一种改良的三维体外系统被用于研究多种肿瘤细胞系在重建基底膜中的生长特性,这些特性与肿瘤细胞在转移性继发部位所表现出的休眠或增殖行为相关 体内.
一种改良的三维体外系统被用于研究多种肿瘤细胞系在重建基底膜中的生长特性,这些特性与肿瘤细胞在转移性继发部位所表现出的休眠或增殖行为相关 体内.
乳腺癌的复发通常发生在一段漫长的潜伏期之后,此期间无任何癌症迹象,且转移灶可能在原发肿瘤切除及辅助治疗多年后才出现临床表现。这一现象的可能解释是,肿瘤细胞已播散至转移部位,对常规治疗具有耐药性,并在长时间内保持休眠状态1-4。
继发部位存在休眠的癌细胞,此前已被描述为静息的单个细胞,既不增殖也不发生凋亡5-7。此外,这些单个细胞已被证明在疾病进展的早期阶段即从原发肿瘤播散8-10,并在患者的骨髓、血液和淋巴结中处于生长停滞状态1,4,11。因此,理解调控休眠状态或向增殖状态转换的机制,对于发现预防疾病复发的新靶点和干预策略至关重要。然而,由于缺乏可用的模型系统,揭示从肿瘤休眠向转移性生长转换的调控机制一直受到阻碍。
已有文献报道过用于研究肿瘤细胞转移进展的体内和离体模型系统1,12-14。然而,这些模型系统尚无法实时、高通量地揭示导致孤立的静止性肿瘤细胞转变为增殖性转移性疾病的具体分子机制。我们近期开发了一种三维体外模型系统,用于模拟在体内表现为静止(D2.OR、MCF7、K7M2-AS.46)或增殖性(D2A1、MDA-MB-231、K7M2)转移特性的细胞的体内生长特征。我们证明,在转移部位体内表现为静止的肿瘤细胞,在三维基底膜提取物(BME)培养环境中仍保持静止状态;而体内高度转移性的细胞则在经历一段可变但相对较短的静止期后,迅速在三维培养中增殖。尤为重要的是,通过利用该三维体外模型系统,我们首次证实细胞外基质(ECM)的组成在调控静止性肿瘤细胞是否向增殖状态转变中发挥重要作用,并在体内研究中验证了这一发现15-17。因此,本报告所述的模型系统提供了一种体外方法,可用于模拟肿瘤细胞静止状态,并研究微环境诱导其向增殖性生长转变的过程。
1. 休眠及转移性肿瘤细胞系的细胞培养维持
2. 在3D-BME系统中培养的静息(休眠)和转移性(增殖)肿瘤细胞的细胞增殖检测
在三维系统中培养休眠/转移性细胞
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维持播散性肿瘤细胞处于休眠状态或促使其转变为转移性生长的潜在机制在很大程度上仍不清楚。这一现象在人类患者中极难研究4,12,且目前仅有少数临床前模型被开发用于解决这一问题。尽管如此,一些用于研究肿瘤休眠的体内和离体模型系统已被建立(详见文献1,12综述)。然而,现有的肿瘤休眠体内模型主要用于验证调控肿瘤休眠的潜在机制,却难以实现实时观察单个播散性休眠肿瘤细胞的生物学行为。
本文首次报道的三维系统模型可模拟单个肿瘤细胞的休眠状态及其向转移性生长的转变过程 体外 模型系统。可在3D系统中随时间追踪模拟肿瘤休眠(静息)及其向增殖转化的增殖检测。该检测可用于在相对短的时间内以高通量方式研究潜在维持肿瘤细胞处于静息状态或促使其活化增殖的因素/基因。此外,增殖检测还可作为高通量平台,用于筛选可能具有休眠表型的其他肿瘤细胞系。
由于从休眠肿瘤细胞中提取的RNA/蛋白质含量较低,因此通过传统的生化方法(如RT-PCR/蛋白质印.......
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未声明任何利益冲突。
本研究部分得到了美国国家癌症研究所院内研究计划的资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| DMEM 高糖培养基 | Invitrogen | 11965-118 | |
| DMEM 低糖培养基 | Invitrogen | 11885-092 | |
| 胎牛血清(FBS) | Invitrogen | 10091-148 | |
| 生长因子减少型 3-D Cultrex 基底膜提取物 | Trevigen Inc. | 蛋白浓度为 14–15 mg/ml | |
| D2.0R 和 D2A1 细胞系 | 5,19 | ||
| K7M2 和 K7M2AS1.46 细胞 | 20 | ||
| MCF-7 和 MDA-MB-231 乳腺癌细胞 | ATCC | ||
| 8 孔玻璃载片系统 | Lab-Tek | 177402 | |
| Cell Titer 96 AQueous One 溶液细胞增殖检测试剂盒 | Promega Corp. | G3580 | |
| 含 DAPI 的 VECTASHIELD 封片剂 | Vector Laboratories | H-1200 | |
| 正常驴血清 | Jackson ImmunoResearch | 017-000-121 | |
| 酶标仪 | Bio-Tec | 记录 490 nm 吸光度 | |
| 共聚焦显微镜 | Carl Zeiss, Inc. | 放大倍数 ×63 |
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