器官培养是一种研究基因和蛋白质表达的非常有用且多功能的技术。这些 离体 培养方法可作为初步检测手段或与其他方法相互补充 在体 研究。
1. 胚胎肺组织分离
- 根据美国国立卫生研究院(NIH)和实验动物福利办公室(OLAW)指南,于交配后第11.5或12.5天(E11.5-12.5)通过CO2麻醉法处死妊娠小鼠。将动物放入密闭舱内,通入100% CO2。待动物失去意识后,加大CO2气流,必须确保动物达到临床死亡。
- 以下所有步骤均需在超净台内的无菌条件下完成。从妊娠雌鼠体内取出子宫。操作时将妊娠雌鼠仰卧放置,并用70%乙醇喷洒体表。在腹部做切口,固定动物后肢并向上牵拉皮肤以暴露腹腔,切开腹膜腔后取出子宫。
- 将子宫置于装有冷的Hanks平衡盐溶液(HBSS)的50 ml锥形管中,以冲洗去除血液,并轻轻振荡2分钟。
- 随后将子宫转移至培养皿中,在体视解剖显微镜下使用弹簧剪剪开子宫壁,释放胚胎。用带孔勺子收集胚胎,并将其置于含有HBSS、预冷的新培养皿中,放置于冰上。
- 在体视解剖显微镜下,于含有冷HBSS的培养皿中逐个分离胚胎肺组织(图1)。
- 使用无菌移液管将分离得到的胚胎肺组织转移至另一含有HBSS的培养皿中,置于冰上保存。
2. 胚胎肺组织培养
- 在 Nunclon 聚苯乙烯培养皿中,每孔加入 500 微升至 1 毫升添加了 50 单位/毫升青霉素-链霉素的 D-MEM/F-12 培养基。
- 将 Nuclepore 聚碳酸酯核孔膜置于培养基上方。放置 Nuclepore 聚碳酸酯核孔膜时,应确保光面朝下接触培养基,粗糙面朝上。
- 使用无菌移液管将解剖好的胚胎肺组织置于 Nuclepore 聚碳酸酯核孔膜上。
- 用镊子调整胚胎肺的位置。置于滤膜上的胚胎肺应保留完整的气管,并使气管保持平直状态,从而确保所有肺组织内部压力一致。
- 将 Nunclon 聚苯乙烯培养皿放入细胞培养箱中,进行所需时间的培养(图 2)。
3. 材料
1. 胚胎全肺组织的分离
- 用于实验的妊娠期定时小鼠(C57BL6 野生型或转基因型),于交配后第 11.5 至 13.5 天(E11.5–13.5)处死。
- 不含氯化钙、氯化镁或硫酸镁的 Hank's 平衡盐溶液(HBSS)(1×),液体状态(Invitrogen,Carlsbad,CA),添加 50 单位/毫升青霉素-链霉素(Invitrogen,Carlsbad,CA)。HBSS 在开封前室温保存,开封后置于 4°C 保存。青霉素-链霉素分装后于 -20°C 保存。
- 体视解剖显微镜(Leica,Wetzlar,德国)。
- 解剖工具,包括 Dumont 镊子、精细虹膜剪(直头)、Noyes 弹簧剪和 Moria® 勺(带孔)(Fine Science Tools,Foster City,CA)。
2. 胚胎全肺培养
- 杜尔贝科改良伊格尔培养基:营养混合物 F-12(D-MEM/F-12)(1X),液体,1:1,含 L-谷氨酰胺,不含 HEPES 缓冲液(Invitrogen,Carlsbad,CA),添加 50 单位/毫升青霉素-链霉素(Invitrogen,Carlsbad,CA)。将 DMEM/F-12 瓶避光保存(例如用铝箔包裹),并于 4°C 储存。将青霉素-链霉素分装后于 -20°C 保存。
- Nuclepore 聚碳酸酯径迹蚀刻膜,8.0 µm,13 mm(Whatman Nuclepore Track-Etch 膜(Whatman,Florham Park,NJ)。
- Nunclon 聚苯乙烯培养皿(带盖),4 孔(Rochester,NY)。
- 一次性移液管,无菌(Fisher Scientific,Pittsburgh,PA)。

图1. E12胚胎肺的解剖。(A) 从右侧观察的E12.5全胚胎。(B) 胚胎的右前肢已被移除。(C) 左手持镊子固定胚胎,使其在培养皿中保持稳定。箭头指示解剖切面。(D) 胚胎肺位于心脏(已移除)后方和脊柱前方。此图显示皮肤和心脏移除后的肺组织。(E) 咽部的移除使完整的肺组织得以从胚胎中分离。(F) 多余的咽部组织和食管已被修剪去除。图中显示的是带有完整气管和喉部的E12.5胚胎肺。(Cr)头侧叶,(Med)内侧叶,(Ca)尾侧叶,(Acc)副叶,(Le)左侧叶。

图2. FGF9促进体外培养肺组织中间充质的扩展和上皮的扩张。 (A-C) E12.5期肺组织在无FGF9条件下培养48小时。注意分支数量增加。(D-F) E12.5期肺组织在含FGF9条件下培养48小时。可见上皮和间充质在培养24小时后即出现扩张(E)。培养48小时后(F),对上皮的影响更为显著。比例尺:A-F 400 μm 4。
本实验方法的完整文字方案可在 Springer Protocols 中获取。