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使用泛病毒微阵列检测技术(Virochip)对临床样本进行病毒病原体筛查

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DOI:

10.3791/2536

2011年4月27日

本文内容

摘要

Virochip 是一种泛病毒微阵列,旨在基于保守序列同源性,同时检测所有已知病毒以及新病毒。本文演示如何运行 Virochip 检测,以分析临床样本中是否存在已知和未知病毒。

摘要

由于病毒本身具有内在的序列多样性,以及不断出现传统方法无法检测到的新型病毒病原体(如SARS冠状病毒和2009年大流行的H1N1流感病毒),许多传染性疾病的病毒病因诊断十分困难。为应对这些挑战,我们此前已开发并验证了一种名为Virochip的广谱病毒微阵列平台,该平台基于保守序列同源性,能够检测所有已知病毒以及新型变异病毒1。利用Virochip,我们已鉴定出与呼吸道感染相关的全部病毒谱系,包括住院患者中病因不明的重症病例,其检测灵敏度相当于甚至优于常规临床检测方法2-5。Virochip还被用于发现多种新型病毒,包括SARS冠状病毒6,7、一种新型鼻病毒进化枝5、XMRV(一种与前列腺癌相关的逆转录病毒)8、禽类博尔纳病毒(导致鹦鹉消耗性疾病的原因)9,以及在患有呼吸道和腹泻疾病的儿童中发现的一种新型心病毒10。截至2009年12月,当前版本的Virochip已迁移至Agilent微阵列平台,包含约36,000个探针,来源于GenBank中超过1,500种病毒。本文将演示从头到尾完成一次Virochip检测的全部步骤(约24小时周转时间),包括样本核酸提取、使用随机引物进行PCR扩增、荧光染料标记、微阵列杂交、扫描及数据分析。

方案

Virochip 检测的步骤包括:(1)从临床样本中提取核酸,(2)对提取的 RNA 进行逆转录以及 2nd-链cDNA合成,(3) 随机引物cDNA的PCR扩增,(3) 掺入Cy3荧光染料,(4) 将标记后的样本杂交至Virochip微阵列,以及(5) 扫描与分析(图1)。下述方案将演示在一名患有流感样疾病的儿童鼻拭子样本中使用Virochip检测的方法。

引物序列

引物A 5'-GTTTCCCAGTCACGATA-(N9)-3'

引物 B 5'-GTTTCCCAGTCACGATA-3'

1. 核酸提取

  1. 临床样本的核酸提取应在生物安全二级(BSL-2)或更高级别的条件下进行,因为这些样本可能具有传染性。
  2. 鼻拭子样本需保存于病毒转运液中。取200 μL样本加入1.5 mL Eppendorf离心管中。
  3. 可选:将样本通过0.22 μm滤膜过滤(以纯化病毒颗粒)
  4. 可选:使用Turbo DNAse试剂盒(Ambion),按照制造商说明书对样本进行DNA酶预处理(以降解宿主基因组DNA,纯化被保护的、衣壳化的病毒核酸)
  5. 按照制造商说明书,使用Zymo ZR病毒RNA提取试剂盒或Qiagen Ultrasens病毒试剂盒提取样本。

2. 逆转录与2nd-链 cDNA 合成(“第一轮 A”)

  1. 加入1 μL 40 pmol/ μL 引物A加入4 μL提取的RNA中。加热至 65°C 在热循环仪(例如 GeneAmp PCR System 9700)中孵育 5 分钟,然后于室温冷却 5 分钟。
  2. 添加 5 μL 由一种主混合液组成,该混合液包含 2 μL 5X RT缓冲液, 1 μL 12.5 mM dNTP, 1 μL 水 0.5 μL 0.1 M DTT,以及 0.5 μL SSIII RT(Invitrogen)。37 °C孵育 42°C × 60 分钟。
  3. 在可编程热循环仪中加热至 94°C x 2 分钟(以终止逆转录反应),冷却至 10°C,脉冲离心,然后加入 5 μL 由Sequenase混合液组成 1 μL 5X Sequenase缓冲液, 3.8 μL 水,和 0.15 μL Sequenase(USB Corporation)。对于2nd 链合成,从...开始升温 10°C 到 37°C 超过 8 分钟,保持 8 分钟,然后加热至 94°C x 2 分钟(以灭活 Sequenase)并冷却至 10°C (保持)
  4. 可选 :此时可将样品 cDNA 储存于 -20°C.

3. 随机引物cDNA的PCR扩增(“B轮”)

  1. 将5 μL Rd A样品加入45 μL的预混液中,预混液包含5 μL 10× PCR缓冲液、1 μL 12.5 mM dNTP、1 μL 100 pmol/μL的引物B、1 μL KlenTaq LA(Sigma)以及37 μL水。
  2. 运行PCR程序如下:94°C 2分钟 →(25个循环:94°C 30秒 / 50°C 45秒 / 72°C 1分钟)→ 72°C 5分钟 → 10°C(保存)
  3. 在1.5%琼脂糖凝胶电泳上检测Rd B样品,应观察到约200–1000 bp的弥散条带(图2A)。

4. Cy3 荧光染料的掺入

  1. 可选:另一个样本可用Cy5荧光染料标记,并与同一张微阵列进行杂交。
  2. 为掺入aa-dNTP,将5 μL Rd B样本加入45 μL的主混合液中,主混合液组成为:5 μL 10X PCR缓冲液、1 μL 12.5 mM aa-dNTP(Invitrogen)、1 μL 100 pmol/μL的引物B、1 μL KlenTaq LA(Sigma)以及37 μL水。PCR程序如下:94°C,2分钟→(15个循环:94°C,30秒 / 50°C,45秒 / 72°C,1分钟)→72°C,5分钟→10°C(保持)
  3. 使用DNA Clean and Concentrator-5试剂盒(Zymo Research)按照生产商说明书纯化Rd C样本,用10 μL洗脱。
  4. 向Rd C样本中加入1 μL 1M碳酸氢盐(Sigma)和1 μL Cy5(GE Healthcare)。
  5. 避光孵育1小时。
  6. 使用DNA Clean and Concentrator-5试剂盒(Zymo Research)按照生产商说明书纯化Cy3标记的样本,用12 μL洗脱。

5. 病毒芯片微阵列杂交

  1. 可选:使用 1.5 μL 样品在 Nanodrop 分光光度计上检测 cDNA 浓度及掺入的染料量(用于样品归一化)
  2. 在 PCR 条状管中加入 1 μL 25X 断裂缓冲液、5 μL 5X 封闭缓冲液、9.5 μL(或用于归一化的相应体积)Cy3 标记样品,并加水至总体积为 25 μL(Agilent)
  3. 加入 25 μL 2X GEx 杂交缓冲液(Agilent)。短暂离心以去除气泡。
  4. 将 40 μL 样品加载至垫圈玻片上。
  5. 将 Agilent 印制的 Virochip 芯片(加州大学旧金山分校 / Agilent)(标记“Agilent”的一面朝下)放置在垫圈玻片上方,并拧紧螺丝固定。
  6. 在 65°C、转速 10 rpm 条件下过夜杂交。
  7. 洗涤芯片时,先将缓冲液 2(Agilent)预热至 37°C。在缓冲液 1(Agilent)水下拆开垫圈玻片与芯片的夹心结构。用缓冲液 1 洗涤 1 分钟。用预热的缓冲液 2 洗涤 1 分钟。缓慢从缓冲液 2 中取出玻片,注意避免产生气泡(使用无尘纸吸去多余水分,注意避免直接接触芯片的活性面)
  8. 将玻片放入玻片架中,并插入芯片扫描仪。

6. Virochip 扫描与分析

  1. 根据仪器的标准扫描程序,以 5 μm 或 2 μm 对 Cy3 标记的芯片进行扫描(图 2B)。
  2. 通过目视检查、聚类分析或自动化的 Virochip 分析程序 E-Predict11 分析 Virochip 微阵列。这三种方法均可在鼻拭子样本(来自一名患有流感样疾病的儿童)中明确检测到流感病毒(图 2C)。

7. 代表性结果:

当实验步骤正确执行时,在Rd B步骤后,琼脂糖凝胶电泳应可见涂抹状条带(图2A)。在Agilent平台上进行的Virochip微阵列难以通过肉眼直接分析(图2B),但如果存在病毒,则应可通过目视检查、聚类分析和/或E-Predict方法轻松鉴定(图1C)。可向样本中加入已知病毒的定量核酸(例如烟草花叶病毒;MS2噬菌体)作为检测的阳性对照。

核酸提取、PCR扩增、微阵列扫描及检测分析。
图1. Virochip微阵列处理与分析示意图。 从临床样本中提取的核酸经过随机扩增,用荧光染料标记后与Virochip微阵列进行杂交。微阵列以2 μm分辨率扫描,并利用多种计算工具(包括E-Predict)进行分析。

DNA电泳结果、微阵列分析、病毒基因表达比较图。
图2. Virochip检测的步骤。 经随机PCR扩增后,可通过凝胶电泳观察到大小为200 - 1000 bp的弥散条带 (A)(B) 显示了每张玻片上8个微阵列中的3个Virochip微阵列,右下角插图为其中一个微阵列的局部放大图。 (C) 使用E-Predict进行自动化的微阵列病毒分析,结果显示临床样本中存在甲型流感病毒。较高的相似性评分(s=0.55)对应接近于零的p值,表明该预测具有极高的显著性。

讨论

本文所述的Virochip实验方案较为复杂,需要由细致且技术娴熟的研究技术人员操作。PCR、标记和杂交过程中试剂的正确浓度和反应条件至关重要。可通过使用TRIzol(Invitrogen)等组织提取方法提取核酸,从而对Virochip实验方案进行简单修改,以适用于病变组织的分析。可根据需要随时增删探针,以获得理想的检测范围和覆盖广度;例如,可设计并快速添加用于检测细菌和真菌等非病毒目标的探针。目前正处于开发阶段的Virochip检测应用包括临床实验室中的广谱病毒诊断、疫情暴发调查、药物与疫苗的纯度筛查,以及新发病毒病原体的发现。

披露

未声明任何利益冲突。

致谢

感谢 David Wang、Anatoly Urisman、Amy Kistler、Kael Fischer、Patrick Tang 和 Alexander Greninger 在 Virochip 实验方案的初步开发与优化中所做的贡献。本研究由美国国立卫生研究院(NIH)K08 项目基金和雅培发现奖(授予 CC)以及霍华德·休斯医学研究所(授予 JLD)提供资助。

参考文献

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Virochip PCR Agilent