方法文章

创建刚性固定的骨折模型以评估膜内成骨、牵张成骨或临界尺寸缺损的愈合

DOI:

10.3791/3552

2012年4月11日

本文内容

摘要

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本文介绍了一种基于改良Ilizarov外固定器应用的长骨骨折稳定方法1-3。在安装固定器并制造骨损伤后,可对骨愈合过程进行评估,实施牵张成骨,或制造骨不连或临界尺寸缺损,用于研究治疗干预措施。

摘要

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

评估骨骼修复模式对于开发用于临床治疗骨折的疗法至关重要。机械稳定性在骨损伤愈合过程中起着重要作用。在最不利的情况下,机械不稳定可能导致人体骨折愈合延迟或不愈合。然而,一定程度的活动也能刺激愈合过程。在存在活动的骨折中,软骨会形成以稳定骨折端,并通过重现软骨内成骨的发育过程,逐渐被骨组织替代。相反,如果骨折骨被刚性固定,则骨组织通过膜内成骨方式直接形成。临床上,软骨内成骨与膜内成骨通常同时发生。为了有效模拟这一过程,研究者按照 Bonnarens4 描述的方法,将一根针插入骨折骨的髓腔中。该实验方法可提供良好的侧向稳定性,同时允许保留一定程度的旋转不稳定性。然而,通过实验手段分别隔离这两种过程,也有助于加深我们对调控这两种不同愈合机制的理解。我们已开发出一种可同时提供旋转和侧向稳定性的固定方案。在此模型中,仅观察到膜内成骨这一种愈合方式,因此可在不同遗传修饰小鼠品系之间5-7、应用生物活性分子后8,9、改变愈合的生理参数后10、调整固定程度或固定时间后11、牵张成骨后12、建立骨不连模型后13,或创建临界尺寸骨缺损后,对愈合参数进行比较。本文中,我们展示了如何在小鼠中应用改良的 Ilizarov 外固定器研究胫骨骨折愈合及牵张成骨过程。

方案

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

所有实验程序均经加州大学旧金山分校(UCSF)机构动物照护与使用委员会批准,并符合国家指南。

1. 手术前固定剂的制备

  1. 在创建稳定骨折模型之前,需要组装定制的外固定装置。定制的外固定架由两个铝环组成,通过三根不锈钢#0/56带螺纹杆、8个#2/56六角螺母和17个匹配的螺栓(Small Part Inc., Miami Lakes, FL3)固定。
  2. 每处骨折需要两个铝环。将4个#2/56六角螺母(Small Part Inc., Miami Lakes, FL)和匹配的螺栓装入其中一个环的适当孔位中,保持松动状态,此为近端环。在远端环上安装3个螺母和螺栓,同样不要完全拧紧。

2. 麻醉、骨折造模与固定器应用

  1. 根据实验需求选择小鼠(年龄、性别和体重由使用者确定),通过腹腔注射 50 mg/ml 氯胺酮和 0.5 mg/ml 美托咪啶(每只小鼠 0.03 ml)进行麻醉。
  2. 在小鼠眼睛上涂抹眼用润滑剂,并用胶带横向固定其头部以保护眼睛,防止手术过程中受损。
  3. 手术剩余步骤中,将动物置于加热垫上以维持体温。
  4. 使用四根 0.25 mm 无菌昆虫针(Anticorro:Fine Science Tool,Foster City,CA),将其固定在 Dremel 工具上,钻穿左侧胫骨近端和远端干骺端,实现骨骼穿刺固定。
  5. 针的方向应垂直于胫骨长轴,且彼此之间呈 90° 角;近端与远端固定针之间的距离至少为 10 mm。
  6. 将第一个环置于近端针上方,螺母朝内面向针;将针固定于环上,确保胫骨位于铝环中央位置。
  7. 将第二个环置于远端针下方,使用六角螺母如前所述将针固定于环上;再将第四个螺母-螺栓组合安装至远端固定器上。
  8. 使用合适的装置通过三点弯曲法制造横断骨折。我们采用 Bonnarens 和 Einhorn 的重力系统4:将胫骨后外侧表面置于支撑块上,将重物沿下落臂提升至预定高度后释放,使其撞击胫骨前外侧,从而产生钝性骨折。重物下落高度需根据不同的小鼠品系预先确定,以确保仅发生单一的胫骨骨折。
  9. 通过 X 射线确认骨折是否成功形成。
  10. 确认骨折后,将三根不锈钢 #0/56 带螺纹杆连接至固定环上。从远端开始插入螺杆,并在远端环上拧紧螺母以固定螺杆;然后在螺杆上安装另一个螺母,近端环将位于此螺母之上。确保两个环保持等距且不会对固定针造成张力;使用第三个螺母将近端环固定在螺杆上。
  11. 术后立即皮下注射布托啡诺(1.0 mg/kg)以镇痛,术后密切观察动物疼痛情况,并根据需要追加布托啡诺。
  12. 通过注射阿替美唑逆转麻醉,持续监测动物直至其恢复意识并能自主活动。

3. 牵张成骨术(另见:12,13

将此操作流程修改以适用于牵张成骨术非常简单。环形支架由带螺纹的杆固定在适当位置,通过旋转固定杆的螺母,即可使环形支架相互分离。

  1. 潜伏期:采用此模型进行标准牵张成骨时,将固定器安装于胫骨后,需静置5天的潜伏期。
  2. 牵张期:牵张成骨可通过每日旋转稳定杆上的螺母¼圈(0.25 mm),持续7天完成。
  3. 成熟期:牵张结束后约10天可观察到骨性连接,27天时可观察到完全骨性愈合。

4. 创建临界尺寸缺损

为了制造临界尺寸缺损,按照此前所述方法应用外固定器,并作如下修改。

  1. 开始操作前,使用70%乙醇清洁皮肤。
  2. 在制造骨缺损前,应完全安装固定器。
  3. 将小鼠置于解剖显微镜下以观察胫骨内侧,并使用手术刀上的#10刀片做一5–7 mm的切口。
  4. 轻柔地横断并分离肌肉,以暴露胫骨中段骨干。
  5. 然后使用剪刀切除一段3 mm长的骨组织。通过剪刀尖端缓慢剪除骨组织,必要时用镊子移除骨碎片。操作时应小心剪刀尖端,避免施加过大的机械力导致胫骨移位。
  6. 检查手术部位,确保无残留骨碎片,因为这些碎片可能促进骨愈合。
  7. 将肌肉复位至胫骨钝端周围。
  8. 使用2–3针6-0聚酰胺单丝缝线关闭皮肤切口。
  9. 逆转麻醉,监测动物疼痛情况,并按前述方法给予镇痛药物。

5. 代表性结果

当正确应用时,外固定器可为闭合性胫骨骨折提供更坚固的稳定性,并实现良好的复位效果(图 1, 2)。然而,在某些情况下复位不充分(骨端之间存在明显且较大的间隙,或发生多处骨折)(图 3),这些小鼠将被排除在分析之外。采用此方法稳定的骨折主要通过膜内成骨方式愈合(图 4)。相比之下,如果骨折未得到稳定,骨折间隙内会形成较大的软骨痂(图 5),随后通过膜内成骨过程被骨组织替代。

figure-protocol-1
图1. X线片显示用于稳定胫骨骨折的外固定装置。骨折后拍摄的X线片显示骨断端对位良好(箭头所示)。

figure-protocol-2
图2. 应用固定器后的小鼠图像。

figure-protocol-3
图3. 骨折后拍摄的X线片显示骨段移位且呈碎片状(箭头所示)。

figure-protocol-4
图4. 稳定的骨折通过膜内成骨方式愈合。对稳定骨折进行三色染色显示骨折部位存在部分新生骨组织(b)。比例尺 = 500 μm。

figure-protocol-5
图5. 未固定骨折通过软骨内成骨方式愈合。非稳定骨折的三色染色显示骨折部位存在软骨(c)和骨组织(b)。比例尺 = 500 μm。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

骨骼的愈合方式根据力学稳定性不同而分为两种模式(综述见:14)。当骨折部位不稳定时,骨折间隙内会形成较大的软骨模板,随后被骨组织替代,从而连接断裂的骨端。在骨折近端和远端,骨组织通过骨膜和骨内膜内的膜内成骨方式直接形成。相反,在稳定的骨折中,愈合过程完全通过膜内成骨实现3。然而,调控这两种过程之间转换的具体机制尚不清楚。有证据表明,干细胞在力学环境刺激下的命运受到遗传调控,并可被改变。在缺乏Mmp9的小鼠中,稳定骨折部位会形成软骨,提示Mmp9参与了骨折修复过程中干细胞命运的决定5。此外,如果在骨折修复过程中激活骨形态发生蛋白(Bone morphogenetic protein, BMP)信号通路,也可诱导稳定骨折部位形成软骨8,9。为了得出这些结论,在愈合早期提供刚性固定至关重要,因为干细胞命运的决定发生在损伤后的最初几天内11

正确应用我们的外固定方法可用于稳定骨骼,以评估骨折愈合过程中的膜内成骨。我们的方法可制造出伴随其他肢体损伤的骨折,类似于...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

我们没有需要披露的内容。

致谢

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本工作由NIAMS的R01-AR053645基金资助。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
0.25 mm 昆虫针Fine Science Tools26000-25黑色阳极氧化钢,0.25 mm 杆径,4 cm 长度
不锈钢六角螺母Small Parts, Inc.#2-561/8" 长度,每英寸 56 牙螺纹
不锈钢六角螺母Small Parts, Inc.#0-801/8" 长度,每英寸 80 牙螺纹
不锈钢机械螺钉Small Parts, Inc.#0-801/8" 长度,每英寸 80 牙螺纹
不锈钢机械切削螺纹杆Small Parts, Inc.#0-806" 长度,每英寸 80 牙螺纹
18-8 不锈钢头部机械螺钉McMaster-Carr2-56 螺纹,3/6" 长度
外固定装置机加工车间定制设计

参考文献

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ilizarov, G. A., Lediaev, V. I., Shitin, V. P. The course of compact bone reparative regeneration in distraction osteosynthesis under different conditions of bone fragment fixation (experimental study). Eksperimentalnaia Khirurgiia i Anesteziologiia. 14, 3-12 (1969).
  2. Ilizarov, G. A., Deviatov, A. A. Surgical elongation of the leg. Ortopediia Travmatologiia i Protezirovanie. 32, (1971).
  3. Thompson, Z., Miclau, T., Hu, D., Helms, J. A. A model for intramembranous ossification during fracture healing. J. Orthop. Res. 20, 1091-1098 (2002).
  4. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal. J. Orthop. Res. 2, 97-101 (1984).
  5. Colnot, C., Thompson, Z., Miclau, T., Werb, Z., Helms, J. A. Altered fracture repair in the absence of MMP9. Development. 130, 4123-4133 (2003).
  6. Lange, J. Action of IL-1beta during fracture healing. J. Orthop. Res. 28, 778-784 (2010).
  7. Xing, Z. Multiple roles for CCR2 during fracture healing. Dis. Model Mech. 3, 451-458 (2010).
  8. Lu, C. Recombinant human bone morphogenetic protein-7 enhances fracture healing in an ischemic environment. J. Orthop. Res. , (2009).
  9. Yu, Y. Y., Lieu, S., Lu, C., Colnot, C. Bone morphogenetic protein 2 stimulates endochondral ossification by regulating periosteal cell fate during bone repair. Bone. 47, 65-73 (2010).
  10. Lu, C., Miclau, T., Hu, D., Marcucio, R. S. Ischemia leads to delayed union during fracture healing: a mouse model. J. Orthop. Res. 25, 51-61 (2007).
  11. Miclau, T. Effects of delayed stabilization on fracture healing. J. Orthop. Res. 25, 1552-1558 (2007).
  12. Tay, B. K., Le, A. X., Gould, S. E., Helms, J. A. Histochemical and molecular analyses of distraction osteogenesis in a mouse model. Journal of Orthopaedic Research. 16, 636-642 (1998).
  13. Choi, P., Ogilvie, C., Thompson, Z., Miclau, T., Helms, J. A. Cellular and molecular characterization of a murine non-union model. J. Orthop. Res. 22, 1100-1107 (2004).
  14. Buckwalter, J. A., Marsh, E. T., J, L. Rockwood and Green's fractures in adults. Heckman, J. D., Bucholz, R. W. , Lippincott Williams & Wilkins. 245-271 (2001).
  15. Garcia, P. The LockingMouseNail-A New Implant for Standardized Stable Osteosynthesis in Mice. J. Surg. Res. , (2009).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

X

相关文章