مقالة منهجية

التصور غير الجراحي لمورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة المسامير في الفئران باستخدام تنظير الشعيرات الدموية

DOI:

10.3791/67529

⸱

فبراير 28, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Ophthalmology and Visual Sciences, Vanderbilt Eye Institute, Vanderbilt University Medical Center, 2Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear, Harvard Medical School, 3Department of Anesthesia and Critical Pain Medicine, Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 4Department of Ophthalmology, Icahn School of Medicine at Mount Sinai

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تنظير الشعيرات الدموية هو أداة يمكن الوصول إليها للتصور المباشر وغير المكلف وغير الجراحي للأوعية الدموية الدقيقة. الهدف من هذا البروتوكول هو تمكين الباحثين من استخدام تنظير الشعيرات الدموية لتصور مورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية في أظافر الفئران.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

أكد تصوير شبكات الشعيرات الدموية الدقيقة للجلد لدى البشر باستخدام تنظير الشعيرات الدموية (NFC) على أهمية دوران الأوعية الدقيقة كنظام عضو مستهدف في الأمراض الجهازية الحرجة. يتم تطبيق تنظير الشعيرات الدموية سريريا للكشف عن الخلل الوظيفي والتشوهات في الأوعية الدموية الدقيقة الطرفية في مجموعة من الحالات الجهازية ، بما في ذلك اضطرابات الروماتيزم والقلب والعينية (مثل الجلوكوما) والغدد الصماء (على سبيل المثال ، ارتفاع ضغط الدم وداء السكري). NFC مفيد ليس فقط في الكشف عن اضطراب الأوعية الدموية الدقيقة الجهازية المحيطية ولكن أيضا في تقييم فعالية الدواء. ومع ذلك ، فإن ترجمة نتائج NFC السريرية إلى نماذج الأمراض الحيوانية قد يكون أمرا صعبا. غالبا ما يكون الكشف عن الخلل الوظيفي أو التشوهات في الأوعية الدموية الدقيقة في غازيا (على سبيل المثال ، بالمنظار) ، أو يتم إجراؤه خارج الجسم الحي (على سبيل المثال ، التصوير بعد الوفاة للأنسجة) ، أو مكلف ، ويتطلب معدات متخصصة مثل تلك المستخدمة في التصوير المقطعي الدقيق وتقنيات التصوير الضوئي الصوتي. هناك ما يبرر تطوير تقنيات سريعة وغير جراحية وغير مكلفة لتصوير الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية في النماذج الحيوانية للأمراض لتقليل نفقات البحث وزيادة قابلية الترجمة إلى العيادة.

تم استخدام تنظير الشعيرات الدموية سابقا لتصور الأوعية الدموية الدقيقة في النماذج الحيوانية ، بما في ذلك خنازير غينيا والفئران ، مما يدل على قدرة تنظير الشعيرات الدموية كأداة تصوير غير جراحية في النماذج الحيوانية. توفر هذه الدراسة بروتوكولا يطبق تنظير الشعيرات الدموية على فأر مسمر ، مما يسمح للباحثين بتقييم مورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة بسهولة وبتكلفة زهيدة. يتم توفير صور تمثيلية لبنية الأوعية الدموية الدقيقة النموذجية في الفئران البرية باستخدام سلالتين معمليتين شائعتين الاستخدام ، SV129 / S6 و C57 / B6J. تعد الدراسات الإضافية باستخدام هذه الطريقة ضرورية لتطبيق تنظير الشعيرات الدموية على مجموعة واسعة من نماذج أمراض الفئران مع تشوهات الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

سلط تصوير شبكات الشعيرات الدموية الدقيقة المحيطية في البشر باستخدام تنظير الشعيرات الدموية العصبية (NFC) الضوء على أهمية دوران الأوعية الدقيقة كنظام عضو مستهدف في مجموعة واسعة من الأمراض الجهازية1. يتضمن التنظير الشعري استخدام مجهر لتكبير وتصور الأوعية في طية الظفر في الجسم الحي. على هذا النحو ، فهي تقنية تستخدم على نطاق واسع في العيادة للكشف عن الخلل الوظيفي والتشوهات في الأوعية الدموية الدقيقة الطرفية في مجموعة من الحالات الجهازية ، بما في ذلك الروماتيزم2،3 ، والقلب4 ، والعينية (على سبيل المثال ، الجلوكوما) 5،6 ، وأمراض الغدد الصماء (على سبيل المثال ، ارتفاع ضغط الدم والسكري7،8). يتم اكتشاف التغيرات المورفولوجية في الشعيرات الدموية في أظافر ، بما في ذلك النزيف ، وزيادة التواء الأوعية الدموية ، والمناطق اللاوعائية ، بسهولة باستخدام NFC. تمثل هذه التشوهات المورفولوجية عمليات مرضية مثل إعادة تشكيل الأوعية الدموية الدقيقة المفرطة أو الناقصة9،10. NFC هي أداة تشخيصية مفيدة للكشف عن هذه الأمراض. بالإضافة إلى ذلك ، هذه التقنية مفيدة في تقييم فعالية الدواء11.

ومع ذلك ، فإن ترجمة نتائج NFC السريرية إلى نماذج حيوانية للمرض يمثل تحديا لأسباب عديدة. عادة ما يكون تصور الأوعية الدموية الدقيقة في غازيا (على سبيل المثال ، بالمنظار) ، ويتم إجراؤه خارج الجسم الحي (على سبيل المثال ، تصوير الأنسجة بعد الوفاة) ، أو مكلف ، ويتطلب معدات متخصصة مثل التصوير المقطعي المحوسب12،13 ، وتصوير الأوعية الدموية بالتصوير المقطعي المتماسك14 ، وتقنيات التصوير الضوئيالصوتي 15. نظرا لأن أمراض الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية واضحة في مجموعة واسعة من أمراض الجهاز العصبي الجهازي والمركزي ، بما في ذلك احتشاء عضلة القلب16 ، وارتفاع ضغطالدم 17 ، والانحطاط العصبي المرتبط بالعمر في الجهاز العصبي المركزي مثل مرض الزهايمر18 ، والاعتلالات العصبية البصرية مثل الجلوكوما19 ، فإن تقنية التصور غير الغازية والفعالة من حيث التكلفة في الجسم الحي مفيدة للغاية.

تم استخدام تنظير الشعيرات الدموية لتقييم الأوعية الدموية الدقيقة في النماذج الحيوانية ، بما في ذلك خنازير غينيا20 والفئران21 ، مما يدل على قدرته كأداة تصوير غير جراحية. هنا ، نقوم بتطبيق تنظير الشعيرات الدموية على جزء مختلف من الظفر ، المسمار. من خلال تسخير شفافية مسمار الفأر ، يقدم تنظير الشعيرات الدموية المسامير موقعا جديدا لتصور الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية. بالمقارنة مع NFC ، وهو مفيد بشكل خاص لمراقبة حركة خلايا الدم21،22 ، يوفر بروتوكول تنظير الشعيرات الدموية المصغر الموصوف هنا مساحة أكبر لمراقبة أفضل لمورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة وهيكلها. نحن نقدم بروتوكولا يسمح للباحثين بتقييم مورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة ذات المسمار بالفئران بسهولة وبتكلفة زهيدة ، وهو موقع جديد لتصوير الأوعية الدموية المحيطية غير الغازية. يوفر هذا البروتوكول صورا تمثيلية لبنية الأوعية الدموية الدقيقة النموذجية في الفئران البرية باستخدام سلالتين معمليتين شائعتين الاستخدام (SV129 / S6 و C57 / B6J). نظهر أن تنظير الشعيرات الدموية المسمورة هو طريقة تصوير الأوعية الدموية الدقيقة غير المكلفة وغير الغازية. ستكون الدراسات الإضافية باستخدام هذه الطريقة الاستكشافية ضرورية لتطبيق تنظير الشعيرات الدموية على مجموعة واسعة من نماذج الفئران للأمراض حيث تكون تشوهات الأوعية الدموية الدقيقة المحيطية واضحة في علم الأمراض.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع الطرق الموضحة هنا من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامه (IACUC) في المركز الطبي بجامعة فاندربيلت ومستشفى ماساتشوستس العام.

1. تحضير أظافر الفئران للتصوير

ملاحظة: للحصول على صفاء مثالي للأوعية واستعادة الجلد ، اتركيه لمدة 24 ساعة على الأقل قبل التصوير.

  1. لتمكين التصوير دون عائق لأظافر الفئران ، قم بإزالة الفراء من أقدام القوارض قبل 24 ساعة على الأقل من تصوير تنظير الشعيرات الدموية (الشكل 1 أ). لإزالة الفراء من أقدام الفأر ، اتبع الخطوات 1.1.1-1.1.6.
    1. تخدير باستخدام تخدير الأيزوفلوران المستنشق (2٪ إيزوفلوران في 5٪ ثاني أكسيد الكربون / 95٪ أكسجين). تأكد من تخدير الفأر بشكل كاف عن طريق الضغط على وسادة القدم على كلتا القدمين الخلفيتين. إذا تم تخديره بشكل صحيح ، فلا ينبغي أن تكون هناك حركة اهتزاز (منعكس سحب الدواسة). إذا كانت هناك حركة انعكاسية ، اترك الفأر مزيدا من الوقت تحت الأيزوفلوران ليصبح مخدرا بالكامل. أعد اختبار منعكس سحب الدواسة واستمر.
    2. بعد تخدير الفأر بشكل صحيح ، ضع جل العين المزلق أو مرهم العين المعقم غير الطبي على كلتا العينين لمنع جفاف القرنية أثناء التخدير.
    3. الحفاظ على تحت التخدير باستخدام مخروط الأنف ، ضع كمية وفيرة من كريم إزالة الشعر على المخلب بالكامل باستخدام قضيب. احرص على تغطية المخلب بالكامل ومناطق التثبيت ، كما هو موضح في الشكل 1 ب.
    4. اتركي كريم إزالة الشعر على المخلب لمدة دقيقتين في درجة حرارة الغرفة (RT).
    5. نظف كريم إزالة الشعر بعناية عن طريق فركه برفق بمنديل نظيف.
    6. اغسل المخلب بالماء الفاتر والمعقم.
      ملاحظة: يجب أن تكون الكفوف خالية من الفراء والأظافر دون عائق للتصوير ، كما هو موضح في الشكل 1 ج.
    7. أعد الفأر إلى قفصه لضمان الشفاء الآمن من التخدير. لا تترك الفأر دون رقابة حتى يستعيد وعيه. بمجرد أن يستعيد الفأر وعيه ، أعده إلى القفص الأصلي بصحبة أخرى.

2. في الجسم الحي تصوير تنظير الشعيرات الدموية

  1. بعد ما لا يقل عن 24 ساعة من وقت التعافي بعد إزالة الفراء ، قم بإعداد معدات تنظير الشعيرات الدموية في غرفة يتم التحكم في درجة حرارتها (يتم الاحتفاظ بها بين 21.5-22.5 درجة مئوية) ، كما هو موضح في الشكل 2 أ. يتضمن الإعداد الكامل للتصوير المسامير 1) معدات تخدير الأيزوفلوران ، 2) مخروط أنف التخدير ، 3) مرحلة حيوانية قابلة للتعديل ، 4) مجهر تنظير الشعيرات الدموية ، و 5) جهاز كمبيوتر محمول مزود ببرنامج فيديو للتصوير.
  2. تخدير باستخدام تخدير الأيزوفلوران المستنشق (2٪ إيزوفلوران في 5٪ ثاني أكسيد الكربون / 95٪ أكسجين).
    1. تأكد من تخدير الفأر بشكل كاف عن طريق الضغط على وسادة القدم على كلتا القدمين الخلفيتين. إذا تم تخديره بشكل صحيح ، فلا ينبغي أن تكون هناك حركة اهتزاز (منعكس سحب الدواسة). إذا كانت هناك حركة انعكاسية ، فارجع إلى الخطوة 1.1.1 واترك الماوس مزيدا من الوقت للتخدير الكامل. ثم أعد اختبار منعكس سحب الدواسة واستمر.
    2. بعد تخدير الفأر بشكل صحيح ، ضع جل العين المزلق أو مرهم العين المعقم غير الطبي على كلتا العينين لمنع جفاف القرنية أثناء التخدير.
  3. للحفاظ على تحت التخدير ، ضع جانب الأخمص الخلفي لأعلى أعلى منصة شريط المختبر أسفل الهدف ، كما هو موضح في الشكل 2 ب ، التكبير.
  4. انشر أصابع القدم برفق لفصل الأظافر تحت هدف المجهر باستخدام قضيب. تأكد من فصل أسطح المسامير عن بعضها البعض للحصول على تصوير الأمثل للأوعية.
    ملاحظة: يوضح الشكل 2C إعداد التصوير الكامل الذي يعرض صورة السفينة على برنامج فيديو الكمبيوتر المحمول.
  5. لتقليل الوهج وتحسين التركيز ، ضع زيت الغمر (زيت الذرة) بسخاء على المخلب ، مما يضمن تغطية كاملة للأظافر. أضف شريطا أبيض أو ما شابه ذلك أسفل مخلب الماوس لتحسين التباين وتحسين تصور قاع الوعاء (الشكل 3 ؛ السهم 3).
  6. ركز على الظفر الموجود على الرقم الثاني من المخلب الخلفي. في الفئران ، هذا هو أكبر مسمار وأسهل في التصوير. لتركيز مسمار الماوس ، استخدم أدوات ضبط المرحلة x و y (الشكل 3 ؛ السهم 4) وعجلة التكبير (حتى 280x على هذه الأداة ؛ الشكل 3 ؛ السهم 1).
  7. قم بتحويل الهدف لتقليل وضع الوهج لعرض شبكة أوعية الأظافر (الشكل 3 ؛ السهم 2).
    ملاحظة: إذا أصبح من الصعب رؤية الأوعية أو تم تمديد وقت التصوير ، فأعد وضع زيت الغمر بسخاء. الكفوف الخطية للفئران أصغر من الكفوف الخلفية. وبالتالي ، يوصى بإجراء التصوير على الكفوف الخلفية.
  8. قم بتوصيل منظار الشعيرات الدموية بجهاز كمبيوتر محمول عبر اتصال ناقل تسلسلي عالمي (USB).
  9. افتح تطبيق برنامج الفيديو الأول على الكمبيوتر المحمول.
    ملاحظة: تحقق من توصيل الجهاز بشكل صحيح بالكمبيوتر المحمول في الإعدادات.
  10. على شاشة الكمبيوتر المحمول ، تصور ما يتم تكبيره بواسطة منظار الشعيرات الدموية وركز على المسمار عن طريق ضبط أدوات ضبط المراحل x و y وعجلة التكبير للحصول على صورة واضحة.
  11. بمجرد تركيز المجهر ورؤية صورة واضحة لشبكة الأوعية الدموية في الغطاء المسمير ، قم بتسجيل مقطع فيديو بالضغط على زر التسجيل الأحمر في Debut أو برنامج فيديو مشابه (الشكل 2C).
  12. احفظ كل مقطع فيديو في مجلد المشروع المناسب وقم بتسمية كل مقطع فيديو وفقا لذلك.

3. حفظ الصور المسمرة

  1. افتح الفيديو المسامير في البرنامج واختر يدويا إطارا في الفيديو حيث تكون الأوعية في تركيز واضح.
  2. باستخدام أداة لقطة الشاشة على الكمبيوتر ، التقط لقطة شاشة لشاشة الفيديو الأولى التي تظهر الأوعية الدموية الواضحة في الظفر. حفظ الصورة.
  3. افتح صورة لقطة الشاشة في برنامج ImageJ بالنقر فوق ملف وفتح ؛ حدد الملف من المجلد الوجهة الخاص به.
  4. إذا لزم الأمر، اضبط السطوع والتباين عن طريق تحديد > Image > Adjust Brightness/Contrast. يمكن أن تساعد هذه الأداة في تغيير تباين الصور لتصور مورفولوجيا الوعاء بشكل أفضل.
  5. بمجرد ضبط الصورة، انقر فوق Set في أداة Brightness/Contrast .
  6. احفظ الصورة كملف TIFF بالنقر فوق ملف ثم حفظ باسم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

باستخدام طريقة تنظير الشعيرات الدموية الموضحة هنا ، يمكن تصوير مورفولوجيا الأوعية الدموية المسامير بسهولة ، كما هو موضح في الشكل 4 أ. تظهر الأوعية الدموية النموذجية المسامير في الفأر ثلاث ميزات متسقة ، كما هو موضح في الشكل 4 ب: كل مسمار يحتوي على 1) وعاء وارد ، 2) وعاء صادر ، و 3) شبكة من الشعيرات الدموية التي تربط كل من الأوعية الواردة والصادرة. لإثبات اتساق مورفولوجيا مسمر ، نعرض في الشكل 4C شبكة شعرية تمثيلية مسمرة في فأر من النو...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

باختصار ، نقدم بروتوكولا يسمح للباحثين بتقييم مورفولوجيا الأوعية الدموية الدقيقة ذات المسمار بالفئران بسهولة وبتكلفة زهيدة ، وهو موقع جديد لتصوير الأوعية الدموية المحيطية غير الغازية. مثل طرق NFC المستخدمة في خنازير غينيا20 والفئران21 ، فإن القوة الرئيسية للبروتوكول الموصوف هنا هي أنه يسمح بإجراء تقييم سريع وغير جراحي للأوعية الدموية الدقيقة المحيطية في نماذج الفئران للمرض. قد يكون هذا مفيدا بشكل خاص للدراسات التي تنطوي على تشوهات الأوعية ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لا علاقة له بهذا العمل ، كان الدكتور باسكوال مستشارا مدفوع الأجر ل Twenty Twenty. لا علاقة لها بهذا العمل ، كلارا كوزينز هي مستشارة مدفوعة الأجر لشركة Cartography Biosciences. المؤلفون الآخرون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تمويل هذا العمل من خلال أموال الإدارات غير المقيدة الممنوحة إلى Lauren K. Wareham. يتم دعم الدكتور باسكوال من قبل مؤسسة الجلوكوما (NYC) وبمنحة تحدي غير مقيدة من Research to Prevention Blindness (NYC).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

علبة

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
فلتر الفحم المخدرReFreshEZ-258
منظار الشعيرات الدموية Jiahua Electronic Instrument Co. ، Jiangsu ، الصينJH-1004
غاز مضغوط (5٪ ثاني أكسيد الكربون ، 95٪ أكسجين)AirgasUN3156
زيت الذرةSigmaC8-267   ؛
لاول مرة برنامج التقاط الفيديولاول مرةمتاح مجانا على الإنترنت.
حراب العينBVI Weck- Cel0008680لتطبيق وإزالة كريم إزالة الشعر.
كريم إزالة الشعرNair 610370323649
زجاجة Isoflurane 250 ملPiramal للعناية الحرجةNDC   ؛ 6679401725
مختبر جاك فيشربراند14-673-52تستخدم كمنصة لحمل الماوس.
مخروط الأنف (قناع تخدير منخفض الارتفاع)كينت ScientificSOMNO-0801
نقل الماصاتفيشربراند13-711-9AMضع زيت الذرة بسخاء على مخلب الفأر كزيت غمر.
بطاقة التقاط الفيديو USBVIXLWBR116
VetequipVWR89012-492معدات Isoflurane
شريط الملصقات الأبيض   ؛Fisherbrand15-958يستخدم لإنشاء خلفية بيضاء / متباينة تحت مخلب الماوس عند التقاط الصور.

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. El Miedany, Y., Ismail, S., Wadie, M., Hassan, M. Nailfold capillaroscopy: tips and challenges. Clin Rheumatol. 41 (12), 3629-3640 (2022).
  2. Etehad Tavakol, M., Fatemi, A., Karbalaie, A., Emrani, Z., Erlandsson, B. -E. Nailfold capillaroscopy in rheumatic diseases: Which parameters should be evaluated. BioMed Res Int. 2015 (1), 974530(2015).
  3. Cutolo, M., Smith, V. Detection of microvascular changes in systemic sclerosis and other rheumatic diseases. Nat Rev Rheumatol. 17 (11), 665-677 (2021).
  4. Lim, M. W. S., et al. Nailfold video-capillaroscopy in the study of cardiovascular disease: a systematic review. Blood Press Monit. 28 (1), 24-32 (2023).
  5. Philip, S., Najafi, A., Tantraworasin, A., Pasquale, L. R., Ritch, R. Nailfold capillaroscopy of resting peripheral blood flow in exfoliation glaucoma and primary open-angle glaucoma. JAMA Ophthalmol. 137 (6), 618-625 (2019).
  6. Taniguchi, E. V., et al. Peripheral microvascular abnormalities associated with open-angle glaucoma. Ophthalmol Glaucoma. 6 (3), 291-299 (2023).
  7. Maldonado, G., Guerrero, R., Paredes, C., Ríos, C. Nailfold capillaroscopy in diabetes mellitus. Microvasc Res. 112, 41-46 (2017).
  8. Gurfinkel, Y. I., Sasonko, M., Priezzhev, A. Digital capillaroscopy as important tool for early diagnostics of arterial hypertension Proc. SPIE 9448, Saratov Fall Meeting 2014: Optical Technologies in Biophysics and Medicine XVI; Laser Physics and Photonics XVI; and Computational Biophysics. , 944804(2015).
  9. Santamaría, R., González-Álvarez, M., Delgado, R., Esteban, S., Arroyo, A. G. Remodeling of the microvasculature: May the blood flow be with you. Front Physiol. 11, 586852(2020).
  10. Pries, A. R., Secomb, T. W. Making microvascular networks work: angiogenesis, remodeling, and pruning. Physiology. 29 (6), 446-455 (2014).
  11. Cutolo, M., Smith, V. State of the art on nailfold capillaroscopy: a reliable diagnostic tool and putative biomarker in rheumatology. Rheumatology. 52 (11), 1933-1940 (2013).
  12. Bentley, M. D., Ortiz, M. C., Ritman, E. L., Romero, J. C. The use of microcomputed tomography to study microvasculature in small rodents. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 282 (5), R1267-R1279 (2002).
  13. Zagorchev, L., et al. Micro computed tomography for vascular exploration. J Angiogenes Res. 2, 7(2010).
  14. Untracht, G. R., et al. Pilot study of optical coherence tomography angiography-derived microvascular metrics in hands and feet of healthy and diabetic people. Sci Rep. 13 (1), 1122(2023).
  15. Mirg, S., Turner, K. L., Chen, H., Drew, P. J., Kothapalli, S. -R. Photoacoustic imaging for microcirculation. Microcirculation. 29 (6-7), e12776(2022).
  16. Gkontra, P., et al. Dynamic changes in microvascular flow conductivity and perfusion after myocardial infarction shown by image-based modeling. J Am Heart Assoc. 8 (7), e011058(2019).
  17. Laurent, S., Agabiti-Rosei, C., Bruno, R. M., Rizzoni, D. Microcirculation and macrocirculation in hypertension: A dangerous cross-link. Hypertension. 79 (3), 479-490 (2022).
  18. Kisler, K., Nelson, A. R., Montagne, A., Zlokovic, B. V. Cerebral blood flow regulation and neurovascular dysfunction in Alzheimer disease. Nat Rev Neurosci. 18 (7), 419-434 (2017).
  19. Wareham, L. K., Calkins, D. J. The neurovascular unit in glaucomatous neurodegeneration. Front Cell Dev Biol. 8, 452(2020).
  20. Mandujano, A., Golubov, M. Animal models of systemic sclerosis: using nailfold capillaroscopy as a potential tool to evaluate microcirculation and microangiopathy: a narrative review. Life. 12 (5), 703(2022).
  21. Kim, M. Nail fold capillaroscopy as a potential tool to evaluate breast tumor. J Anal Sci Technol. 15 (1), 35(2024).
  22. McKay, G. N., et al. Visualization of blood cell contrast in nailfold capillaries with high-speed reverse lens mobile phone microscopy. Biomed Opt Express. 11 (4), 2268-2276 (2020).
  23. Zhang, X., Qian, X., Tao, C., Liu, X. In vivo imaging of microvasculature during anesthesia with high-resolution photoacoustic microscopy. Ultrasound Med Biol. 44 (5), 1110-1118 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

ImageJ

مقالات ذات صلة