小鼠肾移植是一种技术上具有挑战性的手术,需要精细的术后护理和治疗才能成功。
小鼠肾移植是一种技术上具有挑战性的手术,需要精细的术后护理和治疗才能成功。
小鼠肾脏原位移植是一种技术上具有挑战性的手术。尽管Russell等人在30多年前首次完成了小鼠肾移植(1),随后Zhang等人对其进行了改进(2),但目前全球掌握该技术的研究人员仍寥寥无几。在我们的实验室中,已成功实施了1200例原位肾移植手术,术后存活率超过>90%。手术成功的关键在于严格控制手术期间及移植后的再灌注损伤、出血和血栓形成,并在吻合过程中使用10-0缝线而非11-0缝线。
术后对受体动物的护理和治疗对于移植成功及评估至关重要。所有肾移植受体均在术后立即接受青霉素注射,并持续在饮水中添加磺胺甲噁唑-甲氧苄啶(sulfatrim)以提供抗生素支持。每日评估动物整体健康状况,并常规使用便携式I-STAT仪器进行全血肌酐分析,以评估移植物功能。
供体器官获取(2):
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我们已在小鼠中完成了约1200例肾移植手术,技术成功率达到>90%。与心脏移植相比,肾移植的成功率通常较低。然而,我们实验室一直保持较高的肾移植成功率(>90%)。成功的关键在于减少供体肾脏和受体的再灌注损伤,并在整个手术过程及术后最大限度地减少出血和血栓形成。以下因素可能最为重要:(a)通过细致轻柔的操作,尽可能减少受体在手术期间的出血;(b)在供体肾脏准备和受体移植过程中,尽量缩短热缺血时间和交叉阻断时间;(c)使用较小的供体膀胱瓣,以防止术后发生坏死、血供不足及膀胱漏液;(d)延迟切除受体原生肾脏,直至移植后4~7天,以使移植肾在术后有足够时间恢复功能;(e)在主动脉外进行吻合(供体主动脉袖与受体主动脉前壁之间,以及供体主动脉袖与受体主动脉后壁之间),以降低血栓形成的发生率;(f)术后至少24小时内保持受体小鼠体温恒定;(g)术后给予受体小鼠抗生素,以预防潜在感染。
在本方案中,我们使用10-0缝线代替11-0缝线,且不影响存活率。尽管11-0缝线是理想选择,并被许多移植实验室采用,但我们认为,只要上述因素得到良好控制,10-0缝线在肾移植中同样足够适用。
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动物实验严格按照俄亥俄州立大学动物护理和使用委员会(IACUC)制定的指南和规定进行。
本研究部分得到了美国国立卫生研究院(NIH)R01 AI36532 项目对 GAH 的资助。我们衷心感谢 Tibor Nadasdy 博士在移植病理学方面提供的卓越支持,以及已故的 Charles G. Orosz 博士在启动本项研究工作过程中给予的宝贵指导和远见卓识。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 | |
|---|---|---|---|---|
| i-STAT | 其他 | HESKA | Cat 5101 | |
| i-STAT 试剂盒 | 其他 | HESKA | CAT 5110-CREA | |
| 复方磺胺甲噁唑 | 其他 | Actavis | R02109 | |
| 异氟烷 | 其他 | NOVAPLUS | CA-0474 | |
| 10-0 缝合线 | 手术 | Sharpoint | AK0100 |
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