaceutical Limited ، بنغالورو ، كارناتاكا ، الهندKTK / 28a / 467/2001نيومايسين ، كبريتات البولي ميكسين ب والباسيتراسين مرهم الزنك للعين USP
Osteotome (إزميل)السديم الجراجيكي ، غوجارات ، الهند1001.S.1010 مم ، مصعد السمحاق المستقيم
  ؛السديم الجراحي ، غوجارات ، الهند918.10.S10 مم ، كماشة مستقيمة
نائب الرئيس قاطع الأسلاكالسديم الجراحي ، غوجارات ، الهند604.65
رينولد s مقصالسديم الجراحي ، غوجارات ، الهندG.110.06S6 "، النظام
الغذائي شبه الاصطناعي القياسي المستقيم   ؛صناعات أشيرفاد ، شانديغار ، الهندلا يوجد رقم كتالوج متاحالتركيب التفصيلي المقدم في المواد المستخدمة
كوب فولاذي لحفظ البيتادين للتطبيقالشراء المحليلا يوجد رقم كتالوج متاح
صينية فولاذية مع غطاء لأدوات التعقيمالشراء المحليلا يوجد رقم كتالوج متاح
شاش معقمIdeal Healthcare Industries ، دلهي ، الهند & نب سب.E(0047)/14/MNB/7951معقم، 5 سم × 5 سم، 12 رقائق
كتلة رخامية معقمة لدعمالشراء المحليلا يوجد رقم كتالوج متاحمصنع محليا؛
حقنة وإبرة قابلة للتعقيم (1 مل) Becton Dickinson India Pvt. Ltd., Haryana, IndiaREF 3030601 مل حقنة معقمة مع 26 جم × 1/2 (0.45 مم × 13 مم)
حقنة وإبرة إبرة (2 مل)  Becton Dickinson India Pvt. Ltd. ، هاريانا ، الهندREF 307749مل حقنة معقمة مع 24 جم × 1 بوصة (0.55 مم × 25 مم)
حقنة وإبرة إبرة (10 مل)   ؛محاقن هندوستان & الأجهزة الطبية المحدودة فريد أباد, الهند 334-B (H)10 مل حقنة معقمة مع 21 جم × 1.5 بوصة (0.80 مم × 38 مم)
شفرات جراحية (مقاس رقم 15)باراماونت سورجيميد المحدودة ، نيودلهي ، الهند لشركة Medline Industries Inc ، IL ، الولايات المتحدة الأمريكيةالمرجعمعقمة تستخدم لمرة واحدة
(حجم رقم 24)Paramount Surgimed Ltd ، نيودلهي ، الهند لشركة Medline Industries Inc ، IL ، الولايات المتحدة الأمريكيةالمرجعمعقمة ،
الفردي Healthium Medtech Pvt Ltd ، بنغالور ، كارناتاكا ، الهندSN 33184-0 ، 16 مم ، 3/8 إبرة قطع دائرية ، خياطة أحادية الشعيرات البولي أميد   ؛
كتلة الشمع في صينية الألومنيوم  مصنع محليالا يوجد رقم كتالوج متاح30 سم × 30 سم × 4 سم صينية ألومنيوم تحتوي على شمع (لمنع من الانزلاق)
آلة الأشعةالسينية Philips India Ltd ، Gurugram ، هارياناSN19861013الموديل: Philips Digital Diagnost R 4.2 & nbsp ؛
ملقط الشريان أبحاث 2 MDS15115E شفرات جراحية MDS15124E خيوط الاستخدام

المراجع

  1. Wang, T., Zhang, X., Bikle, D. D. Osteogenic differentiation of periosteal cells during fracture healing. Journal of Cellular Physiology. 232 (5), 913-921 (2017).
  2. Fakhry, M., Hamade, E., Badran, B., Buchet, R., Magne, D. Molecular mechanisms of mesenchymal stem cell differentiation towards osteoblasts. World Journal of Stem Cells. 5 (4), 136-148 (2013).
  3. Bishop, J. A., Palanca, A. A., Bellino, M. J., Lowenberg, D. W. Assessment of compromised fracture healing. JAAOS - Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 20 (5), 273-282 (2012).
  4. Fong, K., et al. Predictors of nonunion and reoperation in patients with fractures of the tibia: an observational study. BMC Musculoskeletal Disorders. 14 (1), 103(2013).
  5. Ramoutar, D. N., Rodrigues, J., Quah, C., Boulton, C., Moran, C. G. Judet decortication and compression plate fixation of long bone nonunion: Is bone graft necessary. Injury. 42 (12), 1430-1434 (2011).
  6. Goulet, J. A., Senunas, L. E., DeSilva, G. L., Greenfield, M. L. V. H. Autogenous iliac crest bone graft: Complications and functional assessment. Clinical Orthopaedics and Related Research. 339, 76-81 (1997).
  7. Stevenson, M., et al. A systematic review and economic evaluation of alendronate, etidronate, risedronate, raloxifene and teriparatide for the prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. Health Technology Assessment. 9 (22), 1(2005).
  8. Haffner-Luntzer, M., Kovtun, A., Rapp, A. E., Ignatius, A. Mouse models in bone fracture healing research. Current Molecular Biology Reports. 2 (2), 101-111 (2016).
  9. Mills, L. A., Simpson, A. H. R. W. In vivo models of bone repair. The Journal of Bone and Joint Surgery. British Volume. 94 (7), 865-874 (2012).
  10. Houdebine, L. -M. Transgenic Animal Models in Biomedical Research. Target Discovery and Validation Reviews and Protocols: Volume 1, Emerging Strategies for Targets and Biomarker Discovery. Sioud, M. , Humana Press. Totowa, NJ. (2007).
  11. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: Standards, tips and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  12. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  13. Klein, M., et al. Comparison of healing process in open osteotomy model and open fracture model: delayed healing of osteotomies after intramedullary screw fixation. Journal of Orthopaedic Research. 33 (7), 971-978 (2015).
  14. Kolios, L., et al. Do estrogen and alendronate improve metaphyseal fracture healing when applied as osteoporosis prophylaxis. Calcified Tissue International. 86 (1), 23-32 (2010).
  15. Holstein, J. H., et al. Advances in the establishment of defined mouse models for the study of fracture healing and bone regeneration. Journal of Orthopaedic Trauma. 23, 5 Suppl 31-38 (2009).
  16. Umiatin, U., Dilogo, I. H., Sari, P., Wijaya, S. K. Histological analysis of bone callus in delayed union model fracture healing stimulated with pulsed electromagnetic fields (PEMF). Scientifica. 2021, 4791172(2021).
  17. Han, W., et al. The osteogenic potential of human bone callus. Scientific Reports. 6, 36330(2016).
  18. Haffner-Luntzer, M., et al. A novel mouse model to study fracture healing of the proximal femur. Journal of Orthopaedic Research. 38 (10), 2131-2138 (2020).
  19. Aurégan, J. C., et al. The rat model of femur fracture for bone and mineral research: An improved description of expected comminution, quantity of soft callus and incidence of complications. Bone & Joint Research. 2 (8), 149-154 (2013).
  20. Li, Z., Helms, J. A. Drill hole models to investigate bone repair. Methods in Molecular Biology. 2221, 193-204 (2021).
  21. Handool, K. O., et al. Optimization of a closed rat tibial fracture model. Journal of Experimental Orthopaedics. 5 (1), 13(2018).
  22. Kobata, S. I., et al. Prevention of bone infection after open fracture using a chitosan with ciprofloxacin implant in animal model. Acta Cirurgica Brasileira. 35 (8), 202000803(2020).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة