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方法文章

利用带有galK可筛选标记的重组工程法构建秀丽隐杆线虫(C. elegans)转基因

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DOI:

10.3791/2331

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2011年1月11日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

利用由fosmid携带的基因组DNA为Caenorhabditis elegans构建转基因,具有显著优势,因为可保留全部天然调控元件。本文描述了一种基于galK可筛选标记、通过重组工程构建转基因的简单且稳健的实验流程。

摘要

转基因动物的制备在科学研究中被广泛应用 秀丽隐杆线虫 研究包括利用GFP融合蛋白来分析目的基因的调控机制和表达模式,或构建特定基因的串联亲和纯化(TAP)标签版本以促进其纯化。通常通过将启动子置于GFP报告基因或目的cDNA的上游来构建转基因,这种方法往往能够产生具有代表性的表达模式。然而,该方法可能遗漏基因调控中的关键元件,例如3'非翻译区中的调控序列或可变启动子。此外,通常仅能通过此方法研究一种剪接变体。相比之下,使用由fosmid DNA克隆携带的线虫基因组DNA,很可能包含了大部分甚至全部参与基因调控的元件。 体内 从而能够更准确地捕获真实的表达模式和表达时序。为促进利用fosmid DNA构建转基因,我们描述了一种 E. coli 基于重组工程的方法,将GFP、TAP标签或其他目的序列插入基因组任意位置。该方法利用了 galK 基因作为重组工程中正向和负向筛选步骤的筛选标记,从而以高效率获得所需的修饰。此外,含有该基因的质粒 galK 基因两侧带有同源臂,可与常用的GFP和TAP融合基因连接,从而在构建GFP或TAP融合蛋白时使引物成本降低50%。这些质粒采用R6K复制起点,避免了对PCR产物进行繁琐的纯化步骤。最后,我们还展示了一种将目标序列整合到 unc-119 将标记插入到fosmid载体骨架中,使得该fosmid可直接注射或轰击进入线虫,以产生转基因动物。本视频演示了利用重组工程方法构建转基因的详细操作步骤。

方案

概述

用于转基因生物制备的许多转基因 秀丽隐杆线虫 由启动子序列和可能插入实验室构建的载体中的基因cDNA组成,这些载体由Andy Fire博士实验室提供 1尽管这些转基因在产生GFP报告基因或在特定模式下表达cDNA方面通常较为成功,但这些转基因可能缺少在基因表达调控中起重要作用的替代启动子、增强子元件以及3'非翻译区(UTR)元件 体内 2例如,两者均 daf-12 和 fah-1 基因具有位于近端启动子区域之外的重要增强子元件,而仅包含启动子的构建体遗漏了这些元件 3,4,5此外,许多转基因构建体使用 unc-54 3'非翻译区,可防止被相应的微小RNA基因调控 6,7,8因此,利用包含大量线虫基因组DNA片段的转基因将有助于完整捕获所有启动子、剪接变体以及3'非翻译区调控元件。最近一项 秀丽隐杆线虫 已构建包含约40 kb基因组DNA片段且覆盖几乎整个基因组的fosmid文库。利用这些fosmid DNA克隆所携带的线虫基因组DNA,能够更准确地捕获特定基因的真实表达模式和表达时序。 2,8,9,10,11.

然而,操作大片段基因组DNA在实际应用中存在诸多挑战,例如使用标准分子生物学技术时会遇到极....

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讨论

利用fosmid构建转基因可保留所有天然的启动子元件、剪接变体以及3'非翻译区(UTR)调控元件,从而获得更接近天然表达模式的转基因,或在其他方法失败时成功构建功能性转基因5。所获得的转基因可携带多种表位标签,包括GFP或TAP标签。

转基因的构建包含三个步骤,全部在SW106细菌菌株中进行15。第一步,通过重组工程将galK基因整合到待修饰的fosmid中特定目标位点,所用的PCR产物在其两侧带有与目标fosmid互补的同源臂,并在中间携带galK。我们开发的一项改进是,在galK盒中同时整合了用于FLAG-GFP或TAP标签的同源区域,使得同一对寡核苷酸可用于fosmid修饰的第一步和第二步,从而降低了寡核苷酸的合成成本。另一项进一步简化是使用基于R6K的载体,该载体无法在SW106细菌菌株中复制,因此无需对亲本载体进行酶切消化。第二步,用GFP或TAP等标签替换galK盒,从而将标签与fosmid上的目标基因融合。此步骤具有很高的可靠性,通常可获得大量正确修饰.......

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披露

未声明任何利益冲突。

致谢

作者感谢Lindsey Nash在技术开发过程中提供的帮助。本研究由美国国立卫生研究院(NIH)资助项目AG028977(A.L.F.)、匹兹堡大学老年独立研究中心(OAIC,AG024827)的试点项目资助以及匹兹堡大学的启动资金支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
FosmidMAX试剂盒Epicentre BiotechnologiesFMAX046
GoTaqPromega Corp.M7122
MOPS培养基TEKnova, Inc.M2120
0.132 M 磷酸钾溶液TEKnova, Inc.M2102
D-半乳糖Sigma-AldrichG0750
2-脱氧半乳糖Sigma-AldrichD4407
生物素Sigma-AldrichB4639
亮氨酸Sigma-AldrichL8000
NH4ClSigma-AldrichA9434
Phusion DNA聚合酶New England BiolabsF-530S
麦康凯琼脂基础BD Biosciences281810
阿拉伯糖Sigma-AldrichA3131
氯霉素Sigma-AldrichC1919
磷酸氢二钠Sigma-AldrichS5136
磷酸二氢钾Sigma-AldrichP5655
氯化钠Sigma-AldrichS5886
甘油Sigma-AldrichG2025
Bacto琼脂BD Biosciences214010

参考文献

  1. Mello, C., Fire, A. DNA transformation. Methods Cell Biol. 48, 451-482 (1995).
  2. Zhang, Y., Nash, L., Fisher, A. L. A simplified, robust, and streamlined procedure for the production of C. elegans transgenes via recombineering. BMC Dev Biol. 8, 119-119....

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重印与许可

标签

重组工程操作fosmid DNA 克隆λRed 重组GFP 融合蛋白TAP标签整合菌落 PCR 验证电转感受态细胞最低培养基筛选